Рекомбинантная плазмида plfn-f-pa кодирующая синтез лейкоцитарного интерферона человека, и штамм e. coli - продуцент лейкоцитарного интерферона f человека

 

(19)SU(11)1312962(13)A1(51)  МПК ⁵    _C12N15/19(12) ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯк авторскому свидетельствуСтатус: по данным на 17.01.2013 - прекратил действиеПошлина:

(54) РЕКОМБИНАНТНАЯ ПЛАЗМИДА plFN-αF-Pa КОДИРУЮЩАЯ СИНТЕЗ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА ЧЕЛОВЕКА, И ШТАММ E. COLI - ПРОДУЦЕНТ ЛЕЙКОЦИТАРНОГО ИНТЕРФЕРОНА αF ЧЕЛОВЕКА

Изобретение относится к микробиологической промышленности, молекулярной биологии и генетической инженерии и представляет собой сконструированную in vitro рекомбинантную плазмиду, обеспечивающую биосинтез лейкоцитарного интерферона человека, и штамм E. coli, содержащий эту плазмиду, - продуцент лейкоцитарного интерферона αF человека. Целью изобретения является упрощение технологии крупномасштабного производства лейкоцитарного интерферона αF человека. П р и м е р 1. Конструирование рекомбинантной плазмиды pIFN- αF-P2. 1. Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP1. 150 мкг РФ1 ДНК фага ФХ174 расщепляют с помощью 200 ед. эндонуклеазы рестрикции AluI в буфере, содержащем 50 мМ NaCl, 10 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl₂ и 10 ммоль меркаптоэтанола, при 37^оС в течение 2 ч. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера, содержащего 10 ммоль трис-HCl (рН 8,0) и 1 ммоль ЭДТА, после чего наносят на 8%-ный полиакриламидный гель (ПААГ) и подвергают электрофоретическому разделению при 60 мА в течение 8 ч. Полоску геля, содержащую фрагмент ДНК А6, вырезают и ДНК элюируют по Максаму - Гилберту. Полученный таким образом фрагмент, содержащий промотор, рибосомо-связывающий участок (последовательность Шайн - Дальгарно SD) и 19 N-концевых кодонов гена D фага ФХ174, встраивают в плазмидный вектор pBRH4, который предварительно расщепляют эндонуклеазой рестрикции EcoRI и обрабатывают Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы 1 E. coli в присутствии dATP и dTTP для достройки выступающих 5'-концов. 1 мкг подготовленного таким способом вектора pBRH4 и 0,1 мкг фрагмента Р1 соединяют с помощью 5 ед. Т4-ДНК-лигазы в буфере, содержащем 50 ммоль трис-HCl (рН 7,5), 10 ммоль MgCl₂, 5 ммоль DTT и 0,2 ммоль ATP, при 15^оС в течение 16 ч. Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Полученной смесью рекомбинатных ДНК трансформируют клетки E. coli К 802 по известному методу. Эффективность трансформации составляет 10⁷ колоний на 1 мкг плазмидной ДНК pBR 322. Отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину (10 мкг Тс на 1 мл), и проводят их рестрикционный анализ. 2. Конструирование рекомбинантной плазмиды pGDP2. Фрагмент Р1 выделяют из состава плазмиды pGDP1, расщепляя ее (200 мкг) с помощью 400 ед. эндонуклеазы. EcoR1 в буфере, содержащем 100 ммоль NaCl, 50 ммоль трис-HCl (рН 7,5), 10 ммоль MgCl₂, 1 ммоль DTT, при 37^оС 90 мин. Общий объем реакционной смеси 800 мкл. Смесь субфрагментов обрабатывают фенолом, осаждают этанолом и растворяют в 150 мкл ТЕ-буфера. Отделение фрагмента Р1 от исходного вектора производят с помощью электрофореза в 8%-ном ПААГ при 60 мА в течение 8 ч. Фрагмент Р1 элюируют из геля, как указано. Затем фрагмент Р1 дефосфорилируют, вводят 5'-концевую метку с помощью [j-³²Р]АТР и Т4-полинуклеотидкиназы по Максаму - Гилберту. Меченый фрагмент Р1 расщепляют эндонуклеазой рестрикции BspRI на большой [226 пар оснований (п. о. )] и малый (11 п. о.) EcoRI-BspRI-фрагменты. 14 мкг полученной смеси фрагментов расщепляют с помощью 14 ед. эндонуклеазы Hinf I в буфере, содержащем 50 ммоль NaCl, 10 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl₂ и 10 ммоль меркаптоэтанола, при 37^оС, отбирая аликвоты через 5, 10, 20, 30 и 40 мин. Общий объем реакционной смеси 40 мкл. Так добиваются частичного гидролиза фрагмента P1 эндонуклеазой Hinf I. Смесь субфрагментов наносят на 8%-ный ПААГ и разделяют при 60 мА в течение 6 ч. Фрагмент Р2 (226 п.о.) элюируют из геля, как указано, и используют для конструирования плазмиды pGDP2. Для этого 0,05 мкг фрагмента Р2 обрабатывают 5 ед. S₁-нуклеазы в буфере, содержащем 0,2 моль NaCl, 50 ммоль ацетата натрия (рН 4,5), 1 ммоль ZnSO₄ и 5%-ный глицерин, при 20^оС в течение 20 мин. По окончании инкубации смесь обрабатывают фенолом, хлороформом и ДНК осаждают этанолом. Затем подготовленный таким образом фрагмент Р2 встраивают в плазмиду pBRH4, предварительно расщепленную эндонуклеазой EcoRI и обработанную Кленовским фрагментом ДНК-полимеразы 1 E. coli в присутствии dATP и dTTP. Ферментативное соединение фрагмента Р2 и вектора проводят, как указано, с помощью Т4-ДНК-лигазы в 50 мкл реакционной смеси. Полученной смесью рекомбинантных плазмид трансформируют клетки E. coli HB 101 и отбирают клоны, устойчивые по крайней мере к 10-20 мкг тетрациклина на 1 мл среды. Отобранные клоны подвергают рестрикционному анализу с последующим определением первичной структуры вставок. 3. Получение рекомбинантной плазмиды pIFN- αA-P2. 5 мкг неэкcпрессирующей плазмиды pIFN- αA-310 обрабатывают 10 ед. эндонуклеазы рестрикции EcoRI в буфере, содержащем 100 ммоль NaCl, 50 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl₂ и 1 ммоль DTT, при 37^оС в течение 90 мин. Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Затем ДНК осаждают этанолом и растворяют в 50 мкл буфера, содержащего 33 ммоль трис-HCl (рН 7,9), 66 ммоль ацетата калия, 10 ммоль MgCl₂ и 1 ммоль DTT. В реакционную смесь добавляют dTTP до конечной концентрации 0,4 ммоль и 1,5 ед. Т4-ДНК-полимеразы. Реакцию проводят при 12^оС в течение 90 мин, затем ДНК осаждают этанолом и растворяют в буфере, содержащем 0,2 ммоль NaCl, 50 ммоль ацетата натрия (рН 4,5), 1 ммоль ZnSO₄ и 5%-ный глицерин. К реакционной смеси (20 мкл) добавляют 20 ед. S₁-нуклеазы и инкубируют при 20^оС 30 мин. По окончании реакции ДНК обрабатывают фенолом, хлороформом и осаждают этанолом. 1 мкг подготовленной таким образом плазмиды pIFN- αA-310 сшивают с 0,2 мкг фрагмента Р2, обработанного аналогично вектору Т4-ДНК-полимеразой в присутствии dTTP и S₁-нуклеазой. Лигирование проводят в 50 мкл буфера, содержащего 20 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl₂, 5 ммоль DTT, 0,2 ммоль ATP и 20 ед. Т4-ДНК-лигазы, при 10^оС в течение ночи. Продуктами лигазной сшивки трансформируют клетки E. coli К 802 и с помощью гибридизации колоний in situ отбирают клоны, устойчивые к тетрациклину и содержащие вставку - фрагмент Р2. В качестве "зонда" при гибридизации используют ³²Р - меченый фрагмент Р2. 20 из 140 гибридизирующихся с промоторсодержащим "зондом" клонов анализируют на продукцию интерферона радиоиммунологическим методом. В результате получают плазмиду pIFN- αA-Р2. 4. Конструирование рекомбинантной плазмиды pIFN- αF-Р2. 20 мкг плазмиды pIFN- A-P2 расщепляют смесью эндонуклеаз рестрикции. Hind III и Sam3AI в 50 мкл буфера, содержащего 50 ммоль трис-HCl (рН 7,5), 50 ммоль NaCl, 10 ммоль MgCl₂, 1 ммоль DTT и 20 ед. каждой из эндонуклеаз, при 37^оС в течение 1 ч. Реакционную смесь подвергают электрофоретическому разделению, как указано, для Alu I-гидролизата РФ1 ДНК фага ФХ174. Фрагмент ДНК, содержащий 251 п.о., элюируют из геля, как указано. 20 мкг плазмиды pIFN- αF-7, содержащей неэкспрессируемый ген интерферона αF, расщепляют эндонуклеазой рестрикции BamHI в буфере, состав которого указан выше, в присутствии 20 ед. фермента, 37^оС в течение 1 ч. Затем в реакционную смесь добавляют 5 ед. эндонуклеазы Sam3AI и проводят ограниченный гидролиз расщепленной BamHI плазмиды при 37^оС в течение 20 мин. Общий объем реакционной смеси 50 мкл. Фрагмент длиной 851 п.о. и содержащий С-концевую область гена αF-интерферона с помощью электрофореза в 4%-ной ПААГ отделяют от других фрагментов. 20 мкг вектора pBR 322 расщепляют смесью эндонуклеаз рестрикции BamHI и Hind III, как указано, и с помощью электрофореза в 1% -ном агарозном геле выделяют большой BamHI-Hind III - фрагмент плазмиды pBR 322. Затем 0,1 мкг данного фрагмента ферментативно сшивают с 0,01 мкг Hind III-Sam3AI-фрагмента (251 п.о.) плазмиды pIFN- αA-P2 и 0,01 мкг Sam3AI-BamHI - фрагмента (851 п.о.) плазмиды pIFN- αF-7 в 100 мкл буфера, содержащего 50 ммоль трис-HCl (рН 7,6), 10 ммоль MgCl₂, 1 ммоль DTT и 0,2 ммоль ATP, с помощью 10 ед. Т4-ДНК-лигазы при 14^оС в течение ночи. Полученной смесью рекомбинантных плазмид трансформируют клетки E. coli. Отбирают клоны с высоким уровнем биосинтеза зрелого αF-интерферона человека с помощью р адиоиммунологического анализа и получают рекомбинантную плазмиду pIFN- αF-P2. П р и м е р 2. Получение штамма - продуцента лейкоцитарного αF-интерферона человека. Рекомбинантную плазмиду pIFN- αF-P2 трансформируют в штамм E. coli К 802, как указано в примере 1, и получают штамм - продуцент зрелого лейкоцитарного интерферона αF человека. Активность интерферона определяют методом ингибирования цитопатического действия вируса везикулярного стоматита на диплоидные фибробласты человека и радиоиммунологическими методами. Содержание интерферона в 1 л культуры при OD₅₅₀ = 2,0 составляет 3 х 10⁸ ед. активности. П р и м е р 3. Кинетика накопления интерферона в культуре штамма - продуцента E. coli К 802/pIFN- αF-P2 в зависимости от фазы роста. 250 мл среды, содержащей в 1 л 10 г пептона, 5 г дрожжевого экстракта, 5 г NaCl и 5 мг тетрациклина (рН 7,5), загружают в 500-литровый ферментер и инокулируют 2,5 л ночного посевного материала (OD₅₅₀ = 2,5). Режим культивирования: 37^оС, воздух 1:1, давление 0,5 атм. Через определенные промежутки времени отбирают аликвоты и определяют в них активность интерферона радиоиммунологическими методами. В таблице представлены данные по определению активности интерферона в клеточных экстрактах штамма - продуцента E. coli, содержащего рекомбинантную плазмиду pIFN- αF-P2, в зависимости от оптической плотности культуры при OD₅₅₀. Из данных таблицы следует, что максимальный уровень активности интерферона в бактериальной клетке достигается при OD₅₅₀ культуры штамма-продуцента около 2,0. При этом средняя активность интерферона в клеточных экстрактах составляет 2 х 10⁸ ед. активности в 1 л культуры. В связи с этим ферментацию штамма-продуцента наиболее выгодно проводить до плотности культуры не выше 2,0 Е/л (550 нм). Таким образом, новая рекомбинантная плазмида pIFN- αA-P2, а также штамм E. coli, содержащий эту плазмиду, - продуцент лейкоцитарного интерферона αF человека позволяют значительно упростить процесс крупномасштабного получения интерферона αF человека при сохранении высокого уровня биосинтеза.

