Регулятор роста и способ повышения биохимической активности микроорганизмов и растений

 

Изобретение относится к органической химии и биотехнологии, а именно к регулятору роста растений и микроорганизмов. Регулятор роста содержит раствор биологически активного вещества - 2-оксо-(3Н)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин (Гидроптерин) формулы I в виде гидрата или солей при концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л. При использовании данного регулятора роста для повышения биохимической активности микроорганизмов указанный раствор вводят в ферментационную среду, при этом увеличивается биомасса микроорганизмов и накопление продуцируемых ими веществ. При использовании данного регулятора роста для повышения биохимической активности растений раствором указанного вещества обрабатывают семена и зеленую часть растений, что позволяет увеличить длину стебля, корней, количество листьев, сократить сроки всхожести, роста и развития растений. 3 с.п. ф-лы, 9 табл.

Изобретение относится к органической химии и биотехнологии, а именно к регуляторам роста микроорганизмов и растений на основе гетероциклических соединений с цитокининовыми свойствами, увеличивающими биохимическую активность микроорганизмов и растений.

Известен способ регулирования роста яровой пшеницы, ярового и озимого ячменя путем использования биологически активного вещества на основе пиримидинметанолов в смеси с хлорхолинхлоридом, см. авторское свидетельство СССР N 1409118 по кл. A 01 N 43/54, опубл. 1988 г.

Недостатком этого способа является то, что хлорхолинхлорид используется узко - только для яровой пшеницы.

Известно улучшение качества и увеличение урожая ситника при применении N-6-бензиладенина в дозе 2,5-25 г/га в составе твердого или жидкого препаратов, см. заявку Японии N 56 - 139666 по кл. A 01 N 43/90, опубл. 1983 г.

Известное применение N-6-бензиладенина ограничено в использовании - только для ситника.

Известно влияние пуриновых соединений гипоксантина, аденина, кинетина, гуанозина на стимулирующее действие на микроорганизмы при культивировании молочных бактерий, см. Михлин Э.Д., Радина В.П. Активация молочнокислых бактерий // Прикладная биохимия и микробиология. - 1983. - Т. XVII, вып. 3. - С. 353-354.

Указанные пуриновые соединения способствуют накоплению молочной кислоты, но процесс накопления длительный, что снижает экономичность использования.

Известен способ регулирования роста люцерны, включающий обработку при бутонизации водным раствором, содержащим регулятор роста и группы пиримидинового ряда, см. патент Российский Федерации N 1810036 по кл. A 01 N 43/00, опубл. 1993.

Этот способ ограничен по режимам обработки и используется только в стадии бутонизации люцерны.

Известен регулятор роста (α-нафталинуксусная кислота - НУК), стимулирующий рост сине-зеленой водоросли, см. Шигаев М.Х. Стимуляция жизнедеятельности микроорганизмов и вирусов, - Казахская ССР: Наука, 1986. - 43 с.

Регулятор НУК незначительно увеличивает численность клеток сине-зеленых водорослей.

Известны N-окиси 6-БАП (N-окиси 6-бензиламинопурина), оказывающие фитогормональное действие на растения - на процессы "старения", транспирацию и содержание белка в листьях, см. Физиология активных веществ//Г.П.Мозговая, В.С.Петренко, И.В.Болдырев, В.М.Черкасов. - Киев: 1984. - N 16. - С. 57-59.

Известный 6-БАП оказывает только гормональное действие на растения, приводящее лишь к более ранней выгонке цветов и образованию плодов.

Известен регулятор роста, содержащий водный раствор биологически активного вещества, см. патент США N 4326877 по кл. A 01 N 43/50, опубл. 1982, в качестве биологически активного вещества берут 6-аминопурин при концентрации 25-300 ч. на млн. и используют водный раствор для стимуляции роста корней трав путем опрыскивания травяного покрова.

Этот регулятор роста принят за прототип настоящего изобретения.

Однако он обладает рядом недостатков.

Регулятор-прототип характеризуется узким спектром использования - только для кормовых трав, ограничением биохимического воздействия - только для стимуляции роста корней.

