Вакцинная композиция против репродуктивного и респираторного синдрома свиней (prrs) и способ ее получения, способ иммунизации свиней

 

Представлена авирулентная вакцина против репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRRS), которая эффективно иммунизирует свиней от этого заболевания, вместе со способом размножения вирусного возбудителя in vitro и способом аттенуирования вируса для вакцинного препарата. Использование вакцины позволяет избежать больших потерь в племенных стадах свиней и влиять на их репродуктивность. 3 с. и 11 з.п. ф-лы, 1 ил., 1 табл.

Предпосылки создания изобретения 1. Область изобретения Данное изобретение имеет отношение к области иммунологии и вирусологии и, более конкретно к вакцине, получаемой из патогенного вирусного штамма. Более конкретно, патогенная форма вируса модифицируется или ослабляется до авирулентной формы методами получения вакцин для использования против опустошительного нового заболевания свиней.

2. Описание прототипа Новое заболевание свиней, называемое по-разному, "таинственным заболеванием свиней", "синдромом респираторного заболевания и бесплодия свиней", "заболеванием "синие уши", или "репродуктивным и респираторным синдромом свиней" (PRRS), является причиной больших потерь в племенных стадах свиней в США и Канаде. Сходное заболевание появилось также во многих странах Европы. Заболевание проявляется в двух формах, причем одна является причиной отсутствия репродуктивной способности, а другая дает респираторное заболевание у молодых свиней. Форма заболевания с поражением репродуктивной системы описана Keffaber, K. K., "Reproductive Failure of Unknown Etiology", American Association of Swine Practitioners Newsletter, 1:109 (1989).

Наиболее выраженными клиническими симптомами формы заболевания с поражением репродуктивной системы являются спонтанные аборты на поздних сроках, преждевременный опорос (частота которого может быть такой высокой, как 20-30% от всех рождений) и рождение мумифицированных плодов, мертвых или болезненных поросят. Такие клинические симптомы обычно наблюдаются в группах со сроком беременности 4-16 недель или даже больше. Мертворожденные плоды в пораженном помете часто находятся на ранних стадиях мумификации, о чем свидетельствует изменение цвета кожи на желтовато-коричневый и постмортальный аутолиз. Также иногда наблюдаются уродства с куполообразной формой головы у плодов. Инфекция у свиноматок может пройти незамеченной или может проявляться в виде ухудшения общего состояния, продолжающегося несколько дней. Например, свиноматки могут отказываться от корма, и у них температура тела может быть выше или ниже нормальной. На стадии опороса у свиноматок может появляться депрессия, летаргия, гипертермия и случающаяся время от времени рвота. В некоторых пораженных группах до 75% всех поросят может быть потеряно. Экономические последствия этого заболевания, соответственно, ужасающи.

При респираторной форме заболевания проявляются клинические симптомы, которые наиболее выражены у поросят 3-8-недельного возраста, но как сообщается, встречаются у свиней всех возрастов в инфицированных группах. Заболевшие поросята растут медленно, имеют огрубевший волосяной покров, страдают дыхательной недостаточностью ("одышка", тяжелое дыхание) и наблюдается их повышенная гибель (до примерно 80% гибели до отъема).

Данные, полученные при предварительных исследованиях больших и микроскопических повреждений у поросят, пораженных респираторной формой заболевания, наводят на мысль, что микроскопические повреждения в легких являются важным клиническим признаком этого заболевания. Несмотря на выраженные симптомы респираторного заболевания, легкие, в которых по-видимому нет осложнения в виде вторичной бактериальной инфекции, или совершенно нормальны, или имеют легкое, диффузное изменение окраски поверхности легких на бронзово-серую. Тем не менее, микроскопическое исследование ткани легких больных PRRS поросят выявляет характерную картину интерстициальной пневмонии, по Collins J. Е. et al., "Respiratory Disease in Swine Herd Experiencing a Reproductive Failure Syndrom", Proceedings Minnesota Swine Conference for Veterinarians, p. 254, St. Paul, MN (September 10-18, 1990).

Соответственно, существует реальная потребность в этой области ветеринарии в эффективной вакцине, которая сможет исключить или по крайней мере облегчить последствия PRRS.

Краткое изложение изобретения Данное изобретение разрешает проблемы, изложенные выше, путем получения вакцины, которая эффективно снижает или предупреждает заболеваемость, вызываемую вирусом PRRS у свиней.

Вообще говоря, изобретение включает биологически чистую или чистую по вирусу культуру вируса PRRS вместе со всеми его мутантами и способы получения и использования этих вирионов. Вирус дикого типа способен вызывать PRRS у свиней, но модифицированные формы вируса или непатогенные его мутанты дают эффективную вакцину от этого заболевания. Вакцина предпочтительно включает живой модифицированный или аттенуированный вирус и фармацевтически эффективное вещество-носитель. Модифицированный вирус предпочтительно размножают и сохраняют в линии клеток почки человекообразной обезьяны, и эта линия клеток является, предпочтительно, МА-104, которая является клетками почек африканской зеленой мартышки, пропассированными двадцать и более раз.

Патогенный вирусный возбудитель был выделен из гомогената ткани инфицированной свиньи, и его патогенность подтверждена путем вызова заболевания PRRS у многих поросят и беременных свиноматок. Выделенный вирусный возбудитель был помещен на хранение 18 июля 1991 г. в Американскую коллекцию типовых культур в Роквилле, штат Мэриленд под номером поступления ATCC-VR2332. Этот вирусный возбудитель является негемагглютинирующим оболочечным РНК-вирусом.

Вирус дикого типа предпочтительно модифицируют до по существу авирулентной формы путем посева вируса на полный или частичный слой клеток обезьяны в присутствии сыворотки в подходящей для роста среде, инкубации засеянного слоя клеток при температуре от примерно 35^oC до примерно 37^oC до тех пор, пока не будет наблюдаться цитопатический эффект, и повторного пассирования вируса в линии клеток обезьян на поддерживающей среде в присутствии сыворотки и в соответствующих условиях для пассирования.

Вакцина включает вещество-носитель, такой как сахарозный желатиновый стабилизатор, который смешивают с живым модифицированным вирусом, полученным, как описано выше. Вакцина, предпочтительно, используется для предупреждения PRRS путем иммунизации свиней с помощью местного пути (на поверхность слизистой) и парентерального пути вакцинации. Иммунизированные свиньи обычно остаются без признаков заболевания после заражения вирусом дикого типа.

Вакцина может быть получена в количествах промышленного масштаба с помощью процесса, включающего стадии получения размножающихся культур линии обезьяньих клеток, получения продукционных культур путем инфицирования размножающихся культур аттенуированным вирусом, сбора продукционных культур, стабилизации и лиофилизации вируса.

На чертеже представлена схематическая диаграмма процесса для применения при производстве в промышленно значимых количествах вакцины PRRS.

Детальное описание предпочтительного осуществления Следующие неограничивающие примеры представляют методы и материалы для использования при практическом осуществлении данного изобретения.

Пример 1 Выделение, идентификация и аттенуация вируса PRRS и получение модифицированной живой вакцины A. Выделение и идентификация Гомогенат ткани был получен от поросят из групп, инфицированных PRRS. Этот гомогенат постоянно воспроизводил респираторную форму PRRS и форму с поражением репродуктивной системы при интраназальном заражении у гнотобиотных поросят и беременных свиноматок. Гнотобиотные поросята, зараженные таким образом или нефильтрованным или профильтрованным (0,45, 0,22 или 0,1 мкм) инфицирующим материалом, теряли аппетит, и у них развивались микроскопические повреждения в легких, наблюдаемые в группах животных, пораженных PRRS. Тот же самый инфицирующий материал также вызывал репродуктивную несостоятельность, идентичную наблюдаемой в группах животных, инфицированных PRRS.

Гомогенаты тканей, из которых был выделен вирус, включали ткань легкого (группа 1) и объединенные ткани мозга, селезенки, печени и почек (группа 2), полученные от инфицированных поросят из инфицированной PRRS группы животных. Отдельные группы гомогенатов центрифугировали отдельно при 4000 x g в течение 25 минут. Полученный супернатант собирали и фильтровали, используя стерильный шприцевой 0,45 микронный фильтр. Профильтрованные супернатанты затем объединяли. Один мл объединенного супернатанта использовали в качестве заражающего материала для инфицирования каждой из соответствующих клеточных линий, которые описаны ниже.

Профильтрованный супернатант добавляли в среду для роста, содержащую клеточную линию, которая описана ниже, модифицированную среду Игла ("МСИ") от JRH Biosciences, и гентамицин в концентрации примерно 100 мкг на мл.

