Способ определения свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидоформальдегидных смолах

Изобретение относится к аналитической химии, а именно к способам определения содержания свободных альдегидов в альдегидсодержащих смолах и полимерах. Способ включает получение спиртового раствора глиоксаля путем смешения пробы карбамидоформальдегидной смолы с этиловым спиртом, выдерживанием в течение 30 мин с последующей фильтрацией на мембранном фильтре с размером пор 0,2 мкм, отбором пробы спиртового раствора (35,7±1 мкг) с последующим прибавлением 10,5±1 мкг бензилового спирта, 2,0 мл этанола и 80-100 мг о-фенилендиамина. Затем выдерживают пробу в течение 20 мин, с дальнейшим вводом в испаритель газового хроматографа с помощью микрошприца и проведением анализа со скоростью потока газа-носителя (азота) 30 мл/мин, водорода - 40 мл/мин, воздуха - 500 мл/мин, температурой термостата колонки 140°С, температурой испарителя 200°С и детектора 150°С, с использованием хроматографической колонки длиной 1,6 м, заполненной сорбентом Reoplex-400, нанесенным на носитель Chromaton N, с последующим определением площадей хроматографических пиков бензилового спирта и хиноксалина и расчетом содержания свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле при следующем соотношении компонентов, мас.%: проба карбамидоформальдегидной смолы 45-55; этанол 55-45. Техническим результатом изобретения является разработка способа хроматографического определения глиоксаля с целью определения массовой доли свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидо-формальдегидных смолах. 2 табл.

 

Изобретение относится к аналитической химии, а именно к способам определения содержания свободных альдегидов в альдегидсодержащих смолах и полимерах. Способ может использоваться для контроля технологического процесса приготовления глиоксальсодержащих карбамидоформальдегидных смол. Свободный формальдегид присутствует в карбамидо- и фенолформальдегидных смолах, т.к. в процессе их производства для образования трехмерного каркаса (сшивки) требуется некоторый избыток формальдегида по сравнению со стехиометрией. Определение данного показателя важно, т.к. позволяет, с одной стороны, проводить контроль технологического процесса (судить о "степени сшивки" смолы), и с другой, данный показатель определяет эмиссию формальдегида из древесностружечных плит (получающихся при прессовке смолы с древесными опилками).

При синтезе глиоксальсодержащих смол требуется определение свободного глиоксаля в смоле, однако метода определения на сегодняшний день в литературе не описано. Известны способы определения свободного формальдегида (ГОСТ 16704-71. Смолы фенолформальдегидные. Методы определения свободного формальдегида.) В настоящем ГОСТе определено два титриметрических метода определения свободного формальдегида. Первый метод основан на реакции формальдегида с раствором гидроксиламина гидрохлорида или сернокислого гидроксиламина и потенциометрическом титровании выделившейся кислоты гидроокисью натрия. Второй метод заключается в прямом потенциометрическом титровании формальдегида раствором гидроксиламина гидрохлорида или сернокислого гидроксиламина. Обе реакции основаны на реакции карбонильных групп с гидрохлоридом гидроксиламина. Таким образом, при анализе данным методом будут определены все соединения, находящиеся в смоле, содержащие карбонильные группы. При совместном присутствии глиоксаля и формальдегида в смолах определить содержание глиоксаля таким методом не представляется возможным. Известен способ определения свободного формальдегида в карбамидоформальдегидных смолах (ГОСТ 14231-88. Смолы карбамидоформальдегидные. Технические условия.) Настоящим стандартом регламентируется способ определения свободного формальдегида в карбамидоформальдегидных смолах. Метод основан на взаимодействии свободного формальдегида с кислым раствором сульфита натрия и последующим титрованием избытка кислоты гидроксидом натрия. В ходе протекания реакции с сульфитом натрия соединения, содержащие карбонильную группу, образуют бисульфитные аддукты.

В случае совместного присутствия в смоле глиоксаля и формальдегида в смоле при анализе данным методом будет определяться суммарное количество карбонильных групп. Поэтому данный метод непригоден для определения глиоксаля в карбомидоформальдегидных смолах.

