Фотобиореактор



Фотобиореактор
Фотобиореактор
Фотобиореактор
Фотобиореактор
Фотобиореактор
Фотобиореактор
Фотобиореактор

 


Владельцы патента RU 2451446:

Общество с ограниченной ответственностью "Фитосила-Биос" (RU)

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения как биомассы микроводорослей, так и любых продуктов их жизнедеятельности. Фотобиореактор выполнен из светопрозрачного, химически и биологически инертного материала в виде плоской панели, составленной из параллельных каналов. Снизу и сверху выходы из каналов соединены общими емкостями из того же материала. В общих емкостях расположены порты для установки датчиков, измеряющих рН, температуру и содержание растворенного кислорода, и штуцеры для ввода добавок или отбора суспензии микроорганизмов. Внизу каждого четного канала светоприемной плоскости с одной стороны и нечетного канала с другой стороны установлены порты для ввода газовой смеси, чтобы суспензия внутри фотобиореактора двигалась за счет аэрлифта в половине каналов вверх, а в половине каналов вниз. Достигаемый технический результат заключается в улучшении газомассообменных характеристик, снижении амплитуды колебаний параметров культивирования и обеспечении более компактной структуры, где процесс фотосинтеза совмещен с процессом газомассообмена. 2 з.п. ф-лы, 7 ил.

 

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения биомассы фотосинтезирующих микроорганизмов, в частности микроводорослей, создания систем поглощения углекислоты, фотосинтетического получения кислорода, регенерации воздуха в помещениях с затрудненной вентиляцией, а также для получения других ценных продуктов жизнедеятельности фотосинтезирующих микроорганизмов.

Широко известны аппараты для выращивания микроводорослей (фотобиореакторы), состоящие из светоприемной части, выполненной в виде светопрозрачных трубок, побудителя движения жидкости (насоса или аэрлифта), а также газомассообменной системы (для обзора см. Цыганков, Лабораторные фотобиореакторы. Прикл. Биохим. Микробиол. (2001), 37, 4, с.387-397; Pulz, О., Photobioreactors: production systems for phototropic microorganisms (2001) Appl Microbiol Biotechnol 57, p.287-293).

Известен плоскостной фотобиореактор, состоящий из светоприемной части, побудителя движения жидкости и газомассобменной системы, у которого светоприемная часть выполнена в виде плоской панели из прозрачного материала, состоящей из параллельных каналов, расположенных в 2 ряда (О.Пульц. Плоскостной биореактор закрытого типа для продукции биомассы микроводорослей. Физиол. Раст. (1994), 41(2), с.292-298). Эти каналы соединяются параллельно или последовательно друг с другом, образуя единую трубчатую систему, по которой суспензия микроводорослей движется за счет побудителя движения. Последовательно со светоприемной частью устанавливают газомассообменную систему. Недостатком такой системы является пространственное разделение процессов фотосинтеза и отделения избытка кислорода/насыщения суспензии углекислотой. В результате культура фотосинтезирующих микроорганизмов в таком аппарате находится в циклически изменяющихся условиях (содержание кислорода и углекислоты, рН, окислительно-восстановительный потенциал, освещенность). Кроме того, светоприемная поверхность при длительном культивировании обрастает пленкой микроводорослей. Для очистки стенок светоприемной части трубчатых фотобиореакторов применяют поролоновые пыжи, которые собирают в пыжеуловителе и при необходимости пропускают по трубкам светоприемной части (Лукашин и др. А.с. СССР №1083944, 1984, бюл. №28, с.15-16). К сожалению, такой способ неприменим для плоскостных фотобиореакторов, в которых форма сечения каналов не является окружностью.

