Патенты автора Менделеева Лариса Павловна (RU)
Способ определения абсолютной длины теломер лейкоцитов с помощью метода проточной цитометрии // 2763935
Изобретение относится к медицине, клинической и лабораторной практике. Способ определения абсолютной длины теломер (АДТ) лейкоцитов с помощью метода проточной цитометрии заключается в том, что измеряют длину теломер на проточном цитометре для определения значения средней интенсивности флуоресценции (СИФ). Далее получают значения СИФ. Строят калибровочную прямую для перевода СИФ в молекулярный эквивалент флуоресценции (МЭФ). Затем получают уравнение для перевода СИФ в МЭФ. Получают значения МЭФ. Рассчитывают значения АДТ на основе регрессионной модели. При этом регрессионную модель получают на основе регрессионного анализа значений МЭФ и с использованием данных АДТ, полученных параллельно методом полимеразной цепной реакции в реальном времени (ПЦР РВ). Изобретение обеспечивает простой, быстрый, точный и универсальный способ определения АДТ. 2 з.п. ф-лы, 4 пр., 5 ил.
Изобретение относится к области медицины, в частности к гематологии, а именно к прогнозированию почечного ответа на противомиеломную терапию при миеломной каст-нефропатии с острым почечным повреждением с потребностью в диализе. Прогнозирование проводят путем исследования биоптатов пораженной почки, при этом осуществляют окрашивание не менее двух биоптатов пораженной почки, один из которых окрашивают по Массону, другой иммуногистохимически, исследуя с антителом к Е-кадгерину, после чего количественный анализ морфологических изменений в биоптатах пораженных почек проводят методом компьютерной морфометрии, определяют площадь интерстиция, площадь фиброза интерстиция и площадь экспрессии Е-кадгерина, затем рассчитывают индекс фиброза интерстиция (ФИ) как отношение площади ФИ к площади интерстиция ×100, в %, и индекс площади экспрессии Е-кадгерина как отношение площади экспрессии Е-кадгерина к площади интерстиция ×100, %. При значении индекса площади экспрессии Е-кадгерина менее 10% в сочетании со значением индекса площади фиброза интерстиция более 40% прогнозируют отсутствие почечного ответа на эффективную противомиеломную терапию у пациентов с миеломной каст-нефропатией, острым почечным повреждением и потребностью в диализе. Изобретение обеспечивает высокую достоверность прогноза почечного ответа на противомиеломную терапию у пациентов с миеломной каст-нефропатией, острым почечным повреждением и потребностью в диализе. 4 ил., 1 табл., 2 пр.
Изобретение относится к области медицины и представляет собой способ определения индекса выраженности интерстициального фиброза почек при миеломной нефропатии, включающий световое микроскопическое исследование биоптатов почек, окрашенных трихромом по Массону, отличающийся тем, что осуществляют цифровую обработку и компьютерный морфометрический анализ оптического изображения коркового вещества биоптата почки, при этом последовательно измеряют площадь коркового вещества почки (sКВ), а также составляющие его следующие структуры: площадь всех клубочков, в том числе склерозированных (sКлуб), площадь просвета канальцев (sПКан), площадь цилиндров, в том числе и патологических в просветах канальцев (sЦил), затем рассчитывают площадь интерстиция (sИ) по формуле: sИ=sКВ-(sКлуб+sПКан+sЦил) и вычисляют площадь фиброзной патологической ткани в интерстиции (sИФ) на всем протяжении коркового вещества биоптата почки, а индекс выраженности интерстициального фиброза (ИИФ) рассчитывают по формуле: выраженность ИИФ=sИФ/sИ*100. Изобретение обеспечивает расширение технических средств для определения выраженности интерстициального фиброза почек при миеломной нефропатии с высокой точностью. 2 ил., 3 табл., 2 пр.