Было проведено два испытания для каждой линии клеток с использованием 75 мл пластиковых сосудов. В испытании номер 1 профильтрованный супернатант засевали в два сосуда, в каждом из которых имелся полный слой клеток каждой из клеточных линий, перечисленных ниже. Дополнительно в первый сосуд добавляли примерно 2,3 мг трипсина. Все остальные условия были такими же, что и для каждого сосуда с культурой.

В испытании номер 2 материал гомогената объединенных тканей засевали в сосуды, содержащие те же самые клеточные линии, которые использованы в испытании номер 1; однако слои клеток были слитными только на 20-40% во время посева. Среда дополнительно содержала примерно 10% фетальной телячьей сыворотки, которая не присутствовала в среде из испытания 1. Инфицирующий материал опять вводили в количестве примерно 1 мл, и культуры инкубировали при примерно 34^oC в течение примерно семи дней.

Все сосуды инкубировали в течение примерно семи дней при примерно 34^oC. Результаты регистрировали по истечении примерно семи дней. После замораживания и оттаивания отбирали образец для второго пассажа на той же самой клеточной линии. Остальной материал замораживали в жидком азоте и хранили при примерно -60^oC. Результаты обоих испытаний, номер 1 и номер 2, суммированы в таблице 1.

Отсутствие цитопатического эффекта (ЦПЭ) наблюдалось в испытании номер 1 у любых оцениваемых линий клеток. В испытании номер 2, однако, небольшие группы клеток МА-104 начинали набухать и образовывать "слабые места" в монослое по краю сосуда. Жидкость из сосуда удаляли и помещали в новый сосуд с клетками МА-104 (опять с 20-40% слитности клеточного слоя) и затем соответственно пассировали третий раз. И этот очевидный ЦПЭ становился сильнее при каждом пассаже. При 3 пассаже вирулентность сохранялась. Материал после этого пассажа поместили на хранение в Американскую коллекцию типовых культур в Роквилле, Мэриленд под N поступления ATCC-VR2332.

Вирус ATCC-VR2332 постоянно вызывает клиническую симптоматику PRRS, повреждения в легких у гнотобиотных свиней и давал положительные результаты по ИМФ. Таким образом, вирус ATCC-VR2332 может представлять неидентифицированный род Togaviridae. Вирус ATCC-VR2332 кроме того не является известным патогеном свиней, так как специфические антисыворотки к нескольким обычным вирусным патогенам свиней были неспособны или нейтрализовать вирус, или выявить антигены в инфицированных клетках.

Вирус ATCC-VR2332 является негемагглютинирующим оболочечным РНК-вирусом. Вирус ATCC-VR2332 растет в непрерывно поддерживаемой клеточной линии, конкретно, MA-104 и других клеточных линиях от человекообразных обезьян. Вирус ATCC-VR2332 растет до высоких титров (10⁷ TCID₅₀/1 мл) на коммерческой клеточной линии MA-104.

Вирус ATCC-VR2332 имеет липидную оболочку, на что указывает потеря инфекционности после обработки хлороформом. Липидная оболочка может быть также визуализована в виде полупрозрачного кольца, окружающего пустые частицы при электронной микроскопии. Морфология вируса ATCC-VR2332 не является характерной при прямой электронной микроскопии (ПЭМ) и должно быть чрезвычайно трудно идентифицировать его в препаратах, содержащих остатки клеток. Морфология частиц ATCC-VR2332, очищенных в градиенте плотности и средний диаметр частиц, равный 62 нм, очень сходны с показателями вирионов артериита лошадей и лактодегидрогеназными вирусами.

Вирус лошадиного артериита, как сообщалось, имеет размер частиц в интервале 50-73 нм, который сходен с размером в 48-84 нм вируса ATCC-VR2332. У некоторых частиц ATCC-VR2332 наблюдалась 30-35 нм сердцевина, что похоже на нуклеокапсидные ядра, описанные для вируса лошадиного артериита. Таким образом, морфологически ATCC-VR2332 имеет наиболее близкое сходство с группой вирусов артериита.

Присутствие в ATCC-VR2332 РНК-генома подтверждено способностью этого вируса продолжать репликацию в присутствии 5-бром-2-дезоксиуридина и митомицина C, которые, как известно, подавляют репликацию ДНК и одного семейства РНК-вирусов (Retroviridae), но не подавляет другие РНК-вирусы. Тем не менее предварительная классификация вируса ATCC-VR2332 как РНК-вируса находится в согласии с тем наблюдением, что этот вирус реплицируется в цитоплазме клетки, на что указывает присутствие вирусных антигенов, обнаруживаемое с помощью ИМФ. К тому же, актиномицин D, который мешает ДНК-зависимой транзиции РНК, не оказывает воздействия на репликацию вируса ATCC-VR2332. Эти результаты показывают, что вирус ATCC-VR2332 не нуждается в ядерных функциях для репликации.

В заключение, размер, морфология, наличие РНК генома и другие биологические свойства дают основание предварительно отнести вирус ATCC-VR2332 к семейству Togaviridae. ATCC-VR2332, однако, не может быть отнесен к какому-либо известному роду этого семейства. Хотя морфологически вирус ATCC-VR2332 очень похож на артеривирусы, вирус не должен быть отнесен к определенному роду, до тех пор пока не будет получена дополнительная информация о строении РНК и белка.

Б. Аттенуация Собранный VR2332 после 3 пассажа подвергали двум дополнительным пассажам, описанным подробно ниже, и собранное после 5 пассажа посылали в другую лабораторию для очистки. В частности, вирионы ATCC-VR2332 были идентифицированы после очистки в градиентах CsCI (центрифугируемых при 200000 x g) после экстракции 1,1,2-трихлортрифторэтаном. Очищенные вирионы метили иммуно-золотым набором с использованием конъюгата анти-ATCC-VR2332 гипериммунной сыворотки и золота. Уровень плотности, на котором удерживался слой вирионов ATCC-VR2332 в градиенте CsCI составлял 1,18-1,19 г/л. Сахарозный градиент постоянно приводил к потере титра вируса и от него отказались как от неподходящего градиента для очистки.

Очищенный материал, полученный после 5 пассажа, затем подвергали дополнительным 65 пассажам, как описано подробно ниже. Материал, собранный после 70-го пассажа, аттенуировали и назвали основной посевной культурой. Эту основную культуру для посева поместили на хранение в Американскую коллекцию типовых культур под номером поступления ATCC-VR2495. И наконец, проводили дополнительно еще 5 пассажей для получения ATCC-VR2332, пассажа 75 (могли бы проводиться и дополнительные пассажи, если желательно).

Пассажи 4-75 вируса ATCC-VR2332 проводили в готовой культуре ткани-хозяина коммерчески доступной клеточной линии MA-104 зеленых мартышек. Эту стандартную культуру ткани получали следующим образом. Готовили среду для роста, которая включала минимальную поддерживающую среду Игла ("MEM") от JRH Biosciences (каталог # 200-2041) и 10% фетальной телячьей сыворотки от JRH Biosciences. Примерно 1 мл посевного материала ATCC-VR2332 добавляли в бутыль объемом 75 см³, содержащую 50 мл этой ростовой среды. Бутыль выдерживали в течение примерно 7 дней и инкубировали при температуре в интервале от примерно 35^oC до примерно 37^oC.

Бутыли с готовой культурой ткани получали путем размножения полученной инкубированной культуры, которую разделяли следующим образом. Ростовую среду, которая имела объем, равный примерно 50 мл, декантировали. Клеточный слой удаляли путем добавления 10 мл трипсина-версена IX и инкубации при 37^oC в течение 5-10 минут. Затем клетки удаляли из бутыли и центрифугировали при 270 x g в течение 5-10 минут. Супернатант декантировали, а осадок повторно суспендировали в 5-10 мл среды MEM, содержащей 10% фетальной телячьей сыворотки, как и перед этим. Клетки помещали в 200 мл ростовой среды, которую потом распределяли на четыре 75 мл бутыли по 50 мл на бутыль, тем самым достигая разделения 1:4.

Полученные культуры сохраняли при температуре в интервале 35-37^oC до использования. После 3-4 дней инкубации в бутылях развивался полный покрывающий слой клеток, и они были готовы для использования.

Вирус PRRS ATCC-VR2332 размножался в непрерывных культурах клеточной линии MA-104, которые получали, как описано выше. Показатель pH культуральной среды доводили до 7,2, и культуры инкубировали при температуре в интервале от примерно 35-37^oC. Вирусом заражали клетки MA-104 путем добавления примерно 1 мл замороженного посевного материала из предшествующего пассажа в жидкую ростовую среду. Вирусу давали абсорбироваться на клетках в течение 24 часов.

