Способ определения наркотических средств в ротовой жидкости человека методом иммунохроматографии
Владельцы патента RU 2442988:
Общество с ограниченной ответственностью "ДИАНАРК" (ООО "ДИАНАРК") (RU)
Изобретение относится к медицине и описывает способ латеральной проточной иммунохроматографии для определения наркотических средств в ротовой жидкости человека, при этом способ включает сбор ротовой жидкости коллектором с последующим нанесением ее на тест-полоску, содержащую последовательно расположенные зоны: конъюгат Ат-метки, содержащий специфические антитела к наркотику, меченные золотом; тестовую, содержащую иммобилизованные конъюгаты аналит: овальбумин; и контрольную, содержащую антивидовые антитела; с последующим определением действительности теста путем наблюдения присутствия окрашенной полосы в контрольной зоне, и определение присутствия наркотика в ротовой жидкости путем наблюдения появления окрашенной полосы в тестовой зоне, причем в качестве конъюгата использют аналит: белок, полученный карбодиимидным методом из макромолекулярного носителя овальбумина, в качестве аналита используют гаптены, являющиеся производными наркотических веществ (морфина, амфетамина, кокаина и тетрагидроканнабинола), содержащие спейсер с карбоксильной группой при соотношении количества молей гаптена на молекулу белка, равному 12-15, а в качестве конъюгата Ат-метка используют моноклональные антитела к исследуемым антигенам наркотических веществ, полученные гибридомной технологией на основе конъюгированных антигенов, полученных из макромолекулярного носителя бычьего сывороточного альбумина и указанных выше гаптенов, производных наркотических веществ. Описана возможность проведения мультианалитического иммунохроматографического определения опиатов. Способ обеспечивает увеличение чувствительности, экспрессности и времени сохранения результатов анализов. 1 з.п. ф-лы, 12 пр., 8 табл.
Изобретение относится к области скрининговых методов анализа и позволит определять в динамике ситуацию, связанную со злоупотреблением конкретными видами наркотических средств, что обеспечит возможность оперативного контроля за наркоситуацией и своевременного целенаправленного воздействия на группы риска.
Иммунохимические методы анализа, основанные на специфическом связывании определяемого соединения соответствующими антителами (Ат), широко вошли в аналитическую практику и используются благодаря таким их особенностями, как высокая специфичность, чувствительность, воспроизводимость, экспрессность и относительная простота схемы анализа.
Метод конкурентного ИХА, используемый для определения низкомолекулярных соединений, в том числе метаболитов наркотических соединений в моче, жидкости ротовой полости, экстрактах тканей, основан на конкуренции аналита и иммобилизованного конъюгата аналит:белок-носитель за ограниченное количество центров связывания специфических антител, содержащихся в конъюгате Ат-метка. При нанесении образца, содержащего аналит, он связывается с конъюгатом Ат-метка на мембране. Далее иммунокомплекс проходит через тестовую зону, где иммобилизован конъюгат аналит:белок-носитель. Иммунокомплекс не может связаться с этим конъюгатом из-за стерических затруднений: низкомолекулярные соединения обычно имеют одну антигенную детерминанту, и соответственно антитела имеют один центр связывания с антигеном, который уже является занятым аналитом. Далее иммунный комплекс связывают антивидовые антитела, находящиеся на контрольной линии. В результате появление окрашенной полосы в контрольной зоне свидетельствует о том, что концентрация определяемого вещества в исследуемом образце превышает его пороговое значение для данного теста.
При отсутствии анализируемого вещества в образце конъюгат Ат-метка связывается с конъюгатом Аг: белок-носитель, иммобилизованным в зоне тестовой линии. Несвязавшийся конъюгат Ат-метка попадает в зону контрольной линии и связывается там с антивидовыми антителами. Таким образом, наличие двух окрашенных линий (тестовой и контрольной) является отрицательным результатом анализа.
Известен способ определения тетрагидроканнабинола (ТГК) в жидких образцах, (US 2009/0017555, МКИ G01N 33/53, опубл. 9 мая 2008 г.), который включает: а) контакт образца с 1) конъюгатом 5-пентилрезорцинол/макромолекулярный носитель, где 5-пентилрезорцинол конъюгирован через гидроксильную группу или ее производное в бензольном кольце и 2) антителом, способным связать ТГК и вышеописанный конъюгат. И б) определение, уменьшается ли связывание антител с конъюгатом в присутствии образца.
Однако точность этого метода недостаточно удовлетворительна, т.к. он выявляет целый спектр метаболитов, а не основной метаболит ТГК-СООН.
