Способ изготовления r-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (рнга)


 


Владельцы патента RU 2491553:

Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ Россельхозакадемии) (RU)

Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к способам получения R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА). Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА) включает изготовление формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизацию их сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл, смыв ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование и отделение сенситина центрифугированием. При этом антиген извлекают из штамма В.abortus 16/4 воздействуя на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 минут. Изобретение позволяет получить диагностический препарат высокой эффективности для диагностики бруцеллеза животных. 5 табл., 1 пр.

 

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к способам изготовления диагностических препаратов, применяемых при серологических исследованиях в ветеринарии и может быть использовано в медицине.

Известен способ приготовления антигена для дифференциальной серологической диагностики бруцеллеза у животных, включающий получение бактериальной массы штамма В.abortus R-1096 и инактивацию ее путем гамма-облучения [SU 946039 А, 05.02.79 г.]. Однако антиген, полученный таким способом, используется только для постановки реакции агглютинации и реакции связывания комплемента.

Известен также способ получения эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации при бруцеллезе, включающий приготовление формалинизированных эритроцитов барана, их обработку додецилсульфатом натрия в 1% концентрации при 50-60°С в течение 30 минут, с последующей сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл штамма В.abortus 19, смывом ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацией, экстрагированием и отделением сенситина центрифугированием [RU 2283498 С1, 22.02.2005 г.].

Данный способ получения бруцеллезного антигена для РНГА при бруцеллезе не позволяет получить антиген для выявления в сыворотке крови R-гемагглютининов, т.к. для его изготовления используют штамм бруцелл в S-форме.

Техническим результатом изобретения является получение активного и специфичного R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для выявления в сыворотке крови R-бруцеллезных антител в реакции непрямой гемагглютинации (РНГА).

Технический результат способа изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации достигается приготовлением формалинизированных эритроцитов барана, с последующей их сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы В.abortus 16/4, смывом ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование, отделение сенситина центрифугированием, воздействием на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 минут.

Способ осуществления. Трехсуточную агаровую культуру бруцелл вакцинного штамма В.abortus 16/4 смывают 12% раствором хлорида натрия, фильтруют и подвергают автоклавированию при 1 атм. (120°С) в течение 20-30 минут, доводят концентрацию бруцелл до 40-50 млрд м.к. в 1 мл 12% раствором NaCl. К бактериальной взвеси добавляют 0,5% додецилсульфата натрия, после чего ее нагревают в водяной бане при температуре 68-70°С в течение 60 минут, при периодическом перемешивании. Взвесь декантируют путем центрифугирования при 8-10 тыс об/мин в течение 60 минут, полученный экстракт используют для сенсибилизации формалинизированных эритроцитов барана.

Формалинизацию эритроцитов барана проводят по методу R.Weinbach (1958), при этом концентрация формальдегида в процессе обработки эритроцитов составляет 1,5%, соотношение фиксатора и эритроцитов 0,375:1. Полученную взвесь эритроцитов с формальдегидом переносят в термостат и формалинизируют при температуре 37-38°С в течение 18-20 часов. После окончания формалинизации эритроциты отмывают от избытка формалина 3 раза 10-кратным объемом физиологического раствора на центрифуге при 1000-1500 об/мин в течение 10-15 минут (Каральник Б.Н. Эритроцитарные диагностикумы. - М., Медицина. - 1976. - 164 с.).

В таблице 1 представлены результаты воздействия на бактериальную массу с целью извлечения сенситина разных концентраций додецилсульфата натрия.

