Патенты автора Гилевич Ирина Валериевна (RU)

Изобретение относится к медицине, а именно к регенеративной медицине, и может быть использовано в реконструктивной хирургии для создания технологии получения и использования в практических целях биоинженерного матрикса в качестве трансплантата. Для этого осуществляют забор свиной дермы толщиной 3 мм после предварительного снятия эпидермиса дерматомом, далее образцы замораживают до температуры -80°С, после разморозки образцы заливают раствором Трипсин-Версена и помещают в шейкер-инкубатор в режиме 100 об/мин при 37°С на 18 часов; на втором этапе образцы помещают на вращающуюся платформу в режиме 170 об/мин и подвергают последовательному циклическому воздействию растворов детергентов: 1% раствора Тритона X100 в течение 2 часов и 4% раствора дезоксихолата натрия в комбинации с 0,002 М Na2-ЭДТА в течение 2 часов, общее число циклов обработки равняется 5. После каждого детергента образцы промывают в деионизированной воде в течение 10 минут. На третьем этапе следует обработка образцов раствором свиной панкреатической ДНКазы I (2000 ЕД растворяли в 200 мл фосфатного буфера с кальцием и магнием) в шейкер-инкубаторе в режиме 100 об/мин при 37°С в течение 4 часов. Завершают децеллюляризацию воздействием 10% раствора хлоргексидина биглюконата в фосфатном буфере в течение 24 часов со сменой раствора каждые 6 часов. После этого подтверждают качество децеллюляризации методами гистологического исследования, молекулярно-биологического анализа и культуральными методами. Способ позволяет сократить время экспозиции воздействия децеллюляризирующих растворов, снизить уровень остаточной ДНК в ткани до 60 нг/мг ткани во влажном образце.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к клеточным технологиям, может также быть использовано в медицине и ветеринарии. Предложен способ модификации пролиферативной активности клеточных культур млекопитающих с применением D-аспарагина. С использованием данного способа повышается эффективность культивирования клеток млекопитающих и эффективность питательной среды для культивирования клеток млекопитающих, снижается себестоимость культивирования клеток млекопитающих, а также расширяется база добавок, способных модулировать пролиферативную активность культивируемых клеток млекопитающих, в питательные среды. 2 ил., 2 табл., 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной медицине, и может быть использовано для создания модели для изучения физиологии и патологии пренатального периода онтогенеза на курином эмбрионе. Осуществляют бесскорлупное культивирование куриного эмбриона. На дно полиэтиленового стакана наливают 30 мл бензилдиметил[3-(миристоиламино)пропил]аммоний хлорид моногидрата. В стакан свободно кладут полиэтиленовую пленку с образованием «мешка» и придают ему овоидную форму. Изготавливают по периметру пленки, в верхней ее части, 8 отверстий диаметром 7-9 мм. Добавляют на дно сформированного из пленки «мешка» 450-500 мг альгината кальция и 3 мл высокоочищенной воды. Затем переносят в полученный «мешок» оплодотворенное, выдержанное в течение 45-50 часов при Т 38°С и влажности 80%, куриное яйцо, с которого с помощью шаровидного твердосплавного бора и микромотора с прямым наконечником и пинцета для микроманипуляций после обработки хлоргексидином удалена скорлупа и подскорлупная оболочка. После чего в область желтка наносят с помощью шприца 0,4 мг гентамицина сульфата и сверху на стакан плотно натягивают полиэтиленовую пленку. Стакан помещают в термостат для инкубации при температуре 38°С и влажности 80% с наклоном под углом 8-10°. Дважды в сутки стакан наклоняют в противоположную сторону. На 6 день в боковой поверхности чуть выше уровня жидкости делают отверстие 7 мм и с 17 дня инкубации через него от концентратора кислорода с помощью трубки соответствующего диаметра подают обогащенную кислородом воздушную смесь, проведенную через увлажнитель-очиститель с ультразвуковым испарителем. На 21 сутки из стакана извлекают живого цыпленка. Способ обеспечивает культивирование куриного эмбриона ex ovo до получения живого цыпленка на 21-22 сутки инкубации за счет использования особой системы для культивирования на основе широкодоступных компонентов, условия в которой приближены к естественным. 3 ил., 2 пр.

Изобретение относится к области экспериментальной медицины, а именно к хирургии, травматологии, пластической хирургии, дерматологии, косметологии, ветеринарии. Предложено средство для профилактики образования патологических кожных рубцов, содержащее, масс.%: D-аспарагин - 0,1-0,5, полиэтиленгликоль-400 - 77,75-77,95 и полиэтиленгликоль-1500 - 22,75-22,95. Аппликация средства для профилактики образования патологических кожных рубцов на рану с 3-х по 5-е сутки от ее нанесения на 28-е сутки проявляется значительным сокращением количества дезорганизованных коллагеновых волокон в составе рубца, а к 60-м суткам - уменьшением площади кожного рубца в среднем в 3,4 раза. Полученные данные свидетельствуют о высокой эффективности средства для профилактики образования патологических кожных рубцов в эксперименте у крыс. 4 пр., 2 ил.

