Новые гидрогеназы, выделенные из thermococcus spp., гены, кодирующие эти гидрогеназы, и способы продуцирования водорода с использованием микроорганизмов, содержащих указанные гены
Изобретение относится к биотехнологии. Представлены ферменты: гидрогеназа и дегидрогеназа, выделенные из Thermococcus onnurineus NA1 и имеющие последовательности, приведенные в описании, а также кодирующие их гены. Описан вектор, содержащий указанные гены, объединенные в кластер FDH2-MFH2-MNH2. Описана клетка-хозяин, содержащая указанный вектор. Предложены способы получения водорода, включающие следующие стадии: приготовления среды в сосуде для культивирования; подачи формиата в газовую фазу, присутствующую в сосуде для культивирования; культивирования рекомбинантной клетки-хозяина или штамма T. onnurineus в сосуде для культивирования; извлечения водорода из сосуда для культивирования. Изобретение позволяет наиболее эффективно получать водород микробиологическим способом в среде, содержащей формиат в газовой фазе. 8 н. и 5 з.п. ф-лы, 14 ил., 7 табл., 4 пр.
Предпосылки создания изобретения
Область, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение относится к новым гидрогеназам, выделенным из новых штаммов, принадлежащих к роду Thermococcus; к генам, кодирующим указанные гидрогеназы; и к способам получения водорода с использованием штаммов, имеющих указанные гены.
Предшествующий уровень техники
Энергетическая ценность водорода привлекает внимание специалистов как источник энергии нового поколения, который может заменить ископаемое топливо, поскольку его теплотворная способность на единицу массы по меньшей мере в три раза превышает теплотворную способность нефтяного топлива, но при этом указанное топливо не выделяет веществ, которые могут оказывать негативное воздействие на окружающую среду, например, таких как двуокись углерода, NOx и SOx.
Традиционные способы получения водорода включают электролиз воды и термокрекинг или конверсию природного газа или сырой нефти (лигроина) с водяным паром. Однако осуществление этих способов сталкивается с определенными проблемами, заключающимися в том, что обработка ископаемого топлива должна проводиться при высоких температурах и высоком давлении. Кроме того, при осуществлении этих методов образуются смешанные газы, содержащие монооксид углерода, что требует применения сложных технологий по удалению монооксида углерода из смешанных газов.
С другой стороны, биологические способы получения водорода с использованием микроорганизмов имеют преимущества, заключающиеся в том, что они могут быть осуществлены в условиях, не требующих высоких температур и высокого давления, путем подведения отдельной энергии, а также в том, что вырабатываемые при этом газы не содержат монооксида углерода. Такие биологические способы получения водорода могут быть грубо разделены на способы на основе фотосинтезирующих микроорганизмов и способы на основе нефотосинтезирующих микроорганизмов (главным образом, анаэробных микроорганизмов). Примеры вышеупомянутых способов включают способ, описанный в Корейском патенте рег. No. 10-0680624, озаглавленном «Способ получения водорода с использованием фотосинтезирующих бактерий штамма Rhodobacter sphaeroides, обладающего высокой продуктивностью водорода при высокой концентрации соли».
Однако технология культивирования фотосинтезирующих бактерий при высокой концентрации соли с использованием света в качестве источника энергии пока еще недостаточно разработана, и используемые ранее фотосинтезирующие бактерии имеют тот недостаток, что в них ингибирование субстрата затрудняется при высоком парциальном давлении субстрата. Кроме того, указанные бактерии имеют тот недостаток, что их способность продуцировать водород может поддерживаться только под действием света.
Поэтому до сих пор продолжают предприниматься попытки разработать способ получения водорода с использованием микроорганизмов, которые могут продуцировать водород, используя органический углерод, и примеры таких способов описаны в Корейском патенте рег. No. 10-0315663, озаглавленном «Citrobacter sp. Y19 и получение водорода с использованием этого микроорганизма», и в Корейском патенте рег. No. 10-0315662, озаглавленном «Rhodopseduomonas palustris P4 и получение водорода с использованием этого микроорганизма».
Ранее, то есть 5 сентября 2008 года, авторами настоящего изобретения была подана патентная заявка (заявка на патент Кореи рег. No. 10-2008-0087794), относящаяся к новым белкам, выделенным из новых гипертермофильных Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: КСТС 10859ВР), и к генам, кодирующим такие белки, и настоящее изобретение, в частности, относится к тем генам и белкам из числа уже описанных в настоящей заявке, которые связаны с продуцированием водорода. Авторами настоящего изобретения были проведены эксперименты по оценке способности вышеописанного штамма продуцировать водород, и в результате этих экспериментов было обнаружено, что вышеуказанный штамм продуцирует большое количество водорода даже в условиях высоких температур и, кроме того, были обнаружены новые гидрогеназы, которые в высокой степени экспрессируются, в частности, в условиях культивирования с добавлением монооксида углерода (СО) или формиата, что послужило основой для создания настоящего изобретения.
ОПИСАНИЕ СУЩНОСТИ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Целью настоящего изобретения является получение гидрогеназ, выделеных из гипертермофильных микроорганизмов Thermococcus spp., которые могут продуцировать водород даже в условиях высоких температур, и генов, кодирующих указанные гидрогеназы, а также разработка эффективных способов получения водорода с использованием штаммов, имеющих указанные гены.
Для достижения этих целей было разработано настоящее изобретение, которое относится к гидрогеназам, выделенным из штамма Thermococcus spp., способного продуцировать водород в аэробных условиях культивирования, и к генам, кодирующим указанные гидрогеназы. Кроме того, настоящее изобретение относится к способу получения водорода путем культивирования указанного штамма и к способу получения водорода с использованием указанных генов.
В первом аспекте, настоящее изобретение относится к гидрогеназам, продуцируемым новым гипертермофильным штаммом Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: KCTC 10859BP). T. onnurineus NA1 имеет восемь новых кластеров генов гидрогеназы, и аминокислотные последовательности гидрогеназ, принадлежащих этим кластерам, представлены в SEQ ID NO: 1 - SEQ ID NO: 8.
Во втором аспекте, настоящее изобретение относится к генам, кодирующим указанные аминокислотные последовательности. Такими генами, предпочтительно, являются, но не ограничиваются ими, гены, представленные в SEQ ID NO: 12 - SEQ ID NO: 19 (аминокислотные последовательности SEQ ID NO: 1 - SEQ ID NO: 8 соответствуют генам, представленным в SEQ ID NO: 12 - SEQ ID NO: 19, соответственно).
В третьем аспекте, настоящее изобретение относится к способу получения водорода путем культивирования Thermococcus spp. Этот способ включает стадии: 1) приготовления среды в сосуде для культивирования; 2) культивирование Thermococcus spp. в сосуде для культивирования; 3) извлечения водорода из сосуда для культивирования. Микроорганизмом Thermococcus spp., предпочтительно, является Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: КСТС 10859ВР).
Кроме того, указанной средой может быть среда, в которую были добавлены один или несколько компонентов, выбранных из группы, состоящей из монооксида углерода, формиата и крахмала. Культивирование может быть осуществлено при высокой температуре 80°С в анаэробных условиях.
В четвертом аспекте, настоящее изобретение относится к дегидрогеназе, содержащей по меньшей мере одну аминокислотную последовательность, выбранную из группы, состоящей из последовательностей SEQ ID NO: 9 - SEQ ID NO: 11.
В пятом аспекте, настоящее изобретение относится к гену, кодирующему дегидрогеназу. Предпочтительно, указанный ген имеет последовательность оснований, выбранную из последовательностей SEQ ID NO: 20 - SEQ ID NO: 22 (аминокислоты SEQ ID NO: 9-11 соответствуют SEQ ID NO: 20-22, соответственно).
В шестом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в гидрогеназные кластеры CODH-MCH-MNH3 в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительно гены включают, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO: 21 (CODH-дегидрогеназы) и SEQ ID NO: 16 (MCH-гидрогеназы). Кроме того, настоящее изобретение относится к клетке-хозяину, трансформированной рекомбинантным вектором.
Кроме того, настоящее изобретение относится к способу получения водорода с использованием указанного трансформанта, включающему стадии: приготовления среды в сосуде для культивирования; подачи монооксида углерода в газовую фазу, присутствующую в сосуде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
В седьмом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в гидрогеназный кластер FDH2-MFH2-MNH2 в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительно гены включают, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO:22 (FDH2-дегидрогеназы) и SEQ ID NO:18 (MFH2-гидрогеназы). Кроме того, настоящее изобретение относится к клетке-хозяину, трансформированной рекомбинантным вектором.