Известен способ, принятый за прототип, (патент RU 2007142142, МКИ G01N 33/52, опубл. 27.06.2009) латеральной проточной иммунохроматографии для определения аналита в ротовой жидкости, включающий: сбор ротовой жидкости коллектором, и помещение ее в объем буфера для образцов с последующим помещением в получаемую смесь тест-полоски для латеральной проточной иммунохроматографии, и определении действительности теста путем наблюдения присутствия сигнала (окрашенной полосы) в контрольной зоне, в которой иммобилизованы антивидовые антитела, взаимодействующие с конъюгатом Ат-метка и дающие окрашенную полосу и определение присутствия аналита путем наблюдения сигнала (окрашенной полосы) в тестовой зоне, в которой иммобилизован реагент, который специфически связывается с целевым аналитом (конъюгат аналит: белок). Аналит, подлежащий тестированию, выбран из антител против антигенов инфекционного заболевания, гормонов, факторов роста, терапевтических лекарств, лекарств, допускающих злоупотребление, и продуктов метаболизма лекарств, допускающих злоупотребление. Внизу тест-полоски, которую помещают в буфер с образцом слюны, и где происходит реакция с аналитом, располагают конъюгат Ат-метка, представляющая собой частицы коллоидного золота. При этом буфер для образцов представляет собой буферный раствор фосфата калия с рН 7,2+/-0,2. Причем сигнал наблюдается в течение 20-45 минут через 15-60 мин от начала теста.
Однако чувствительность известного способа не удовлетворяет современным требованиям. Кроме того, время появления сигнала не удовлетворяет требованиям экспрессности, а время его сохранения достаточно мало.
Предлагаемое изобретение решает задачу увеличения чувствительности, экспрессности и времени сохранения результатов анализов, которые используется для диагностики потребления наркотиков.
Поставленная задача решается способом латеральной проточной иммунохроматографии для определения наркотических средств в ротовой жидкости человека, включающим: сбор ротовой жидкости коллектором с последующим нанесением ее на тест-полоску, содержащую последовательно расположенные зоны: конъюгат Ат-метки, содержащий специфические антитела к наркотику, меченные золотом; тестовую, содержащую иммобилизованные конъюгаты аналит: овальбумин; и контрольную, содержащую антивидовые антитела; с последующим определением действительности теста путем наблюдения присутствия окрашенной полосы в контрольной зоне, и определение присутствия наркотика в ротовой жидкости путем наблюдения появления окрашенной полосы в тестовой зоне, причем в качестве конъюгата используют аналит:белок, полученный карбодиимидным методом из макромолекулярного носителя овальбумина, в качестве аналита используют гаптены, являющиеся производными наркотических веществ (морфина, амфетамина, кокаина и тетрагидроканнабинола), содержащие спейсер с карбоксильной группой при соотношении количества молей гаптена на молекулу белка, равному 12-15. В качестве конъюгата Ат-метка используют моноклональные антитела к исследуемым антигенам наркотических веществ, полученные гибридомной технологией на основе конъюгированных антигенов, полученных из макромолекулярного носителя бычьего сывороточного альбумина и указанных выше гаптенов, производных наркотических веществ.
Для мультианалитического иммунохроматографического определения опиатов, амфетаминов и каннабиноидов тестовая зона состоит из 3 частей, расстояние между центрами линий которых, а также центрами зон конъюгата Ат-метки и контрольный, составляет 3-4 см, а Результаты определения оптимальных разведений конъюгатов с коллоидным золотом для ИХА опиатов, амфетаминов и каннабиноидов составляют:
- разведение 1:4000-1:8000 для анти-Mop-Au (концентрация от 0,1 до 1 мкг/мл Мор-Ова (ИХА опиатов);
- разведение анти-Амф-Au - 1:2000-1:6000, (концентрация Амф-Ова - от 0,5 до 2 мкг/мл (ИХА амфетаминов);
- разведение 1:3000-1:12000 для анти-Кан- Au и (концентрация от 0,25 до 3 мкг/мл для Кан-Ова (ИХА каннабиноидов),
при этом разведение антивидовых антител составило 1:2000-1:5000.
Конъюгат Ат-метка, представляющий собой специфические антитела к наркотику, меченные золотом, наносится внизу тест-полоски, связывается с аналитом (если присутствует наркотик), в виде иммунного комплекса поднимается по тест-полоске, доходит до тестовой зоны, там происходит конкуренция между нанесенным конъюгатом аналит:белок и аналитом(наркотиком), уже связавшимся с конъюгатом Ат-метка внизу. Если наркотика было много, то полоски не будет, места в антителах все заняты. Дальше вся эта конструкция движется в контрольную зону и обязательно всегда образует окрашенную полосу с антивидовыми антителами.
В таблице 1 приведены условия проведения иммобилизации антител и наночастиц коллоидного золота (НКЗ).
В таблице 2 приведены результаты определения предела обнаружения морфина в разработанной тест-системе ИХА опиатов (N=20).
В таблице 3 приведены результаты определения предела обнаружения амфетамина в разработанной тест-системе ИХА амфетамина (N=20).
В таблице 4 приведены результаты определения предела обнаружения кокаина в разработанной тест-системе ИХА кокаина (N=20).
В таблице 5 приведены результаты определения предела обнаружения Δ9 -ТГКК в разработанной тест-системе ИХА каннабиноидов (N=20).
В таблице 6 приведены результаты медицинских испытаний в МНПЦ Наркологии:
Сопоставление результатов тестирования жидкости ротовой полости с помощью предлагаемого изобретения с результатами подтверждающего метода ВЭЖХ и клиническими диагнозами.