Ближайшим аналогом изобретения является фотобиореактор, описанный в патенте CN 101838606 A, опубл. 22.09.2010, который состоит из светоприемной части, освещаемой с одной или двух сторон и выполненной из светопрозрачного химически и биологически инертного материала, составленный из параллельных каналов, причем снизу и сверху выходы из каналов соединены общими емкостями, выполненными из того же материала, и в них расположены один или несколько штуцеров для ввода добавок или отбора суспензии микроорганизмов и вывода газа из фотобиореактора, а внизу части каналов установлены порты для ввода газовой смеси, чтобы суспензия внутри фотобиореактора двигалась за счет аэрлифта как вверх, так и вниз. К недостаткам указанного фотобиореактора следует отнести недостаточную равномерность подачи углекислоты и отбора избытка кислорода.

Целью настоящего изобретения является устранение недостатков прототипа и достижение технического результата, состоящего в улучшении газомассообменных характеристик, снижении амплитуды колебаний параметров культивирования и обеспечении более компактной структуры, где процесс фотосинтеза совмещен с процессом газомассообмена.

Указанный технический результат достигается в фотобиореакторе, содержащем светоприемную поверхность, освещаемую с одной или двух сторон и выполненную из светопрозрачного химически и биологически инертного материала, составленном из параллельных каналов, причем снизу и сверху выходы из каналов соединены общими емкостями, выполненными из того же материала, и в них расположены один или несколько штуцеров для ввода добавок или отбора суспензии фотосинтезирующих микроорганизмов и вывода газа из фотобиореактора, а внизу части каналов установлены порты для ввода газовой смеси, чтобы суспензия внутри фотобиореактора двигалась за счет аэрлифта как вверх, так и вниз, согласно изобретению, выполненном в виде плоской панели, в общих емкостях фотобиореактора расположены один или несколько портов для датчиков, измеряющих температуру, рН и содержание растворенного кислорода в суспензии фотосинтезирующих микроорганизмов, при этом порты для ввода газовой смеси установлены внизу каждого четного канала светоприемной поверхности с одной стороны и нечетного канала с другой стороны, что обеспечивает аэрлифтное движение в половине каналов вверх, а в половине каналов вниз.

В частных случаях воплощения, для очистки светоприемных поверхностей от биопленки внутри фотобиореактора располагают постоянный магнит сечением, примерно равным сечению каналов, покрытый мягким пористым химически и биологически инертным материалом и приводимый в движение внешним магнитным полем, при этом переход между светоприемной панелью и емкостями не имеет ступенек и резких изменений угла наклона плоскости для облегчения движения магнита.

Кроме того, для одновременной очистки нескольких светоприемных поверхностей каналов от биопленки внутри фотобиореактора располагают магниты по числу, равному или меньшему количества каналов, одновременно приводимые в движение внешним многополюсным магнитом, выполненным в виде полосы, у которой чередуются южные и северные полюса с шагом, равным сечению канала.

На фиг.1 схематично изображено устройство фотобиореактора, на фиг.2 - график изменения рН при вводе кислоты, на фиг.3 - график изменения содержания растворенного кислорода при смене подаваемой газовой смеси с воздуха на аргон, на фиг.4-5 - макет фотобиореактора после 3-х недель культивирования хлореллы, фиг.6-7 - очистка макета фотобиореактора с помощью магнита.

Фотобиореактор (фиг.1) состоит из светоприемной части (1), выполненной из светопрозрачного химически и биологически инертного материала (например, поликарбоната или оргстекла) в виде плоской панели, составленной из параллельных каналов. Снизу выходы из каналов соединены общей емкостью (2), а сверху - общей емкостью (3), выполненными из того же материала. В емкостях (2) и (3) расположены один или несколько портов (4) для датчиков, измеряющих значения температуры, рН, содержания растворенного кислорода в культуре фотосинтезирующих микроорганизмов, а также один или несколько штуцеров (5) для ввода необходимых жидкостных добавок или отбора проб суспензии микроорганизмов и отвода газа из фотобиореактора. Между верхней емкостью (3) и штуцером для отвода газа (5) установлено устройство механического пеногашения (6). Кроме того, внизу каждого четного канала светоприемной плоскости с одной стороны и нечетного канала с другой стороны установлены порты (7) для ввода газовой смеси. Внутри фотобиореактора располагают постоянный магнит (8), покрытый инертным материалом для предотвращения коррозии, а также мягким пористым материалом, используемым для протирки поверхностей (например, ткань из поливиниацетатного армированного волокна, используемая для протирки крашеных поверхностей автомобилей).