В основу настоящего изобретения положено решение задачи расширения арсенала экономичных регуляторов роста растений и микроорганизмов, повышение эффективности роста и развития растений и увеличение интенсификации процессов метаболизма.

Согласно изобретению эта задача решается за счет того, что регулятор роста растений и микроорганизмов, содержащий раствор биологически активного вещества, в качестве биологически активного вещества содержит 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин (Гидроптерин) формулы в виде гидрата или солей при концентрации 10^-6÷10^-5 г/л.

Согласно изобретению эта задача решается за счет того, что способ повышения биохимической активности микроорганизмов путем воздействия на процессы роста и метаболизма раствором биологически активного вещества, в качестве биологически активного вещества берут 2- оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин (Гидроптерин) формулы в виде гидрата или солей и вводят в ферментационную среду до достижения концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л.

Согласно изобретению эта задача решается за счет того, что способ повышения биохимической активности растений путем воздействия на процессы роста и развития растений раствором биологически активного вещества берут 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин (Гидроптерин) формулы в виде гидрата или солей и готовят раствор концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л.

Заявителями не выявлены источники, содержащие информацию о регуляторах роста и способах их реализации, идентичных настоящему изобретению, что позволяет сделать вывод об их соответствии критерию "новизна".

За счет реализации отличительных признаков изобретения (в совокупности с признаками, указанными в ограничительной части формулы) достигаются важные новые свойства вещества и способы их использования. Предложенный регулятор роста растений и микроорганизмов является новым регулятором, он экономичен, так как затраты на производство гидроптерина невелики и стоимость продукта определяется ценой недорогого исходного сырья (урацила, брома, этилендиамина).

Предложенный регулятор повышает эффективность роста и развития растений при заявленной концентрации, так как при использовании раствора гидроптерина активизируется дружность прорастания семян, увеличивается масса стебля, масса корня и количество истинных листьев. Гидроптерин используют как для замачивания семян, так и для последующей обработки при вегетативном развитии растений.

Предложенный регулятор увеличивает интенсификацию процессов метаболизма (при заявленной концентрации), так как при использовании раствора гидроптерина увеличивается биомасса дрожжей, повышается выход спирта, увеличивается накопление молочной кислоты.

Заявителям не известны какие-либо публикации, которые содержали бы сведения о влиянии отличительных признаков изобретения на достигаемый результат. В связи с этим, по мнению заявителей, можно сделать вывод о соответствии заявляемого решения критерию "изобретательский уровень".

Сущность изобретения поясняется примерами.

Гидроптерин экологически безопасен для человека и биосферы. Острая токсичность гидроптерина исследована в опытах на белых мышах и белых крысах. После подкожного введения мышам гидроптерина в дозе 2 г/кг никаких симптомов интоксикации не наблюдалось. У белых крыс после введения им через зонд в желудок взвеси или подкисленного теплого водного раствора гидроптерина в дозе 0.5 г/кг никаких проявлений интоксикации не обнаружено, даже в течение трехнедельного введения с суммарной дозой 1400 мг. Исследование влияния гидроптерина в динамике на функциональное состояние различных физиологических систем (сердечно-сосудистая, нервная система) и органов (селезенка, сердце, легкие, почки, мозг, печень) животных с регистрацией массы тела, записью электрокардиограммы, анализом мочи, крови, определением активности ферментов холинэстеразы, аланин- и аспартатамино-трансферазы не выявило статистически значимой разности между крысами и мышами, получавшими гидроптерин, и животными контрольной группы. Таким образом, гидроптерин может быть отнесен к V классу практически нетоксичных веществ.

Изобретение включает оригинальную технологию получения гидроптерина, которая описывается химической схемой (см. в конце описания).

Пример 1 (синтез).

