Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале



Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале
Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале
Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале
Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале

 


Владельцы патента RU 2439562:

Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" (RU)

Изобретение относится к биологии, экологии, токсикологической и санитарной химии и может быть использовано в практике санэпидстанций, химико-токсикологических, ветеринарных и экологических лабораторий. Биологическую ткань измельчают, дважды по 1 часу настаивают с порциями диоксана, каждая из которых в два раза по массе превышает количество биоматериала, отдельные извлечения объединяют, фильтруют, фильтрат упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до незначительного объема, разбавляют в 5 раз водой, экстрагируют этилацетатом, этилацетатное извлечение отделяют, обезвоживают, упаривают при 18-22°С в токе воздуха до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), очищают методом колоночной хроматографии в колонке размером 490×11 мм, заполненной 10 г силикагеля L 40/100 µ, с использованием подвижной фазы гексан - диоксан-пропанол-2 (150:5:1), фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°С до незначительного объема, затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в гексане и проводят определение методом газожидкостной хроматографии с применением капиллярной колонки DB-1701 длиной 30 м и внутренним диаметром 0,25 мм со стационарной фазой толщиной 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль, используя газ-носитель гелий, подаваемый со скоростью 1 мл/мин и масс-спектрометрический детектор, работающий в режиме электронного удара, с регистрацией масс-спектра по полному ионному току, количество эсфенвалерата вычисляют из данных хроматограммы, полученной регистрацией интенсивности сигнала, обусловленного заряженными частицами, образующимися при бомбардировке анализируемого вещества, вышедшего из капиллярной колонки и попавшего в источник ионов, ионизирующим пучком электронов с энергией 70 эВ. Способ обеспечивает повышение чувствительности определения. 4 табл.

 

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии, а именно к способам определения эсфенвалерата (α-циан-3-феноксибензил-(R,S)-2-(4-хлорфенил)-3-метилбутирата) в биологическом материале, и может быть использовано в практике химико-токсикологических и ветеринарных лабораторий. Способ относится к числу массовых.

Известен способ определения производных изовалериановой (3-метилбутановой) кислоты (к которым относится и эсфенвалерат) в биологическом материале растительного происхождения (рисе), заключающийся в том, что анализируемую пробу измельчают, проводят изолирование анализируемых веществ ацетоном путем настаивания в течение 48 часов, очистку экстракта проводят методом колоночной хроматографии путем последовательного пропускания через колонки с флорисилом, силасорбом C-18 и оксидом алюминия. Очищенный экстракт анализируют методом ВЭЖХ со спектрометрическим способом детектирования (Haddad Paul R., Brayan John.G., Sharp Gerard J., Dilli Sergio. Determination of pyretroid residues on paddy rice by reversed-phase high-performance liquid chromatography // Journal of Chromatography. - 1989. - Vol.461. - P.337-346).

Способ характеризуется длительностью выполнения, недостаточно высокой чувствительностью, не может обеспечить селективное определение близких по структуре синтетических пиретроидов производных изовалериановой кислоты.

Известен способ определения производных изовалериановой кислоты (к которым относится и эсфенвалерат) в растительных биологических объектах (фруктах и овощах) путем настаивания с метанолом, отделения метанольных извлечений, их объединения, упаривания объединенного извлечения в токе воздуха до полного испарения растворителя, разбавления 10% раствором хлорида натрия и экстрагирования толуолом, хроматографирования на макроколонке с использованием в качестве подвижной фазы толуола, объединения фракций элюата, содержащих исследуемое вещество, упаривания в токе воздуха до незначительного объема, растворения в органическом растворителе с последующим определением методом газожидкостной хроматографии с использованием детектора электронного захвата, капиллярной колонки НР-1 (длина 5 м, диаметр 0,53 мм, толщина пленки стационарной фазы 2,65 мкм) и подвижной фазы - смеси аргона и метана (10:90) (Guo-Fang Pang, Chun-lin Fan, Jan-Zhong Chao, Tie-Sheng Zhao. Rapid method for the determination of multiple pyretroid residues in fruits and vegetables by capillary column gas chromatography // Journal of chromatographya. - 1994. - Vol.667, №1+2. - P.348-353).