Таблица 1
Влияние концентрации додецилсульфата натрия на активность и пецифичность R-бруцеллезного эритроцитарного антигена
Концентрация додецилсульф ата натрия Количество антигена на 1 мл 5,0% взвеси эритроцитов Титр РИГА с R-бруцеллезной сывороткой Негативная сыворотка крупного рогатого скота с 1:50 Контроль с физиологическим раствором
0,1% 0,25 - - -
0,5 - - -
1 - - -
2 - - -
3 - - -
0,25% 0,25 - - -
0,5 - - -
1 1:100++++ - -
2 1:400++++ - -
3 1:800++++ - -
0,5% 0,25 1:1600++++ - -
0,5 1:3200++++ - -
1 1:6400++++ - -
2 1:12800++++ 1:100++++ -
3 1:25600++++ 1:200++++ ++++
1,0% 0,25 1:25600++++ 1:400++++ ++++
0,5 1:25600++++ 1:400++++ ++++
1 1:25600++++ 1:400++++ ++++
2 1:25600++++ 1:400++++ ++++
3 1:25600++++ 1:400++++ ++++

Анализ данных таблицы 1 показывает, что оптимальной концентрацией детергента при изготовлении R-антигена является 0,5% додецилсульфата натрия, при этом специфичный эритроцитарный антиген с заданной активностью не ниже 1:3200 при титрации с R-бруцеллезной сывороткой можно получить при соотношении формалинизированных эритроцитов и сенситина 1:0,5. При применении 0,25% концентрации додецилсульфата в процессе извлечения сенситина диагностикум не обладает достаточной активностью. При использовании додецилсульфата натрия в концентрации 1,0% эритроцитарный диагностикум становится неспецифичным, получены положительные результаты с негативной сывороткой крупного рогатого скота в разведении 1:50 и выше и с физиологическим раствором.

Сенсибилизацию формалинизированных эритроцитов проводят оптимальной дозой сенситина, которую определяют путем титрации его с использованием R-бруцеллезной агглютинирующей сыворотки. При титрации сенситина для сенсибилизации эритроцитов к 1 мл 5,0% взвеси эритроцитов добавляют его в количествах 0,25; 0,5; 1,0; 1,5; 2; 3,0 мл. Результаты испытания специфичности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена представлены в таблице 2.

Таблица 2
Результат испытания специфичности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена
Сыворотки крови, подвергнутые исследованию Количество исследуемых проб Разведение сыворотки крови Результат исследования
невакцинированный против бруцеллеза крупный рогатый скот из благополучных по бруцеллезу хозяйств 505 1:50 отрицательно
здоровые кролики 20 1:10 отрицательно
здоровые морские свинки 26 1:10 отрицательно
кролики, гипериммунизированные вакцинным штаммом B.abortus 104 M(S-форма) 10 1:10 отрицательно
крупный рогатый скот больной бруцеллезом из неблагополучных по бруцеллезу хозяйств 79 1:50 отрицательно

Из представленных в таблице 2 данных следует, что предложенный способ позволяет получить специфичный R-бруцеллезный эритроцитарный антиген, т.к. позволяет получить отрицательные результаты РИГА у здоровых и сенсибилизированным бруцеллезным S-антигеном животных. Результаты испытания активности R-бруцеллезного антигена отражены в таблице 3.

Таблица 3
Результаты испытания активности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена
№ п/п Объект исследования Результаты исследования
РНГА РА с единым антигеном (титр ME) РСК с единым антигеном (разведение сыворотки крови)
1 сыворотки крови кроликов, зараженных В.abortus 54-70 (R-форма) 1:2560 - -
2 1:2560 - -
3 1:2560 - -
4 1:3200 - -
5 1:200 - -
6 1:1600 - -
7 1:1600 - -
8 1:3200 - -
9 1:800 - -
10 1:100 - -
1 сыворотки крови крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82 (R S -форма) 1:200 - -
2 1:400 - -
3 1:1600 50МЕ+++ -
4 1:800 - -
5 1:400 - -
6 1:3200 - 1:10++
7 1:800 - -
8 1:400 - -
9 1:200 - -
10 1:3200 100МЕ++ -

Из таблицы 3 следует, что R-бруцеллезный эритроцитарный антиген обладает активностью, так гемагглютинины в сыворотке крови кроликов, зараженных R-формой бруцелл, содержались в титре от 1:100 до 1:3200, в сыворотке крови крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82 от 1:200 до 1:3200.