Известен метод определения формальдегида в фенолформальдегидных смолах методом газовой хроматографии, выбранный в качества прототипа (М.Р.Stevens, D.F.Percival. Gas chromatographic determination of free phenol and free formaldehyde in phenolic resins, Anal. Chem., 1964, 36 (6), p. 1023-1024). Настоящий метод состоит в разведении фенолформальдегидной смолы в воде и газохроматографическом определении формальдегида с использованием внутреннего стандарта (1-бутанола). Принцип, положенный в основу настоящего метода, является наиболее оптимальным, т.к. позволяет проводить определение свободного формальдегида в присутствии других веществ. Это возможно благодаря хроматографическому разделению компонентов водного раствора смолы. Однако выдвигаются определенные требования к хроматографическому методу определения глиоксаля. Стабильное хроматографическое определение глиоксаля в водных растворах оптимально проводить в виде хиносколина, селективно образующегося из глиоксаля при реакции с о-фенилендимином. Глиоксаль в водных растворах существует в виде ди- и тримеров [Whipple, E.В. (1970). "Structure of Glyoxal in Water". J. Am. Chem. Soc. 90: 7183-7186], что также накладывает определенные требования на метод анализа. Еще одним важным моментом является необходимость полного разделения хроматографических пиков формальдегида и глиоксаля, что может быть достигнуто применением о-фенилиендиамина и выбором оптимальной неподвижной фазы и условий хроматографирования.

Задачей настоящего изобретения является разработка способа хроматографического определения глиоксаля с целью определения массовой доли свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидо-формальдегидных смолах.

Поставленная задача решается тем, что способ определения свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидоформальдегидных смолах включает хроматографическое определение свободного альдегида, но в отличие от прототипа предварительно получают спиртовой раствор глиоксаля путем смешения пробы карбамидоформальдегидной смолы с этиловым спиртом, выдерживанием в течение 30 мин с последующей фильтрацией на мембранном фильтре с размером пор 0,2 мкм, отбором пробы спиртового раствора (35,7±1 мкг) с последующим прибавлением 10,5±1 мкг бензилового спирта, 2,0 мл этанола и 80-100 мг о-фенилендиамина, выдерживанием пробы в течение 20 мин, с дальнейшим вводом в испаритель газового хроматографа с помощью микрошприца и проведением анализа со скоростью потока газа-носителя (азота) 30 мл/мин, водорода - 40 мл/мин, воздуха - 500 мл/мин, температурой термостата колонки 140°C, температурой испарителя 200°C и детектора 150°C, с использованием хроматографической колонки длиной 1,6 м, заполненной сорбентом Reoplex-400, нанесенным на носитель Chromaton N, с последующим определением площадей хроматографических пиков бензилового спирта и хиноксалина и расчетом содержания свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле при следующем соотношении компонентов, мас.%:

карбамидоформальдегидная смола 45-55
этанол 55-45

Анализ основан на количественном хроматографическом определении глиоксаля в виде хиноксалина методом внутреннего стандарта. Хиноксалин образуется в спиртовом растворе глиоксаля при взаимодействии с о-фенилендиамином.

Концентрация глиоксаля устанавливается исходя из измерения соотношения площадей хроматографических пиков хиноксалина и известного количества внутреннего стандарта, введенного в пробу. В качестве стандарта используется бензиловый спирт.

Для измерений используется газовый хроматограф Хроматэк "Кристалл 5000.1" с пламенно-ионизационным детектором, микрошприц МШ-10 по ТУ 2833106, весы аналитические типа А-100 А, класс точности 2, пипетка на 2 мл по ГОСТ 29169, виалы на 15-20 мл. Разделение компонентов смеси производится с применением стеклянной газохроматографической колонки длиной 1,6 м, заполненной сорбентом Reoplex-400, нанесенным на носитель Chromaton N.

Пробу карбамидоформальдегидной смолы (0,5±0,05) переносят в виалу на 15 мл и взвешивают (mсм) с точностью до 4 знаков грамма. Обнуляют показания весов. Затем прибавляют (0,5±0,05) г этанола и проводят повторное взвешивание (mэт). Полученную смесь встряхивают в течение 2-3 мин и выдерживают в течение 30 мин при комнатной температуре. После этого спиртовой раствор отфильтровывают через мембранный фильтр с размером пор 0,2 мкм.

На аналитических весах взвешивают 34,7±1 мг отфильтрованного спиртового раствора в виалу объемом 15 мл (предварительно взвешенную). В эту же виалу взвешивают 10,7±1 мг бензилового спирта и 80-100 мг о-фенилендиамина, затем пипеткой на истечение добавляют в полученную смесь 2 мл этилового спирта.