Способ характеризуется недостаточно высокой селективностью и чувствительностью.

Наиболее близким является способ определения эсфенвалерата (α-циан-3-феноксибензил-(R,S)-2-(4-хлорфенил)-3-метилбутирата) в биологическом материале (ткани печени), заключающийся в том, что к анализируемой пробе прибавляют воду, подщелачивают 0,1 М раствором гидроксида натрия до pH 9,0, обрабатывают концентрированным раствором хлорида натрия, трехкратно (по 1 часу) настаивают с порциями хлороформа, масса каждой из которых в 1,5 раза превышает массу биологического материала, отдельные извлечения объединяют, обезвоживают путем фильтрования через фильтр с безводным сульфатом натрия, растворитель испаряют из фильтрата при температуре не выше 40°C до сухого остатка, остаток растворяют в гексане и проводят определение методом газожидкостной хроматографии с применением пламенно-ионизационного детектора, набивной колонки размерами 130×0,2 см со стационарной фазой SE-30, нанесенной на твердый носитель N-AW-DMCS в количестве 5%, используя в качестве газа-носителя азот, скорость подачи которого составляет 30 мл/мин (З.А.Юлдашев, В.А.Попков. Химико-токсикологическое исследование синтетических пиретроидов. - М.: Издательство Московского университета. - 2006. - С.160-161, 119-121).

Задачей настоящего изобретения является повышение чувствительности определения.

Поставленная задача достигается с помощью предлагаемого способа, который заключается в том, что биологическую ткань (например, ткань печени) измельчают, дважды по 1 часу настаивают с порциями диоксана; масса каждой из которых в два раза превышает массу биоматериала, отдельные извлечения объединяют, фильтруют, фильтрат упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, разбавляют в 5 раз водой, экстрагируют этилацетатом, этилацетатное извлечение отделяют, обезвоживают, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), очищают методом колоночной хроматографии в колонке размером 490×11 мм, заполненной 10 г силикагеля L 40/100 µ, с использованием подвижной фазы гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в гексане и проводят определение методом газожидкостной хроматографии с применением капиллярной колонки DB-1701 длиной 30 м и внутренним диаметром 0,25 мм со стационарной фазой толщиной 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль, используя газ-носитель гелий, подаваемый со скоростью 1 мл/мин и масс-спектрометрический детектор, работающий в режиме электронного удара, с регистрацией масс-спектра по полному ионному току, количество эсфенвалерата вычисляют из данных хроматограммы, полученной регистрацией интенсивности сигнала, обусловленного заряженными частицами, образующимися при бомбардировке анализируемого вещества, вышедшего из капиллярной колонки и попавшего в источник ионов, ионизирующим пучком электронов с энергией 70 эВ.

Способ осуществляется следующим образом: биологический материал, содержащий эсфенвалерат, дважды по 1 часу настаивают с порциями диоксана, каждая из которых в два раза по массе превышает количество биоматериала, отдельные извлечения объединяют, фильтруют, фильтрат упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, разбавляют в 5 раз водой, экстрагируют этилацетатом, этилацетатное извлечение отделяют, обезвоживают, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), очищают методом колоночной хроматографии в колонке размером 490×11 мм, заполненной 10 г силикагеля L 40/100 µ, с использованием подвижной фазы гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в гексане и проводят определение методом газожидкостной хроматографии с применением капиллярной колонки DB-1701 длиной 30 м и внутренним диаметром 0,25 мм со стационарной фазой толщиной 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль, используя газ-носитель гелий, подаваемый со скоростью 1 мл/мин и масс-спектрометрический детектор, работающий в режиме электронного удара, с регистрацией масс-спектра по полному ионному току, количество эсфенвалерата вычисляют из данных хроматограммы, полученной регистрацией интенсивности сигнала, обусловленного заряженными частицами, образующимися при бомбардировке анализируемого вещества, вышедшего из капиллярной колонки и попавшего в источник ионов, ионизирующим пучком электронов с энергией 70 эВ.