Определение чувствительности R-бруцеллезного эритроцитарного антигена проводили при исследовании сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма В.abortus 82, в благополучных и неблагополучных по бруцеллезу хозяйствах (таб. 4, 5).

Таблица 4
Результаты серологических исследований сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма В.abortus 82, в благополучных по бруцеллезу хозяйствах
Срок исследования (сутки) № хозяйства Исследовано проб Реагировало в РНГА с R-антигеном РА+РСК с единым антигеном
абс. % абс. %
30 1 49 34 69,4 3 6,1
2 198 171 86,4 43 21,7
60 1 196 106 54,1 6 3,1
90 1 189 130 68,8 11 5,8
120 1 199 60 30,1 3 1,5
180 1 198 30 15,2 6 3
210 1 191 22 11,5 6 3,1
ИТОГО: 1220 553 45,3 78 6,4

Обследование благополучного по бруцеллезу крупного рогатого скота, иммунизированного вакциной из штамма В.abortus 82, показало, что с помощью R-бруцеллезного эритроцитарного антигена на протяжении 210 суток удалось обнаружить от 11,5 до 86,4% реагирующих животных.

Таблица 5
Результаты серологических исследований сыворотки крови крупного рогатого скота, привитого вакциной из штамма 82, в неблагополучных по бруцеллезу стадах
Срок исследования после вакцинации (сутки) Количество голов Количество животных, реагирующих в:
РА+РСК+РНГА+РИД с S-антигенами в высоких титрах РНГА с R-антигеном
абс. % абс. %
60 539 31 5,8 25 80,6
90 504 16 3,2 15 93,7
120 471 7 1,5 7 100,0
Итого: 1514 54 3,6 47 87,0

Данные таблицы 5 показывают, что R-бруцеллезные антитела в сыворотке крови больных бруцеллезом животных, привитых вакциной из штамма В.abortus 82 (SR-форма), можно диагностировать с помощью R-бруцеллезного эритроцитарного антигена, изготовленного данным способом, в разные сроки после иммунизации животных.

Предлагаемый R-бруцеллезный эритроцитарный антиген обладает специфичностью и чувствительностью, его используют в лаборатории ГНУ ВНИИБТЖ при проведении контроля иммунного ответа у крупного рогатого скота, иммунизированного противобруцеллезными вакцинами, а также при оздоровлении неблагополучных по бруцеллезу хозяйств с целью сохранения от необоснованного убоя животных с поствакцинальными реакциями.

Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РНГА), включающий приготовление формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизацию их сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы бруцелл, смыв ее гипертоническим раствором хлорида натрия, инактивацию, экстрагирование и отделение сенситина центрифугированием, отличающийся тем, что антиген извлекают из R-штамма В.abortus 16/4, воздействуя на бактериальные клетки 0,5% концентрацией додецилсульфата натрия при температуре 68-70°С в течение 60 мин.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и касается иммуноферментной тест-системы для серологической диагностики реовирусной инфекции крупного рогатого скота и контроля напряженности поствакцинального иммунитета.
Изобретение относится к урологии и может быть использовано, в частности, для определения роли микроорганизмов в развитии инфекционных заболеваний урогенитальной сферы.
Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к изготовлению диагностических препаратов, и может быть использовано для серологической диагностики бруцеллеза животных.
Изобретение относится к области вирусологии и касается штамма вируса болезни Ньюкасла. .
Изобретение относится к ветеринарии, в частности к ветеринарной микробиологии, и может быть использовано при производстве сыворотки для диагностики сибирской язвы.
Изобретение относится к области медицины, иммунологии и биотехнологии и касается способа диагностики клещевого риккетсиоза. .

Изобретение относится к способу измерения относительных уровней кариесогенных и аргинолитических бактерий в ротовой полости, например, как части режима стоматологического обслуживания, путем применения композиции, включающей основную аминокислоту в форме свободного соединения или соли.