Полученная смесь выдерживается в течение 20 мин до полного растворения кристаллов о-фенилендиамина.

Для измерений используется пламенно-ионизационный детектор. Устанавливаются следующие параметры работы хроматографа: температура детектора - 150°C, температура испарителя - 200°C, температура термостата хроматографической колонки - 140°C, скорость подачи газа носителя (азота) - 30 мл/мин, скорость подачи водорода (для детектора) - 40 мл/мин, скорость подачи кислорода (для детектора) - 500 мл/мин.

Приготовленную смесь в количестве 1 микрошприцом МШ-10 вводят через головку испарителя, прокалывая резиновую мембрану. Перед вводом смеси шприц промывают сначала этиловым спиртом 10 раз, затем анализируемым раствором (смесью) не менее 10 раз. Порядок выхода пиков на хроматограмме: этиловый спирт (растворитель) - бензиловый спирт - хиноксалин. Ориентировочное время выхода бензилового спирта 10 мин, хиноксалина 12 мин. Точное время выхода глиоксаля (хиноксалина) и бензилового спирта определяется по чистым компонентам либо методом добавок.

Массовое содержание свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле рассчитывают исходя из соотношения площадей хроматографических пиков хиноксалина и бензилового спирта по формуле:

где: Ссв.ГО - массовая доля свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле, %;

mпр.ж - масса пробы спиртового раствора глиоксаля, мг;

Sx - площадь хроматографического пика хиноксалина;

Sст - площадь хроматографического пика бензилового спирта;

а, b - коэффициенты градуировочной прямой;

mст - масса стандарта, мг;

mсм - масса навески карбамидформальдегидной смолы;

mэт - масса этанола, г;

К - коэффициент извлечения глиоксаля из смолы, К=0.359.

Перед проведением измерений выполняют градуировку хроматографа путем определения зависимости отношения масс хиноксалина и внутреннего стандарта в пробе от отношения площадей их хроматографических пиков. Готовится 8-10 растворов глиоксаля с известной концентрацией. Диапазон концентраций определяют исходя из содержания свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидоформальдегидных смолах. Эквивалентная концентрация глиоксаля в спиртовом растворе, после проведения выделения рассчитывается по формуле: где К - коэффициент извлечения глиоксаля из смолы.

Для определения градуировочных характеристик растворы анализируют аналогично спиртовому раствору глиоксаля при проведении анализа смолы, определяя соотношение площадей хроматографических пиков глиоксаля и бензилового спирта. Далее строят график зависимости отношения масс глиоксаль/стандарт (бензиловый спирт) (mx/mst) от отношения площадей пиков хиноксалин/стандарт (Sx/Sst). Полученную зависимость аппроксимируют уравнением вида и применяют при дальнейших анализах. При необходимости могут быть применены другие аппроксимирующие функции.

Примеры конкретного осуществления изобретения приведены ниже.

Пример 1

Была взята навеска глиоксальсодержащей карбамидоформальдегидной смолы 0,4896 г, прибавлено 0,4880 г этанола (получена смесь, содержащая 50,1% смолы и 49,9% этанола). Смесь встряхивалась в течение 3 минут, затем отстаивалась в течение 0,5 ч при комнатной температуре. Из полученного спиртового раствора была отобрана проба на анализ (35,4 мкг), прибавлен бензиловый спирт (11,3 мг), этанол (2 мл), о-фенилендиамин (~ 90 мг). Смесь была выдержана в течение 20 минут при комнатной температуре. Затем 1 мкл пробы был введен в испаритель хроматографа. Параметры хроматографа задавались согласно предлагаемому методу. В результате анализа были определены площади хроматографических пиков хиноксалина и бензилового спирта. Исходя из полученных площадей хроматографических пиков было вычислено содержание свободного глиоксаля в пробе глиоксальсодержащей крабамидоформальдегидной смолы. В таблице 1 приведен результат анализа пробы глиоксальсодержащей карбамидоформальдегидной смолы.