В таблице 7 приведены результаты медицинских испытаний в НД №1:
Сопоставление результатов тестирования жидкости ротовой полости с помощью предлагаемого изобретения с результатами подтверждающего метода ВЭЖХ и клиническими диагнозами.
В таблице 8 приведены статистические характеристики метода ИХА опиатов, амфетамина, каннабиноидов и кокаина с помощью предлагаемого изобретения согласно медицинским испытаниям в МНПЦ Наркологии и НД №1.
Приведенные примеры подтверждает, но не ограничивает предлагаемое изобретение.
Вторичные антитела к моноклональным антителам мыши, использованные для сорбции в контрольной зоне тест-системы, получали на заказ в фирме «Биалекса», Россия.
Пример 1. Синтез конъюгированных антигенов морфина с овальбумином, для иммобилизации в тестовую зону.
Синтез конъюгированных антигенов морфина, амфетамина, кокаина и тетрагидроканнабинола с овальбумином проводили с использованием карбодиимидного метода. Для этого гаптены 6-0-гемисукцинат морфина, d, 1-1-фенил-2-карбоксиаминопропан, бензоилэкгонин, дельта-9-тетрагидроканнабинол, модифицированный реакцией азосочетания с п-аминобензойной кислотой (6-0-гемисукцинат морфина) непосредственно вводили в реакцию с белком (овальбумин), используя в качестве конденсирующего агента водорастворимый карбодиимид, глутаровый альдегид, изобутилхлорформиат. В синтезированных конъюгатах определение количества молей гаптена, связавшихся с белком-носителем, проводили с помощью спектрального анализа в ультрафиолетовой и видимой областях.
Конъюгированные антигены исследуемых веществ с белком овальбумином использовали в качестве реагента для нанесения в тестовую зону полоски разрабатываемых тест-систем. Такие конъюгаты обладают наиболее оптимальными параметрами для связывания моноклональными специфическими антителами.
Раствор 50 мг (0,001 ммоль) овальбумина в 5,0 мл дистиллированной воды смешивали с 2,0 мл ДМФА, содержащего 15, 0 мг (0,039 ммоль) 6-сукцинилморфина, и при охлаждении по каплям прибавляли раствор 15 мг (0,055 ммоль) водорастворимого карбодиимда в 3 мл дистиллированной воды. Реакционную смесь инкубировали в течение 5 час при 4°С. Полученный конъюгат выделяли гель-хроматографией на колонке с сефадексом G-25 и лиофильно высушивали.
Получено 25 мг конъюгата М-Ова, содержащего 5 молекул морфина на молекулу белка.
Пример 2. Синтез конъюгированных антигенов амфетамина с овальбумином, для иммобилизации в тестовую зону.
3.1 d,1-1-фенил-2-аминопропан (5 мг; 0,112 ммоль) и (10 мг; 0,00022 ммоль) овальбумина растворяли в 3,0 мл 0,1 М фосфатного буфера. По каплям при перемешивании к реакционной смеси добавляли (70 мкл; моль) раствора глутарового альдегида при комнатной температуре. Постепенно реакционная смесь приобретала характерную желтую окраску, свидетельствующую об окончании реакции. Для остановки реакции к смеси добавляли 40 мкл 1М раствора лизина и инкубировали в течение 1 часа. Полученный конъюгат диализовали против фосфатного буфера в течение ночи при температуре 4°C. Выделение конъюгата проводили гель-хроматографией на колонке с сефадексом G-25 и лиофильно высушивали. Получено 25 мг конъюгата, содержащего 12 молекул амфетамина на молекулу белка.
Пример 3. Синтез конъюгированных антигенов кокаина с овальбумином для иммобилизации в тестовую зону.
Конъюгат Кок-ОВА получали по методике 1.1. из 50 мг (0,001 ммоль) овальбумина и 2,0 мг (0,005 ммоль) бензоилэкгонина.
Получено 29 мг конъюгата Кок-Ова, содержащего 14 молекул кокаина на молекулу белка.
Пример 4. Синтез конъюгированных антигенов тетрагидроканнабинола с овальбумином, для иммобилизации в тестовую зону.
К раствору 15 мг (3,3×10-3 ммоль) в 3 мл дистиллированной воды прибавили раствор 7,4 мг (0,02 ммоль) вещества дельта-9-тетрагидроканнабинол, модифицированного реакцией азосочетания с п-аминобензойной кислотой в 1 мл ДМФА, охладили реакционную смесь до 0°C и при перемешивании прибавили 5 мг водорастворимого карбодиимида. Реакционную смесь выдерживали в течение 12 час в холодильнике, выпавший осадок мочевины и выделили полученный конъюгат гель-хроматографией на Сефадексе G-25.
Получено 12 мг конъюгата Δ9-ТГК-Ова, содержащего 25 молекул гаптена на молекулу белка.
Пример 5. Синтез специфических (моноклональных) антител к наркотику, меченных золотом, для иммобилизации в зону конъюгат Ат-метки.