Изобретение относится к медицине и касается способа скрининга in vitro потенциальных лекарственных средств для лечения туберкулеза путем нарушения биосинтеза арабиногалактана, где указанный способ включает стадию приведения в контакт клеточной культуры Mycobacterium tuberculosis, сверхэкспрессирующей белок, выполняющий превращение декапренил-Р-рибозы в декапренил-Р-арабинозу, и который может кодироваться геном rv3790 или его гомологами, или искусственной открытой рамкой считывания, продукт экспрессии которой идентичен белку Rv3790 или является его гомологом, с потенциальным лекарственным средством, и последующей оценки процента ингибирования, вызываемого потенциальным лекарственным средством, относительно контроля в аналитическом тесте.

Изобретение относится к областям микробиологии и иммунологии. .
Изобретение относится к области лабораторных исследований и может быть использовано для оценки эффективности лечения хронического тонзиллита. Способ оценки эффективности терапии хронического тонзиллита включает микробиологическое исследование содержимого лакун небных миндалин с определением видов микроорганизмов и их концентрации, которое осуществляют на 5-7 сутки от начала лечения и при наличии в составе слизистой микрофлоры микроорганизмов S. группы viridans и/или коагулазонегативных стафилококков - КНС в концентрации >105 КОЕ/тамп., а других условно-патогенных микроорганизмов в концентрации <103 КОЕ/тамп. оценивают лечение как эффективное. Предложенный способ позволяет на ранних сроках оценить эффективность выбранного метода лечения и при неблагоприятном исходе выбрать новую тактику лечения. 1 табл., 2 пр.
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу определения антител к Mycobacterium leprae. Способ включает выявление в сыворотках крови антител к Mycobacterium leprae с помощью иммуноферментного метода. В качестве тест-антигена в иммуноферментном анализе используют водную суспензию из культивируемых в условиях термостата на среде Левенштейна-Йенсена в течение 7 суток при температуре 37°C Mycobacterium lufu, прогретую при 100°C в течение 1,5 часов на водяной бане. Предложенное изобретение позволяет упростить способ определения антител к Mycobacterium leprae. 1 табл.
Настоящее изобретение относится к области медицины, а именно к клинической лабораторной диагностике, и описывает способ конструирования полимерного иммуноглобулинового диагностикума для выявления Legionella pneumophila 1, 3 и 6 серогрупп, включающий получение иммунных кроличьих сывороток с последующей их сенсибилизацией на полимерный носитель в виде микросфер для обнаружения клеток штаммов L. pneumophila в реакции слайд-агглютинации, причем в качестве полимерного носителя антител используют полиакролеин, который на стадии полимеризации обрабатывают сафранином Т, а микросферы выполняют диаметром 1 мкм с содержанием альдегидных групп 0,4 мкмоль/г, затем носитель дополнительно обрабатывают 5% водным раствором танина при 37-40°C в течение трех часов и выдерживают 15 часов при комнатной температуре, отмывают водой посредством центрифугирования до отрицательной реакции в супернатанте на фенолы с FeCl3, после этого проводят сенсибилизацию микросфер легионеллезной кроличьей сывороткой, для этого 25 мг носителя суспендировали в 0,9 мл физиологического раствора и добавляли 0,1 мл разведенной (1:40) сыворотки, полученную суспензию перемешивают в течение 2-х часов при комнатной температуре, затем 15 часов при 4°C отмывают раствором хлористого натрия и суспендируют их в 1 мл того же раствора с 1% желатозой, проводят консервацию полученного диагностикума и разливают его в 5 мл емкости для использования и хранения. Способ обеспечивает обнаружение возбудителя Legionella pneumophila 1, 3 и 6 серогрупп с высокой специфичностью, демонстративностью и низкой себестоимостью. 4 з.п. ф-лы, 3 пр., 3 табл.