Пример 2

К 0,5012 г карабамидформальдегидной смолы с содержанием глиоксаля 0,72% прибавлено 0,0277 г 38% раствора глиоксаля. К полученной смоле с добавкой глиоксаля было прибавлено 0,5289 г этанола (получена смесь, содержащая 50,2% смолы и 49,8% этанола). Смесь встряхивалась в течение 3 минут, затем отстаивалась в течение 0,5 ч при комнатной температуре. Из полученного спиртового раствора была отобрана проба на анализ (35,2 мг), прибавлен бензиловый спирт (11,6 мг), этанол (2 мл), о-фенилендиамин (~90 мг). Смесь была выдержана в течение 20 минут при комнатной температуре. Затем 1 мкл пробы был введен в испаритель хроматографа. Параметры хроматографа задавались согласно предлагаемому методу. Исходя из площадей хроматографических пиков хиноксалина и бензилового спирта было вычислено содержание глиоксаля в пробе с добавкой. В таблице 2 представлен результат анализа пробы глиоксальсодержащеи карбамидоформальдегидной смолы с добавкой глиоксаля.

Таблица 1
Результат анализа пробы глиоксальсодержащей карбамидоформальдегидной смолы
Площадь пика хиноксалина, отн. ед. Площадь пика бензилового спирта, отн. ед. Содержание свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле, мас.%
2500,2 105490,9 0,72
Таблица 2
Результат анализа пробы глиоксальсодержащей карбамидоформальдегидной смолы с добавкой глиоксаля
Концентрация глиоксаля в исходной смоле, % мас. Расчетная концентрация глиоксаля с добавкой, % мас. Измеренная концентрация глиоксаля в растворе с добавкой, % мас. Введено, % мас. Найдено, % мас.
0,72 2,82 2,73 2,10 2,01

Способ определения свободного глиоксаля в глиоксальсодержащих карбамидоформальдегидных смолах, включающий хроматографическое определение свободного альдегида, отличающийся тем, что предварительно получают спиртовой раствор глиоксаля путем смешения пробы карбамидоформальдегидной смолы с этиловым спиртом, выдерживанием в течение 30 мин с последующей фильтрацией на мембранном фильтре с размером пор 0,2 мкм, отбором пробы спиртового раствора (35,7±1) мкг с последующим прибавлением (10,5±1) мкг бензилового спирта, 2,0 мл этанола и 80-100 мг о-фенилендиамина, выдерживанием пробы в течение 20 мин с дальнейшим вводом в испаритель газового хроматографа с помощью микрошприца и проведением анализа со скоростью потока газа-носителя (азота) 30 мл/мин, водорода - 40 мл/мин, воздуха - 500 мл/мин, температурой термостата колонки 140°С, температурой испарителя 200°С и детектора 150°С, с использованием хроматографической колонки длиной 1,6 м, заполненной сорбентом Reoplex-400, нанесенным на носитель Chromaton N, с последующим определением площадей хроматографических пиков бензилового спирта и хиноксалина и расчетом содержания свободного глиоксаля в карбамидоформальдегидной смоле при следующем соотношении компонентов, мас.%:

проба карбамидоформальдегидной смолы 45-55
этанол 55-45


 

Похожие патенты:

Изобретение относится к устройствам для разделения или очистки веществ методами жидкостной хроматографии. .

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии. .

Изобретение относится к медицине, в частности к способу получения растворов 68Ga, который включает следующие стадии: взаимодействие элюата генератора 68Ge/ 68Ga с катионообменной смолой, промывку катионообменной смолы смесью 0,2-1 М соляной кислоты и 20-80% об.

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии и может быть использовано в практике санэпидстанций, химико-токсикологических, экспертно-криминалистических и ветеринарных лабораторий.

Изобретение относится к газовой хроматографии и может быть использовано для стандартизации и оценки подлинности различного лекарственного сырья в медицине, фармакологии, здравоохранении, пищевой, парфюмерной и других отраслях промышленности.

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано для обнаружения и идентификации химических веществ в смеси по их признакам. .

Изобретение относится к биологии, экологии, токсикологической и санитарной химии и может быть использовано в практике санэпидстанций, химико-токсикологических, ветеринарных и экологических лабораторий.

Изобретение относится к области медицины и описывает способ определения содержания этилового спирта и других метаболитов в крови человека методом газожидкостной хроматографии, включающий получение дистиллятов крови методом прямой перегонки с водяным паром и исследование компонентов крови, отличающийся тем, что одновременно проводят количественное определение этилового спирта, диэтилового эфира, ацетальдегида, ацетона, метилацетата, этилацетата, пропилового спирта, изобутилового спирта, бутилового спирта, изоамилового спирта в ходе одного исследования с использованием капиллярной хроматографической колонки, расчет концентрации определяемых компонентов крови производят по формуле: где а - результат хроматографического исследования, мг/дм3; V - объем дистиллята, см3; m - масса навески цельной крови, г.