I стадия - 5-бромурацил: - урацил 504 г (4.5 моль) и 1800 мл воды загружают в трехгорлую колбу объемом 4 л, снабженную обратным холодильником, термометром, эффективной мешалкой и капельной воронкой; - смесь нагревают до 40^oC на водяной бане и при интенсивном перемешивании прикапывают 232 мл (4.5 моль) жидкого брома в течение 45 мин, при этом наблюдается небольшой тепловой эффект, подъем температуры до 55-60^oC и почти полное растворение исходного урацила; - смесь перемешивают при температуре 80-85^oC в течение 1.5 часа, при этом происходит полное обесцвечивание массы и выпадает обильный осадок продукта;
- реакционную массу охлаждают сначала до комнатной температуры, затем выдерживают в ледяной воде в течение 2 часов и в холодном состоянии отфильтровывают белый кристаллический осадок;
- осадок отжимают от маточного раствора и промывают водой до отрицательной реакции на ион брома и отсутствия примесей 5,5- дибром-6-окси-5,6-дигидроурацила;
- осадок отжимают и сушат в сушильном шкафу при температуре 70-75^oC до постоянного веса;
- получают 816,7 г (95%) 5-бромурацила в виде бесцветных кристаллов с т. пл. 303-305^oC с разл. ; хроматографически однороден - R_f = 0.45 в системе метанол-хлороформ - 1: 4, силуфол УФ 254. Вычислено для C₅H₃BrN₂O₂ (М.м. 191.05), %: Br - 41.83, N - 14.66. Найдено, %: Br - 41.67, N - 14.59;
- ПМР спектр, ДМСО-d₆, δ, м.д.: 7.75 (C₆-H, д, 1H); 11.15 (NH, д, 1Н), 11.50 (NH, с, 1Н); УФ-спектр: 0.1 н. HCl - λ_макс = 275 нм (lgε 3.88); 0.1 н. NaOH λ_макс = 290 нм (lg ε 3.86).

II стадия - 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин (гидроптерин)
- 1410 мл 70%-ного водного раствора этилендиамина (d=0.975) загружают в трехгорлую колбу объемом 4 л, снабженную обратным холодильником, термометром, эффективной мешалкой;
- смесь нагревают до 70-75^oC на водяной бане и прибавляют небольшими порциями 860 г (4.5 моль) 5-бромурацила в течение 1 часа. При этом температура реакционной массы не должна превышать 85^oC;
- наблюдается растворение исходного 5-бромурацила, а затем происходит кристаллизация продукта реакции;
- смесь перемешивают при 80-85^oC в течение 1.5 часов до исчезновения на хроматограмме исходного урацила;
- реакционную массу охлаждают до 50-60^oC и приливают при перемешивании 1.5 л метилового спирта;
- смесь нагревают при 70-75^oC и перемешивают в течение 1 часа;
- смесь охлаждают ледяной водой в течение 3 часов и осадок отфильтровывают;
- осадок хорошо отжимают от раствора, промывают 450 мл 70% метанола, маточный раствор отделяют для регенерации метанола и этилендиамина, отжимают от растворителя и сушат до постоянного веса;
- получают 651 г (85%) 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридина моногидрата (гидроптерина) в виде светло-желтых кристаллов с т. пл. 200 - 205^oC с разл. ; хроматографически однороден R_f = 0.8 в системе 5% NH₄Cl, силуфол УФ 254. Вычислено для C₆H₁₀N₄O₂ (М. м. 170.18), %: C - 42.31, Н - 5.87, N - 32.94. Найдено, %: C - 42.26, Н - 5.81, N - 32.89.

Препарат стандартизирован по физико-химическим показателям:
- ПМР спектр, ДМСО-d₆, δ, м.д.: 6.45 (C₄-Н, с, 1Н); 2.80 (CH₂CH₂, с, 4Н); УФ-спектр: вода - λ_макс1 = 233 нм (lg ε = 4.01), λ_макс2 = 300 нм (lg ε 3,77), 0.1 н. HCl - λ_макс = 299 нм (lg ε 3.60); 0.1 н. NaOH λ_макс = 292 нм (lg ε 3.55); ИК спектр (KBr): ν_C=O1645 см^-1, ν_кольца1600 см^-1.
Гидроптерин растворяется в разбавленных щелочах, минеральных кислотах с образованием солей, нерастворим в хлороформе, бензоле, эфире. Растворимость в кипящем спирте 1 г/50 мл, в кипящей воде - 1 г/30 мл (хорошо кристаллизуется).