Фотобиореактор работает следующим образом. Перед началом работы в фотобиореактор устанавливают датчики, измеряющие значения температуры, рН, содержания растворенного кислорода, подсоединяют необходимые коммуникации: газовые линии, емкости для сред и приема урожая. Затем его заполняют стерилизующим раствором (например, 10-12% раствором гипохлорита) и стерилизуют. После стерилизации фотобиореактор несколько раз (обычно 3-5) промывают стерильной водой и заполняют стерильной питательной средой, специфичной для выращиваемого фотосинтезирующего микроорганизма. Затем доводят рН и температуру до требуемых значений, в каналы подают газовую смесь. Фотобиореактор освещают с одной или двух сторон любым источником освещения (например, солнечным светом, светодиодами, люминесцентными лампами, газоразрядными лампами на основе ртути или натрия и т.п.), пригодным по спектральному составу и интенсивности излучения для выращиваемого микроорганизма, и вводят суспензию микроорганизмов. Развивающаяся культура микроорганизмов насыщается углекислотой в каналах, куда подается газовая смесь, а избыток кислорода переходит из жидкости в газовую фазу. В каналах, где нет подачи газовой смеси, суспензия микроорганизмов, уже насыщенная углекислотой, движется сверху вниз за счет аэрлифта. Таким образом, предлагаемый фотобиореактор не требует дополнительно устройства газомассообмена и побудителя движения суспензии. Кроме того, в каналах, куда подается газовая смесь, газовые пузырьки, поднимаясь к поверхности, предотвращают обрастание поверхности пленкой фотосинтезирующих микроорганизмов, тем самым способствуя эффективному проникновению света внутрь фотобиореактора.

Тем не менее, в каналах, где не подается газовая смесь, а также в каналах с газовой смесью, возможно образование зон с ламинарным потоком суспензии, где происходит обрастание стенок биопленкой. Для снятия биопленки используют магнит (магниты) (8), приводя их в движение по каналу с помощью внешнего магнита (электромагнита) (на фиг.1 не указан) с достаточным для приведения в движение магнита (8) магнитным полем. Магнит (8), покрытый мягким химически и биологически инертным материалом, проходит по каналу и снимает биопленку. Сечение магнита должно быть близко к сечению канала по форме, а сечение магнита с учетом покрывающего материала должно быть примерно равно сечению канала. Если используется только один магнит, он при помощи внешнего магнита переводится из канала в канал вручную и последовательно очищает все каналы от биопленки. Если используется система магнитов, они располагаются на переходной поверхности между светоприемной поверхностью (1) и емкостью (3). Магниты (8) удерживаются на этой поверхности внешним многополюсным магнитом, выполненным в виде полоски с попеременным расположением северных и южных полюсов с шагом, равным ширине каналов. При необходимости очистить светоприемные поверхности, внешний многополюсный магнит вручную перемещают вдоль каналов, увлекая за ним магниты (8). После очистки поверхностей внешний многополюсный магнит возвращают в исходное положение, возвращая магниты (8), причем внешний многополюсный магнит не требует специальной фиксации, поскольку удерживается в исходном положении силой взаимодействия с магнитами (8). Для осуществления возможности очистки светоприемных поверхностей в процессе работы фотобиореактора без его разборки переходная поверхность между светоприемной поверхностью (1) и емкостями (2) и (3) не должна иметь ступенек и резких изменений угла наклона.