Ростовую среду декантировали через 24 часа после заражения вирусом ATCC-VR2332 и колбу снова заполняли 50 мл поддерживающей среды с заменой 4% содержания фетальной телячьей сыворотки на 10% фетальной телячьей сыворотки в ростовой среде. Поддерживающая среда имела pH, равный 7,6. После этой замены ростовой среды культуру инкубировали при температуре в интервале 35-37^oC. Вирусу давали размножиться до тех пор, пока 50-60% слоя клеток MA-104 в культуре не будут разрушены вирусом. Образец затем замораживали в жидком азоте и подготавливали для пассажа в другой сосуд с клетками MA-104.

Продемонстрирована также перекрестная реактивность пассажей 3-70. Вирус PRRS VR2332 из 3 пассажа использовали для иммунизации свиней, кроликов и коз для получения антисыворотки PRRS. Сыворотку использовали для нейтрализации вируса PRRS на пассажах разного уровня с 3 по 70 пассаж. Кроме того, было получено два моноклональных антитела (SDOW-12 и SDOW-17) с использованием лимфоцитов селезенки от мышей, иммунизированных вирусом PRRS VR2332. Моноклональные антитела, как было показано, реагируют со всеми штаммами PRRS, выделенными в США и Европе к декабрю 1992 г. Моноклональные антитела использовали для идентификации или обнаружения вируса PRRS в пассажах 3-70.

C. Получение модифицированной живой вакцины
Было получено два вакцинных препарата, включающих, соответственно, основную посевную культуру (полученную из пассажа 70 ATCC-VR2332) и полученное после пассажа 75 ATCC VR-2332. Вирус основной посевной культуры и вирус пассажа 75 были по существу авирулентными, т.е. вакцины при введении свиньям или другим млекопитающим, восприимчивый к контакту с PRRS, не вызывали клинических симптомов заболевания PRRS, но были способны индуцировать иммунный ответ, который создавал иммунитет у животных к патогенным формам вируса PRRS. Вакцину получали общепринятыми способами. Перед лиофилизацией добавляли стандартные стабилизаторы и носители.

Пример 2
Испытание вирусного штамма in vivo
Вирулентный материал, полученный после третьего пассажа вируса ATCC-VR2332 из примера 1 использовали для заражения двух трехдневных гнотобиотных поросят. Обоих поросят заражали интраназально, одного - 1 мл, а другого - 2 мл. Поросята находились под клиническим наблюдением в течение семи дней, затем их забивали и делали вскрытие.

Образцы тканей от каждого поросенка собирали для гистопатологического исследования и для выделения вирусного возбудителя. Данные гистопатологии подтвердили, что поражения в легких у инфицированных поросят были идентичными поражениям легких у поросят, которые, как известно, имеются при PRRS. Образцы ткани обрабатывали, как в примере 1, и затем культивировали на 20-40% и 100% монослое клеточной линии MA-104 с добавлением фетальной сыворотки крупного рогатого скота. Вирусный возбудитель снова выделяли.

Вирусный материал, собранный после третьего пассажа, использовали также для заражения свиноматок, чтобы подтвердить, что действие заболевания на репродуктивную сферу может быть воспроизведено и подтверждено. Многородящих свиноматок заражали интраназально примерно на 93 день беременности. Свиноматки давали пометы с 50% мертворожденных поросят (8/13 и 6/14 мертворожденных/живых) на 112 и 114 день беременности, соответственно. Семь из мертворожденных поросят были частично мумифицированы, и поросята, рожденные живыми, были слабыми и не могли энергично сосать. Вирусный возбудитель был выделен из тканей мертворожденных поросят тем же способом, что и в примере 1. Вирусный возбудитель был выделен в трех группах с подтвержденным заболеванием PRRS. В тех же самых группах были определены титры антител к возбудителю ATCC-VR2332.

Пример 3
Цель этого исследования состояла в определении минимальной защищающей дозы вируса PRRS (VR2332, пассаж 75), выбранной для использования в качестве модифицированной живой вакцины. Это было выполнено путем анализа степени, с которой две выбранные дозы вакцины (4,0 ± 0,5 log/дозу и 2,0 ± 0,5 log/дозу) были способны регулировать начало ненормальных состояний после заражения вирулентным штаммом вируса PRRS (VR2332, пассаж 3, 3,5 ± 0,5 log/дозу) и сравнения вакцинированных зараженных поросят с невакцинированными зараженными и незараженными (нормальными) поросятами. Модифицированная живая вакцина была получена с использованием 75 пассажа вируса, как объяснялось ранее.

Для использования в эксперименте было отобрано шестьдесят два серонегативных поросенка с фермы-поставщика и они были распределены на четыре группы, обозначенные 1, 2, 3 и 4. Двадцать один поросенок в группе 1 были провакцинированы 2 мл вакцины от PRRS L-4 внутримышечно (4,0 log/дозу). Двадцать один поросенок в группе 2 были провакцинированы 20 мл вакцины против PRRS L-2 (2,0 log/дозу). Десять поросят в группе 3 и десять поросят в группе 4 не вакцинировались. Поросят из контрольных групп 3 и 4 помещали в отдельные строения, чтобы застраховать от возможности заражения вирусом. Группы 1, 2 и 3 заражали 2,0 мл вирусного материала PRRS VR2332 после 3 пассажа интраназально на 28 день испытания. Поросят из группы 4 не заражали. За поросятами из четырех изучаемых групп наблюдали и регулярно производили контроль в течение 31-дневного срока до заражения и 21-дневного срока после заражения. Показателями, использованными для оценки результатов исследования, были клинические симптомы, вес тела, температура тела (ректальная), число лейкоцитов, выделение вируса и серология. Эффективность вакцины демонстрировалась по снижению числа дней, когда у поросят наблюдалась виремия, по предотвращению лейкопении и лихорадки и по сохранению нормальной скорости роста после заражения.

Температуру тела (ректальную) измеряли до и после вакцинации. Средняя температура для группы 1 повышалась на 2-ой день после вакцинации (ДПВ) и на 3-ий ДПВ, тогда как для группы 2 она повышалась на 3-ий ДПВ. Продолжительность повышения температуры для каждой из двух групп была короткой, 2 дня для группы 1 и 1 день для группы 2.

Ни у одной из вакцинированных групп не наблюдалось падения числа лейкоцитов после вакцинации. Предшествующие исследования показали, что контакт с вирулентным штаммом вируса PRRS вызвал бы лейкопению в пределах 72 часов после заражения.

Результаты измерения увеличения веса в течение периода после вакцинации показали, что лечение не оказывало неблагоприятного воздействия на жизнедеятельность вакцинированных поросят. В течение 29 дней после вакцинации увеличение веса в каждой из вакцинированных групп не было значительно различным по уровню достоверности, равному 0,05, от увеличения веса в группах 3 и 4.

Клинические наблюдения показали небольшие отклонения от нормы по большинству категорий, за исключением состояния ноздрей и испражнений. Сравнение оценок испражнений в вакцинированных группах с оценками в объединенных контрольных группах (группах 3 и 4) с использованием двустороннего t-критерия не выявило значительного различия при уровне достоверности 0,05. Значение p при сравнении группы 1 и объединенных контрольных групп было равно 0,47, тогда как при сравнении группы 2 и объединенной контрольной группы было равно 0,87. Сравнение показателей состояния ноздрей у группы 1 и объединенной контрольной группы имело значение p, равное 0,41. Только два из 21 поросенка в группе 2, как наблюдалось, имели клинические показатели для ноздрей. Анализ по t-критерию для полной индивидуальной клинической оценки групп 1 и 2 с результатами для объединенной контрольной группы показал значения p, равные 0,53 и 0,74, соответственно. Это сравнение показало отсутствие различия между результатами для животных, получающих вакцину при любом уровне дозы и для невакцинированных контрольных.

Результаты выделения вируса из крови показали, что 100% животных (21 из 21) из группы 1 стали положительными, тогда как в группе 2 было 90% (19 из 21) положительных результатов для обследованных животных. В течение периода после вакцинации результаты для контрольных групп 3 и 4 оставались отрицательными. Результаты ИПТ (иммунопероксидазного теста) исследования давало сходную картину в том, что 100% группы 1 становилось серологически положительными, как и 90% группы 2. Обе группы оставались отрицательными на сывороточные нейтрализующие антитела в течение 21 ДПВ. Нейтрализующие антитела были обнаружены в обоих группах на 29 ДПВ (0 ДПЗ - день после заражения, см. результаты после заражения). Контрольные группы оставались серологически отрицательными по обоим методам испытания до времени заражения.