Пример 1

Определение эсфенвалерата в ткани печени

К 10 г мелкоизмельченной ткани печени прибавляют 0,2 мг эсфенвалерата, тщательно перемешивают биологическую ткань с веществом и оставляют на сутки при температуре 18-22°C. По истечении указанного времени биологический объект, содержащий анализируемое вещество, заливают 20 г диоксана и выдерживают 60 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют, операцию настаивания повторяют в указанных условиях. Отдельные вытяжки объединяют, фильтруют через бумажный фильтр, фильтр дополнительно промывают 10 г диоксана. Фильтрат и промывную жидкость объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°C до объема менее 4 мл, доводят до 4 мл диоксаном, переносят в делительную воронку, добавляют 16 мл воды, 20 мл этилацетата и экстрагируют путем встряхивания содержимого воронки в течение 4 минут (120 встряхиваний). Процесс экстракции повторяют дважды. Извлечения объединяют в выпарительной чашке, растворитель испаряют из экстракта в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 3-4 мл системы растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях (150:5:1). Полученный раствор вносят в колонку размером 490×11 мм, заполненную 10 г силикагеля L 40/100 µ. После полного вхождения раствора в слой сорбента в колонку прибавляют элюент - систему растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях 150:5:1. Выходящий из колонки элюат собирают отдельными порциями по 2 мл каждая. Фракции с 14 по 25 включительно объединяют в выпарительной чашке, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 10 мл гексана, 2 мкл полученного раствора вводят в хроматограф типа «Agilent 7890 A C/5975C MSD».

Хроматографирование осуществляют в капиллярной колонке DB-1701 длиной 30 м, внутренним диаметром 0,25 мм, толщиной стационарной фазы 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль.

Начальная температура термостата колонки составляет 50°C (задержка на 1 минуту). Температура программируется от 50°C до 200°C со скоростью 50°C в минуту, от 200°C до 280°C со скоростью 20°C в минуту с выдержкой при конечной температуре 10 минут. Температура инжектора составляет 280°C, температура интерфейса - 260°C, температура квадруполя - 150°C, температура источника ионов - 230°C.

В качестве газа-носителя используется гелий. Подача газа-носителя производится со скоростью 1 мл/мин. Режим без деления потока с задержкой 1 минута. Масс-селективный детектор работает в режиме электронного удара (70 эВ). Регистрация масс-спектра проводится по полному ионному току с задержкой 8 минут. Диапазон сканирования составляет 40-550 m/z. Ток детектора 1500.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 12,01 мин соответствует эсфенвалерату. В масс-спектре данного соединения, снятом по полному ионному току, обнаруживаются сигналы ряда характеристических заряженных частиц с массовыми числами 55, 77, 125, 167, 225, 293, 419. Наиболее интенсивной является частица с массовым числом 125, интенсивность которой принимается за 100%.

Эсфенвалерат идентифицируют по сочетанию времени удерживания вещества в неподвижной фазе колонки и специфического набора сигналов характеристических заряженных частиц в его масс-спектре.

По площади хроматографического пика, полученного при регистрации интенсивности по полному ионному току, определяют количественное содержание анализируемого соединения, используя уравнение градуировочного графика, и пересчитывают на навеску анализируемого вещества, внесенную в биологический материал.