Для разработки иммунохроматографического метода анализа наркотических веществ в биологической жидкости человека (слюне) в целях обеспечения визуализации результата анализа были использованы специальные метки - частицы коллоидного золота. Преимущества этого красителя для электронной и оптической микроскопии обусловлены его уникальными оптическими свойствами, а также возможностью получать частицы определенного размера, что позволяет визуализировать объект при любых микроскопических условиях.
Синтезированные и охарактеризованные по количеству связавшегося с белковой матрицей гаптена конъюгированные антигены морфина, амфетамина, кокаина и тетрагидроканнабинола с бычьим сывороточным альбумином (БСА) были использованы для наработки специфических антител. Для этой цели выбрана гибридомная технология получения моноклональных антител. Для наработки моноклональных антител к исследуемым антигенам были получены конъюгированные антигены Мор-БСА, Амф-БСА, Кок-БСА, Кан-БСА. В результате иммунизации получено по шесть образцов мышиных сывороток, содержащих моноклональные антитела к каждому исследуемому антигену (анти-Мор, анти-Амф, анти-Кок и анти-Кан).
Для синтеза конъюгированных с коллоидным золотом моноклональных антител к исследуемому антигену (анти-Мор-Au, анти-Амф-Au, анти-Кок-Au и анти-Кан-Au), нами были использованы наночастицы коллоидного золота (НКЗ) различного диаметра производства компании "ЭКОС-Сибирь". Синтез конъюгатов антител с НКЗ проводили по стандартной технологии. Для этого антитела (анти-Мор, анти-Амф, анти-Кок и анти-Кан) переводили в 10 мМ буфер со значением pH от 7,5 до 10,0. К НКЗ добавляли раствор антител, инкубировали при комнатной температуре и дополнительно стабилизировали раствором БСА. НКЗ с иммобилизованными молекулами антител (анти-Мор, анти-Амф, анти-Кок и анти-Кан) отделяли от несвязавшихся молекул антител центрифугированием. После удаления супернатанта осадок ресуспендировали в 50 мМ К-фосфатном буфере, pH 7,4, с 0,1М раствором NaCl, содержащем 0,25% БСА и 0,25% Твин-20.
Для конъюгации с антителами было отобрано пять гомогенных (стандартное отклонение диаметра - до 22%) препаратов НКЗ со средним диаметром в диапазоне от 5 до 60 нм. Раствор коллоидного золота в этом диапазоне стабилен длительное время. Изменяя размер частиц, можно регулировать валентность конъюгата. Исходя из того, что одно антитело на поверхности НКЗ занимает 45 нм2, содержание антител в конъюгатах с отобранными препаратами НКЗ может варьировать от 2 до 250.
Пример 6. Выбор оптимальной концентрации конъюгированных антигенов для иммобилизации в тестовую зону.
Раствор конъюгатов Мор-Ова, Амф-Ова, Кок-Ова и Кан-Ова в 50 мМ К-фосфатном буфере, pH 7,4, в разных концентрациях (от 400 нг/мл до 0,2 нг/мл) в виде капель наносили на нитроцеллюлозную мембрану. Затем полоски высушивали 15 мин в сушильном шкафу при 37°C, наносили на них блокирующий раствор овальбумина в фосфатном буфере, сушили вновь 2 часа в сушильном шкафу при 37°C. Затем полоски были помещены в раствор соответствующих конъюгатов моноклональных антител с коллоидным золотом анти-Мор-Аu, анти-Амф-Аu, анти-Кок-Аu и анти-Кан-Au (с разведениями 1:4000, 1:2000, 1:6000, 1:4000 соответственно). Полоски инкубировались 30 минут при комнатной температуре, а затем были промыты 3 раза ФБСТ. Каждое исследование связывания было выполнено в 3-х повторах. Минимально определяемая концентрация анти-Мор-Аu с помощью конъюгата анти-Мор-Аu составила 31 нг/мл. Концентрация, при которой пятно является ярким, составила 500 нг/мл. Дальнейший подбор оптимальной концентрации Мор-Ова следует проводить для концентрации, близкой к этому значению.
Минимально определяемая концентрация для ИХА амфетамина составила 62 нг/мл, для ИХА кокаина - 31 нг/мл, для ИХА каннабиноидов - 16 нг/мл, концентрации оптимальной яркости пятна - 1000, 500 и 250 нг/мл соответственно.
Пример 7. Проверка оптимальной концентрации конъюгированных антигенов для иммобилизации в тестовую зону в конкурентной реакции.
Далее для определения оптимальной концентрации конъюгатов Аг-Ова, где Аг-определяемые наркотики, а Ова-овальбумин, а именно (Мор-Ова, Амф-Ова, Кок-Ова и Кан-Ова) проводили эксперимент на тест-полосках. Мембраны для конъюгатов обрабатывали растворами конъюгатов анти-Мор-Аu, анти-Амф-Аu, анти-Кок-Аu и анти-Кан-Аu в фосфатном буфере с Ова в рабочих концентрациях. В зону контрольной линии наносили антивидовые антитела кролик-анти-мышь в разведении 1:2000. В тестовую зону полосок наносили линии конъюгатов Аг-Ова в концентрациях 500, 1000 и 2000 нг/мл. Затем тест-полоски помещали в растворы фосфатного буфера, содержащего различные концентрации морфина: 20, 40, 60, 100, 200 нг/мл. Результат определяли визуально по появлению линий бурого цвета в тестовой и контрольной зоне
Оптимальные концентрации для конъюгатов Аг-Ова составили: 1 мкг/мл для Мор-Ова, 2 мкг/мл - для Амф-Ова, 0,25 мкг/мл - для Кан-Ова и 1 мкг/мл - для Кок-Ова.