Анализ наблюдений после вакцинации показывает, что по-видимому нет побочных инфекций в результате вакцинации любой дозой вакцины, использованной при изучении. Однако более высокая дозировка создает серологическую конверсию у всех (21 из 21) поросят, тогда как более низшая доза создает серологическую конверсию у 19 из 21 поросят или у 90%.

После заражения вирулентным вирусом PRRS клинические параметры, которые контролировали у вакцинированных и невакцинированных испытуемых групп, дали данные о защите с помощью двух испытанных доз вакцины. Результаты испытания на виремию дали ясное свидетельство благотворного действия вакцины. У невакцинированной группы (группа 3) наблюдалась виремия в 100% случаев на 3 ДПЗ, 5 ДПЗ и 7 ДПЗ, тогда как частота виремии в те же дни наблюдения в группе 1 (3,65 log/дозу) и группе 2 (1,85 log/дозу) составляла 15,5 и 10% и 30%, 20% и 15%, соответственно. А также, вирус не был выделен из образцов крови в группе 1 после 9 ДПЗ и в группе 2 после 13 ДПЗ, тогда как у 30% из группы 3 результаты были еще положительными на 19 ДПЗ.

Результаты контроля температуры тела (ректальной) также свидетельствовали об эффективности вакцин. В течение 21-дневного периода наблюдения средняя температура в группе 3 превышала 40^oC (104^oF) в течение 5 дней. Средняя температура в группах 2 и 3 не превышала 40^oC (104^oF). Кроме того, средняя температура в группе 3 превышала 40,4^oC (104,5^oF) в течение 2 дней, на 2 и 6 ДПЗ.

После заражения результаты подсчета лейкоцитов показали, что в группе 3 наблюдалась лейкопения, для которой наблюдалось 16% снижение, происходившее на 5 ДПЗ. Ни в одной из вакцинированных групп не наблюдалось снижение более 6% в течение всего периода наблюдения.

Контроль повышения веса в разных группах лечения в течение 21 дня после заражения, показал, что вакцинация дозой любого из двух уровней сохраняла нормальную скорость повышения веса. В двух вакцинированных группах, 1 и 2, наблюдался средний процент повышения веса, равный 74 и 73, соответственно. В группе 4, нормальных контрольных животных, среднее увеличение веса составило 75%. Напротив, средний процент набору веса в группе 3, невакцинированных зараженных контрольных животных, составлял 69%. Это значительно отличалось от групп 1, 2 и 4 с p=0,009 при применении двустороннего t-критерия и уровня достоверности 0,05.

Хотя результаты клинических испытаний не могут быть столь определенными в демонстрации эффективности, они все же иллюстрируют преимущества вакцин. После заражения в группах 1, 2 и 3 показано значительное увеличение числа случаев симптомов со стороны респираторной системы. Средние суточные индивидуальные оценки для животных в группах 1, 2 и 3 были равны 0,39, 0,64 и 0,53, соответственно. Это показывает преимущества более высокой дозы (3,65 log/дозу) над более низкой дозой (1,85 log/дозу) и над случаями без вакцинации. Хотя наблюдения за характером испражнений после заражения были впечатляющими, они незначительно отличались (при использовании уровня достоверности 0,05) от наблюдений после вакцинации и перед заражением. Таким образом, в этом эксперименте заражение вирулентным вирусом PRRS по-видимому не оказывало действия на низшие отделы желудочно-кишечного тракта. В целом, остальные клинические наблюдения не выявляют значительных изменений в результате заражения. Что касается показателей в отношении ноздрей и рта в группе 1, один поросенок имел 25% показателя состояния ноздрей во всей группе, а у другой поросенок имел 94% группового показателя по категории состояния рта. Подобным же образом в группе 2 один поросенок имел 22% группового показателя по состоянию ноздрей, а другой поросенок имел 43% группового показателя для рта. В общих чертах частота клинических наблюдений после заражения для этих двух показателей незначительно отличалась от наблюдений после вакцинации. Подобные заключения могут быть сделаны по этим двум клиническим параметрам и для группы 3. Группа 4 оставалась относительно нормальной по всем показателям для организма.

В конце периода наблюдения всех поросят забивали и легкие обследовали макроскопически на признаки патологического поражения. У шестидесяти процентов (6 из 10) животных из группы 3 проявлялось заметное поражение. Для сравнения, 10% из группы 1 и 19% из группы 2, по-видимому, имели заметное поражение. При сравнении с группой 4, нормальные контрольные, 80% из группы 1, 81% - из группы 2 и 30% - из группы 3, как было описано, по наблюдениям не имели различий.

Производилось выделение вируса из ткани легких. Из ткани легких поросят из группы 1 вирус не был выделен. Один образец из материала от 21 поросенка из группы 2 дал положительный результат на вирус. Вирус был выделен из трех из десяти образцов от 3 группы поросят и ни из одного от группы 4.

Заключение, сделанное по этим результатам, состоит в том, что оба уровня дозировки (3,65 log/2,0 мл дозы и 1,85 log/2,0 мл дозы) вакцины из модифицированного живого вируса PRRS, содержащей пассаж 75 VR2332, были эффективны против респираторного заболевания у 3-5 недельных поросят, которых заражали на 29 ДПВ вирулентным вирусом PRRS.

Это исследование показало, что предпочтительная минимальная защищающая доза составляет 3,65 log/2,0 мл дозы. По некоторым параметрам, использованным для оценки эффективности доз вакцины, таким как виремия, клинические признаки респираторного заболевания, патологическое поражение легких и выделение вируса из ткани легких, те животные, которые вакцинировались более высокой дозой, были лучше защищены. К тому же у 21 из 21 поросенка, вакцинированных 3,65 log/дозу наблюдалась сероконверсия к 21 ДПВ. Для сравнения, только у 19 из 21 поросенка, вакцинированных более низкой дозой, наблюдалась сероконверсия к 29 ДПВ (0 ДПЗ).

Пример 4
В этом примере исследовали продолжительность иммунитета при использовании модифицированной живой вакцины из пассажа 75 PRRS, описанной в примерах 1 и 3. Откормочный поросенок в норме достигает убойного веса в возрасте шести месяцев. В этом примере поросят вакцинировали в возрасте примерно 1 месяца (4-5 недельном возрасте) и затем заражали на 110 день после вакцинации. Продолжительность этого иммунитета должна затем охватывать большую часть ожидаемого жизненного срока нормальных откормочных поросят.

Было получено шестьдесят два серонегативных на PRRS поросенка и распределяли их на четыре экспериментальных группы, обозначенных 1, 2, 3 и 4. Двадцать одного поросенка из группы 1 вакцинировали 2,0 мл вакцины из пассажа 75 PRRS-МЖВ, содержащими 3,32 log на дозу. Десять поросят из группы 3 и группы 4 не вакцинировались и были помещены в отдельные строения, чтобы сохранить серонегативный статус. В конце исследования, описанного в примере 3, поросят группы 2 из этого примера удалили из исследования и забили, так как было сделано заключение, что минимальная защищающая доза составляла 3,68 log, а не 1,87 log на дозу. Группы 1 и 3 заражали интраназально на 110 день после вакцинации (ДПВ) с использованием 3 пассажа вируса VR-2332 (3,9 log/мл). Поросят из группы 4 не заражали. За поросятами осуществлялся контроль в течение 21 дня после заражения (ДПЗ) по клиническим симптомам, изменению веса тела, температуре тела (ректальной), числу лейкоцитов, виремии и серологии. Защитный иммунитет на 110 день после вакцинации был продемонстрирован по отсутствию виремии, предотвращению лейкопении и лихорадки и улучшенному набору веса по сравнению с зараженными невакцинированными поросятами.

После вакцинации проводили контроль вакцинированных поросят на любые побочные реакции на вакцину. Параметры, которые контролировали, включали температуру тела (ректальную), число лейкоцитов, набор веса, клинические симптомы, серологию и виремию.

Температуру тела (ректальную) контролировали ежедневно с -1 ДПВ по +4 ДПВ. Анализ средних значений для группы не показал значительного повышения температуры в группах, получавших лечение, в результате вакцинации. У вакцинированных поросят из группы 1 наблюдалось максимальное повышение температуры, равное 0,1^oC (0,2^oF) по сравнению со средними значениями до вакцинации.

Число лейкоцитов контролировали в разные моменты времени до и после введения вакцин. В группе 1 наблюдалось 14% снижение по сравнению со средними числами до вакцинации на 4 ДПВ. Все остальное снижение числа лейкоцитов в группе 1, оставалось менее 9%. В остальных группах (3 и 4) не наблюдалось какого-либо снижения числа лейкоцитов более 11% в течение периода наблюдения после вакцинации.