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии

Изобретение относится к аналитической химии, а именно к способам определения химических соединений газохроматографическим методом, и может быть использовано в различных областях химии, фармации, медицины, контроле окружающей среды и технологических процессах в нефтегазовой, химической и пищевой промышленности и так далее

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для диагностики патологий, связанных с заболеваниями коры надпочечников

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано при анализе органических и неорганических веществ методом тонкослойной хроматографии в различных научных и практических областях медицины, биологии, химии, пищевой и парфюмерной промышленности, охране окружающей среды и других отраслях народного хозяйства. Способ, при котором разделение пробы на отдельные компоненты происходит в капиллярной колонке с сорбентом под действием восходящего потока жидкого элюента, расход которого программируют путем экспоненциального повышения давления на входе колонки. Устройство содержит кварцевую капиллярную колонку с сорбентом, герметичную емкость с жидкой подвижной фазой, видеоденситометрический детектор, блок подготовки инертного газа, регулируемое пневмосопротивление и полую емкость, соединенную с газовым пространством герметичной емкости с жидким элюентом. Техническим результатом изобретения является стабилизация линейной скорости подъема жидкой подвижной фазы по слою сорбента и уменьшение времени анализа. 2 н.п. ф-лы, 1 ил., 1 табл.

Изобретение относится к газовой хроматографии, в частности к использованию модифицированных углеродных адсорбентов для анализа сложных смесей веществ в нефтяной, химической, газовой, медицинской, пищевой и других отраслях промышленности. Способ анализа оптических и структурных изомеров путем разделения анализируемой смеси на бинарном сорбенте, содержащем хиральный макроциклический метилированный β-циклодекстрин, с последующим определением состава анализируемых компонентов смеси по результатам измерения хроматографических сигналов из полученных хроматограмм. Причем метилированный β-циклодекстрин нанесен на плоскую однородную поверхность углеродного адсорбента-носителя Карбопак Y (Carbopack Y) в количестве, достаточном для полного покрытия поверхности плотным слоем. Техническим результатом изобретения является повышение селективности разделения оптических и структурных изомеров в одном цикле хроматографирования. 1 табл.

Изобретение относится к области хроматографии. Готовят суспензию анионита в 20-25% водном растворе глицерина с последующим ее центрифугированием и декантированием до получения осадка анионита-основы с зернением 12-16 мкм. Готовят наносуспензию катионита-модификатора путём перевода функциональных групп катионита в водородную форму, отмывки водой, сушки, помола частиц в шаровой мельнице, с последующим центрифугированием и декантированием до получения суспензии катионита в воде с размером частиц 50-300 нм. Наполняют колонку суспензией анионита в водном растворе глицерина, уплотняют слой анионита под давлением, переводят анионит в гидроксильную форму. Производят укладку наночастиц катионита в макропоры анионита-основы. Удаляют наночастицы с внешней поверхности анионита путем пропускания наносуспензии катионита-модификатора через колонку до проскока, а затем удаляют избыток модификатора путем пропускания кислоты, воды, растворителя до установления равновесия. Технический результат заключается в получении колонок для хроматографии с варьируемой селективностью, обладающих долговечностью, химической устойчивостью и возможностью регенерации. 6 з.п. ф-лы, 2 табл., 4 ил.

Изобретение относится к регуляторам малых расходов газов, применяемых в газовых хроматографах. Технический результат заключается в повышение абсолютной и относительной точности поддержания расхода газа и точности анализа на хроматографах. Для этого предложен регулятор расхода газа для газового хроматографа, содержащий стабилизатор давления, вход которого подключен к газовой магистрали, датчик расхода газа, программатор-задатчик расхода газа, причем в нем установлен содержащий низкочастотный фильтр электронный регулятор с пропорционально-интегрально-дифференциальным (ПИД) законом регулирования, один из входов которого «задающее воздействие» соединен с «управляющим» выходом программатора-задатчика расхода газа, а второй «сигнальный» вход соединен с сигнальным выходом датчика расхода газа, представляющего собой преобразователь массовый расход газа - напряжение, при этом датчик расхода соединен своим газовым выходом с газовым входом аналитической части хроматографа, а газовый вход соединен с газовым выходом стабилизатора давления, представляющего собой электронный регулятор давления «после себя» и включающий пневматический пропорциональный клапан с электромагнитным управлением, включенный пневматически между входом газовой магистрали и выходом стабилизатора давления, при этом электромагнит привода соединен с выходом схемы сравнения, один из входов которой соединен с управляющим выходом регулятора с пропорционально-интегрально-дифференциальным законом регулирования, а второй вход с сигнальным выходом преобразователя давление-напряжение, подключенным пневматически к газовому выходу стабилизатора давления. 3 з.п. ф-лы, 1 ил.