Изобретение относится к области медицины, а именно к иммунологии и онкогематологии, и может быть использовано для контроля качества исследуемого образца при мониторинге минимальной резидуальной болезни при множественной миеломе методом проточной цитофлуориметрии аспирата костного мозга. Для этого вначале проводят лизис аспирата костного мозга и после центрифугирования оценивают клеточность полученной суспензии на наличие ядросодержащих клеток и до 3×106 ядросодержащих клеток образца из полученного осадка окрашивают моноклональными антителами, инкубируют и анализируют образец. При этом полученный осадок окрашивают с использованием шестицветной панели моноклональных антител: CD38, меченого флуоресцеин изотиоцианатом, CD138, меченого фикоэритрином, CD45, меченого аллофикоцианином-Су7, CD19, меченого перидинин-хлорофиллом-Су5.5, CD56, меченого фикоэретрином-Су7, CD27, меченого аллофикоцианином. После инкубации производят цитометрический анализ и выделяют всю популяцию плазматических клеток на основе экспрессии маркеров CD38, CD138 и CD45. Оценивают уровни экспрессии на плазматических клетках маркеров CD19, CD56, CD45 и CD27 и при наличии на плазматических клетках двух или более признаков их аномальности, в частности отсутствие экспрессии CD19, отсутствие экспрессии CD45, отсутствие экспрессии CD27 или наличие экспрессии CD56, плазматическую клетку считают резидуальной. И при выявлении таких клеток в исследуемом образце его анализируют на наличие В-клеточных предшественников по маркерам CD45 и CD38, и при их количестве менее 0,33% от всей популяции ядросодержащих клеток суспензии костного мозга оценивают качество аспирата костного мозга как неудовлетворительное, то есть образец чрезмерно разведен периферической кровью, и во избежание ложноотрицательного результата на наличие минимальной резидуальной болезни при множественной миеломе рекомендуют повторное проведение пункции костного мозга, а при наличии 0,33% и более В-клеточных предшественников оценивают качество образца костного мозга как удовлетворительное и указывают долю найденных резидуальных плазматических клеток от всех ядросодержащих клеток. Использование данного способа позволяет проводить оценку качества аспирата костного мозга в процессе проведения мониторинга минимальной резидуальной болезни при множественной миеломе, включающего его исследование на наличие популяции клеток многоцветной проточной цитофлуориметрией. 2 пр., 3 ил.
Изобретение относится к области медицины, а именно к гематологии, и может быть использовано для лечения рецидива острого миелоидного лейкоза (ОМЛ) после трансплантации аллогенных гемопоэтических стволовых клеток. Для этого больному проводят химиотерапию с последующим введением (с учетом состояния донорского лейкоцитарного химеризма) лимфоцитов донора костного мозга в сочетании с интерлейкином 2 (ИЛ-2). Причем химиотерапию проводят путем внутривенного введения противоопухолевых средств цитабарина в дозе 100 мг/м2 2 раза в сутки в течение 7 дней и идарубицина в дозе 12 мг/м2 1 раз в сутки в течение 3 дней. Затем на фоне миелотоксического агранулоцитоза при количестве гранулоцитов менее 0,5×109/л осуществляют трансфузию лимфоцитов донора костного мозга в дозе 1×107 CD3+клеток/кг массы тела больного с последующим внутривенным капельным введением через 1-2 часа ИЛ-2 в дозе 6 млн МЕ. Далее при отсутствии 100% донорского лейкоцитарного химеризма и признаков реакции «трансплантат против хозяина» проводят следующие две трансфузии лимфоцитов донора и инфузии ИЛ-2 в дозе 6 млн. МЕ, при этом первую из двух трансфузию лимфоцитов донора костного мозга осуществляют в дозе 5×107 CD3+клеток/кг, а вторую в дозе 1×108 CD3+клеток/кг. Интервал между трансфузиями составляет 2-4 недели. Далее проводят курсы поддерживающей терапии ИЛ-2 в дозе 2 млн МЕ в день в течение 5 дней внутривенно, интервал между курсами 4-5 недель с длительностью поддерживающей терапии в течение 2-х лет. Способ обеспечивает повышение эффективности лечения посттрансплантационных рецидивов, достижение стойких повторных ремиссий, повышение общей выживаемости больных острым миелоидным лейкозом. 2пр.