Изобретение относится к медицине, а именно к торакальной хирургии, и может быть использовано при лечении бронхиальных свищей. Для этого в послеоперационном периоде после выявления методом фибробронхоскопии бронхиального свища размером более 5 мм размораживают дермальные аллофибробласты и ресуспендируют в 2 мл 0,9% физиологического раствора NaCl до конечной концентрации клеток 2,0×106 в дозе. Одновременно выполняют температурный лизис обогащенной тромбоцитами аутологичной плазмы с исходным содержанием в ней тромбоцитов 1,85×109/л для получения 2 мл аутологичного лизата тромбоцитов. Затем полученные компоненты смешивают в шприце. Подсоединяют шприц к эндоскопическому инъектору и производят 4-6 инъекций по периметру свища в подслизистый слой, отступив 1-2 мм от края свища на глубину 1 мм на одинаковом расстоянии друг от друга. Процедуру повторяют на 3-й и 5-й дни лечения с последующим цитологическим и гистологическим контролем результатов лечения. Способ обеспечивает устранение послеоперационных дефектов бронхов размером более 5 мм за счет раннего начала терапии активированными дермальными аллофибробластами. 5 ил., 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к пластической хирургии, травматологии, нейрохирургии, комбустиологии и может быть использовано при выполнении комбинированной аутопластики. На раневой дефект перед пластикой аутосальника используют 20 мл аутологичной плазмы, обогащенной тромбоцитами, в концентрации 1,4*109/л, приготовленной из венозной крови, взятой в день операции, и аллогенные замороженные дермальные фибробласты 3-го пассажа в физиологическом растворе NaCl 0,9% в конечной концентрации 2,0 млн клеток в 1 мл из расчета расхода не менее 35 тыс. клеток на 1 см2 поверхности раны путем орошения; а на аутосальник под кожный аутотрансплантат используют аллогенные замороженные дермальные фибробласты 3-го пассажа в физиологическом растворе NaCl 0,9% в конечной концентрации 2,0 млн клеток в 1 мл из расчета расхода не менее 40 тыс. клеток на 1 см2 путем орошения. Способ позволяет создать условия быстрого приживления и эпителизацию кожного аутотрансплантата на сальнике в связи с применением фибробластов; создать условия полноценной адаптации аутосальника на глубоких анатомических структурах в связи с применением фибробластов и плазмы, обогащенной тромбоцитами; при обнажении глубоких анатомических структур за одну операцию закрыть раневой дефект, претовратить развитие инфекционных осложнений, тем самым сохранить жизнь пострадавшим. Заполнение сальником глубоких раневых дефектов с одномоментной кожной аутопластикой на лице является альтернативой к трансплантации лица и/или уменьшает показания в проведении длительных реконструктивных операций. 5 ил.

Изобретение относится к медицине, а именно к пластической хирургии, комбустиологии и может быть использовано при выполнении кожной аутопластики у тяжело обожженных больных. Способ включает проведение интенсивного общего лечения, а также местного лечения в виде некрэктомии, подготовки раны, аутотрансплантации с перфорацией по МЕЕК-технологии и использования культуры дермальных аутофибробластов. При этом в первые 1-3 дня после травмы производят забор дермальной ткани толщиной 0,25-0,35 мм, площадью 5 кв.см, с целью выделения и культивирования аутологичных дермальных фибробластов до 4-го пассажа. Полученными фибробластами в конечной концентрации 2,0 млн клеток в 1 мл физиологического раствора в ходе операции перед аутопластикой орошают рану, дермальную поверхность перфорационных кусочков аутокожи и ткань, входящую в комплектацию МЕЕК-перфорации со стороны прикрепленной к ней аутокожи. Орошение проводят из расчета расхода не менее 40 тыс.клеток на 1 кв.см поверхности раны и перфорированного аутотрансплантата. Способ позволяет создать условия быстрого приживления и эпителизации перфорированного аутотрансплантата, исключает риск передачи гемотрансмиссивных инфекций, позволяет уменьшить площадь донорских участков и тем самым решить вопрос дефицита донорских участков у тяжело обожженных больных. 5 ил., 2 пр.

Предлагаемое изобретение относится к медицине, а именно к пластической хирургии и комбустиологии. Способ пластики полнослойным кожным аутотрансплантатом, включающий аутотрансплантацию после 17-22-го дня после травмы цельным полнослойным свободным кожным аутотрансплантатом на гранулирующую рану с предварительным иссечением на глубину 1-2 мм верхних слоев грануляций и краев раны отступя на 0,5-2,0 см. При этом в первые 1-3 дня после травмы производят забор расщепленного кожного аутотрансплантата толщиной 0,25-0,3 мм и площадью 10 кв. см. Получают из него культуру дермальных аутофибробластов до третьего пассажа в конечной концентрации 1,3 млн клеток в 1 мл из расчета расхода не менее 25 тыс. клеток на 1 кв. см. обрабатываемой поверхности. При этом полученную культуру дермальных аутофибробластов в 0,9%-ном физиологическом растворе наносят на 25-30 мин перед аутопластикой путем орошения внутренней поверхности полнослойного аутотрансплантата и ожоговой раны после иссечения грануляций. Способ позволяет создать условия быстрого приживления и адаптации цельного полнослойного свободного кожного аутотрансплантата на гранулирующую рану после ее иссечения, исключить риск передачи гемотрансмиссивных инфекции, уменьшить риск развития грубой рубцовой ткани в отдаленном послеоперационном периоде. 6 ил., 2 пр.

 


Наверх