Результаты набора веса с 0 ДПВ по 28 ДПВ были противоречивыми в том, что изменение веса в группе 1 значительно отличалось от показателей в группе 4 (p= 0,02). Для этого различия не существовало объяснения, так как по всем другим параметрам, которые контролировали, не показано больших различий между группой 1 и группой 4.

Статистический анализ клинических результатов не выявил различий между вакцинированными группами и невакцинированными контрольными группами. Хотя результаты по дефекациям имели наибольшую частоту, не было значительного различия между группой 1 и группами 3 и 4, p=0,7 5; p=0,5 9; соответственно. Подобным же образом клинические результаты по состоянию ноздрей не были значимыми. Сравнение между группой 1 и группой 3 давало значения p более 0,8. Значение p для сравнения между группой 1 и группой 4 было равно 0,02, причем в группе 4 было более высокое число случаев. Не показано значительной степени проявления ни одного из других клинических параметров.

Серологические результаты после вакцинации показали, что эта доза вакцины успешно иммунизировала лечившихся животных. На 14 ДПВ в группе 1 было 48% положительных испытуемых по ИПТ-исследованию. Через семь дней, на 21 ДПВ 100% испытанных животных в лечившейся группе были положительными по ИПТ. Группа 1 оставалась отрицательной на сывороточные нейтрализующие (CH) антитела до 28 ДПВ. Все поросята в группе 1 оставались серологически позитивными по обоим
исследованиям до времени заражения на 110 ДПВ. Поросята из групп 3 и 4 оставались серологически негативными в течение всего периода после вакцинации.

Результаты выделения вируса после вакцинации показали, что 100% лечившейся группы было успешно заражено. Это подтверждается серологическими данными, описанными выше. Обе контрольные группы, 3 и 4, оставались негативными в течение периода наблюдения после вакцинации.

Наблюдения после вакцинации показывают, что лечение не дает каких-либо значительных нежелательных эффектов у лечившихся животных, а контрольные животные оставались свободными от вируса PRRS.

После заражения вирулентным вирусом PRRS контролировали различные клинические параметры, чтобы оценить преимущества лечения вакциной. Вакцинированную группу (группа 1) сравнивали с невакцинированной зараженной группой (группа 3) и невакцинированной незараженной группой (группой 4).

Серологические результаты, полученные после заражения показали, что уровень заражения успешно стимулировал иммунный ответ в группе 3. В группе 1 не было анамнестического гуморального ответа после заражения вирулентным вирусом. Результаты серологических исследований показали, что группа 4 оставалась негативной в течение периода наблюдения, равного 21 дню.

Наиболее наглядными данными были результаты по выделению вируса. Сто процентов животных из группы 3 по испытаниям были позитивными на 3, 5 и 7 ДПЗ и еще и на 21 ДПЗ 20% из этой группы были по испытаниям позитивными. Неожиданным был положительный результат выделения вируса PRRS из образцов крови животных из группы 4. Первый положительный результат выделения вируса в группе 4 появился на 15 ДПЗ. Это наблюдение коррелировали с другими показателями, что будет обсуждено позднее. Даже хотя группа контактировала с вирусом PRRS, полученные данные должны рассматриваться как ценные, так как очевидный контакт произошел в течение последнего третьего периода наблюдения и первичный интервал, представляющий интерес, находится в промежутке от 1 ДПЗ по 11 ДПЗ. Именно в течение этого времени производилось большинство сравнений между группами 1 и 3. Наиболее важным результатом было очевидное предотвращение инфекции, что показано отсутствием выделения вируса в группе, получившей лечение вакциной.

Значение клинических результатов после заражения, по-видимому, ограничено при оценке эффекта лечения вакциной. Хотя клинические симптомы респираторного заболевания наблюдались в группах 1 и 3, эти симптомы не были даже классифицированы (распространенными). В случае группы 1, два поросенка рассматривались как 88% общего показателя для этой группы. Подобным же образом два поросенка в группе 3 рассматривались как 71% показателя для всей группы, равного 49. Общий показатель по дефекациям по группе 1 является значимым при сравнении с другими группами. Однако только у 9 из 21 поросенка, как наблюдалось, имелись какие-либо клинические симптомы по этой категории, а из 9 поросят 3 рассматривались как свыше 55% общего показателя для группы. Никакие показатели в отношении дефекации не относились к группе 3, и только у 1 поросенка в группе 4, как наблюдалось, была клиническая симптоматика, связанная с дефекацией. Клинические показатели для ноздрей и рта могут иметь ограниченное значение вне связи с другими показателями, такими как касающиеся респираторной системы. Частота наблюдений в отношении ноздрей была ограничено в обеих группах, 1 и 3, в которых было менее 50% каждой группы, имеющих показатели. С высокой частотой встречались показатели для наблюдений, касающихся состояния рта, у 90% из группы 3 и 76% из группы 1. Не было существенного различия между этими двумя группами в отношении клинических показателей по состоянию рта, p=0,45. Как наблюдалось, все остальные клинические показатели были нормальными.

В течение периода наблюдения после заражения группа набирала в среднем 19,2 кг (42,62 фунта). Группа 3 имела средний набор веса, равный 16,4 кг (36,5 фунта), а группа 4 набирала в среднем 16,7 кг (37,1 фунта). Не было значительного различия между группами 3 и 4, p=0,9, и это могло быть результатом того, что группа 4 случайно имела контакт с вирусом. Однако это не уменьшило данных сравнения между группами 1 и 3, так как существовало статистически значимое различие между этими двумя группами. Оценка продуктивности поросят с течением времени дает превосходное средство для оценки общего самочувствия этих поросят. Эти данные в сочетании с другими параметрами показывают преимущества вакцины, которая испытана при экспериментальном заражении.

Температура у животных после заражения показала преимущества лечения вакциной при экспериментальном заражении. При заражении контрольной группы, группы 3, было 8 дней, в которые средняя температура в группе повышалась по крайней мере на 0,55^oC (1^oF) по сравнению со средним значением до заражения. В группе 1 не было повышения средней температуры на 0,55^oC (1^oF) в какое-либо время. Хотя группа 4 была заражена вирусом PRRS, средняя температура в группе не повышалась ни на градус. Это связано с тем, что распространение вируса в группе было постепенным, и не охватило группу полностью по сравнению с экспериментальным заражением. Однако анализ температуры у отдельных поросят с 15 ДПЗ по 21 ДПЗ показал, что у поросят в группе 4 температура поднималась после контакта с вирусом PRRS. Анализ температур у отдельных поросят в группах 1 и 3 дополнительно подчеркивает преимущество лечения вакциной. У десяти из десяти поросят в группе 3 было повышение температуры на 0,55^oC (1^oF) в течение двух последующих дней или более. Напротив, у поросят из группы 1 не было сравнимых результатов.

Дополнительные данные по эффективности вакцины были продемонстрированы результатами подсчета лейкоцитов после заражения. Среднее число лейкоцитов в группе 1 снижалось после заражения. Снижение, равное 14%, 19%, 14%, 21% и 13%, происходило на 1, 3, 5, 7 и 9 день после заражения, соответственно. В те же самые дни испытания в группе 3 было снижение среднего значения, равное 15%, 37%, 43%, 31% и 28%. В группе 4, незараженной контрольной группе наблюдалось снижение в интервале от 11% до 17% в течение того же самого периода времени. Анализ числа лейкоцитов у отдельных поросят дополнительно подтверждает защиту, обеспечиваемую лечением вакциной. У десяти из десяти поросят в группе 3 выявлено 25% падение числа лейкоцитов или более в течение двух или более последовательных дней испытания. В группе 1 было 2 из 21 поросенка с лейкопенией в 25% или более в течение двух последующих дней. У инфицированных поросят из группы 4 наблюдались результаты, сходные с результатами для группы 3. Частота лейкопении становилась очевидной, так как распространение вируса по группе прогрессировало. Между 15 ДПЗ и 21 ДПЗ у 50% группы происходило снижение числа лейкоцитов, равное 25% в последующие дни испытания. Эти результаты показывают, что у вакцинированных поросят не было лейкопении, которая наблюдалась у невакцинированных поросят.