Кроме того, настоящее изобретение относится к способу получения водорода с использованием указанного трансформанта, включающему стадии: приготовления, содержащей формиат среды в сосуде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
В восьмом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в гидрогеназный кластер FDH1-MFH1-MNH1 в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительно гены включают, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO:20 (FDH1-дегидрогеназы) и SEQ ID NO:13 (MFH1-гидрогеназы). Кроме того, настоящее изобретение относится к клетке-хозяину, трансформированной рекомбинантным вектором.
Кроме того, настоящее изобретение относится к способу получения водорода с использованием указанного трансформанта, включающему стадии: приготовления содержащей крахмал среды в сосуде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
Способы получения водорода, в отличие от применяемых ранее химических способов получения водорода, имеют те преимущества, что они не требуют создания специальных условий, а именно высоких температур и высокого давления, и позволяют получать водород при температуре окружающей среды и при атмосферном давлении, а также не приводят к образованию вредных побочных продуктов. Кроме того, способы согласно изобретению имеют то преимущество, что, в отличие от известных способов получения водорода с использованием микроорганизмов, они являются гораздо более эффективными и позволяют получать водород высокой чистоты даже при высокой температуре.
Поэтому настоящее изобретение является экономически выгодным, поскольку оно позволяет исключить монооксид углерода при высокой температуре в процессе очистки нефти и т.п. и может быть непосредственно использовано для получения водорода без проведения отдельной стадии охлаждения после поглощения монооксида углерода. Кроме того, настоящее изобретение может быть использовано для кондиционирования воздуха.
КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ ГРАФИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА
На фиг.1 представлена диаграмма Венна, иллюстрирующая общие и уникальные части протеома (совокупоности белков) четырех штаммов Thermococcales, T. onnurineus NA1 (NA1), T. kodakaraensis, P. furiosus и P. abyssi. Набор белков для этих штаммов был взят из коллекции RefSeq в NCBI.
На фиг.2A представлена репрезентативная карта восьми кластеров генов гидрогеназы в T. onnurineus NA1. А, В, С и D: мембраносвязанные гидрогеназы и цитоплазматические NiFe-гидрогеназы. S1, S2 и S3: T. onnurineus NA1. Гены были окрашены в соответствии с функциональными категориями COG. TON_0051-0055 представляют собой SEQ ID NO: 1-5; TON_0486-0498 представляют собой SEQ ID NO: 35-47; TON_0533-0544 представляют собой SEQ ID NO: 48-59; TON_1583-1595 представляют собой SEQ ID NO: 100-112; TON_0261-0289 представляют собой SEQ ID NO: 6-34; TON_1016-1031 представляют собой SEQ ID NO: 60-75; а TON_1559-1582 представляют собой SEQ ID NO: 76-99.
На фиг.2B представлена организация генов из трех кластеров генов гидрогеназ (fdh1-mfh1-mnh1, fdh2-mfh2-mnh2 и codh-mch-mnh), имеющих 3-модульный генный кластер в геноме T. onnurineus NA1. Гены, принадлежащие к тем же самым субкластерам, показаны одним и тем же цветом.
На фиг.3 показаны паттерны распределения и консервативности кластеров генов гидрогеназы в 31 архегеноме. В синие скобки (первая скобка, третья скобка, пятая скобка снизу) заключены CDS, обнаруживающие низкое сходство (<25%) с любыми CDS из 31 архегенома. В черных скобках показаны CDS, аналогичные гидрогеназе 4 от P. abyssi. 31 археген представлен ниже:
| №. | Ген | № | Ген |
| 1 | Aeropyrum_pernix | 17 | Pyrococcus_abyssi |
| 2 | Pyrobaculum_aerophilum | 18 | Pyrococcus_furiosus |
| 3 | Sulfolobus_acidocaldarius_DSM_639 | 19 | Pyrococcus_horikoshii |
| 4 | Sulfolobus_solfataricus | 20 | Thermococcus_kodakaraensis_KOD1 |
| 5 | Sulfolobus_tokodaii | 21 | Archaeogiobus_fulgidus |
| 6 | Haloarcula_marismortui_ATCC_43049 | 22 | Methanosarcina_barkeri_fusaro |
| 7 | Natronomonas_pharaonis | 23 | Methanosarcina_mazei |
| 8 | Halobacterium_sp | 24 | Metnanosarcina_acetivorans |
| 9 | Haloquadratum_walsbyi | 25 | Methanospirillum_hungatei_JF-1 |
| 10 | Methanococcoides_burtonii_DSM_6242 | 26 | Methanobacterium_thermoautotrophicum |
| 11 | Picrophilus_torridus_DSM_9790 | 27 | Methanococcus_jannaschii |
| 12 | Thermoplasma_acidophilum | 28 | Methanococcus_maripaludis_S2 |
| 13 | Thermoplasma_volcanium | 29 | Methanosphaera_stadtmanae |
| 14 | Methanosaeta_thermophila_PT | 30 | Methanopyrus_kandleri |
| 15 | Pyrobaculum_islandicum DSM_4184 | 31 | Nanoarchaeum_equitans |
| 16 | Thermofilum_pendens_Hrk_5 |
На фиг.4 и 5 проиллюстрировано сравнение α-субъединиц CODH- и F420-гидрогеназных белков. На фиг.4 представлено филогенетическое дерево CODH, а на фиг.5 представлено филогенетическое дерево α-субъединицы F420-гидрогеназы. Гомологи белков на филогенетическом дереве были взяты из базы данных NCBI.
На фиг.6 показан график роста T. onnurineus NA1 в зависимости от CO. T. onnurineus NA1 культивировали в среде 1, в которую были добавлены CO (дорожка 2; треугольники), сера (3; квадраты) или то и другое (дорожка 4; перевернутые треугольники). Были включены контроли без добавок (дорожка 1; кружки) и культура в среде YPS (C). DAPI-окрашенные клетки были непосредственно подсчитаны на фильтрах под флуоресцентным микроскопом. a: Влияние состава среды при различных концентрациях дрожжевого экстракта (YE). b: Кривые роста Т. onnurineus NA1 в среде 1 с другими добавками. c: Анализ транскрипции гена CODH.
На фиг.7 проиллюстрирован рост микроорганизма T. onnurineus NA1 и продуцирование водорода указанным микроорганизмом в YPS (A) или в CO-содержащей среде. Незаштрихованные кружки: рост; и заштрихованные кружки: продуцирование водорода.
На фиг.8 проиллюстрирован анализ, проводимый с использованием микромассивов (microarray) (A), и ОТ-ПЦР-анализ (B) экспрессии кластеров генов гидрогеназы T. onnurineus NA1 в YPS (A) или в CO-содержащей среде (B). На фиг.8 (A) проиллюстрирован анализ восьми кластеров генов гидрогеназы в T. onnurineus NA1, проводимый с использованием микромассивов. Изменения в иерархической кластеризации мРНК в присутствии CO сравнивали с кластеризацией в культуральной среде YPS, используемой в качестве контроля. Стимуляция и ингибирование показаны красным и зеленым цветом, соответственно. Условия роста показаны в верхней части картины кластеризации. На правой стороне картины кластеризации, ОРС для каждого из codh-mch-mnh3, fdhl-mfhl-mnhl или fdh2-mfh2-mnh2 показаны в виде горизонтальных полос. YE: дрожжевой экстракт. На фиг.8 (B) представлены результаты количественного ОТ-ПЦР-анализа в присутствии CO или YPS, проводимого для каждой из крупных субъединиц гидрогеназ mbh (TON_1593), mbx (TON 0489), frh (TON_1560), sulf I (TON_0534), mch (TON_1023), mfh2 (TON_1569) и mfhl (TON_0276). Ген, кодирующий шаперонин (cha), использовали в качестве контроля для нормализации уровней экспрессии.
На фиг.9 представлено нарушение гена-мишени крупной субъединицы каждой из гидрогеназ mch (TON_1023) и mfh2 (TON_1569). На фиг.9 (A) представлена организация гена каждого из кластеров codh-mch-mnh3 и fdh2-mfh2-mnh2 в T. onnurineus NA1. Pgdh: промоторная область, расположенная слева (выше) от 5'-конца гена глутамат-дегидрогеназы T. kodakaraensis KOD1; и hmgPfu: ген 3-гидрокси-метилглутарил-кофермент A-редуктазы Pyrococcus furiosus. На фиг.8(B) проиллюстрирована идентификация нарушения гена с помощью ПЦР. На левой панели проиллюстрирована ПЦР-амплификация с использованием праймеров для области кассеты сверхэкспрессии (Pgdh-hmgPfu). На правой панели проиллюстрирована ПЦР-амплификация с использованием праймеров для крупной субъединицы каждой из гидрогеназ mch TNA1 и mfh2 TNA1. M: маркер размера (l т.п.н.-лэддер); W: дикого типа; дорожки 1 и 2: мутантные штаммы.
На фиг.10 проиллюстрирован рост мутантных штаммов Δ mch TNA1 и Δ mfh2 TNA1 и продуцирование ими водорода в среде, содержащей YPS или CO. Незаштрихованные кружки: рост; заштрихованные кружки: продуцирование водорода.