Пример 8. Оптимизация концентрации конъюгатов с коллоидным золотом. В тестовой зоне полосок наносились линии растворами указанных выше конъюгатов Аг-Ова в выбранных концентрациях. На нижнюю часть мембраны для конъюгата Ат-метка наносили растворы специфических моноклональных антител, меченных золотом (Ат-Аu): анти-Mop-Au, анти-Амф-Au, анти-Кан- Au, анти-Кок-Au, в 3-х разных разведениях для каждого вида ИХА. На данном этапе установили оптимальные разведения составляют: 1:4000 для анти-Мор-Аu (ИХА опиатов); анти-Амф-Аu 1:6000 (ИХА амфетаминов); 1:3000 для анти-Кан- Au (ИХА каннабиноидов; для анти-Кок-Аu разведение составило 1:2000 (ИХА кокаина). Разведение антивидовых антител составило 1:2000.
Пример 9. Создание мультианалитической иммунохроматографической полоски. ИХА для 3-х аналитов: опиатов, амфетаминов и каннабиноидов объединен в одну тест-полоску. Для этого раствор, содержащий 3 конъюгата анти-Мор-Аu, анти-Амф-Аu и анти-Кан-Аu в рабочих разведениях, диспергировали на мембрану для конъюгата. На хроматографическую мембрану в тестовой зоне наносили 3 полоски с растворами конъюгатов Амф-Ова, Мор-Ова и Кан-Ова в рабочих концентрациях. Расстояние между тестовыми линиями, а также между тестовой линией КАН (каннабиноиды) и контрольной линией было установлено равным 3,5 мм (расстояние между центрами линий).
При соединении 3-х видов ИХА на одной тест-полоске параметры анализа изменяются, т.к. мембрана для конъюгата оказывается «нагруженной» в 3 раза больше, чем при ИХА на один аналит. Через иммунохроматографическую мембрану проходит поток с большими концентрациями иммунореагентов, поэтому характеристики латерального потока изменяются. Результаты определения оптимальных разведений конъюгатов с коллоидным золотом для ИХА опиатов, амфетаминов и каннабиноидов составляют: разведение 1:4000 -1:8000 для анти-Мор-Аu (и концентрация от 0,1 до 1 мкг/мл Мор-Ова (ИХА опиатов); анти-Амф-Аu - 1:2000-1:6000, Амф-Ова - от 0,5 до 2 мкг/мл (ИХА амфетаминов); 1:3000-1:12000 для анти-Кан- Au и от 0,25 до 3 мкг/мл для Кан-Ова (ИХА каннабиноидов). Разведение антивидовых антител составило 1:2000 -1:5000.
Пример 10. Иммобилизация в зону конъюгат Ат-метки специфических (моноклональных) антител к наркотику, меченных золотом.
Для каждого конъюгата (анти-Мор-Аи, анти-Амф-Аu, анти-Кок-Аu и анти-Кан-Аu) были подобраны условия иммобилизации, отличающиеся по концентрации антител и значениям pH. Концентрацию антител (анти-Мор, анти-Амф, анти-Кок и анти-Кан) выбирали с учетом количества белка, необходимого для стабилизации поверхности НКЗ. Характер адсорбции антител на поверхности НКЗ обусловливает их ориентацию на поверхности частицы, возможность взаимодействия с антигенными детерминантами и соответственно аффинность конъюгата. Результаты проведенных исследований представлены в таблице 1.
Поскольку для растворения реагентов исключено применение буферов высокой ионной силы, а также многих консервантов (содержащих атомы меди и ртути), т.к. они вызывают разрушение конъюгатов, рекомендуют использовать низкомолярные буферы. Поэтому в качестве консерванта в работе был использован 0,1% азид натрия.
Пример 11. Определение предела обнаружения исследуемых наркотических веществ с помощью разработанной тест-системы.
Для приготовления стандартных растворов наркотических и психотропных веществ в слюне человека были использованы калибраторы, контроли и мульти-контроли фирмы «Abbott» (США), используемые для калибровки и проверки работы (контроля качества) наборов реагентов к ТДх, FLx-анализатору данной фирмы.
Вторичные антитела к моноклональным антителам мыши, использованные для сорбции в контрольной зоне тест-системы, получали на заказ в фирме «Биалекса», Россия.
Компоненты для производства иммунохроматографических тестов (пробоотборники, емкости для сбора и хранения слюны и пластиковый корпус для тест-полосок) были закуплены в фирме Surescreen, Великобритания. После отбора пробы из ротовой полости слюна помещалась в емкости для сбора и хранения, из которых наносилась в количестве по три капли жидкости на тест-полоски, обработанные в соответствии с предлагаемым изобретением. Через 10 мин визуально оценивались результаты реакции.