Анализ общих (макроскопических) обследований легких на 21 ДПЗ подразделялся на показатели для паренхимы и плевры, которые затем объединяли для общей оценки легких. Анализ этих наблюдений стал более трудным в связи со случайным контактом с вирусом PRRS незараженной контрольной группы, так как нельзя было разработать исходный уровень для негативного контроля. Таким образом, необходимо ограничить сравнение группы 1 и 3, так как обе группы подверглись одинаковому заражению вирусом и в одно и то же время. Показатели для паренхимы в группе 3 были более серьезными, причем 4 из 10 поросят имели оценки, равные 200. Наивысшая оценка в группе 1 была равна 100. Как процент пораженных в лечившейся группе, так и тяжесть повреждений паренхимы снижались при лечении вакциной. Подобным же образом лечение вакциной снижало число случаев и тяжесть повреждений плевры. В группе 1 было 24% животных (5 из 21), имеющих оценку плевры, равную 100, тогда как в группе 3 было 50% животных (5 из 10), имеющих оценку плевры, равную 100. Большинство поросят (9 из 21) в группе 1 имело показатели частоты повреждений плевры, равное 15 или менее. Корреляции оценок легких с проблемами с респираторной системой не существовало. Например, один поросенок из группы 3 имел клинический показатель респираторных симптомов 23, а общий показатель легких 287,5, тогда как другой поросенок из группы 3 имел клинический показатель респираторных симптомов, равный 0, а общий показатель легких, равный 300. Существует несколько дополнительных примеров отсутствия корреляции между оценками легких и клинической оценкой респираторной симптоматики. Так или иначе макроскопические обследования являются ценными для анализа целительного действия вакцины, и можно заключить, что в лечившейся группе, группе 1, было меньше животных с повреждениями, и тяжесть этих повреждений была снижена.

В заключение, многие параметры, использованные для оценки эффекта вакцины при экспериментальном заражении на 110 день после вакцинации, хорошо коррелировали друг с другом. Во время периода (3-9 ДПЗ), во время которого виремия является наиболее явной, появлялись значительная лейкопения и повышение температуры тела. Во время заражения поросята были в примерно 20 недельном возрасте или на 12 недель старше, чем поросята, зараженные в примере 3. Многие из клинических симптомов, отмеченных в этом исследовании, были более тяжелыми. Например, повышение температуры тела (ректальной) увеличивалось в течение 8 дней при этом исследовании по сравнению с 5 днями при изучении иммуногенности. Тяжесть лейкопении, проявляющейся у контрольной группы невакцинированных зараженных животных (группа 3), при этом исследовании была более выраженной, чем у зараженной контрольной группы при изучении иммуногенности. В первом исследовании у контрольной зараженной группы наблюдалось снижение числа лейкоцитов, равное от 43% до 27% (3-9 ДПЗ). При изучении иммуногенности у контрольной зараженной группы происходило снижение, равное 15-21% в сроки 2-9 ДПЗ. Число дней, в которые обнаруживалась виремия во время периода после заражения (1-14 ДПЗ) для вакцинированной зараженной группы по изучению иммуногенности, было равно 0 из возможных 110 дней по сравнению с 45 из 110 дней в зараженной контрольной группе в этом исследовании. Таким образом, увеличение тяжести клинических симптомов совсем не связано с увеличением продолжительности виремии.

Результаты, полученные после заражения, в этом исследовании показали, что вакцинация вакциной PRRS-МЖВ при уровне дозировки, равном 3,32 log на 2,0 мл обеспечивала защиту от заражения вирулентным штаммом вируса PRRS на 110 день после вакцинации. Они состояли в следующем:
1. Вакцинированные животные были полностью негативными на виремию в течение 21 дня периода наблюдения после заражения.

2. Кроме минимальных проявлений симптомов со стороны респираторной системы, дефекаций, клинических симптомов со стороны ноздрей, рта, как наблюдалось, вакцинированные поросята были нормальными по клиническим симптомам.

3. Вес, набранный вакцинированными поросятами, был значительно более массы, набранной невакцинированными зараженными поросятами.

4. У вакцинированных поросят не было заметного повышения температуры тела.

5. Не происходило заметного снижения числа лейкоцитов у вакцинированных поросят.

6. Распространенность и тяжесть повреждения паренхимы и повреждений плевры были меньшими у вакцинированных поросят.

Пример 5
В этом примере вакцина из пассажа 75 PRRS-МЖВ, описанная в примерах 1 и 3, была испытана в отношении определения начала иммунитета. За семь дней перед началом исследования у 35 поросят определяли наличие антител к PRRS с использованием иммунопероксидазного теста (ИПТ) и наличие вируса PRRS в крови с помощью выделения вируса в культуре клеток МА-104. Десять поросят группы 1 вакцинировали внутримышечно 2,0 мл вакцины из пассажа 75 PRRS-МЖВ в 0 день испытания. Десять поросят из группы 2 вакцинировали таким же образом в 7 день испытания. Десять поросят из группы 4 содержали в отдельном помещении, но в подобных же условиях окружающей среды, и они служили в качестве невакцинированных одновременных контролей. Поросят в группах 1, 2 и 3 заражали на 14 день испытания. Заражающий материал, содержащий вирулентный вирус PRRS (VR2332, пассаж 3, 3,7 log₁₀ вируса на 1,0 мл), вводили интраназально (2,0 мл/на поросенка). Поросята из группы 4 оставались незараженными. Всех поросят подвергали контролю в течение 10 дней на клинические симптомы респираторного заболевания. Всех поросят забивали по окончании исследования для оценки повреждения легких.

Во время заражения поросята из группы 1 были серологически позитивными по анализу ИПТ, но не дали положительных результатов на нейтрализующую активность сыворотки. Напротив, все остальные поросята, включая животных из группы 2, давали отрицательные результаты по обеим этим методикам. Пятьдесят процентов поросят из группы 2 дали положительные результаты по ИПТ на 7 ДПЗ и 100% - на 10 ДПЗ. Поросята из группы 3, как обнаружено при испытании по ИПТ, имели положительные результаты на 10 ДПЗ. У одного поросенка из каждой группы, 1 и 2, развилась нейтрализующая активность сыворотки (НАС) на 10 ДПЗ и 7 ДПЗ, соответственно. Результаты по НАС не были значимо различными при уровне p=0,05. Результаты этого исследования показали, что защита появляется как следствие лечения даже хотя поросята в момент заражения были или серологически негативными, или не имели нейтрализующей активности сыворотки. Защита не может быть напрямую связана с гуморальным иммунитетом. Клеточно опосредованный иммунитет в ответ на вакцинацию модифицированной живой вакциной, возможно, играет главную роль в защите от заражения вирулентным штаммом.

В примере 4 отсутствие виремии после заражения было важным критерием для демонстрации защиты путем вакцинации. Однако в связи с коротким периодом между вакцинацией и заражением в данном исследовании у вакцинированных животных не устранялась виремия после вакцинации. Хотя, так как заражение было гомологичным заражением невозможно было дифференцировать заражающий вирус от вакцинного вируса. У четырех поросят из группы 1 и 1 поросенка из группы 2 при испытании были отрицательные результаты на виремию в течение по меньшей мере одной стадии испытания с 3 ДПЗ по 9 ДПЗ. Сто процентов группы 3 имели положительные результаты на виремию во время того же самого периода времени.

В отличие от предыдущих примеров в этом исследовании было обнаружено значительное проявление клинических симптомов респираторного заболевания. В группе 3 было 9 из 10 животных, у которых наблюдались респираторные осложнения в течение одного или более дней (среднее число дней равнялось 3,6). Число животных в группах 1 и 2, у которых было затруднение дыхания в течение одного или более дней, равнялось одному и нулю, соответственно (p < 0,001). Частота появления клинических симптомов в отношении ноздрей была сходна с частотой симптомов респираторного заболевания. В группе 3 было 8 из 10 животных, у которых присутствовали клинические симптомы в отношении ноздрей в течение одного или более дней. Средняя продолжительность клинических симптомов составляла 3,1 дня. В противоположность этому, группы 1 и 2 значительно отличались от продолжительности средних сроков, равных 1,3 дня и 0,1 дня, соответственно (p < 0,001). Проявление остальных клинических показателей было обычным.

Обе вакцинированных группы набирали больше веса, чем зараженная контрольная группа. Группа 2 набирала в среднем 5,8 кг (10,6 фунтов) в течение 10-дневного периода наблюдения, по сравнению с 3,5 кг (7,8 фунта) для группы 3 (p=0,01). Средний набор веса в группе 1 составлял 4,3 кг (9,6 фунтов), что не было значительным различием по сравнению с группой 3. В этой группе было два самых маленьких поросенка, которые весили 3,2 кг и 5,6 кг (7 и 12,5 фунтов), соответственно, в день испытания 0, 2,7 кг и 5,4 кг (6 и 12 фунтов) соответственно, на время заражения. Средний набор веса в группе при удалении двух самых маленьких поросят составлял 5,6 кг (12,3 фунта), что является значительным отличием от группы 3 (p < 0,001). Плохой набор веса двумя поросятами может быть связан с их неспособностью конкурировать с более крупными поросятами в группе. У этих поросят наблюдалась также диарея во время периода наблюдения после заражения. Поросята в группе 4 имели средний прирост в весе, равный 15,2 фунта в течение 10-дневного срока. У поросят в этом возрасте должен ожидаться средний суточный привес от 0,45 кг до 0,7 кг (1,0 до 1,5 фунтов). Эти результаты показывают, что лечение вакцинацией на 7 и 14 дней перед заражением обеспечивали защиту, которая создавала возможность ожидаемой скорости роста.