На фиг.11 проиллюстрирован рост T. onnurineus NA1 и продуцирование им водорода в среде, содержащей YPS (А) или формиат (В). Незаштрихованные кружки: рост; заштрихованные кружки: продуцирование водорода.
На фиг.12 проиллюстрирован анализ, проводимый с использованием микромассивов (A) и ОТ-ПЦР-анализ (B) экспрессии кластеров гидрогеназы T. onnurineus NA1 в среде, содержащей YPS, (A) или в формиатсодержащей среде (B). На фиг.12 (A) проиллюстрирован анализ 8 кластеров генов гидрогеназы в T. onnurineus NA1, проводимый с использованием микромассивов. Изменения в иерархической кластеризации мРНК в присутствии формиата сравнивали с кластеризацией в культуральной среде YPS, используемой в качестве контроля. Стимуляция и ингибирование показаны красным и зеленым цветом, соответственно. Условия роста показаны в верхней части картины кластеризации. На правой стороне картины кластеризации, ОРС для каждого из кластеров mbh, codh-mch-mnhЗ, fdh1-mfh1-mnh1 и fdh2-mfh2-mnh2 показаны в виде горизонтальных полос. YE: дрожжевой экстракт. На фиг.12 (B) представлены результаты количественного ОТ-ПЦР-анализа в присутствии YPS, проводимого для каждой из крупных субъединиц гидрогеназ mbh (TON_1593), mbx (TON 0489), frh (TON_1560), sulf I (TON_0534), mch (TON_1023), mfh2 (TON_1569) и mfh1 (TON_0276). Ген T. onnurineus NA1, кодирующий шаперонин (cha), использовали в качестве контроля для нормализации уровней экспрессии.
На фиг.13 представлено нарушение гена-мишени крупной субъединицы каждой из гидрогеназ mfh1 (TON_0276) и mfh2 (TON_1569). На фиг.13 (A) представлена организация гена каждого из кластеров fdh1-mfh1-mnh1 и fdh2-mfh2-mnh2 в T. onnurineus NA1. Pgdh: промоторная область, расположенная слева от 5'-конца гена глутамат-дегидрогеназы T. kodakaraensis KOD1; и hmgPfu: ген 3-гидрокси-метилглутарил-кофермент A-редуктазы Pyrococcus furiosus. На фиг.13 (B) проиллюстрирована идентификация нарушения гена с помощью ПЦР. На левой панели проиллюстрирована ПЦР-амплификация с использованием праймеров для области кассеты сверхэкспрессии (Pgdh-hmgPfu). На правой панели проиллюстрирована ПЦР-амплификация с использованием праймеров для крупной субъединицы каждой из гидрогеназ mfh1 TNA1 и mfh2 TNA1. M: маркер размера (1 т.п.н.-лэддер); W: дикого типа; дорожки 1 и 2: мутантные штаммы.
На фиг.14 проиллюстрирован рост мутантных штаммов Δ mch TNA1, Δ mfh1 TNA1 или Δ mfh2 TNA1 и продуцирование ими водорода в среде, содержащей YPS или формиат. Незаштрихованные кружки: рост; и заштрихованные кружки: продуцирование водорода.
ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ
В первом аспекте, настоящее изобретение относится к гидрогеназам, продуцируемым новым гипертермофильным штаммом Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: KCTC 10859BP), который продуцирует водород в анаэробных условиях. Этот штамм был выделен из гидротермальной глубоководной дренажной зоны в регионе островов Манус в Тихом океане, а именно в бассейне восточных островов Манус. Выделенный штамм был депонирован в Корейской коллекции типовых культур (KCTC) при Корейском научно-исследовательском институте биологии и биотехнологии (KRIBB) 7 октября 2005, а 20 октября 2005 ему был присвоен рег. №: KCTC 10859BP. Свойства этого штамма и методы его культивирования описаны в заявке на патент Кореи No. 10-2007-0127255, на основе которой было разработано настоящее изобретение.
T. onnurineus NA1 имеет восемь новых кластеров генов гидрогеназы. Гидрогеназы являются ключевыми ферментами, которые имеют отношение к метаболизму молекулярного водорода (H2), и действуют как катализаторы в следующей обратимой реакции: 2H+ + 2e- ⇔ H2. Предпочтительно, гидрогеназы, принадлежащие к вышеописанным кластерам, продуцируют белки и их функциональные эквиваленты, содержащие одну или несколько аминокислотных последовательностей, выбранных из группы, состоящей из последовательностей SEQ ID NO: 1 - SEQ ID NO: 8. Используемый в настоящем документе термин «функциональный эквивалент» включает варианты аминокислотной последовательности, имеющие аминокислотные замены в некоторых или во всех белках, или аминокислотные добавления или делеции в некоторых из этих белков. Аминокислотными заменами, предпочтительно, являются консервативные замены. Примерами консервативных замен являются замены следующих природных аминокислот, таких как алифатические аминокислоты (Gly, Ala и Pro), гидрофобные аминокислоты (Ile, Leu и Val), ароматические аминокислоты (Phe, Tyr и Trp), кислотные аминокислоты (Asp и Glu), основные аминокислоты (His, Lys, Arg, Gln и Asn) и серусодержащие аминокислоты (Cys и Met). Делеции аминокислот, предпочтительно, присутствуют в области, которая не оказывает непосредственного влияния на активность гидрогеназ.
Во втором аспекте, настоящее изобретение относится к генам, кодирующим вышеописанные аминокислотные последовательности. Такими генами, предпочтительно, являются, но не ограничиваются ими, гены, представленные в SEQ ID NO: 12 - SEQ ID NO: 19 (аминокислотные последовательности SEQ ID NO: 1 - SEQ ID NO: 8 соответствуют генам, представленным в SEQ ID NO: 12 - SEQ ID NO: 19, соответственно).
В третьем аспекте, настоящее изобретение относится к способу получения водорода путем культивирования Thermococcus spp. Этот способ включает стадии: 1) приготовления среды в сосуде для культивирования; 2) культивирования Thermococcus spp. в сосуде для культивирования; и 3) извлечения водорода из сосуда для культивирования. Микроорганизмом Thermococcus spp., предпочтительно, является Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: КСТС 10859ВР).
Кроме того, указанной средой может быть среда, в которую были добавлены один или несколько компонентов, выбранных из группы, состоящей из монооксида углерода, формиата и крахмала. Культивирование может быть также осуществлено при высокой температуре 80°С в анаэробных условиях.
В четвертом аспекте, настоящее изобретение относится к дегидрогеназе, содержащей по меньшей мере одну аминокислотную последовательность, выбранную из группы, состоящей из последовательностей, представленных в SEQ ID NO: 9 - SEQ ID NO: 11. Дегидрогеназы Fdh1 (SEQ ID NO: 20), Fdh2 (SEQ ID NO: 22) и CODH(SEQ ID NO: 21), соответственно, могут образовывать кластеры с гидрогеназами MFH1, MFH2 и MCH.
В пятом аспекте, настоящее изобретение относится к гену, кодирующему указанную дегидрогеназу. Предпочтительно, указанный ген выбран из генов, представленных в SEQ ID NO: 20 - SEQ ID NO: 22 (аминокислотные последовательности SEQ ID NO: 9-11 соответствуют SEQ ID NO: 20-22, соответственно).
В шестом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в гидрогеназные кластеры CODH-MCH-MNH3 в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительными генами являются, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO:21 (CODH-дегидрогеназы) и SEQ ID NO:16 (MCH-гидрогеназы). Используемый в настоящем документе термин «вектор» означает молекулу нуклеиновой кислоты, которая может иметь другую присоединенную к ней молекулу нуклеиновой кислоты.
В качестве экспрессионного вектора, который может синтезировать белок, кодируемый рекомбинантным геном, присутствующим в указанном векторе, могут быть использованы плазмида, космида или фаг. Предпочтительным вектором является вектор, который может самореплицироваться и экспрессировать нуклеиновую кислоту, связанную с этим вектором.
Кроме того, настоящее изобретение относится к клеткам-хозяевам, трансформированным рекомбинантным вектором. Рекомбинантный вектор может быть использован для трансформации клеток, таких как прокариотические клетки, клетки грибов, клетки растений и клетки животных, в целях получения трансформированных клеток, которые могут продуцировать водород с высокой эффективностью. Используемый в настоящем документе термин «трансформация» означает абсорбцию чужеродной ДНК или РНК в клетки для изменения их генотипа. Для получения такой клетки-хозяина может быть использован общеизвестный метод трансформации каждой из указанных клеток.