ОТРИЦАТЕЛЬНО: Наличие по одной линии темно-розового цвета на уровне маркировок МАРИХ (каннабиноиды), ОПИЙ (опиаты), АМФ (амфетамины), и КОК(кокаин), а также линия темно-розового цвета на уровне маркировки К (контроль) каждой полоски. Линии могут быть яркими или бледными.
ПОЛОЖИТЕЛЬНО: Отсутствие линий темно-розового цвета на уровне маркировок МАРИХ, ОПИЙ, АМФ и КОК и наличие одной линии темно-розового цвета на уровне маркировки К (контроль) каждой полоски. Линия может быть яркой или бледной.
ОШИБКА: Отсутствие линии темно-розового цвета на уровне маркировки К через 10 мин после внесения образца. Анализ следует повторить с использованием другого планшета.
Для разработанного способа иммунохроматографических тест-систем проведено исследование основных аналитических характеристик - чувствительности и специфичности определения наркотических соединений.
При приготовлении стандартов наркотических и психотропных веществ для разведения использовалась слюна здоровых лиц. Концентрации определяемых веществ варьировали в широком диапазоне, от 0 нг/мл до 100 нг/мл.
Предел обнаружения устанавливали как минимальную концентрацию аналита, при которой он может быть достоверно обнаружен. Для каждого аналита готовили растворы определяемого вещества в ФБС (фосфатном буферном растворе) различных концентраций, близких к предполагаемому значению предела обнаружения. Каждый полученный стандартный раствор исследовали с помощью разработанного ИХА 20 раз. Для каждой концентрации определяли количество положительных и отрицательных результатов теста. Предел обнаружения определяли как концентрацию аналита, при которой процент положительных результатов теста равен или более 95%. Полученные результаты определения предела обнаружения морфина представлены в таблице 2, были использованы стандартные растворы в диапазоне концентраций от 10 до 100 нг/мл.
Результаты определения предела обнаружения амфетамина, кокаина и каннабиноидов представлены в таблицах 3-5.
Согласно полученным данным предел обнаружения наркотических веществ с помощью разработанного ИХА составляет: для опиатов - 40 нг/мл, для каннабиноидов - 4 нг/мл, для кокаина - 20 нг/мл и для амфетаминов - 50 нг/мл.
Пример 12. Определение кросс-реактивности синтезированных иммунореагентов для разработанной тест-системы.
Специфичность метода анализа, или его кросс-реактивность можно определить как степень влияния на результат исследования соединений, отличных по химической структуре от анализируемого вещества, используемого как калибратор или стандарт. Чувствительность и специфичность любого иммунохимического анализа зависит от чувствительности и специфичности используемых антител. Определение данных иммунохимических характеристик очень важно для оценки получаемых результатов иммунохимических исследований и соответствия их выполнению поставленных задач.
Определение кросс-реактивности синтезированных иммунореагентов проводили при добавлении в реакционную среду соединений, условно разделенных на 2 группы: вещества, являющиеся близкородственными к исследуемому веществу, и вещества, наиболее часто встречающиеся в наркологической практике. При этом было рассмотрено влияние различных концентраций исследуемых веществ в аналитах слюны при постоянной концентрации нанесенных на мембраны тест-системы реагентов.
Проведенные испытания показали, что антитела перекрестно реагируют с близкими по структуре соединениями. Вещества, отличающиеся по своей природе от исследуемых веществ, не ингибируют специфическую реакцию взаимодействия антител и антигена даже в высоких концентрациях.
Таким образом, апробация на модельных смесях биологических объектов разработанной тест-системы показала, что антитела обладают высокой специфичностью только для определяемых соединений (морфин, амфетамин, кокаин, каннабиноиды), поскольку не обнаружено перекрестной, реакции с наркотическими веществами других классов.
Апробация разработанных наборов реагентов и статистический анализ результатов
Медицинские испытания Наборов реагентов проводили согласно ГОСТ Р 15.013-94 в Московском Научно-практическом центре наркологии Департамента здравоохранения г.Москвы (МНПЦ Наркологии) и в Наркологическом диспансере №1 г.Москвы (НД №1). В соответствии со стандартом лабораторной практики в дальнейшем проводилась оценка достоверности результатов разработанного метода анализа. Для этого результаты, полученные при проведении анализа, сравнивались с результатами исследования референтным методом анализа - хромато-масс-спектрометрии, имеющего высокую аналитическую специфичность и надежность, что позволяет дать оценку отклонений получаемых результатов от наиболее вероятной величины.
В ходе испытаний в МНПЦ Наркологии Наборы реагентов были апробированы на 60 человеках, в том числе: на 50 пациентах, больных наркоманией, находящихся в состоянии наркотического опьянения и 10 здоровых донорах, не принимавших наркотики. Процедура анализа проходила согласно Инструкции. Затем собранные образцы жидкости ротовой полости анализировали с помощью подтверждающего метода высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) ("Милихром А-02", Россия). Результаты испытаний показаны в Таблице 6.