Пример 1

Для проверки массообменных характеристик фотобиореактора был изготовлен его макет на основе промышленно выпускаемого сотового поликарбоната толщиной 16 мм с прямоугольным сечением сот, расположенных в 2 ряда. Использовали отрезок из 35 пар сот с высотой 90 см, присоединив к панели нижнюю (2, фиг.1) и верхнюю (3, фиг.1) емкости объемом 0,9 л каждая. В нижней части панели из сотового поликарбоната установлены порты для ввода газа (в четные соты - каналы с одной стороны, и в нечетные - с другой). Созданный таким образом макет фотобиореактора с полезным объемом 10,24 л заполняли питательной средой для выращивания микроводорослей, содержащей (г/л): NH4Cl - 0,5; MgSO47H2O - 0,02; СаСl22O - 0,01; KН2РО4 - 0,77; K2НРО4 - 1,44; NaHCO3 - 0,5; ЭДТА - 0,05; ZnSO47H2O - 0,022; H3BO3 - 0.0114; МnСl22O - 0,00506; FeSO47H2O - 0,00499; СаСl22О - 0,00161; CuSO45H2O - 0,00157; (NH4)6Mo7O244H2O - 0,0011. pH полученной среды без титрования составлял 10,7. При подаче воздуха в качестве газовой фазы обнаружено, что устойчивое истечение воздуха из всех каналов начиналось при скорости его подачи 0,7 л/мин. При увеличении скорости подачи газовой фазы выше 2 л/мин обнаружено, что в некоторых каналах газовая фаза занимала почти полностью весь канал по высоте, то есть происходило неэффективное перемешивание газа и жидкости. Таким образом, рабочая скорость подачи газовой фазы лежит в диапазоне примерно 0,7-2,0 л/мин. Если в газовую фазу кратковременно (10 сек) добавить углекислый газ до 10% по объему, то рН смещался до значения 5,5 в течение около 30 сек после добавления (данные не приведены). Для проверки эффективности горизонтального перемешивания в реакторе в центр реактора снизу вводили датчик рН, а добавку кислоты (1 мл 1 N раствора) делали в нижнюю часть крайнего канала. Ход изменения рН приведен на фиг.2, из него видно, что более чем 95% ответ на такую несимметричную добавку достигался менее чем за 1700 сек. При этом изменения рН были монотонными, без осцилляции, что выгодно отличает описанный макет от петлевого фотобиореактора, у которого такая добавка приводила к осцилляциям рН в течение более чем 2000 сек (Цыганков, Лабораторные фотобиореакторы. Прикл. Биохим. Микробиол. (2001), 37, 4, с.387-397).

Для измерения газомассообменных характеристик (KLa) газовую фазу при скорости ее подачи 1 л/мин меняли с воздуха на аргон и измеряли кинетику изменения содержания растворенного кислорода (фиг.3, кривая в виде точек). Аппроксимацию полученной кривой (кривая в виде линии на фиг.3) проводили в соответствии с уравнением

dOi/dt=KLa(C*-OL),

где OL - концентрация растворенного кислорода, выраженная в микромолях, в данный момент;

С* - концентрация растворенного кислорода в начальный момент (232 мкМ);

KLa - коэффициент массопереноса из жидкости в газовую фазу.

Полученное путем аппроксимации значение KLa составляло 0.0036±0.00005 сек-1. Это значение примерно вдвое выше, чем описанное для трубчатого фотобиореактора 0,0015 (Tsygankov AA, Borodin VB, Rao KK, et al. Н2 photoproduction by batch culture of Anabaena variabilis ATCC 29413 and its mutant PK84 in a photobioreactor. Biotechnology And Bioengineering 1999 64(6):709-715), что подтверждает преимущества предлагаемого фотобиореактора.