Формула изобретения

1. Рекомбинантная плазмида pIFN-αA-P2 , кодирующая синтез лейкоцитарного интерферона αF человека, характеризуется следующими признаками: имеет длину 4850 пар оснований (п.о.); состоит из Hind III - BamHI большого фрагмента плазмидного вектора pBR 322, регуляторной области гена D бактериофага ⊘X174, включающей промотор, участок связывания рибосом и инициирующий кодон ATG гена D, которая локализована с 1 по 216 п.о. и присоединена к Hind III-сайту плазмиды pBR 322, гена зрелого лейкоцитарного интерферона αA человека, локализованного с 217 по 755 п.о.; содержит в качестве генетических маркеров ген Tc^r, локализованный между 755 и 1600 п.о., и ген Ap^r, локализованный между 3400 и 4600 п.о, уникальные сайты узнавания эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от начала регуляторной области гена D, п.о.: EcoRI 4800, Hind III 4830, BaiHI 755, SalI 1040, PstI 3988, сайты узнавания другими эндонуклеазами рестрикции, расположенные на следующих расстояниях от начала регуляторной области гена D, п. о.: Pvu 493 и 2445, Hind III 1030 и 4286. 2. Штамм E.coli ЦМПМ В-3230 (Центральный музей промышленных микроорганизмов института ВНИИгенетика) - продуцент лейкоцитарного интерферона αA человека.

РИСУНКИ

Рисунок 1