Процесс получения 5-бромурацила может быть совмещен со стадией его конденсации с этилендиамином, то есть технологический процесс получения гидроптерина из урацила упрощается и проводится в одном реакторе. Затраты на производство гидроптерина невелики и стоимость продукта определяется лишь ценой недорогого исходного сырья (урацила, брома, этилендиамина).

Заявленный раствор содержит биологически активное вещество 2-оксо-(3H)-5,6,7,8 тетрагидроптеридин (Гидроптерин) формулы

в виде гидрата или солей при концентрации 10^-6-10^-5 г/л.

Способ интенсификации процессов метаболизма микроорганизмов состоит в следующем и поясняется примерами.

Готовят водный раствор гидроптерина: гидроптерин в количестве 1 мг растворяют в 1 г воды.

Готовят ферментационную среду: посевной материал вносят в стерильную среду в соотношении 10% к объему среды.

Водный раствор гидроптерина в количестве 1 мл вводят в (10 мл; 100 мл; 1000 мл; 10000 мл) ферментационной среды, соответственно, и получают концентрации гидроптерина 10^-4; 10^-5; 10^-6; 10^-7 г/л.

Пример 2.

Посевной материал: дрожжи Saccharomyces cerevisiae шт. АТСС-7754 с титром живых клеток 10⁷ кл/мл.

Стерильная минеральная среда, г/л:
Глюкоза - 10,0
(NH₄)₂SO₄ - 2,5
К₂HPO₄ - 3,0
MgSO₄ • 7H₂O - 0,2
Дрожжевой экстракт - 1,0
Дрожжи культивируют в аэробных условиях на ротационной качалке при 220 об/мин в течение 4-х суток и определяют накопление биомассы в культуральной среде.

Результаты опыта представлены в табл. 1.

Из табл. 1 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина 10^-6 - 10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению численности дрожжей на 53% на 4-е сутки. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание:
1. Посевной материал взят из учебной коллекции кафедры технологии микробиологического синтеза Санкт-Петербургского государственного технологического института (технического университета).

2. Контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 3.

Посевной материал: дрожжи Saccharomyces cerevisiae шт. АТСС-7754 с титром живых клеток 10⁶ кл/мл.

Стерильная минеральная среда Крючковой, г/л:
Глюкоза - 20,0
NH₄H₂PO₄ - 5,0
K₂SO₄ - 0,5
MgSO₄ • 7H₂O - 0,5
Дрожжевой экстракт - 1,0
Условия культивирования среды: дрожжи культивируют в анаэробных условиях в течение 3-х суток и после этого определяют содержание спирта в культуральной среде.

Результаты опыта представлены в табл. 2.

Из табл. 2 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина - 10^-6 - 10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению бродильной активности дрожжей и повышает выход спирта на 22-40% на 3-й сутки. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание:
1. Посевной материал взят из учебной коллекции кафедры технологии микробиологического синтеза Санкт-Петербургского государственного технологического института (технического университета).

2. Контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 4.

Посевной материал: водоросли Clorella vulgaris шт. 157 с титром живых клеток 10⁶ кл/мл.

Стерильная минеральная среда Хата, г/л:
Глюкоза - 10,00
(NH₄)₂HPO₄ - 1,50
K₂HPO₄ - 1,50
MgSO₄ • 7H₂O - 1,00
CaCl₂ - 0,50
NaCl - 0,50
FeSO₄ • 7H₂O - 0,01
Дрожжевой экстракт - 1,0
Условия культивирования среды: водоросли культивируют в аэробных условиях при дневном освещении 2000 лк в течение 4-х суток и определяют накопление биомассы в культуральной среде.

Результаты опыта представлены в табл. 3.

Из табл. 3 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина - 10^-6 - 10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению количества клеток водорослей на 23-31% на 2-е сутки. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание:
1. Посевной материал взят из коллекции БНШ АН РФ.

2. Контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 5.

Посевной материал: бактерии Streptococcus bovis шт. АТСС-49133 с титром живых клеток 10⁹ кл/мл.

Стерильная крахмалсодержащая среда, г/л:
Мука пшеничная - 10,00
Препарат глюкоамилазы с активностью 2000 м.е. - 0,05
Условия культивирования среды: бактерии культивируют в анаэробных условиях при температуре 40^oC в течение 73 часов и определяют накопление молочной кислоты в культуральной среде.