Изобретение относится к вирусологии, в частности к области культивирования клеток и тканей для наработки и изучения вирусов. Целью изобретения является получение штамма клеток синовиальной мембраны поросенка (СМП), стабильного по биологическим характеристикам, пригодного для вирусологических и диагностических исследований, обладающего чувствительностью к вирусам-возбудителям болезням свиней, таких как африканская и классическая чума, болезнь Ауески. Штамм клеток СПМ получен методом культивирования растущих тканевых эксплантатов синовиальной мембраны поросенка в питательной среде ДМЕМ с 10% фетальной сыворотки крови телят (FBS). Культура клеток СМП чувствительна к вирусам классической чумы свиней, африканской чумы свиней, болезни Ауески и может быть использована для изучения вирусов, а также в диагностических исследованиях. Штамм СПМ хранится в коллекции клеточных культур Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии под №65 и депонирован в Специализированной Коллекции перевиваемых соматических клеточных культур сельскохозяйственных и промысловых животных РККК(П) (СХЖ РАСХН) при Всероссийском научно-исследовательском институте экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко (ВИЭВ) за №81. 2 пр.
Изобретение относится к вирусологии и биотехнологии, в частности к культивированию клеток с целью изучения вирусов и конструирования новых антигенных препаратов. Целью изобретения является получение штамма диплоидных клеток синовиальной мембраны ягненка Ovis aries (СМЯ), стабильного по биологическим характеристикам, пригодного для научно-исследовательской и диагностической работы, обладающего пермиссивностью к лентивирусам мелких жвачных, пригодный для научно-исследовательской работы и конструирования новых антигенных препаратов. Штамм диплоидных клеток СМЯ получен методом культивирования растущих тканевых эксплантантов в питательной среде ДМЕМ с 10% фетальной сыворотки крови телят (FBS). Штамм клеток СМЯ чувствительна к лентивирусам мелких жвачных (вирусу артрита-энцефалита коз (ВАЭК) и вирусу висна-маеди (ВВМ)). Штамм клеток СМЯ хранится в коллекции клеточных культур Всероссийского научно-исследовательского института ветеринарной вирусологии и микробиологии под №64 и депонирован в Специализированной коллекции перевиваемых соматических клеточных культур сельскохозяйственных и промысловых животных РККК(П) (СХЖ РАСХН) при Всероссийском научно-исследовательском институте экспериментальной ветеринарии им. Я.Р. Коваленко под №82. 1 пр.

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащему к субтипу А, и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Представленный штамм вируса иммунодефицита человека I-го типа ИВ710 депонирован в Государственной коллекции вирусов ФГБУ НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского Минздравсоцразвития России под номером 1188. Штамм обладает стабильной репродуктивной активностью. Инфекционный титр составляет 3,5-4,0 lg ТЦД 50. Штамм является моделью для изучения антивирусной активности химиопрепаратов нового поколения, а также для создания вакцинных препаратов. 1 ил., 4 табл., 3 пр.

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащему к субтипу А, и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Штамм вируса иммунодефицита человека I-го типа ИВ742 депонирован в Государственной коллекции вирусов ФГБУ НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского Минздравсоцразвития России под номером 1187. Штамм обладает стабильной репродуктивной активностью. Инфекционный титр составляет 6 lg ТЦД 50. Штамм является моделью для изучения антивирусной активности химиопрепаратов нового поколения, а также для создания вакцинных препаратов. 1 ил., 3 табл., 3 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой способ определения неспецифической устойчивости патогенных микроорганизмов к антибиотикам и факта присутствия бактериальных биопленок на основании измерения каталитической активности фосфодиэстераз, расщепляющих циклический дигуанозинмонофосфат, с пороговой чувствительностью 50 пг/мл, включающий: 1) выделение фосфодиэстеразы-мишени из лизированных бактериальных клеток; 2) связывание фосфодиэстеразы биотинилированными антителами, специфичными к некаталитическим доменам фосфодиэстеразы; 3) аффинную очистку комплексов, сформированных фосфодиэстеразой-мишенью и биотинилированным антителом при помощи парамагнитных частиц, содержащих нейтравидин или его аналоги, связывающие биотин; 4) взаимодействие комплексов фосфодиэстераза/биотинилированное антитело, иммобилизованных на парамагнитных частицах, с комплексами, содержащими с-di-GMP в форме G-квадруплексов с интеркалированным красителем, сопровождающееся падением интенсивности флуоресценции по мере разрушения комплексов интеркалирующего красителя c-di-GMP; 5) измерение падения флуоресценции при гидролизе c-di-GMP и разрушении комплекса c-di-GMP с интеркалирующим красителем с последующим количественным определением активности фосфодиэстеразы на основании калибровочных кривых, построенных с использованием известных количеств рекомбинантного фермента фосфодиэстеразы, идентичного исследуемой мишени; 6) выявление повышенного уровня фосфодиэстеразной активности, обнаруживаемого тестируемыми антибиотикоустойчивыми бактериальными штаммами, способными к формированию биопленок, по сравнению с уровнем фосфодиэстеразной активности, обнаруживаемым для контрольных штаммов бактерий того же вида, не обладающих антибиотикоустойчивостью и способностью к формированию биопленок. Способ позволяет определить неспецифическую устойчивость патогенных микроорганизмов к антибиотикам и установить факт присутствия бактериальных биопленок. 4 ил., 5 пр.