После заражения у поросят из группы 3 было длительное повышение температуры на 0,55^oC (1^oF) по сравнению со средним значением до заражения в течение в среднем 4,6 дней. Среднее число дней, в течение которых у поросят в группах 1 и 2 было сравнимое повышение температуры, составляло 0,5 и 1,1 дня, соответственно (p < 0,001). Только у 1 из 20 вакцинированных поросят было повышение температуры на 0,55^oC (1^oF) в течение 2 последующих дней, по сравнению с 8 из 10 в группе 3. Статистическое различие между вакцинированными и контрольными животными представляло p <0,001. Эти результаты продемонстрировали, что лечение поросят в группах 1 и 2 вакциной предотвращало появление лихорадки, как результата контакта с вирулентным штаммом вируса PRRS.

У поросят из группы 3 наблюдалось значительное снижение числа лейкоцитов на 3, 5 и 7 ДПЗ. Эти результаты находятся в хорошем соответствии с повышением температуры, которое происходило у этих животных в течение того же периода времени. У поросят из вакцинированных групп была легкая лейкопения, продолжавшаяся 1-2 дня до возвращения к значениям до заражения. Значения для вакцинированных поросят значительно отличались от значений для зараженных контрольных (p < 0,001). Эти результаты особенно ярко выражают уровень защиты, обеспечиваемый вакцинацией за 7 и 14 дней до заражения, по снижению уровня и продолжительности лейкопении.

Вакцинация за или 14 или 7 дней до заражения снижала тяжесть повреждений легких. Обе вакцинированных группы значительно отличались от зараженной контрольной группы (p = 0,01). Оценки вакцинированных были подобны оценкам для группы 4, группы нормальных контролей. Средняя оценка легких для группы 3 была равна 97,1, по сравнению с 9,3 и 7 для групп 1 и 2, соответственно. Наблюдаемые поражения в последних двух группах рассматривались как нормальные, и их появление ожидалось у здоровых обычным образом выращиваемых поросят.

Результаты в данном исследовании показали, что защитный иммунитет вызывался вакцинацией с помощью вакцины из живого модифицированного вируса за 7 дней. Значительные различия по изменению температуры, набору веса, лейкопении, поражению легких и клиническим симптомам после экспериментального заражения наблюдались у вакцинированных поросят по сравнению с невакцинированными зараженными поросятами.

Пример 6
В этом примере две группы (А и Б) из 100 трехнедельных отнятых поросят из позитивной на PRRS группы свиней вакцинировали или вакциной из пассажа 70 PRRS-МЖВ, или плацебо (стерильная вода). Производили наблюдение за тридцатью поросятами из каждой экспериментальной группы на побочные реакции путем контроля температуры тела, набора веса и реакций в месте инъекции. За этими поросятами и остальными 70 поросятами из каждой экспериментальной группы наблюдали также на симптомы общего состояния здоровья в течение 28 дней после инъекций. Результаты этого исследования показывают, что вакцина не вызывала побочных эффектов и является безопасной при правильном использовании в группе, позитивной на PRRS.

Ректальные температуры до вакцинации (-2 ДДВ) показали, что поросята, использованные в этом испытании, не были здоровыми нормальными поросятами. Температуры в группе А были значительно выше, чем температуры для группы Б в дни испытания -2 и -1 (p < 0,05). Не было значительных различий между двумя группами в дни испытания 0, 1, 2 и 3 (p < 0,05). Эти результаты показывают, что вакцинация модифицированной живой вакциной PRRS не обостряет состояний, вызываемых существующей повышенной температурой.

Ни у одного поросенка из той или другой группы не было какой-либо реакции после лечения в месте инъекции. Эти результаты дополнительно демонстрируют безопасность вакцины при правильном применении.

В течение 29-дневного срока, с дня испытания -2 по 27, 30 поросят из группы А набирали в среднем 9,53 кг (21,02 фунта), а 29 поросят из группы Б набирали в среднем 8,26 кг (18,18 фунта). Это различие было значимым, с p < 0,05. Так как это испытание выполнялось под угрозой активной инфекции PRRS, результаты являются показательными как в отношении безопасности, так и эффективности вакцины.

Результаты клинических наблюдений показывают, что вакцинация значительно снижает частоту появления тяжелых клинических показателей. Сниженные клинические показатели включают внешний вид - с 62 до 6, дефекации - с 48 до 24, глаза - с 162 до 89, ноздри - с 30 до 0, рот - с 30 до 0, аппетит - с 91 до 13, уход (обработки) - с 37 до 14 и смерти с 5 до 0. Снижение числа обработок, получаемое группой 1 по сравнению с группой Б, было значительным (p < 0,05). Снижение клинической симптоматики дополнительно свидетельствует о том, что модифицированная живая вакцина PRRS является безопасной при использовании в группе, в которой имеется клиническая вспышка заболевания, связанного с вирусом PRRS.

В заключение, как показано, вакцина является безопасной при соответствующем использовании в группе животных, в которой присутствует активная клиническая форма заболевания, связанного с инфицированием PRRS. Вакцина не усиливает клинических симптомов, независимо от того, связаны ли они с вирусом PRRS или с возбудителями вторичной инфекции, которые, как известно, существуют в этом свиноводческом хозяйстве. В условиях, которые существуют в этом месте испытания, эти результаты также показали целительное действие в экспериментальной группе, получающей вакцину.

Пример 7
В этом примере определялось действие у 20 конкретных, свободных от патогенных возбудителей, разного пола, 5-недельных поросят датской породы ландрас, вакцинации низкой дозой вакцины их пассажа 75 ATCC-VR2332 (ATCC-VR2495) на распространение вируса Lelystad (LV). Дикие штаммы LV, как полагают, играют важную роль в предрасположении поросят к вторичным респираторным инфекциям, служащим причиной плохой продуктивности и высоких уровней падежа. Этот пример представляет данные, касающиеся действия вакцины на передачу вируса LV европейского антигенного типа.

Поросят разделили на две группы из 10 животных: одну экспериментальную группу и одну контрольную. Каждого поросенка в экспериментальной группе вакцинировали внутримышечно 2 мл разведенной вакцины, содержащей примерно 10³ TCID₅₀ вакциной ATCC-VR2332 после 75 пассажа. Шестью неделями позже 5 животных из каждой группы заражали путем интраназального инфицирования европейским штаммом LV дикого типа (код CDI-NL-2.91, Ter Huurne, 5-ый пассаж на свиных альвеолярных макрофагах) с использованием заражающей дозы, равной 10^5,3 TCID₅₀/2 мл. Через 1 день зараженных поросят возвращали в их загоны.

В эксперименте определяли появится ли, когда и у скольких поросят, вакцинированных и невакцинированных, клиническое заболевание и будет ли у них виремия, и станут ли инфицированными вирусом Lelystad и сколько однопометных поросят, зараженных по контакту. Инфицирование в вакцинированной и контрольной группе затем оценивалось количественно, и подсчитывали степень передачи вируса Leiystad в вакцинированной и контрольной группах. Чтобы вакцинация была успешной, тяжесть и продолжительность заболевания и виремии и степень передачи в вакцинированной группе должна быть меньше, чем в контрольной группе.

В этом исследовании при испытании в экстремальных условиях низкой дозы вакцины и заражения гетерологичным возбудителем показана ценность вакцины в качестве защиты от заболевания.

Вакцинация снижала уровень проявления клинических симптомов заболевания после заражения. Она значительно снижала среднюю ректальную температуру после заражения, она значительно снижала число дней, в течение которых зараженные поросята имели виремию; и это значительно снижало уровень виремии у зараженных поросят. Кроме того, хотя передача от непосредственно зараженных поросят к заражаемым по контакту поросятам происходила у всех поросят, как в вакцинированной, так и в невакцинированной группе, существовало значительное различие между передачей LV дикого типа в вакцинированной и невакцинированной группе.

Вакцинация низкой дозой вакцины 75 пассажа ATCC-VR2332 американского антигенного типа PRRS, следовательно, была эффективной для обеспечения защиты от заражения вирусом Lelystad европейского антигенного дикого типа.