Результаты опыта представлены в таблице 4.

Из таблицы 4 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина - 10^-6-10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению накопления молочной кислоты на 20-28% через 73 часа. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание:
1. Посевной материал взят из учебной коллекции кафедры технологии микробиологического синтеза Санкт-Петербургского государственного технологического института (технического университета).

2. Контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 6.

Посевной материал: бактерии Streptococcus bovis шт. АТСС-49133 с титром живых клеток 10⁹ кл/мл.

Стерильная инулинсодержащая среда, г/л: мука топинамбура 100
Условия культивирования среды: бактерии культивируют в анаэробных условиях при температуре 40^oC в течение 73 часов и определяют накопление молочной кислоты в культуральной среде.

Результаты опыта представлены в таблице 5.

Из таблицы 5 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина - 10^-6 - 10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению накопления молочной кислоты на 26-31% через 73 часа. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание:
1. Посевной материал взят из учебной коллекции кафедры технологии микробиологического синтеза Санкт-Петербургского государственного технологического института (технического университета).

2. Контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Способ повышения биохимической активности растений осуществляют следующим образом.

Готовят водный раствор гидроптерина: гидроптерин в количестве 1 мг растворяют в 1 л воды, 1 мл раствора переносят в 10 мл; 100 мл; 1000 мл; 10000 мл воды, соответственно, и получают водные растворы гидроптерина с концентрациями 10^-4; 10^-5; 10^-6; 10^-7 г/л.

Пример 7.

Растения:
- однолетнее семейство злаковых РАЙГРАС;
- горох кормовой.

Водный раствор гидроптерина при концентрациях: 10^-4; 10^-5; 10^-6; 10^-7 г/л.

Условия обработки семян:
- семена замачивают в водном растворе гидроптерина указанных концентраций, соответственно, на 1 час;
- выдерживают в течение 1 часа;
- высаживают на глубину 0,5 см;
- определяют количество проросших семян через 3-4 дня;
- измеряют длину проростка через 7 дней.

Результаты опыта представлены в таблице 6.

Из таблицы 6 видно, что наиболее эффективная и экономичная концентрация раствора гидроптерина - 10^-6 - 10^-5 г/л. Этот предел концентраций способствует увеличению количества проросших семян у РАИГРАСа на 20-23% и у гороха на 56-59%, и увеличению длины проростка у РАИГРАСа на 15-21% и у гороха на 8-10%. Вне указанного диапазона концентраций использование гидроптерина становится менее эффективным и экономичным.

Примечание: контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 8.

Растения: горох, огурцы, бархотцы.

Водный раствор гидроптерина при концентрации 10^-6 г/л.

Условия обработки семян:
- семена замачивают в водном растворе гидроптерина на 1 час;
- выдерживают в течение 1 часа;
- высаживают на глубину 0,5 см;
- определяют всхожесть через 4-7 дней.

Результаты опыта представлены в таблице 7.

Из таблицы 7 видно, что обработка семян раствором гидроптерина значительно активизирует энергию и дружность прорастания семян. Всхожесть семян гороха на пятые сутки достигает 98%. Всхожесть семян огурцов и бархотцев на четвертые сутки достигает 96% и 98%. В то время как максимальная всхожесть на контроле наблюдается только на седьмые сутки. Использование гидроптерина повышает всхожесть семян и сокращает время их прорастания на трое-четверо суток.

Примечание: контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Пример 9.

Растения: - томаты, капуста, редис, лук, укроп;
- горох;
- люпин.

Водный раствор гидроптерина при концентрации 1•10^-6 г/л.

Условия обработки.

Вариант с обработкой семян гидроптерином:
- семена замачивают;
- семена выдерживают в течение 1 часа;
- семена высаживают на глубину 0,5 см.

Вариант с обработкой семян гидроптерином с последующим опрыскиванием зеленой части растений:
- семена замачивают;
- семена выдерживают в течение 1 часа;
- семена высаживают на глубину 0,5 см;
- зеленую часть растений опрыскивают 1 раз в неделю раствором гидроптерина;
- зеленую часть растений опрыскивают раствором гидроптерина в течение 5 недель.