Настоящее изобретение также относится к способу получения водорода с использованием указанных трансформантов, включающему стадии: приготовления среды в сосуде для культивирования; подачи монооксида углерода в газовую фазу, присутствующую в среде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
В седьмом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в гидрогеназные кластеры FDH2-MFH2-MNH2 в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительными генами являются, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO:22 (FDH2-дегидрогеназы) и SEQ ID NO:18 (MFH2-гидрогеназы). Кроме того, настоящее изобретение относится к клетке-хозяину, трансформированному рекомбинантным вектором.
Подробное описание «вектора», «трансформации» и «клеток-хозяев» приводится выше в шестом аспекте.
Настоящее изобретение также относится к способу получения водорода с использованием указанного трансформанта, включающему стадии: приготовления формиатсодержащей среды в сосуде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
В восьмом аспекте, настоящее изобретение относится к рекомбинантному вектору, содержащему гены, организованные в FDH1-MFH1-MNH1-гидрогеназные кластеры в T. onnurineus NA1, где все указанные гены являются функционально связанными. Предпочтительными генами являются, но не ограничиваются ими, гены SEQ ID NO:20 (FDH1-дегидрогеназы) и SEQ ID NO:13 (MFH1-гидрогеназы). Кроме того, настоящее изобретение относится к клетке-хозяину, трансформированному рекомбинантным вектором.
Подробное описание «вектора», «трансформации» и «клеток-хозяев» приводится выше в шестом аспекте.
Настоящее изобретение также относится к способу получения водорода с использованием указанного трансформанта, включающему стадии: приготовления крахмалсодержащей среды в сосуде для культивирования; культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и извлечения водорода из сосуда для культивирования.
Ниже приводится более подробное описание настоящего изобретения со ссылкой на примеры. В этой связи следует отметить, что эти примеры приводятся лишь в иллюстративных целях и не ограничивают объема настоящего изобретения.
Пример 1: Анализ генов гидрогеназы штамма Thermococcus onnurineus NA1
(1) Тест-методы
1) Условия культивирования
Для осуществления рутинного культивирования клетки выращивали в анаэробных условиях при 80°С в среде, содержащей дрожжевой экстракт-пептон-серу (YPS) (Holden et al. 2001). Физиологические тесты осуществляли с использованием модифицированной среды 1 (Sokolova, T. G., C. Jeanthon, N. A Kostrikina, N. A. Chernyh, A. V. Lebedinsky, E. Stackebrandt and E. A. Bonch-Osmolovskaya. 2004. «The first evidence of anaerobic CO oxidation coupled with H2 production by a hyperthermophilic archaeon isolated from a deep-sea hydrothermal vent». Extremophiles 8:317-323), в которую было добавлено 1 мл смеси микроэлементов, 1 мл раствора витамина (Balch, W. E., G. E. Fox, L. J. Magrum, C. R. Woese, and R. S. Wolfe. 1979. Methanogens: reevaluation of a unique biological group. Microbio 1. Rev. 43:260-296), NaCl (30 г/л), и дрожжевой экстракт (0,5 г/л). pH доводили до 8,0 с использованием NaOH. Среду, полученную в анаэробных условиях, распределяли по 25-миллилитровым бутылям с сывороткой, и газовую фазу (15 мл) заменяли на N2/CO2 (80:20; 1 бар) или 100% CO. Если клетки культивировали в присутствии формиата или крахмала, то в среду добавляли 10 г/л формиата натрия (Sigma) или 5 г/л растворимого крахмала (Sigma), а затем автоклавировали. Все культуры для проведения физиологических тестов выращивали при 80°С в течение 2 дней.
2) Секвенирование генов
Последовательность генома T. onnurineus NA1 определяли путем секвенирования всего генома методом «дробового ружья» (shotgun) и пиросеквенирования. Для капиллярного секвенирования конструировали библиотеку со вставками размером 2 т.п.н.-3 т.п.н. (11028 клонов), библиотеку со вставкой размером 40 т.п.н. (1870 клонов) и библиотеку со вставкой размером 35 т.п.н. (288 клонов), и эти библиотеки секвенировали на секвенаторе ABI 3730XL (Applied Biosystems, CA). Для осуществления пиросеквенирования, 581990 фрагментов ДНК секвенировали на секвенаторе GS-20 (454 Life Sciences). Контиги, полученные на обоих секвенаторах, объединяли, и «закрытие» пропусков секвенирования осуществляли методом «прогулки по клонам» и методом ПЦР-секвенирования. Гены ОРС и РНК определяли с использованием комбинации программ Glimmer 3.0 (Универистет в шт. Мэриленд), GSFinder и RBSFinder, с последующей подгонкой ОРС вручную. После определения всех ОРС проводили дополнительный анализ последовательности белка с помощью поисковой программы BLASTP на последовательности белка в неизбыточных базах данных Национального центра биотехнологической информации (NCBI), в энциклопедии генов и геномов Киото (KEGG) и COG (базе данных кластеров ортологичных групп белков) (Tatusova, R. L., D. A. Natale, I. V. Garkavtsev, T. A. Tatusova, U. T. Shankavaram, B. S. Rao, B. Kiryutin, M. Y. Galperin, N. D. Fedorova and E. V. Koonin. 2001. The COG database: new developments in phylogenetic classification of proteins from complete genomes. Nucleic Acids Res. 29:22-28). Для определения тРНК использовали программу tRNAScan-SE (Lowe, Т. М., and S. R. Eddy. 1997. tRNAscan-SE: a program for improved detection of transfer RNA genes in genomic sequence. Nucleic Acids Res. 25:955-964).
3) Анализ белков
Клетки Т. onnurineus NA1 суспендировали в 100 мМ трис-HCl-буфере (pH 6,8), содержащем 4% додецилсульфат натрия (ДСН) и 4 мМ EDTA, и кипятили в течение 10 минут, после чего центрифугировали при 22000g в течение 20 минут. Клеточный лизат отделяли с помощью электрофореза в 12% полиакриламидном геле с додецилсульфатом натрия (ДСН-ПААГ), и получали 30 фракций исходя из размера их молекул. Затем эти фракции гидролизовали в геле с использованием трипсина (Promega, USA) (Kim, Y. H., K. Cho, S. H. Yun, J. Y. Kim, K. H. Kwon, J. S. Yoo, and S. I. Kim. 2006. Analysis of aromatic catabolic pathways in Pseudomonas putida KT 2440 by combined proteomic approach: 2-DE/MS and cleavable ICAT analysis. Proteomics 6:1301-1318), и трипсиновые гидролизаты растворяли в 0,5% растворе трифторуксусной кислоты для проведения масс-спектрометрического анализа (Thermo Finnigan LTQ IT). Идентичность пептидов определяли с помощью программы Sequest (Thermo Finnigan, San Jose, CA).
4) Выделение всей РНК и ОТ-ПЦР-анализ
50-миллилитровую культуру Т. onnurineus NA1 выращивали до средней экспоненциальной фазы роста в модифицированной среде 1, в которую были добавлены различные концентрации дрожжевого экстракта в газовой фазе, состоящей из N2/CO2 (80:20, 1 бар) или 100% CO. Клетки собирали путем центрифугирования при 6000g в течение 30 минут. Осадок ресуспендировали в 50 мкл 50 мМ трис-HCl-буфера (pH 7,5), в который было добавлено 500 мкл реагента тризола (Invitrogen, Carlsbad, CA). Клетки подвергали лизису путем замораживания и оттаивания, а затем образцы экстрагировали 200 мкл хлороформа. Водную фазу, содержащую всю РНК, дополнительно обрабатывали путем преципитации этанолом, а затем ресуспендировали в дистиллированной воде. Концентрацию и целостность РНК определяли путем измерения оптической плотности на 260 и 280 нм, а также с помощью анализа в 0,8% агарозном геле. Обратную транскрипцию и ПЦР-амплификацию осуществляли с использованием обратной транскриптазы Superscript™ II (Invitrogen) в соответствии с инструкциями производителей. Для амплификации CODH (окись углерода-дегидрогеназы) и Hsp60 (шаперонина), используемого в качестве контроля, применяли два набора нижеследующих праймеров:
Ген CODH (прямой праймер: 5'-GGACCATGTAGAATCGAYCCGTTY-3' (SEQ ID NO: 23) и обратный праймер 5'-TTCRTTTCCGGTACAGCA-3' (SEQ ID NO: 24)); и ген Hsp60 (прямой праймер: 5'-ATGGCACAGCTTAGTGGACAG-3' (SEQ ID NO: 25) и обратный праймер, 5'-CAAGGATTTCCTGGGCTTTCTC-3' (SEQ ID NO: 26)).