Построение калибровочного графика

В мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 0,01 г эсфенвалерата и доводят объем содержимого колбы до метки гексаном (раствор А). 1 мл раствора A вносят в мерную колбу вместимостью 10 мл и доводят до метки гексаном (раствор Б). 1 мл раствора А вносят в мерную колбу вместимостью 100 мл и доводят до метки гексаном (раствор В). 1, 3, 5 мкл полученных растворов А, Б и С вводят в колонку хроматографа.

Определение проводят, используя хромато-масс-спектрометрическую систему, марки «Agilent 7890 A C/5975С MSD» с квадрупольным масс-селективным детектором. Хроматографирование осуществляют в капиллярной колонке DB-1701 длиной 30 м, внутренним диаметром 0,3 мм, толщиной пленки стационарной фазы 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль. Начальная температура термостата колонки составляет 50°C (задержка на 1 минуту). Температура программируется от 50°C до 200°C со скоростью 50°C в минуту, от 200°C до 280°C со скоростью 20°C в минуту с выдержкой при конечной температуре 10 минут. Температура инжектора составляет 280°C, температура интерфейса - 260°C, температура квадруполя -150°C, температура источника ионов - 230°C.

В качестве газа-носителя используется гелий. Подача газа-носителя производится со скоростью 1 мл/мин. Режим без деления потока с задержкой 1 минута. Масс-селективный детектор работает в режиме электронного удара (70 эВ). Регистрация масс-спектра проводится по полному ионному току с задержкой 8 минут. Диапазон сканирования составляет 40-550 m/z. Ток детектора 1500.

По результатам измерений на хромато-масс-спектрометре строят график зависимости площади пика от концентрации определяемого вещества. График линеен в интервале концентраций 2·10-10-5·10-7 г.

Методом наименьших квадратов рассчитывают уравнение калибровочного графика, которое в данном случае имеет вид:

S=795332·C+56121,

где S - площадь хроматографического пика;

C - концентрация определяемого вещества в хроматографируемой пробе, нг.

Результаты количественного определения эсфенвалерата в ткани печени представлены в таблице 1.

Пример 2

Определение эсфенвалерата в ткани почек

К 10 г мелкоизмельченной ткани почек прибавляют 0,2 мг эсфенвалерата, тщательно перемешивают биологическую ткань с веществом и оставляют на сутки при температуре 18-22°C. По истечении указанного времени биологический объект, содержащий анализируемое вещество, заливают 20 г диоксана и выдерживают 60 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют, операцию настаивания повторяют в указанных условиях. Отдельные вытяжки объединяют, фильтруют через бумажный фильтр, фильтр дополнительно промывают 10 г диоксана. Фильтрат и промывную жидкость объединяют, упаривают в токе воздуха при при температуре 18-22°C до объема менее 4 мл, доводят до 4 мл диоксаном, переносят в делительную воронку, добавляют 16 мл воды, 20 мл этилацетата и экстрагируют путем встряхивания содержимого воронки в течение 4 минут (120 встряхиваний). Процесс экстракции повторяют дважды. Извлечения объединяют в выпарительной чашке, растворитель испаряют из экстракта в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 3-4 мл системы растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях (150:5:1). Полученный раствор вносят в колонку размером 490×11 мм, заполненную 10 г силикагеля L 40/100 µ. После полного вхождения раствора в слой сорбента в колонку прибавляют элюент - систему растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях 150:5:1. Выходящий из колонки элюат собирают отдельными порциями по 2 мл каждая. Фракции с 14 по 25 включительно объединяют в выпарительной чашке, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 10 мл гексана, 2 мкл полученного раствора вводят в хроматограф типа «Agilent 7890 A C/5975C MSD».

Хроматографирование осуществляют в капиллярной колонке DB-1701 длиной 30 м, внутренним диаметром 0,25 мм, толщиной стационарной фазы 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль.

Начальная температура термостата колонки составляет 50°C (задержка на 1 минуту). Температура программируется от 50°C до 200°C со скоростью 50°C в минуту, от 200°C до 280°C со скоростью 20°C в минуту с выдержкой при конечной температуре 10 минут. Температура инжектора составляет 280°C, температура интерфейса - 260°C, температура квадруполя - 150°C, температура источника ионов - 230°C.