Результаты опыта представлены в табл.8.

Из табл.8 видно, что после обработки семян раствором гидроптерина у всех исследованных растений по сравнению с контролем наблюдается увеличение длины стебля от 6 до 133%, увеличение длины корня - от 12 до 53%, увеличение количества листьев - от 33 до 78%.

Еще более эффективно сочетание замачивания семян с последующим опрыскиванием зеленой части растений раствором гидроптерина один раз в неделю в течение 5 недель. При таком режиме обработки увеличение длины стебля по сравнению с контролем у всех исследованных растений составляет от 10 до 181%, увеличение длины корня - от 17 до 110%, увеличение количества листьев - от 78 до 175%.

Примечание: контрольный вариант не обрабатывают гидроптерином.

Проведено сравнение использования предложенного регулятора роста с известными регуляторами роста.

Пример 10.

Растение: Plectrantus austrelis.

Регуляторы роста:
- лентехнин;
- индолилуксусная кислота (β-ИУК);
- бензиламинопурин (6-БАП) - прототип;
- гидроптерин.

Результаты опыта представлены в таблице 9.

Из табл. 9 видно, что наиболее эффективным и экономичным является гидроптерин. При использовании гидроптерина в виде раствора с концентрацией 10^-6 г/л масса корня и стебля Plectrantus austrelis увеличивается по отношению к контролю на 119 и 143% соответственно. Использование 6-БАП (прототип) при такой же концентрации приводит к увеличению массы корня на 104%, а стебля - на 106%. Повышение концентрации 6-БАП до 10/ г/л не приводит к приросту массы корня и стебля.

Использование раствора индолилуксусной кислоты (β-ИУК) и лентехнина с концентрацией 10^-4 г/л менее эффективно, чем применение гидроптерина, поскольку приводит к увеличению массы корня соответственно на 115 и 94%, а стебля - на 128 и 117%.

Примечание: контрольный вариант не обрабатывают регулятором роста.

Предложенный регулятор роста растений и микроорганизмов является эффективным и экономичным. Технология его получения пригодна для реализации в промышленном масштабе с использованием стандартного оборудования и отечественного сырья, что обуславливает, по мнению заявителей, его соответствие критерию "промышленная применимость".

Новый регулятор роста - гидроптерин является высокоэффективным и экономичным регулятором, способ получения гидроптерина высокопроизводителен, экономичен и стоимость целевого продукта значительно ниже по сравнению с импортными препаратами аналогичного действия.

Использование гидроптерина, как регулятора роста растений и микроорганизмов позволяет:
- повысить эффективность биохимических процессов;
- сократить сроки роста, развития растений и метаболизма микроорганизмов и растений;
- увеличить биомассу микроорганизмов;
- повысить выход спирта в процессе брожения;
- увеличить накопление молочной кислоты в процессе брожения;
- увеличить длину стебля, массу корней растений;
- сократить сроки всхожести, роста и развития растений.

Формула изобретения

1. Регулятор роста растений и микроорганизмов, содкржащий раствор биологически активного вещества, отличающийся тем, что в качестве биологически активного вещества он содержит 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин(гидроптеридин) формулы

в виде гидрата или солей при концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л.

2. Способ повышения биохимической активности микроорганизмов путем воздействия на процессы их роста и метаболизма раствором биологически активного вещества, отличающийся тем, что в качестве биологически активного вещества берут 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин по п.1 и вводят в ферментативную среду до достижения концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л.

3. Способ повышения биохимической активности растений путем воздействия на процессы роста и развития раствором биологически активного вещества, отличающийся тем, что в качестве биологически активного вещества берут 2-оксо-(3H)-5,6,7,8-тетрагидроптеридин по п. 1 и готовят раствор концентрации 10^-6 - 10^-5 г/л.

РИСУНКИ

Рисунок 1, Рисунок 2, Рисунок 3, Рисунок 4, Рисунок 5, Рисунок 6, Рисунок 7, Рисунок 8, Рисунок 9, Рисунок 10, Рисунок 11