5) Компьютерный анализ
Поиск гомологии аминокислотных последовательностей осуществляли с использованием программы BLAST в не-избыточной базе данных белков NCBI. Поиск мотива белков, имеющих сигнал L1 (C[GS][ILV]C[AGNS]xxH, где x означает любую аминокислоту) в гидрогеназах группы 4, осуществляли с использованием программы ProteinFinder (Ensoltek, Korea) в не-избыточной базе данных белков NCBI. Выравнивание множества последовательностей белков осуществляли с использованием программы ClustalW (Thompson, J.D., Higgins, D.G. and Gibson, T.J. (1994) CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res. 22, 4673-4680), и конструировали филогенетическое дерево с использованием компьютерной программы для молекулярно-эволюционного генетического анализа (Molecular Evolutionary Genetics Analysis)(Mega 4.1) (Tamura, K., Dudley, J., Nei, M. and Kumar, S. (2007) MEGA4: Molecular Evolutionary Genetics Analysis (MEGA) software version 4.0. Mol. Biol. Evol. 24, 1596-1599). Филогенетическое дерево для последовательностей рРНК 16S строили на основе последовательностей, подвергнутых предварительному выравниванию и взятых из базы данных для рибосом на сайте (http://rdp.cme.msu.edu/index.jsp).
6) Создание сигнатур logo-данных
Logo-представления данных использовали для визуализации объема информации, ассоциированного с каждым положением данного мотива, который является общим для родственных последовательностей. В графическом представлении, общая высота для каждого положения коррелирует с консервативностью в данном положении (выражено в битах), где относительные размеры символов в данном положении указывают на их относительную частоту. Logo-анализы осуществляли в Центре структурной геномики Беркли (http://weblogo.berkeley.edu/).
(2) Результат анализов
1) Общие признаки генов T. onnurineus NA1
Для получения какого-либо представления относительно факторов, которые вносят свой вклад в явно успешную конкуренцию Thermococcus spp. с другими микроорганизмами, обитающими в гидротермальной дренажной зоне, геномную последовательность T. onnurineus NA1 определяли комбинированным методом рандомизированного секвенирования всего генома, проводимым методом «дробовика» и пиросеквенирования. В результате было обнаружено, что T. onnurineus NA1 имеет одну кольцевую хромосому (1847607 п.н.), не содержащую каких-либо внехромосомных элементов, и было идентифицировано всего 1976 кодирующих последовательностей ДНК (CDS) (Таблица 1 и фиг.1). Из них 1104 CDS (55,8%) было выявлено путем поиска гомологии и доменов, но функция остальных 872 CDS не могла быть предсказана исходя из их первичной структуры. При поиске сходства белков в масштабе всего генома 82,7% белков T. onnurineus NA1 обнаруживали сходство с другими членами Thermococcales.
| Таблица 1 | |||||
| Общие признаки генома T. onnurineus NA1 и штаммов T. kodakaraensis KOD1 и Pyrococcus | |||||
| NA1 | KOD1 | P.abyssi | P.horikoshii | P.furiosus | |
| Размер генома (п.н.) | 1847607 | 2088737 | 1765118 | 1738505 | 1908256 |
| Белоккодирующие области | 90,1% | 92,1% | 91,1% | 91,2% | 92,5% |
| Содержание GC | 51,0% | 52,0% | 44,7% | 41,9% | 40,8% |
| CDSa | 1976 | 2306 | 1784 | 2064 | 2065 |
| тРНК | 46 | 46 | 46 | 46 | 46 |
| рРНК | 5S(x2), 7S,16S,32S | 5S(x2), 7S,16S,32S |
5S(x2), 7S,16S,32S | 5S(x2), 7S,16S,32S |
5S(x2), 7S,16S,32S |
| a: Наборы белков для этих штаммов были получены из коллекции RefSeq в NCBI. |
2) Кластеры гидрогеназ
В геноме T. onnurineus NA1 было обнаружено очень высокое содержание гидрогеназ и родственных белков (5,5%), что указывает на повышенную консервативность или рециклизацию восстановительного потенциала в отношении оксидоредуктаз, включая CO-дегидрогеназу и формиатдегидрогеназу.
Гидрогеназы могут быть разделены на следующие три основные группы, исходя из их каталитического металлического центра: [NiFe]-гидрогеназы, [FeFe]-гидрогеназы и [Fe]-гидрогеназы. На основании уникального функционального центра, который является консервативным для каждой из групп гидрогеназ, был сделан вывод, что все гидрогеназы в T. onnurineus NA1, за исключением одной гидрогеназы, принадлежат к [NiFe]-гидрогеназам. В соответствии с системой классификации гидрогеназ Vignais et al., [NiFe]-гидрогеназы в T. onnurineus NA1 принадлежат к группе 3 (одна F420-восстанавливающая гидрогеназа и две NADP-восстанавливающие гидрогеназы) или к группе 4 (четыре мембраносвязанные гидрогеназы) (Silva, P.J., van den Ban, E.C., Wassink, H., Haaker, H., de Castro, В., Robb, F.T. and Hagen, W.R. (2000) Enzymes of hydrogen metabolism in Pyrococcus furiosus. Eur. J. Biochem. 267, 6541-6551). Гидрогеназы, принадлежащие к группе 4, называются преобразующими энергию гидрогеназами (Ech), и такие гидрогеназы широко распространены в бактериях и архебактериях.
Для выявления молекулярной основы метаболизма гидрогеназ генные кластеры гидрогеназ подвергали сравнительному анализу. Указанные гидрогеназы подвергали филогенетическому анализу и на основе полученных данных гидрогеназы группы 4 могут быть подразделены на две подгруппы, 4a и 4b, и во всех последовательностях подгруппы 4b можно обнаружить общие паттерны пар мотивов.
Как показано на фиг.2, в геноме T. onnurineus NA1 были обнаружены три дополнительных кластера гидрогеназ (FDH1-MFH1-MNH1 (Hyg4-I, S1:TON_0279-0274, MFH1: SBQ ID NO: 2), CODH-MCH-MNH3 (Hyg4-II, S2:TON_1021-1024, MCH: SEQ ID NO: 5) и FDH2-MFH2-MNH2 (Hyg4-III, S3:TON_1565-1571, MFH2: SEQ ID NO: 7)) и Frh (TON_1559-1562, SEQ ID NO: 6) вместе с двумя мембраносвязанными гидрогеназами (Mbh (TON_1590-1595, SEQ ID NO: 8) и Mbx (TON_0489-0486, SEQ ID NO: 3)), и двумя цитоплазматическими NiFe-гидрогеназами (Sulf-I (TON_0533-0544, SEQ ID NO: 4) и Sulf-II (TON_0051-0055, SEQ ID NO:1), которые, как сообщалось, присутствуют в Pyrococcus spp. и T. kodakaraensis KOD1. Анализ генного кластера гидрогеназ с CDS от 31 архегенома явно показал, что FDH1-MFH1-MNH1 (Hyg4-I), CODH-MCH-MNH3 (Hyg4-II) и FDH2-MFH2-MNH2 (Hyg4-III) являются уникальными по своей первичной последовательности, что указывает на низкое сходство с 4 компонентами гидрогеназ от P. abyssi и R. rubrum (фиг.3). Аналогично дополнительным гидрогеназам кластер FDH2-MFH2-MNH2 (Hyg4-III) (TON_1559-1582, SEQ ID NO: 76-99) включает субъединицы α/β/γ F420-гидрогеназы (TON_1559-1561, SEQ ID NO: 76 - 78) в геноме. Субъединицы F420-гидрогеназы имеют уникальные первичные последовательности, что указывает на сходство с кофермент F420-восстанавливающей гидрогеназой (YP_001097176) от Methanococcus maripaludis (33%) и кофермент F420-восстанавливающей гидрогеназой (NP_987940) от M. maripaludis S2 (33%) (фиг.3 и фиг.5). При этом в литературе отсуствуют какие-либо сообщения о гомологах F420-гидрогеназы Thermococcales.
3) Конструирование 3-модульных генных кластеров
Было обнаружено, что каждая из трех гидрогеназ Ech (MFH1, MFH2 и MCH), принадлежащих к группе 4 [NiFe]-гидрогеназ, представляет собой часть крупных 17- или 18-генных кластеров (fdh1-mfh1-mnh1, fdh2-mfh2-mnh2 и codh-mch-mnh3), состоящих из ОРС (открытых рамок считывания) TON_266-TON_282, TON_1563-TON_1580 и TON_1016-TON_1031 (фиг.2B). ОРС в кластерах могут быть подразделены на три подкластера. Первая часть кодирует оксидоредуктазу, такую как формиатдегидрогеназа (Fdh1 (SEQ ID NO: 9) или Fdh2 (SEQ ID NO: 11)), или монооксид углерода-дегидрогеназа (Codh (SEQ ID NO: 10)). Вторая часть кодирует мультимерные мембраносвязанные гидрогеназы (MFH1, MFH2 или MCH), имеющие 5-7 субъединиц. Последняя часть кодирует катионные/протонные антипорты, такие как Na+/H+-антипорт. При этом в литературе отсутствуют какие-либо сообщения о 3-модульных генных кластерах.