Изобретение относится к области защиты окружающей среды. Предложен способ определения содержания в газообразной среде труднолетучих органических соединений, таких как полиароматические углеводороды, карбоновые кислоты, спирты, сложные эфиры, н-алканы-С15-30. Способ включает пропускание газообразной среды через сорбент, содержащий по меньшей мере одно соединение, выбранное из группы MgO, CaO, CaCO3, MgCO3. Затем производят растворение сорбента в первом водном растворе со значением рН менее 7 с получением второго водного раствора. Затем осуществляют экстракцию находящегося во втором водном растворе труднолетучего соединения с помощью органического растворителя с получением экстракта. Содержание труднолетучего соединения в экстракте определяют с помощью пригодного физико-химического метода анализа. Изобретение позволяет определить содержание органических соединений, имеющих температуру кипения от 120 до 300°C при снижении продолжительности пробоподготовки. 3 н. и 20 з.п. ф-лы, 6 ил., 5 табл.
Предложен экспрессный, безопасный и экономичный способ определения микотоксинов в продуктах животного и растительного происхождения. Определение проводят из 2 г пробы, очищенный экстракт по QuEChERS делят на три части по 2 мл и используют в качестве диспергатора 300 мкл хлороформа в дисперсионной жидкостно-жидкостной микроэкстракции. Отбирают полученные экстракты в микрофлаконы, производят выпаривание растворителя и остаток в первом и третьем микрофлаконах растворяют в 50 мкл ацетонитрила, во втором - в 50 мкл гексана. В первом микрофлаконе определяют афлатоксины (B1, B2, G1, G2), зеараленон и охратоксин А методом ВЭЖХ с флуориметрическим детектором, во втором - трихотоценовые микотоксины (дезоксиниваленол, ниваленол, НТ-2, Т-2, диацетооксискирпенол, 13-, 15-ацетилдезоксиниваленол), патулин, охратоксин А и зеараленон методом газожидкостной хроматографии с детектором по захвату электронов, в третьем - патулин и зеараленон методом ВЭЖХ с диодно-матричным детектором. Продолжительность определения микотоксинов составляет 1,5-2 часа при одновременной работе на 3-х хроматографах. Для пробоподготовки требуется 10,1 мл ацетонитрила, 0,9 мл хлороформа и 0,05 мл гексана. Использование разных вариантов хроматографии для определения патулина, зеараленона, охратоксина А приводит к получению более надежных результатов анализа. 1 табл., 1 пр.
Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения 2,4-дихлорфенола в крови. Способ включает отбор пробы крови, экстракцию органическим экстрагентом из указанной пробы 2,4-дихлорфенола и определение его количества методом газохроматографического анализа с использованием градуировочного графика, причем перед экстракцией пробу крови подкисляют раствором щавелевой кислоты до pH 2-3, при экстракции в качестве органического экстрагента используют толуол, далее к полученному экстракту добавляют бромирующий реагент и разбавленную водой серную кислоту в объемном соотношении вода : концентрированная серная кислота как 3:1 соответственно, проводят бромирование экстракта в течение 5 минут, после завершения которого избыток брома нейтрализуют раствором сернистокислого натрия, затем полученный бромированный экстракт центрифугируют для отделения толуола и проводят его ацетилирование трифторуксусным ангидридом в среде пиридина в течение 5 минут, при этом пробу крови, органический экстрагент - толуол, бромирующий реагент, трифторуксусный ангидрид и пиридин берут в следующем объемном соотношении 1:0,5:0,4:0,02:0,02 соответственно. Способ обеспечивает упрощение стадии пробоподготовки при одновременном повышении чувствительности. 4 з.п. ф-лы, 6 табл., 1 пр.
Наверх