В качестве газа-носителя используется гелий. Подача газа-носителя производится со скоростью 1 мл/мин. Режим без деления потока с задержкой 1 минута. Масс-селективный детектор работает в режиме электронного удара (70 эВ). Регистрация масс-спектра проводится по полному ионному току с задержкой 8 минут. Диапазон сканирования составляет 40-550 m/z. Ток детектора 1500.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 12,01 мин соответствует эсфенвалерату. В масс-спектре данного соединения, снятому по полному ионному току, обнаруживаются сигналы ряда характеристических заряженных частиц с массовыми числами 55, 77, 125, 167, 225, 293, 419. Наиболее интенсивной является частица с массовым числом 125, интенсивность которой принимается за 100%.

Эсфенвалерат идентифицируют по сочетанию времени удерживания вещества в неподвижной фазе колонки и специфического набора сигналов характеристических заряженных частиц в его масс-спектре.

По площади хроматографического пика, полученного при регистрации интенсивности по полному ионному току, определяют количественное содержание анализируемого соединения, используя уравнение градуировочного графика, и пересчитывают на навеску анализируемого вещества, внесенную в биологический материал.

Процесс построения градуировочного графика и его уравнение приведены выше в примере 1.

Результаты количественного определения эсфенвалерата в ткани почек представлены в таблице 2.

Пример 3

Определение эсфенвалерата в ткани желудка

К 10 г мелкоизмельченной ткани желудка прибавляют 0,2 мг эсфенвалерата, тщательно перемешивают биологическую ткань с веществом и оставляют на сутки при температуре 18-22°C. По истечении указанного времени биологический объект, содержащий анализируемое вещество, заливают 20 г диоксана и выдерживают 60 минут при периодическом перемешивании. Извлечение отделяют, операцию настаивания повторяют в указанных условиях. Отдельные вытяжки объединяют, фильтруют через бумажный фильтр, фильтр дополнительно промывают 10 г диоксана. Фильтрат и промывную жидкость объединяют, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°C до объема менее 4 мл, доводят до 4 мл диоксаном, переносят в делительную воронку, добавляют 16 мл воды, 20 мл этилацетата и экстрагируют путем встряхивания содержимого воронки в течение 4 минут (120 встряхиваний). Процесс экстракции повторяют дважды. Извлечения объединяют в выпарительной чашке, растворитель испаряют из экстракта в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 3-4 мл системы растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях (150:5:1). Полученный раствор вносят в колонку размером 490×11 мм, заполненную 10 г силикагеля L 40/100 µ. После полного вхождения раствора в слой сорбента в колонку прибавляют элюент - систему растворителей гексан-диоксан-пропанол-2, взятых в объемных соотношениях 150:5:1. Выходящий из колонки элюат собирают отдельными порциями по 2 мл каждая. Фракции с 14 по 25 включительно объединяют в выпарительной чашке, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°C до незначительного объема, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в 10 мл гексана, 2 мкл полученного раствора вводят в хроматограф типа «Agilent 7890 A C/5975C MSD».

Хроматографирование осуществляют в капиллярной колонке DB-1701 длиной 30 м, внутренним диаметром 0,25 мм, толщиной стационарной фазы 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль.

Начальная температура термостата колонки составляет 50°C (задержка на 1 минуту). Температура программируется от 50°C до 200°C со скоростью 50°C в минуту, от 200°C до 280°C со скоростью 20°C в минуту с выдержкой при конечной температуре 10 минут. Температура инжектора составляет 280°C, температура интерфейса - 260°C, температура квадруполя - 150°C, температура источника ионов - 230°C.