Пример 2: Анализ состава газа
(1) Метод проведения анализа
Состав газа водорода определяли на газовом хроматографе HP 5890 серии II (Hewlett Packard), снабженном колонкой с молекулярными ситами HP-PLOT (Agilent) и детектором TCD. В качестве газа-носителя использовали аргон. Для количественной оценки состава газа водорода использовали газовый калибровочный эталон (Supleco), содержащий 1% (масс./масс.) каждого из компонентов (CO, CO2, H2, CH4 и О2) в азоте.
(2) Получение водорода с использованием различных веществ
Для того чтобы определить, могут ли различные гидрогеназы в T. onnurineus NA1 осуществлять эффективное продуцирование водорода в различных средах, скорость продуцирования водорода анализировали с использованием различных источников энергии (таблица 2). В результате было обнаружено, что штамм NA1 может продуцировать водород с использованием крахмала, CO и формиата даже в отсутствие серы. В частности, CO и формиат являются наиболее подходящими источниками энергии для эффективного продуцирования водорода.
| Таблица 2 | |
| Сравнение продуцирования водорода штаммом T. onnurineus NA1 в различных условиях |
|
| Среда | Продуцирование водорода (ммоль/л) |
| М + СО | 30,7 |
| М + формиат | 49,7 |
| М + крахмал | 15,6 |
| M: модифицированная среда 1 |
Уровень продуцирования водорода штаммом NA1 в периодической культуре был аналогичен уровню продуцирования, наблюдаемому в непрерывной культуре T. kodakaraensis KOD1 и Pyrococcus furiosus. Гипертермофильные архебактерии, несмотря на их низкую волюметрическую продуктивность, имеют ряд преимуществ, заключающихся в том, что они обнаруживают определенную скорость продуцирования водорода, превышающую скорость продуцирования водорода при сбраживании мезофильных бактерий, или скорость продуцирования водорода в фотобактериях, и продуцируют водород высокой чистоты. Описанная здесь высокая скорость продуцирования водорода может быть еще больше увеличена путем оптимизации условий культивирования, способов обработки и технологии получения продуктов метаболизма.
Пример 3: СО-зависимое продуцирование H 2 штаммом Thermococcus onnurineus NA1: идентификация СО-чувствительных гидрогеназ
(1) Генный кластер CODH и рост в карбоксидотропных условиях
Как описано выше, было обнаружено, что T. onnurineus NA1 имеет уникальный генный кластер (CODH-MCH-MNH3), который состоит из предполагаемого регулятора транскрипции (TON_1016), вспомогательного белка CODH (CooC, TON_1019), каталитической субъединицы CODH (CooS, TON_1018) и белка-переносчика электронов (CooF, TON_1017), а также гидрогеназы (mch, TON_1021-1024, SEQ ID NO: 5) (фиг.2B). CooS (TON_1018), фермент, играющий центральную роль в метаболизме монооксида углерода (CO) в микробах, обнаруживает значительное сходство с ферментами CODH, происходящими от СО-окисляющих метаногенных архебактерий, такими как CODH (AAM06652) от Methanosarcina acetivorans C2A (60%) и CODH (AAM29817) от Methanosarcina mazei Gol (59%) (фиг.3 и 4). Предполагается, что монофункциональный CODH (Bonam, D., L. Lehman, G. P. Roberts and P. W. Ludden., 1989, Regulation of carbon monoxide dehydrogenase and hydrogenase in Rhodospirillum rubrum: effects of CO and oxygen on synthesis and activity. J. Bacteriol. 171:3102-3107; и Wu, M. Q. Ren, A. S. Durkin, S. C. Daugherty, L. M Brinkac, R. J. Dodson, R. Madupu, S. A. Sullivan, J. F. Kolonay, W. С Nelson, L. J. Tallon, К. М. Jones, L. E. Ulrich, J. M. Gonzalez, I. B. Zhulin, F. T. Robb, and J. A. Eisen. 2005, Life in hot carbon monoxide: the complete genome sequence of Carboxydothermus hydrogenoformans Z-2901. PLoS Genet. 1:e65) не обладает активностью бифункциональной CODH/ацетил-кофермент А-синтетазы, заключающейся в синтезе/расщеплении ацетил-кофермента А. Как описано в публикации Fox et al. (Fox, J. D., R. L. Kerby, G. P. Roberts, and P. W. Ludden, 1996, Characterization of the CO-induced, СО-tolerant hydrogenase from Rhodospirillum rubrum and the gene encoding the large subunit of the enzyme. J. Bacteriol. 178:1515-1524), монофункциональный комплекс CODH/гидрогеназы, происходящий от Rhodospirillum rubrum, участвует в СО-индуцируемом поглощении протонов, что приводит к сохранению энергии в форме протонного градиента, создаваемого по всей клеточной мембране. В этой связи, чтобы убедиться в том, что CODH-кластер может играть аналогичную роль в сохранении энергии посредством окисления CO, авторами настоящего изобретения был проведен тест на утилизацию СО штаммом T. onnurineus NA1. В результате было обнаружено, что этот штамм действительно способен лучше расти в среде 1 в атмосфере СО в отсутствие и в присутствии серы, чем в базовой среде (фиг.6a и b), даже в том случае, когда выход культивирования был меньше, чем в среде с YPS (фиг.6a). Рост в атмосфере CO ассоциируется с транскрипцией гена CooS, что указывает на то, что это ген может быть индуцирован в присутствии CO (фиг.6c). Заслуживает внимания тот факт, что добавление серы приводит к снижению уровня транскрипции гена CooS. Полученные результаты подтвердили гипотезу, что штамм T. onnurineus NA1 генерирует энергию из CO. Ниже описаны конкретные методы тестирования и результаты, подтверждающие данную гипотезу.
(2) Методы тестирования
1) Условия культивирования
T. onnurineus NA1 культивировали в анаэробных условиях при 80°С в среде, содержащей дрожжевой экстракт-пептон-серу (YPS). Для оценки параметров роста мутантного штамма в качестве базовой среды использовали модифицированную среду 1, в которую было добавлено 30,0 г/л NaCl (Uffen, R. L., 1976, Anaerobic growth of a Rhodopseudomonas species in the dark with carbon monoxide as sole carbon and energy substrate. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 73:3298-3302). Среду автоклавировали, а затем в модифицированную среду 1 в аэробной камере добавляли 1,0 мл/л раствора витамина (Balch, W. E., G. E. Fox, L. J. Magrum, C. R. Woese, and R. S. Wolfe. 1979. Methanogens: reevaluation of a unique biological group. Microbiol. Rev. 43:260-296) и 0,5 г/л дрожжевого экстракта. pH доводили до 8,0 путем добавления 1 н. NaOH в базовую среду. 30 мл полученной среды распределяли по 150-миллилитровым бутылям с сывороткой, и газовую фазу (120 мл) заменяли на 100% CO (105 Па). Все культуры для проведения физиологических тестов выращивали при 80°С в анаэробных условиях в течение 24 часов, и эти тесты проводили в дубликате.
2) Экстракция РНК и конструирование микромассивов
Культуры центрифугировали при 4°C при 3500g в течение 10 минут, и всю РНК экстрагировали из культур с использованием реагента Тризола в соответствии с протоколом, рекомендованным производителями (Invitrogen, Carlsbad, California). Все РНК-образцы количественно и качественно анализировали на спектрофотометре NanoDrop (ND-1000, Thermo Scientific) и с помощью электрофореза. Микромассив, используемый в этом эксперименте, представляет собой микромассив Roche NimbleGen. Вкратце, было сконструировано всего 31994 уникальных 60-мерных олигонуклеотидов, и эти олигонуклеотиды были синтезированы in situ химическим методом снятия защиты под действием света. Каждый уникальный олигонуклеотид был повторен на массиве дважды (всего ~72000 элементов).
3) Синтез кДНК и условия гибридизации
Тест на микромассивах осуществляли в соответствии с протоколом, рекомендованным производителем. Каждый образец полноразмерной РНК (5 мкг) метили Cy5-dCTP (Amersharm, Piscataway, NJ) путем проведения реакции обратной транскрипции с использованием обратной транскриптазы Superscript II (Invitrogen, Carlsbad, California). Затем смесь меченой кДНК концентрировали путем преципитации этанолом. 30 мкл концентрированных Cy5-меченых кДНК суспендировали в растворе для гибридизации (GenoCheck, Korea). Меченые кДНК локализовали на микромассиве, а затем помещали в камеру для гибридизации MAUI Mixer X4 (BioMicro Systems, Salt Lake 32 City, UT). Гибридизацию на предметных стеклах осуществляли с использованием 12-секционных систем MAUI (BioMicro Systems, Salt Lake City, UT) при 42°C в течение 12 часов. Гибридизованные предметные стекла промывали при комнатной температуре в 2 X SSC, 0,1% ДСН в течение 2 минут, 1X SSC в течение 3 минут, а затем 0,2 X SSC в течение 2 минут. Предметные стекла центрифугировали при 1000g в течение 20 секунд, а затем сушили.