Пример 2

Для демонстрации возможности очистки фотобиореактора с помощью магнита, расположенного внутри, описанный в примере 1 фотобиореактор использовали для культивирования хлореллы. Выращивание проводили в среде, описанной выше. рН среды (7,3) поддерживали с помощью внешнего регулятора рН, установив в фотобиореактор датчик рН Mettler Toledo InPro 3030 и подавая в среду углекислоту при повышении рН выше заданного значения. Освещение (50 Вт/м2) при культивировании осуществляли с помощью панели светодиодов на основе световой ленты RoHS Dreamled 3528. Температуру регулировали автоматическим включением вентиляторов (30°С). После 3 недель культивирования (при разбавлении культуры каждые 3 дня свежей средой) культуру слили и заполнили фотобиореактор дистиллированной водой. Каналы фотобиореактора, в которые не подавали газовую фазу, покрылись пленкой из микроводорослей (фиг.4-5). В фотобиореактор был установлен магнит в виде диска толщиной 2 мм и диаметром 20 мм, покрытый искусственным материалом, используемым для протирки крашеных поверхностей автомобилей. При помощи внешнего магнита внутренний магнит вводили внутрь каналов и проводили вдоль них (фиг.5). В результате после прохода магнита поверхность канала очистилась, и в канале образовалась суспензия микроводорослей (фиг.6). Это свидетельствует о достижении полезного эффекта от использования постоянного магнита.

1. Фотобиореактор, состоящий из светоприемной поверхности, освещаемой с одной или двух сторон и выполненной из светопрозрачного химически и биологически инертного материала, составленный из параллельных каналов, причем снизу и сверху выходы из каналов соединены общими емкостями, выполненными из того же материала, и в них расположены один или несколько штуцеров для ввода добавок или отбора суспензии фотосинтезирующих микроорганизмов и вывода газа из фотобиореактора, а внизу части каналов установлены порты для ввода газовой смеси, чтобы суспензия внутри фотобиореактора двигалась за счет аэрлифта как вверх, так и вниз, отличающийся тем, что выполнен в виде плоской панели, в емкостях также расположены один или несколько портов для датчиков, измеряющих температуру, рН и содержание растворенного кислорода в суспензии фотосинтезирующих микроорганизмов, при этом порты для ввода газовой смеси установлены внизу каждого четного канала светоприемной поверхности с одной стороны и нечетного канала с другой стороны, что обеспечивает аэрлифтное движение в половине каналов вверх, а в половине каналов - вниз.

2. Фотобиореактор по п.1, отличающийся тем, что для очистки светоприемных поверхностей от биопленки внутри него располагают постоянный магнит сечением, примерно равным сечению каналов, покрытый мягким пористым химически и биологически инертным материалом и приводимый в движение внешним магнитным полем, при этом переход между светоприемной панелью и емкостями не имеет ступенек и резких изменений угла наклона плоскости для облегчения движения магнита.

3. Фотобиореактор по п.2, отличающийся тем, что для одновременной очистки нескольких светоприемных поверхностей каналов от биопленки внутри него располагают магниты по числу, равному или меньше количества каналов, и одновременно приводимые в движение внешним многополюсным магнитом, выполненным в виде полосы, у которой чередуются южные и северные полюса с шагом, равным сечению канала.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к гидротехническим сооружениям при возведении искусственных рифов в морских и пресноводных хозяйствах. .

Изобретение относится к микробиологической промышленности, а именно к технологии выращивания хлореллы. .
Изобретение относится к марикультуре, а именно к искусственному восстановлению полей ламинарии в традиционных местах ее произрастания. .

Изобретение относится к микробиологической промышленности, а именно к технологии выращивания хлореллы. .

Изобретение относится к сельскому хозяйству и направлено на решение проблемы повышения жизнеспособности различных видов флоры и фауны, обитающих в воде. .

Изобретение относится к биофизике и ядерной технике и предназначено для производства биологического сырья для синтеза искусственного органического топлива, кормов и гумуса.

Изобретение относится к сельскому хозяйству, конкретно к установкам для выращивания кормовой микроводоросли спирулины плантенсис. .
Изобретение относится к области сельского хозяйства, а именно к методам электромагнитного воздействия на биообъекты. .

Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано для культивации хлореллы

Изобретение относится к носителю для швартовной точки выращивания макроводорослей, как описано во вступительной части п.1 формулы изобретения, и устройству для подвешивания таких носителей

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к технологии выращивания планктонных водорослей, в частности хлореллы

Плавучий биореактор включает по меньшей мере один установленный на поверхности водоема герметичный контейнер из мягкого светопроницаемого полимерного материала с трубопроводами с запорной арматурой для загрузки исходных сырьевых компонентов, разгрузки микроводорослей и подачи и отбора газов из контейнера. Контейнер снабжен горизонтальным каркасом в форме поверхности кругового полого цилиндра, основания которого посредством стержней соединены между собой по образующим. На одной оси с каркасом смонтирован вал. Трубопроводы для загрузки исходных сырьевых компонентов и подачи газов, а также разгрузки микроводорослей и отбора газов смонтированы в основаниях каркаса контейнера. Биореактор снабжен понтоном, шарнирно сочлененным с контейнером посредством одноплечих рычагов, смонтированных на валу контейнера с возможностью его свободного вращения и качания по вертикали. Изобретение позволяет увеличить производительность биореактора. 1 з.п. ф-лы, 3 ил.

Группа изобретений относится к области выращивания микроводорослей. Предложена установка для выращивания хлореллы и светильник для установки. Установка содержит связанную линией отвода готовой суспензии с емкостью готовой суспензии систему биореакторов хлореллы, биореактор раствора углекислого газа, связанный на выходе с биореакторами хлореллы, станцию подготовки питательного раствора, связанную на выходе с биореакторами хлореллы и биореактором раствора углекислого газа, светильники в виде электроламп, снабженные системой охлаждения, насосы и запорно-регулирующие устройства. Светильники установлены внутри корпусов биореакторов хлореллы, их система охлаждения представляет собой рубашку жидкостного охлаждения. Рубашка жидкостного охлаждения выполнена в виде дополнительного кожуха из прозрачного материала, огибающего корпус электролампы с образованием проточного канала. Вход и выход проточного канала связаны между собой через теплообменник и циркуляционный насос линией подвода и линией отвода охлаждающей жидкости. Устройства перемешивания, регулирования, мойки и дренажа размещены и подключены под системой секций биореакторов. Биореакторы хлореллы снабжены линиями отвода моющей жидкости в дренаж, при этом биореакторы хлореллы связаны на входе с емкостью готовой суспензии. Изобретения позволяют повысить удобство эксплуатации, безопасность работы, эффективность системы охлаждения светильников, производительность и качество целевого продукта, обеспечить процесс производства суспензии водоросли в автоматическом режиме. 2 н.п. ф-лы, 3 ил.

Устройство для культивирования макрофитов с рабочими объемами с соотношением высоты к ширине не менее 1,5, имеющими поперечные профили дна в форме четвертой-шестой части сечения цилиндра, примыкающего к высоким боковым стенкам под прямым углом, и низкие стенки, выполненные из светонепроницаемого материала, оснащенные расположенными в их глубоких частях продольными перфорированными воздуховодами, патрубками для подачи и щелями для слива питательной среды, газообменниками, блоком регулирования рН с датчиками рН и набором сигнальных электродов, коммутатором, исполнительным механизмом для подачи в газообменники углекислого газа, светильниками с вертикальным набором люминесцентных ламп, вокруг которых попарно группируются рабочие объемы, которые дополнительно оснащены роторами, вращающимися на осях, закрепленных на торцевых стенках, с шестью подпружиненными, наполняемыми воздухом поворотными лопастями, выполненными из светопроницаемого материала, и вспомогательными перфорированными воздуховодами с независимым регулированием подачи воздуха. Устройство при значительном сокращении расходов углекислого газа и сжатого воздуха позволяет эффективно использовать световую энергию и, сохраняя высокую удельную производительность продукции, снизить её себестоимость.