В качестве газа-носителя используется гелий. Подача газа-носителя производится со скоростью 1 мл/мин. Режим без деления потока с задержкой 1 минута. Масс-селективный детектор работает в режиме электронного удара (70 эВ). Регистрация масс-спектра проводится по полному ионному току с задержкой 8 минут. Диапазон сканирования составляет 40-550 m/z. Ток детектора 1500.

Пик на хроматограмме с временем удерживания 12,01 мин соответствует эсфенвалерату. В масс-спектре данного соединения, снятому по полному ионному току, обнаруживаются сигналы ряда характеристических заряженных частиц с массовыми числами 55, 77, 125, 167, 225, 293, 419. Наиболее интенсивной является частица с массовым числом 125, интенсивность которой принимается за 100%.

Эсфенвалерат идентифицируют по сочетанию времени удерживания вещества в неподвижной фазе колонки и специфического набора сигналов характеристических заряженных частиц в его масс-спектре.

По площади хроматографического пика, полученного при регистрации интенсивности по полному ионному току, определяют количественное содержание анализируемого соединения, используя уравнение градуировочного графика, и пересчитывают на навеску анализируемого вещества, внесенную в биологический материал.

Процесс построения градуировочного графика и его уравнение приведены выше в примере 1.

Результаты количественного определения эсфенвалерата в ткани желудка представлены в таблице 3.

Предлагаемый способ по сравнению с прототипом в 250 раз повышает чувствительность определения в хроматографируемой пробе и в 20 раз - в биологическом материале.

Сравнительная характеристика предлагаемого и известного способов представлена в таблице 4.

Способ определения эсфенвалерата в биологическом материале, заключающийся в том, что биологическую пробу измельчают, неоднократно настаивают с органическим растворителем, отдельные извлечения объединяют, фильтруют, растворитель из фильтрата испаряют и проводят определение методом газо-жидкостной хроматографии, отличающийся тем, что после измельчения биологической пробы ее дважды настаивают с порциями диоксана, масса каждой из которых в 2 раза превышает массу биоматериала, фильтрат упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С, разбавляют в 5 раз водой, экстрагируют этилацетатом, этилацетатное извлечение отделяют, обезвоживают, упаривают в токе воздуха при температуре 18-22°С, а затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в смеси растворителей гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), очищают методом колоночной хроматографии в колонке размером 490х11 мм, заполненной 10 г силикагеля L 40/100 µ, с использованием подвижной фазы гексан-диоксан-пропанол-2 (150:5:1), фракции элюата, содержащие анализируемое вещество, объединяют, элюент испаряют в токе воздуха при температуре 18-22°С до незначительного объема, затем в токе азота до полного удаления растворителя, остаток растворяют в гексане и проводят определение методом газожидкостной хроматографии с применением капиллярной колонки DB-1701 длиной 30 м и внутренним диаметром 0,25 мм со стационарной фазой толщиной 0,25 мкм, содержащей полисилоксан и полиэтиленгликоль, используя газ-носитель гелий, подаваемый со скоростью 1 мл/мин и масс-спектрометрический детектор, работающий в режиме электронного удара, с регистрацией масс-спектра по полному ионному току, количество эсфенвалерата вычисляют из данных хроматограммы, полученной регистрацией интенсивности сигнала, обусловленного заряженными частицами, образующимися при бомбардировке анализируемого вещества, вышедшего из капиллярной колонки и попавшего в источник ионов, ионизирующим пучком электронов с энергией 70 эВ.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно к гинекологии, и может быть использовано для лечения гиперпластических процессов эндометрия у пациенток с метаболическим синдромом.
Изобретение относится к медицине, а именно к детской кардиологии, и может быть использовано для оценки тяжести хронической сердечной недостаточности (СН) у детей с врожденными пороками сердца.
Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству и гинекологии, и предназначено для диагностики текоматоза яичников в период менопаузы. .

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для определения содержания глюкозы в клетке крови. .