4) Сканирование предметных стекол, нормализация и анализ данных
Массивы сканировали с использованием сканера GenePix 4000B (Molecular Devices Corporation, Union City, CA), и данные получали с помощью компьютерной программы NimbleScan 2.4. Нормализацию массивов осуществляли методом уточнения среднего и нормализации квантилей (Amaratunga, D., and J. Cabrera. 2001. Statistical analysis of viral microchip data. J. Am. Stat. Assoc. 96:1161-1170). Нормализованные величины экспрессии для отдельных зондов использовали в целях получения величин экспрессии для данной ОРС методом RMA (надежным методом вычисления средних с использованием множества массивов), ранее описанным Irizarry et al. (Karl, D. M. 1995. The microbiology of deep-sea hydrothermal vents. CRC Press, Boca Raton, FL). И наконец, n-кратные изменения отношений (R) определяли с использованием RMA-обработанных величин экспрессии (RMA-запрос), полученных для конкретного гена в образце. Анализ данных осуществляли с использованием программы GeneSpring GX 7.3.1 (Agilent Technologies, CA). Программы-фильтры для кратных изменений требуют, чтобы стимулируемые гены составляли по меньшей мере 200% от контролей, а ингибируемые гены составляли менее чем 50% от контролей. Данные были объединены в группы генов с аналогичным поведением в экспериментах, проводимых с использованием GeneSpring GX 7.3.1 (Agilent technologies, CA). Для разделения генов с аналогичными паттернами был использован алгоритм, разработанный на основе евклидова расстояния и усреднения связей.
5) Количественная ОТ-ПЦР
Геноспецифические праймеры были сконструированы на основе геномной последовательности T.onnurineus NA1 (Genbank рег. №: CP000855). Праймерные последовательности представлены ниже в таблице 3.
кДНК синтезировали из 350 нг всей РНК с использованием обратной транскриптазы, SuperScrip II (Invitrogen, Carlsbad, California), в соответствии с протоколом, рекомендованным производителем. ПЦР-реакции осуществляли с использованием ДНК-полимеразы rTaq (Takara) в термоячейке T1 (Biometra). Реакции проводили в 50 мкл смеси, содержащей кДНК для реакции первой цепи, 10 пмоль праймеров, 250 мкМ dNTP и буфер от производителя. Кроме того, реакции ПЦР-амплификации проводили в следующих условиях: денатурация в течение 2 минут при 94°С, а затем 25 циклов денатурации (30 секунд при 94°С), отжига (30 секунд при 56°С) и удлинения (1 минута при 72°С). ПЦР-продукты анализировали с помощью электрофореза в 0,8% агарозном геле. Уровень экспрессии измеряли с использованием GelPro32.EXE v4.6 (Media Cybernetics, Inc.). Шаперонинкодирующий ген, обозначенный “cha”, использовали в качестве контроля для нормализации уровней экспрессии.
| Таблица 3 | ||
| Олигонуклеотиды, используемые в данном примере | ||
| Название гена | Смысловой праймер (5'→ 3') | Антисмысловой праймер (5'→ 3') |
| Праймеры, используемые в ОТ-ПЦР | ||
| mbh | Cacgacataggctacgacacgg (SEQ ID NO: 27) | Ctggcttaactcctaggtcagg (SEQ ED NO: 28) |
| mbx | Gcgattcggtatgataccggac (SEQ ID NO: 29) | Ccatccttcgccgaagagctcg (SEQ ID NO: 30) |
| frh | Gtaagctcgacgagtacgacgtg (SEQ ID NO: 31) | Gcaccacaacctatgcagaggcc (SEQ ID NO: 32) |
| sulfI | Gcagtacgaggaagtcgagggg (SEQ ID NO: 33) | Gagggcctcgtcgataaggtcg (SEQ ID NO: 34) |
| mch | Ctaccggacgattggccagaagg (SEQ ID NO: 35) | Ccttatatactgtgctctctccg (SEQ ID NO: 36) |
| mfhl | Gcgaccggtacggcaaccttcg (SEQ ID NO: 37) | Cttgtcagtcatgacgtagtgg (SEQ ID NO: 38) |
| mfh2 | Gacccgaggttcacctcgatagc (SEQ ID NO: 39) | Gcagacctggtcgtaggttagcc (SEQ ID NO: 40) |
| Праймеры, используемые для нарушения генов | ||
| Flk-mch | cgttgtctttgcccttggggcagggatatatc (SEQ ID NO: 41) |
ggcaattgcttggactgccgaaaagccaatggc (SEQ ID NO: 42) |
| Flk-mfh1 | gaagaaatcgcagagggcgcctatgactatcag (SEQ ID NO: 43) |
gctcctcgcttactcaagcgttggacaaatgg (SEQ ID NO: 44) |
| Flk-mfh2 | ggactgctcttcctgtcgacgggctcaatattc (SEQ ID NO: 45) |
ggacgcacttaaagtcggcgtagccctttgcc (SEQ ID NO: 46) |
| Ivs-mch | aatttaccaccccaccactcccaaaatccaac (SEQ ID NO: 47) |
aatggggaggctgaaactactgggcaaggc (SEQ ID NO: 48) |
| Ivs-mfh1 | tggcccaggcgatttccttcaccgacagg (SEQ ID NO: 49) |
aattcaccaccccaccagcgctattatcagg (SEQ ID NO: 50) |
| Ivs-mfh2 | gagcaccacctcaccatcccagggaagctatc (SEQ ID NO: 51) |
gatggccgtgacgctgaagtaccccttcgtga (SEQ ID NO: 52) |
| Праймеры, используемые для идентификации нарушения генов | ||
| Pgdh-hmgpfu | gaacggtagttttcgacaaaagacg (SEQ ID NO: 53) |
gctcaccagccaaaaccgcaccagc (SEQ ID NO: 54) |
| mchTNA1 | gcaatgtaccacatattcaactgcgatac (SEQ ID NO: 55) |
ccgataccgagtttgaatggaggaatctc (SEQ ID NO: 56) |
| Mfh1TNA1 | tcaggccacccccttgcccttctgt (SEQ ID NO: 57) |
atggagtgcagcgtgtgtgcgggtg (SEQ ID NO: 58) |
| mfh2TNA1 | atgtctgaagttatcaagtttaacg (SEQ ID NO: 59) |
tgaggcctttatggagagcttgttg (SEQ ID NO: 60) |
6) Нарушение гена-мишени
Для анализа функции гидрогеназ in vivo T. onnurineus, мутанты инсерционной инактивации крупной субъединицы гидрогеназы mch или mfh2 конструировали с использованием системы нарушения генов для гипертермофильных архебактерий T. kodakaraensis KOD1 (Sapra, R., K. Bagramyan, and M. W. W. Adams, 2003, A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550). В частности, ДНК-фрагменты, содержащие фланкирующую область крупных субъединиц ((TON_023 и TON_1569) каждой из гидрогеназ mch и mfh2, амплифицировали из геномной ДНК T. onnurineus NA1 с использованием наборов праймеров (таблица 3) для Flk-mch или Flk-mfh2. Каждый из амплифицированных фрагментов лигировали в pUC118, гидролизованный ферментом HincII. Затем матрицу (рекомбинантную плазмиду Flk-mch_pUC118 или Flk-mfh2_pUC118) подвергали обратной ПЦР с использованием наборов праймеров (Ivs-mch или Ivs-mfh2) (таблица 3), а затем лигировали в кластер Pgdh-hmgPfu (Sapra, R., K. Bagramyan, and M. W. W. Adams. 2003. A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550). Лигированный продукт переносили в клетки Escherichia coli DH5α. Рекомбинантные плазмиды (mch::Pgdh-hmgPfu и mfh2::Pgdh-hmgPfu) получали с использованием мининабора для плазмид (Qiagen, Hilden, Germany). И наконец, плазмиды переносили в T. onnurineus NA1 с применением слегка модифицированного метода Sato et al. (Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2003. Targeted gene disruption by homologous recombination in the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis KOD1. J. Bacteriol. 185:210-220., Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2005. Improved and versatile transformation system allowing multiple genetic manipulations of the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis. Appl. Environ. Microbiol. 71:3889-3899). Трансформанты скринировали в среде ASW-YT-S в присутствии 10 мкМ симвастатина (Matsumi, R., K. Manabe, T. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2007. Disruption of a sugar transporter gene cluster in a hyperthermophilic archaeon using a host-marker system based on antibiotic resistance. J. Bacteriol. 189:2683-2691), и группы-кандидаты, в которых, как предполагается, были делетированы гены-мишени, подтверждали путем оценки присутствия кластера Pgdh-hmg Pfu в области-мишени.