Пример 8
Производство вакцины в промышленном масштабе
На чертеже изображена схематическая диаграмма процесса для использования при производстве количеств промышленного масштаба живой модифицированной основной посевной культуры вируса из примера 1. Процесс P10 начинается со стадии P12, которая является стерилизацией всех контейнеров. Стерилизация, предпочтительно, производится путем облучения, но может быть также осуществлена термическим или химическим способом. Типы контейнеров включают колбы для посевного материала, например, 75-150 мл, пятилитровые колбы, вращаемые сосуды для культивирования и стальные сосуды-биореакторы с перемешиванием воздухом.

Стадия P14 включает получение размножающихся культур клеток-хозяев MA-104. Основная клеточная линия MA-104 58 пассажа хранится в жидком азоте и используется для снабжения клетками-хозяевами культуры вируса по 78 пассаж. Основные клеточные культуры MA-104 выращивают в колбах с объемом в интервале от 75 мл до 150 мл и содержащим от 50 до 150 мл среды. Среда предпочтительно включает МПС (минимальную поддерживающую среду), смешанную с 10% бычьей или фетальной телячьей сывороткой и примерно 30 мкг на 1 мл неомицина. Стерильные колбы и среду предпочтительно засевали примерно 1 мл предварительного пассажа культуры MA-104 и инкубировали при температуре от примерно 35^oC до примерно 37^oC в течение 3-7 суток.

Размножение основных клеточных культур предпочтительно происходит из 150 мл колбы в примерно 400-600 мл среды в отношении 1:5 (объем на объем). После примерно 4-7 дней инкубации при примерно 35-37^oC эти 400-600 мл среды можно потом дополнительно подрастить в пятилитровой колбе, наполненной средой. Или же посевной материал может подаваться при соотношении 1:3,4 в культуру во вращаемом сосуде, имеющем площадь роста, равную примерно 670-850 см² и содержащем 150 мл среды, которая затем дополнительно подращивается в других вращающихся сосудах с культурой при соотношении от примерно 1:9 до 1:11. Эти субкультуры инкубируют в течение примерно 4-7 дней при примерно 35-37^oC.

Стадия P16 включает получение продуктивных культур, инфицированных вирусом клеток MA-104. Размножающиеся культуры со стадии P14 обычно дополнительно размножают в сосудах-биореакторах большего объема при соотношении от примерно 1:3 до примерно 1:5 (объем на объем). Сосуды для производства могут включать, например, пятилитровые колбы культур для размножения или 40-литровые сосуды для культивирования из нержавеющей стали, снабженные аэродинамической мешалкой, регуляцией температуры и регуляцией pH. Сосуд наполняют соответствующим количеством среды для роста, засевают клетками MA-104, инкубируют при примерно 35^oC в течение 4-7 дней и инфицировали основной культурой вируса из примера 1. Эта вирусная культура предпочтительно должна иметь титр по меньшей мере примерно 10⁶ TCID₅₀ на 1 мл по ЦПЭ и должен добавляться в культуры в сосудах для производства в соотношении по меньшей мере примерно 0,1-10 мл на 100 мл среды. Продуктивные культуры инкубируют при примерно 35-37^oC в течение 2-3 дней после инфицирования аттенуированным вирусом.

Стадия 18 включает выделение (сбор) продуктивных культур со стадии P16 после периода инкубации после инкубации. Соответствующее время для основного сбора клеток должно определяться путем визуального контроля ЦПЭ, на который укрывают примерно 10% макроскопических изменений (клетки в виде круга и разрушение слоя клеток) или изменение pH на 10%. Производственную культуру со стадии P16 собирали колпаком с ламинарным потоком путем слива в стерильный контейнер или через закрытую систему для отбора под положительным давлением. Собранную вирусную массу замораживали и хранили при температуре от примерно -40^oC до примерно -70^oC.

Были получены образцы для измерений качественного контроля, какие необходимы. Образцы каждой собранной массы испытывают в тиогликолятной среде на переваренном казеине соевых бобов, которую инкубируют при примерно 36^oC и 20^oC, соответственно, в течение 14 дней при каждой температуре. Этот посевной материал вируса используют для размножения последующих культур, если испытание показывает титр, равный по меньшей мере примерно 10⁵ TCID₅₀/мл по ЦПЭ. Неудовлетворительный материал стерилизуют 5% гипохлоритом натрия в течение 24 часов или автоклавируют.

Стадия P20 включает стабилизацию и лиофилизацию замороженной вирусной массы, полученной на стадии P18. Замороженную вирусную массу оттаивают и, предпочтительно, смешивают с фармакологически совместимым стабилизатором, таким как обычный сахарозно-желатиновый стабилизатор, в соотношении примерно три части оттаявшей основной посевной культуры на примерно одну часть стабилизатора. Для регуляции конечной концентрации вируса может быть добавлен физиологический раствор соли.

Смесь затем делят на отдельные дозированные объемы примерно по 0,28 мл каждый, причем каждая доза содержит примерно 0,20 мл культуры PRRS на дозу при минимальном титре 10^4,9 TCID₅₀ на дозу. Здесь отмечено, что предпочтительное количество стабилизированной производственной культуры, которая получена на стадиях P16, P18 и P20, будет достаточным для изготовления 150000 и 500000 стабилизированных доз. Например, 25 доз должны содержаться в объеме примерно 7,0 мл. Эти объемы замораживают в закупоренном виде, предпочтительно в жидком азоте. Камеру для сушки выдерживают под вакуумом, тогда как температура повышается до максимума, равного примерно 30^oC, и разлитый объем выдерживают в течение максимально 18 часов для удаления (возгонки) влаги из образца.

Стадия P22 включает непрерывный контроль вакцинного продукта, который получен на стадии P20. Контейнер конечных образцов или несколько штук из одной серии вакцины PRRS проверяют на образование пятна, чтобы убедиться, что содержание влаги упало ниже 5%. Серии с содержанием влаги более 4% или менее 1% должны испытываться на активность через интервалы в шесть месяцев. Для определения безопасности морским свинкам делали инъекцию количества, эквивалентного по весу 10 дозам вакцины, и наблюдали за ними в течение 21 дня на неблагоприятные симптомы клинической реакции.

Вирус VR2332 адаптировался также к холоду параллельно с аттенуированием, описанным в примере 1. Это было сделано для получения вакцинного штамма, который предотвращает распространение вируса инфицированными животными. Такая адаптация к холоду производилась путем последовательных пассажей при температуре 31-35^oC. Полученные штаммы должны также стимулировать иммунный ответ.

Формула изобретения

1. Вакцинная композиция против репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS), содержащая авирулентный штамм вируса репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS) ATCC-VR2332 и фармакологически приемлемый носитель.

2. Вакцинная композиция по п.1, в которой указанный фармакологически приемлемый носитель содержит сахарозно-желатиновый стабилизатор.

3. Вакцинная композиция по п.1, в которой указанный вирус был пассирован 75 раз.

4. Способ иммунизации свиней против репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS), включающий в себя введение животному вакцинной композиции и выработку организмом устойчивого иммунитета к патогенным формам вируса репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS).

5. Способ по п.4, при котором указанный вирус был пассирован 75 раз.

6. Способ получения вакцины против репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS), включающий в себя стадии получения продуктивной культуры авирулентного штамма вируса репродуктивного и респираторного синдрома свиней (PRSS) ATCC-R2332, сбора вирусной культуры, добавления стабилизатора к вирусной культуре и лиофилизации вирусной культуры.

7. Способ по п.6, при котором стадия получения включает в себя инфицирование обезьяньей клеточной линии указанным вирусом и инкубацию полученной культуры при температуре примерно 35 - 37^oС.

8. Способ по п.6, при котором стадия сбора включает в себя замораживание вирусной культуры.

9. Способ по п.6, при котором стадия добавления включает в себя смешивание примерно одной части сахарозно-желатинового стабилизатора примерно с тремя частями вирусной культуры.

10. Способ по п.6, при котором стадия лиофилизации включает в себя сублимацию влаги из замороженного образца вирусной культуры.

11. Способ по п.6, при котором указанная культура включает в себя серийные объемы от 150000 до 500000 доз, каждая из которых составляет 0,28 мл.

12. Способ по п.10, дополнительно включающий в себя деление серийного объема перед стадией лиофилизации.

13. Способ по п.6, при котором указанный по существу авирулентный вирус является вирусом ATCC-VR2495.

14. Способ по п.6, при котором указанный вирус был пассирован 75 раз.

РИСУНКИ

Рисунок 1, Рисунок 2