Изобретение относится к медицине. .
Изобретение относится к практической медицине и может быть использовано для прогнозирования тромбофилических осложнений при эндопротезировании тазобедренного сустава.

Изобретение относится к области медицины, а именно к онкологии, и может использоваться для прогнозирования онкологической 3-, 5- и 7-летней выживаемости больных с неметастатическим светлоклеточным раком почек после нефрэктомии или резекции почки с новообразованием.
Изобретение относится к области медицины, а именно к гепатологии и педиатрии. .

Изобретение относится к медицине, в частности к способам физического анализа биологических материалов in vitro. .

Изобретение относится к области медицины, в частности может быть использовано для раннего выявления нарушений здоровья детей, а также при формировании санитарно-гигиенических мероприятий по предупреждению и устранению воздействия вредных химических веществ, обуславливающих формирование экологически обусловленной патологии у детей.

Изобретение относится к области медицины и описывает способ определения содержания этилового спирта и других метаболитов в крови человека методом газожидкостной хроматографии, включающий получение дистиллятов крови методом прямой перегонки с водяным паром и исследование компонентов крови, отличающийся тем, что одновременно проводят количественное определение этилового спирта, диэтилового эфира, ацетальдегида, ацетона, метилацетата, этилацетата, пропилового спирта, изобутилового спирта, бутилового спирта, изоамилового спирта в ходе одного исследования с использованием капиллярной хроматографической колонки, расчет концентрации определяемых компонентов крови производят по формуле: где а - результат хроматографического исследования, мг/дм3; V - объем дистиллята, см3; m - масса навески цельной крови, г.

Изобретение относится к способу ионообменного разделения метионина и глицина и может найти применение в биохимической, фармацевтической и пищевой промышленности.

Изобретение относится к биологии, экологии, а также - к токсикологической и санитарной химии. .
Изобретение относится к области медицины и описывает способ количественного определения циклоспорина А в крови пациентов, включающий осаждение белков крови путем добавления водного раствора сульфата цинка и метанола, перемешивания, центрифугирования и отбора центрифугата; разделение компонентов центрифугата методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии, масс-спектрометрическую детекцию циклоспорина А и определение содержания циклоспорина А с построением калибровочной кривой, причем для осаждения белков крови используют цельную кровь, после осаждения белков крови дополнительно осаждают солевые примеси путем добавления в центрифугат метанола до общего содержания не менее 90% по объему, повторного перемешивания, центрифугирования и отбора центрифугата, после чего проводят разделение его компонентов, детекцию и определение содержания циклоспорина А.

Изобретение относится к газовой хроматографии и может быть использовано для определения содержания серосодержащих соединений в углеводородном сырье и продукции. .

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии. .

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и описывает способ количественного определения уксусной, пропионовой, изо-масляной, масляной, валериановой, изо-капроновой и капроновой кислот в крови методом газохроматографического анализа, в котором пробу крови подкисляют 1%-ным раствором серной кислоты до рН 2-3, осуществляют экстракцию определяемых кислот изобутиловым спиртом, объем которого соотносится с объемом пробы крови как 1:1, проводят центрифурирование для отделения белков, добавляют 2-3 капли 0,4%-ного раствора щелочи и экстракт выпаривают досуха, далее к сухому осадку последовательно добавляют 1%-ный раствор серной кислоты и изобутиловый спирт и осуществляют газохроматографическое разделение смеси кислот на капиллярной колонке с пламенно-ионизационным детектором, а количество каждой кислоты устанавливают по калибровочному графику.
Изобретение относится к газохроматографическому анализу различных химических соединений и может быть использовано в медицине, биологии, экологии и допинговом контроле.

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии и касается способа определения тетраэтилтиурамдисульфида в крови. .

Изобретение относится к биологии, экологии, токсикологический и санитарной химии, а именно к способам определения тетраметилтиурамдисульфида в биологическом материале.

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано для обнаружения и идентификации химических веществ в смеси по их признакам
Наверх