Способ культивирования одноклеточной зеленой микроводоросли Dunaliella salina для получения биомассы с использованием квазинепрерывного режима культивирования. Культуру, выращенную на модифицированной питательной среде Тренкеншу методом накопительных культур до плотности 1,5-3 г ОР·л-1 переводят в квазинепрерывный режим культивирования. Дальнейшее выращивание осуществляют при удельной скорости протока среды около 0,3 сут-1, при круглосуточном освещении с поверхностной освещенностью 80 Вт·м-2, непрерывной продувке газовоздушной смесью со скоростью 1 л смеси·мин-1·л-1 культуры, которая содержит 3 % СО2, и температуре 26-28°С, на модифицированной питательной среде Тренкеншу. Полученная биомасса составляла около 0,5 г ОВ с 1 л культуры в сутки при относительном содержании каротиноидов в биомассе не менее 0,9 % ОВ, хлорофилла а - 2,8% ОВ и белка - 55% ОВ.

Изобретение относится к способу определения объемов и площадей поверхностей клеток диатомовых водорослей, предусматривающему отбор и фотографирование водорослей, компьютерное построение трехмерных геометрических моделей путем создания каркаса, покрываемого полигональной поверхностью, расчеты объемов и площадей водорослей по полученным моделям. При этом трехмерный каркас модели строят путем объединения трех компьютерных оцифрованных проекций панцирей диатомовых водорослей на створчатую, продольную и поперечную плоскости, причем для построения цифровых проекций применяют кубические кривые Безье, которые используют для обводки контуров клеток диатомовых, причем ключевые вершины кривых Безье размещают в морфологически значимых местах границы контура клетки, которые соответствуют наиболее возможным местам изменения формы границы в процессе развития микроводоросли, а после «обтягивания» каркаса полигональной поверхностью построенную модель соотносят с размерами исследуемого объекта и модифицируют с помощью перемещения ключевых вершин кривых Безье так, чтобы их размеры и пропорции отвечали размерам и пропорциям исследуемых клеток.

Изобретение «Применение глубинной морской воды из сероводородной зоны Черного моря в качестве среды культивирования морских водорослей» относится к марикультуре и предназначено для культивирования морских водорослей в лабораторных и промышленных условиях. Техническая сущность изобретения заключаются в применении глубинной воды Черного моря как содержащей сероводород, так и окисленной в качестве среды культивирования морских водорослей. Исследования биогенных свойств водной среды из восстановительной зоны Черного моря, выполненные авторами изобретения показали, что глубинная вода не оказывает губительного действия на черноморские планктонные водоросли в присутствии высоких исходных концентраций сероводорода. После полного окисления этого ксенобиотика черноморская глубинная вода может применяться в качестве питательной плодородной среды культивировании одноклеточных планктонных и многоклеточных бентосных водорослей в лабораторных или промышленных условиях и в марикультурных хозяйствах.
Изобретение относится к области выращивания одноклеточных фотосинтезирующих микроорганизмов. Предложен способ культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов в фотобиореакторе закрытого типа с рабочим объемом, содержащим культуральную жидкость. Способ включает подачу газовой смеси, содержащей углекислый газ, в рабочий объем фотобиореактора, осуществление освещения культуральной жидкости от источника искусственного света и ее перемешивание. Перед началом процесса культивирования в рабочий объем фотобиореактора в культуральную жидкость вносят гранулы люминофора с длительным послесвечением в количестве 10-30% от объема культуральной жидкости. Гранулы люминофора снабжены прозрачной наружной оболочкой из химически и биологически инертного материала. При непрерывном или периодическом отборе культуральной жидкости из рабочего объема фотобиореактора отделяют гранулы люминофора с помощью сетчатого фильтра. Изобретение обеспечивает снижение энергетических затрат на процесс культивирования фотосинтезирующих микроорганизмов и увеличение производительности процесса. 1 табл., 2 пр.
Наверх