Медицинские испытания Набора реагентов в Наркологическом диспансере №1 включали обследование 40 человек, из них 32 пациентов, больных наркоманией, находящихся в состоянии наркотического опьянения и 8 здоровых доноров, не принимавших наркотики. Результат обследования также сопоставляли с результатом подтверждающего метода высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) ("Милихром А-02", Россия). Результаты испытаний представлены в Таблице 7.
В обоих случаях медицинские испытания прошли успешно. Согласно заключениям комиссий, Наборы реагентов соответствуют заявленным в Инструкции характеристикам; метод обладает высокой чувствительностью и специфичностью.
Сводные данные по количеству истинно положительных (ИП), истинно отрицательных (ИО), ложноположительных (ЛП) и ложноотрицательных (ЛО) результатов, а также данные по чувствительности (Ч) и специфичности (С) определения каждого класса наркотиков, приведены в Таблице 8. Характеристики метода рассчитывали по следующим формулам:
Чувствительность метода:
Специфичность метода: 
Согласно результатам данного статистического анализа чувствительность определения наркотических веществ с помощью разработанного согласно изобретению Набора реагентов ОРАНАРК составляет 95-100%, специфичность определения - 98-100%.
Таким образом, разработан иммунохроматографический метод анализа исследуемых наркотических веществ в биологической жидкости человека (слюне) с высокой чувствительностью, специфичностью и надежностью, предназначенный для экспресс определения наркотических веществ. Время проведения анализа составляет 10 минут, результат анализа сохраняется в течение нескольких часов. Разработанный метод позволит не только эффективно решать вопросы аналитической диагностики, но значительно снизить затраты на лечение за счет снижения ежегодного прироста заболеваемости на 10% в год.
| Таблица 1 | ||
| Конъюгат антител с НКЗ | pH | Концентрация антител (анти-Мор, анти-Амф, анти-Кок и анти-Кан), нг/мл |
| анти-Мор-Au | 9,0 | 65 |
| анти-Амф-Au | 8,8 | 80 |
| анти-Кок-Au | 8,6 | 75 |
| анти-Кан-Au | 9,1 | 50 |
| Таблица 2 | |||
| Концентрация морфина, нг/мл | Число положительных результатов теста | Число отрицательных результатов теста | % положительных результатов теста |
| 0 | 0 | 20 | 0 |
| 10 | 0 | 20 | 0 |
| 20 | 6 | 14 | 30 |
| 40 | 19 | 1 | 95 |
| 60 | 20 | 0 | 100 |
| 100 | 20 | 0 | 100 |
| Таблица 3 | |||
| Концентрация амфетамина, нг/мл | Число положительных результатов теста | Число отрицательных результатов теста | % положительных результатов теста |
| 0 | 0 | 20 | 0 |
| 10 | 0 | 20 | 0 |
| 30 | 4 | 16 | 20 |
| 50 | 20 | 0 | 100 |
| 70 | 20 | 0 | 100 |
| 100 | 20 | 0 | 100 |
| Таблица 4 | |||
| Концентрация кокаина, нг/мл | Число положительных результатов теста | Число отрицательных результатов теста | % положительных результатов теста |
| 0 | 0 | 20 | 0 |
| 5 | 0 | 20 | 0 |
| 10 | 5 | 15 | 25 |
| 20 | 19 | 1 | 95 |
| 50 | 20 | 0 | 100 |
| 100 | 20 | 0 | 100 |
| Таблица 5 | |||
| Концентрация Δ9-ТГКК, нг/мл | Число положительных результатов теста | Число отрицательных результатов теста | % положительных результатов теста |
| 0 | 0 | 20 | 0 |
| 2 | 0 | 20 | 0 |
| 4 | 5 | 15 | 25 |
| 10 | 19 | 1 | 95 |
| 20 | 20 | 0 | 100 |
| 50 | 20 | 0 | 100 |
| Таблица 6 | |||||||||
| Обследо- ванные больные |
Результат визуальной детекции | Результат подтверждающего теста | Клинический диагноз | ||||||
| МОР | АМФ | КАН | КОК | МОР | АМФ | КАН | КОК | ||
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
| №1 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №2 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №4 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №7 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №9 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №10 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №13 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №15 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №19 | - | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №24 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №27 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №31 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №33 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №39 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №41 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №42 | + | - | - | + | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №45 | + | - | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №47 | + | + | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №48 | + | - | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №49 | + | - | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №50 | + | - | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №11 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №14 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №18 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №20 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №23 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №29 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №35 | - | + | + | - | - | + | - | - | Полинаркомания |
| №38 | - | + | - | - | - | + | - | - | Полинаркомания |
| №43 | - | + | - | - | - | + | - | - | Полинаркомания |
| №5 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №12 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
| №16 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №17 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №22 | - | - | - | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №26 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №30 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №32 | - | - | + | + | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №36 | - | - | + | - | - | - | + | - | Полинаркомания |
| №37 | - | - | + | - | - | - | + | - | Полинаркомания |
| №44 | - | - | + | - | - | - | + | -. | Полинаркомания |
| №46 | - | - | + | - | - | - | + | - | Полинаркомания |
