Патенты автора Остерман Илья Андреевич (RU)
Изобретение относится к биотехнологии. Штамм бактерий Amycolatopsis rifamycinica, обладающий способностью продуцировать тетраценомицин Х, депонирован в Национальном Биоресурсном Центре Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов НИЦ «Курчатовский институт» - ГосНИИгенетика под регистрационным номером ВКПМ Ас-2086. Изобретение обеспечивает получение культуральной жидкости с повышенным содержанием тетраценомицина Х. 3 ил., 1 табл., 1 пр.
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ НИБОМИЦИНА // 2718802
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к производству антибиотика нибомицина. Осуществляют культивирование штамма-продуцента Streptomyces iakyrus ВКПМ Ас-2084. Штамм выращивают на питательной среде, содержащей глюкозу, аспарагин и гидроортофосфат калия и воду при заданном содержании компонентов. Осуществляют последовательную фильтрацию культуральной жидкости через бумажные, а затем мембранные фильтры. Отфильтрованную культуральную жидкость фракционируют на селективном сорбенте с последующей десорбцией 20±3%-ным водным раствором ацетонитрила при нейтральном рН и инкубированием элюата до выпадения кристаллов нибомицина. Изобретение позволяет повысить выход нибомицина. 3 з.п. ф-лы, 4 ил., 1 табл.,1 пр.
Изобретение относится к биотехнологии. Штамм микроорганизма Streptomyces iakyrus Ре6, обладающий способностью продуцировать нибомицин, депонирован во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов под регистрационным номером Ас-2084. Штамм Streptomyces iakyrus ВКПМ Ас-2084 может быть использован в качестве продуцента нибомицина. Изобретение позволяет повысить выход нибомицина. 2 ил., 1 пр.
Группа изобретений относится к биотехнологии. Способ получения амикумацина предусматривает культивирование штамма бактерий Bacillus pumilus ВКПМ В-12548 на жидкой питательной среде, содержащей сахарозу, глюкозу, дрожжевой экстракт, К2НРО4, NaCl, MgSO4, (NH4)2SO4, FeSO4×7H2O, MnCl2×4H2O, CaCO3 и водопроводную воду в заданном соотношении компонентов с последующим выращиванием в условиях аэрирования в течение 40-42 ч. Проводят осаждение клеток бактерий из культуральной жидкости центрифугированием с получением надосадочной жидкости. К надосадочной жидкости добавляют сорбент Amberlite XAD-2 с последующим элюированием амикумацина А системой н-бутанол-ацетон-вода в соотношении 1:1:1. Изобретение позволяет повысить выход антибиотика амикумацина А. 2 н.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл., 1 пр.
Изобретение относится к биотехнологии, конкретно к методам поиска антибактериальных веществ природного и синтетического происхождения с одновременным анализом механизма их действия, и может быть использовано для идентификации соединений, ингибирующих биосинтез белка и/или вызывающих SOS-ответ у бактерий. Генетическая конструкция содержит гены двух флюоресцентных белков с различимыми спектрами флюоресценции. Экспрессия одного из генов флюоресцентных белков активируется при остановке трансляции предшествующего ему генетически модифицированного аттенюатора триптофанового оперона Escherichia coli. Экспрессия второго гена активируется при дерепрессии предшествующего ему промотора гена sulA Escherichia coli. Генетическая конструкция представляет собой плазмиду, которой трансформируют клетки бактерий Е. coli для получения штамма-репортера Е. coli ΔtolC. Полученный штамм Е. coli ΔtolC позволяет проводить высокопроизводительный анализ (скрининг) большого количества веществ или смесей для поиска среди них антибактериальных веществ, с одновременным выявлением тех из них, которые ингибируют биосинтез белка и/или вызывают SOS-ответ на повреждения ДНК. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 5 ил., 1 табл., 3 пр.
Изобретение относится к области молекулярной биологии и медицины и предназначено для обнаружения модифицированных нуклеотидов в составе РНК. Осуществляют подбор подходящей для исследуемой области РНК пары олигонуклеотидных зондов, подбор пары донора и тушителя флуоресценции с подходящими оптическими свойствами. Проводят прямой химический синтез модифицированных зондов, оценивают их эффективность в ходе плавления с РНК, содержащей известные модификации. Оценивают полученные параметры плавления для каждой конкретной системы. Анализируют контрольную и исследуемую РНК, подвергая смесь зондов и РНК сильному нагреванию, медленному охлаждению, а затем контролируемому нагреванию с одновременной детекцией интенсивности флуоресценции, причем параметры исследования выбирают с учетом конкретной системы. Результаты плавления анализируют, оценивая характер кривых плавления, и делают вывод о наличии или отсутствии модификации в исследуемой РНК при наличии или отсутствии модификаций в контрольной РНК. Предлагаемый способ эффективен для обнаружения различных типов модификаций РНК и позволяет детектировать наличие модификаций, которые не препятствуют образованию Уотсон-Криковских пар между нуклеотидами. 16 з.п. ф-лы, 3 ил., 1 пр.