Изобретение относится к области фармацевтики. Создана иммуногенная композиция, способная индуцировать иммунный ответ в отношении по меньшей мере двух штаммов и/или серотипов Streptococcus uberis, включающая по меньшей мере один выделенный и/или рекомбинантный белок, имеющий определенную аминокислотную последовательность, полученный способом, включающим трансформацию прокариотической, эукариотической клеток или микроорганизма, такого как бактерия, дрожжи или грибы, конструкцией нуклеиновой кислоты, кодирующей указанный протеин, рекомбинантную молекулу нуклеиновой кислоты, рекомбинантный носитель и/или их иммуногенную часть, производное и/или аналог. Способ получения иммуногенной композиции. Способ идентификации белка бактерии Streptococcus uberis, который способен вызывать иммунный ответ против по меньшей мере двух штаммов и/или серотипов Streptococcus uberis, включающий стадии: а) идентификации по меньшей мере части секретируемого белка, поверхностно-ассоциируемого белка и/или белка, который по меньшей мере на 80% идентичен последовательности фактора бактериальной вирулентности, б) выбор по меньшей мере одного белка, идентифицированного на стадии а), который сохраняется по меньшей мере в двух штаммах и/или серотипах Streptococcus uberis, в) определение способности по меньшей мере одного белка, выбранного на стадии б), или его иммуногенной части, производного или аналога, специфически связывать антитело и/или иммунные клетки животного, инфицированного первым штаммом и/или серотипом Streptococcus uberis, и антителом и/или иммунными клетками животного, инфицированного вторым штаммом и/или серотипом Streptococcus uberis. Способ индукции иммунного ответа против по меньшей мере двух штаммов и/или серотипов Streptococcus uberis. А также набор для диагностики мастита у крупного рогатого скота, включающий по меньшей мере один белок, имеющий определенную аминокислотной последовательность, рекомбинантную молекулу нуклеиновой кислоты, рекомбинантный носитель и средства выявления антитела. Использование изобретения позволяет индуцировать иммунный ответ против по меньшей мере двух штаммов и/или серотипов Streptococcus uberis.. 10 н. и 11 з.п.ф-лы, 4 ил., 7 табл., 12 пр.

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащему к субтипу B, и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Представленный штамм вируса иммунодефицита человека I-го типа ИВ735 субтипа В депонирован в Государственной коллекции вирусов ФГБУ НИИ вирусологии им. Д.И. Ивановского Минздравсоцразвития России под номером №1189. Штамм обладает стабильной репродуктивной активностью. Инфекционный титр составляет 6 lg ТЦД 50. Штамм является удобной природной моделью для изучения антивирусной активности химиопрепаратов нового поколения, а также для создания вакцины. 1 ил., 3 табл., 3 пр.
Наверх