| №3 | - | - | + | - | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №6 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №8 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №21 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №25 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №28 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №34 | - | - | - | + | - | - | - | + | Полинаркомания |
| №40 | - | - | - | + | - | - | - | + | Полинаркомания |
| №51 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №52 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №53 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №54 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №55 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №56 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №57 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №58 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №59 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №60 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| Таблица 7 | |||||||||
| Обследованные больные | Результат метода ИХА | Результат метода ВЭЖХ | |||||||
| МОР | АМФ | КАН | КОК | МОР | АМФ | КАН | КОК | Клинический диагноз | |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
| №1 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №3 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №4 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №5 | + | - | + | - | + | - | + | - | Опийная наркомания |
| №8 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №11 | + | - | - | + | + | - | - | + | Опийная наркомания |
| №13 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №17 | + | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №21 | - | - | - | - | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №25 | + | - | - | + | + | - | - | - | Опийная наркомания |
| №26 | + | - | + | - | + | - | + | - | Опийная наркомания |
| №29 | + | - | - | - | + | - | - | - | Полинаркомания |
| №30 | + | + | - | - | + | + | - | - | Полинаркомания |
| №32 | + | + | - | - | + | + | - | - | Полинаркомания |
| №6 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №10 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №15 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №18 | - | + | - | + | - | + | - | + | Амфетаминовая наркомания |
| №19 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №22 | - | + | - | - | - | + | - | - | Амфетаминовая наркомания |
| №23 | - | + | + | - | - | + | + | - | Полинаркомания |
| №27 | - | + | - | - | - | + | - | - | Полинаркомания |
| №31 | - | + | + | - | - | + | - | - | Полинаркомания |
| №2 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №7 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №12 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №20 | - | - | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| №24 | - | + | + | - | - | - | + | - | Гашишная наркомания |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
| №9 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №14 | - | - | + | + | - | - | + | + | Кокаиновая наркомания |
| №16 | - | - | - | + | - | - | - | + | Кокаиновая наркомания |
| №28 | - | - | - | + | - | - | - | + | Полинаркомания |
| №33 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №34 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №35 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №36 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №37 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №38 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №39 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| №40 | - | - | - | - | - | - | - | - | Здоровый донор |
| Таблица 8 | ||||||
| Определяемая группа веществ | ИП | ИО | ЛП | ЛО | Ч, % | С, % |
| опиаты | 33 | 65 | 0 | 2 | 95 | 100 |
| амфетамины | 18 | 80 | 2 | 0 | 100 | 98 |
| каннабиноиды | 17 | 80 | 2 | 1 | 95 | 98 |
| кокаин | 11 | 86 | 3 | 0 | 100 | 97 |
1. Способ латеральной проточной иммунохроматографии для определения наркотических средств в ротовой жидкости человека, включающий: сбор ротовой жидкости коллектором с последующим нанесением ее на тест-полоску, содержащую последовательно расположенные зоны: конъюгат Ат-метки, содержащий специфические антитела к наркотику, меченные золотом; тестовую, содержащую иммобилизованные конъюгаты аналит: овальбумин; и контрольную, содержащую антивидовые антитела; с последующим определением действительности теста путем наблюдения присутствия окрашенной полосы в контрольной зоне, и определение присутствия наркотика в ротовой жидкости путем наблюдения появления окрашенной полосы в тестовой зоне, причем в качестве конъюгата использют аналит: белок, полученный карбодиимидным методом из макромолекулярного носителя овальбумина, в качестве аналита используют гаптены, являющиеся производными наркотических веществ (морфина, амфетамина, кокаина и тетрагидроканнабинола), содержащие спейсер с карбоксильной группой при соотношении количества молей гаптена на молекулу белка, равном 12-15, а в качестве конъюгата Ат-метка используют моноклональные антитела к исследуемым антигенам наркотических веществ, полученные гибридомной технологией на основе конъюгированных антигенов, полученных из макромолекулярного носителя бычьего сывороточного альбумина и указанных выше гаптенов, производных наркотических веществ.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что для мультианалитического иммунохроматографического определения опиатов, амфетаминов и каннабиноидов тестовая зона состоит из 3 частей, расстояние между центрами линий которых, а также центрами зон конъюгата Ат-метки и контрольный составляет 3-4 см, а результаты определения оптимальных разведений конъюгатов с коллоидным золотом для ИХА опиатов, амфетаминов и каннабиноидов составляют:
разведение 1:4000-1:8000 для анти-Мор-Аu (концентрация от 0,1 до 1 мкг/мл Мор-Ова (ИХА опиатов);
разведение анти-Амф-Аu - 1:2000-1:6000, (концентрация Амф-Ова - от 0,5 до 2 мкг/мл (ИХА амфетаминов);
разведение 1:3000-1:12000 для анти-Кан-Аu и (концентрация от 0,25 до 3 мкг/мл для Кан-Ова (ИХА каннабиноидов),
при этом разведение антивидовых антител составило 1:2000-1:5000.