7) Влияние кинетики на рост микроорганизмов и продуцирование водорода
Рост микроорганизмов наблюдали визуально. Образцы разводили в стерильной воде, содержащей морскую соль (30,0 г/л), формалин (2,5%) и 4',6'-диамидино-2-фенилиндол (0,01%) (Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2005. Improved and versatile transformation system allowing multiple genetic manipulations of the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis. Appl. Environ. Microbiol. 71:3889-3899). Разведенные образцы фильтровали через черный поликарбонатный фильтр (размер пор: 0,2 мкм; Whatman), а затем анализировали на оптическом фазово-контрастном микроскопе (Zeiss Axioplan). Состав газа водорода определяли на газовом хроматографе HP 5890 серии II (Hewlett Packard), снабженном колонкой с молекулярными ситами HP-PLOT (Agilent) и детектором TCD. В качестве газа-носителя использовали аргон. Температура печи составляла 40°C. 10 мкл газового образца для анализа брали с помощью газонепроницаемого шприца через бутилкаучуковую пробку. Состав детектируемого газа водорода определяли путем сравнения площади пика с площадью пика калибровочной кривой, построенной с помощью регрессионного анализа с использованием стандартного газа, содержащего 40% водорода в азоте.
(3) Результаты теста
1) In silico анализ гидрогеназы T. onnurineus NA1
Предварительный геномный анализ Т. onnurineus NA1 указывал на присутствие восьми кластеров генов гидрогеназы (Porter, K. G. and Y. S. Feig. 1980. The use of DAPI for identifying and counting microflora. Limnol. Oceanogr. 25:943-948), которые включают пять мембраносвязанных [NiFe]-гидрогеназ (Mbh, TON_1583-1595; Mbx, TON_0486-0498; Mfh1, TON_0273-0278; Mfh2, TON_1566-1573; и Mch, TON_1021-1024), и три цитоплазматические [NiFe]-гидрогеназы (Fru, TON_1559-1562; Sulf I, TON_0533-0544; и Sulf II, TON_0051-0055). В результате проведения сравнительного анализа кластеров генов гидрогеназы и штаммов Thermococcales, секвенирование генома которых было завершено, было обнаружено, что кластеры, гомологичные кластерам Mfh1, Mfh2 и Mch, встречаются очень редко, и такие кластеры были обнаружены в штаммах Thermococcales, у которых были недавно определены последовательности геномов, а именно, такие как T. barophilus MP (гомологи Mfh1 и Mch), Thermococcus sp. AM4 (гомологи Mfh1 и Mch) (неопределенная последовательность, GenBank рег. № ABXN00000000), и T. gammatolerans (гомологи Mfh1 и Mfh2) (GenBank рег. № CP001398). Секвенирование кластера fdh1-mfh1-mnh1 (обозначенного “Hyg4-I” в работах Lee, H. S., S. G. Kang, S. S. Bae, J. K. Lim, Y. Cho, Y. J. Kim, J. H. Jeon, S.-S. Cha, K. K. Kwon, H.-T. Kim, C.-J. Park, H.-W. Lee, S. I. Kim, J. Chun, R. R. Colwell, S.-J. Kim, and J.-H. Lee. 2008. The complete genome sequence of Thermococcus onnurineus NA1 reveals a mixed heterotrophic and carboxydotrophic metabolism. J. Bacteriol. 190:7491-7499), кластера fdh2-mfh2-mnh2 (обозначенного “Hyg4-III”) и кластера codh-mch-mchЗ (обозначенного “Hyg4-II”) в T. onnurineus NA1 показало, что каждый из этих кластеров включал оксидоредуктазы, такие как формиатдегидрогеназа (FDH) и CO-дегидрогеназа (Codh). В частности, карбоксидотропный метаболизм, наблюдаемый при культивировании в СО-содержащей среде, позволяет предположить, что кластер Codh-Mch-Mnh3 играет функциональную роль в вырабатывании энергии в реакциях продуцирования водорода путем окисления СО.
2) Экспрессия генов гидрогеназы в условиях СО-индуцированного роста
Был проведен тест для того, чтобы определить, может ли T. onnurineus NA1 продуцировать водород при культивировании в СО-содержащей среде. Как показано на фиг.7, в среде YPS, продуцирование водорода не может быть детектировано, однако в среде 1, в которую был добавлен CO, общее количество газа водорода и число клеток увеличивалось по мере увеличения времени культивирования.
Для того чтобы определить, какие из гидрогеназ участвуют в продуцировании водорода в процессе карбоксидотропного роста, были проанализированы уровни экспрессии генов гидрогеназы в CO-содержащей среде для культивирования или в комплексной среде (YPS). Как показано в таблице 4 и 5 и на фиг.8A, уровни экспрессии некоторых ОРС (10 из 16 ОРС) в кластере codh-mch-mnh3 в СО-содержащей среде для культивирования были по меньше мере в два раза выше уровней экспрессии в среде с YPS. Кроме того, уровни экспрессии нескольких OPC (TON_1563 и TON_1569-1571) в кластере fdh2-mfh2-mnh2 были также выше в СО-содержащей среде для культивирования, включающей 1 г дрожжевого экстракта. Уровни экспрессии ОРС в кластере codh-mch-mnh3 варьировались в зависимости от количества дрожжевого экстракта, что дает основание предположить, что дрожжевой экстракт ассоциируется с ингибированием или активацией катаболизма при СО-индуцированном метаболизме (таблицы 4 и 5). С другой стороны, уровень экспрессии других кластеров генов гидрогеназы значительно не изменялся, а экспрессия генов (20 генов из 29 ОРС) в кластере fdh1-mfh1-mnh1 снижалась. Данные количественного ОТ-ПЦР-анализа для крупной субъединицы каждой из гидрогеназ также совпадают с данными, полученными с использованием микромассивов. Экспрессия крупных субъединиц (TON_1023 и T0N_1569) гидрогеназ mch и mfh2 возрастала по меньшей мере в два раза (фиг.8B), а экспрессия крупной субъединицы (TON_0276) гидрогеназы mfh1 ингибировалась; а что касается экспрессии других крупных субъединиц (mbh, mbx, frh и sulf1), то она поддерживалась на постоянном уровне в обоих состояниях. Полученные результаты позволяют предположить, что кластеры codh-mch-mnh3 или fdh2-mfh2-mnh2 могут быть индуцированы CO и могут участвовать в процессах продуцирования водорода, ассоциированных с карбоксидотропным метаболизмом.
| Таблица 4 | ||||
| Уровни экспрессии ОРС каждого из кластеров генов гидрогеназы в СО-содержащей среде для культивирования по сравнению с уровнями экспрессии в среде YPS | ||||
| Генный кластер и ОРС | Аннотация | М+СО+0,5 г YE/YPS | M+CO+1 г YE/YPS | M+CO+3 г YE/YPS |
| Кластер гидрогеназы sulfII | ||||
| TON_0051 | Гипотетический белок | 1,273306 | 3,1454 | 2,569546 |
| TON_0052 | Альфа-субъединица гидрогеназы | 1,085002 | 0,652365 | 0,550585 |
| TON_0053 | Дельта-цепь сульфгидрогеназы II | 0,896129 | 1,898148 | 1,337585 |
| TON_0054 | Гамма-субъединица гидрогеназы | 0,606088 | 0,517724 | 0,630549 |
| TON_0055 | Бета-цепь сульфгидрогеназы II | 0,84527 | 1,44889 | 1,452254 |
| Кластер fdh1-mfh1-mnh1 | ||||
| TON_0261 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypA | 0,658409 | 0,78969 | 0,746964 |
| TON_0262 | АТФаза, участвующая в распределении семейства ParA/MinD, Mrp-гомолога в хромосоме | 0,640277 | 0,776389 | 0,619674 |
| TON_0263 | Протеаза, участвующая в созревании гидрогеназы HycI | 0,775719 | 1,531337 | 1,090123 |
| TON_0264 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, участвующий в биосинтезе белка А | 0,538102 | 0,957335 | 0,826924 |
| TON_0265 | Нуклеотидилтрансфераза, предполагаемая | 0,421398 | 0,554433 | 0,503557 |
| TON_0266 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,38336 | 0,338185 | 0,333459 |
| TON_0267 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,296945 | 1,215972 | 0,838087 |
| TON_0268 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,648077 | 0,424896 | 0,386235 |
| TON_0269 | Предполагаемая субъединица MnhB антипорта мультисубъединицы Na+/H+ | 0,591411 | 0,571996 | 0,600235 |
| TON_0270 | Гипотетический белок | 0,827927 | 0,85379 | 0,581906 |
| TON_0271 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,410417 | 0,328062 | 0,51901 |
| TON_0272 | Предполагаемая субъединица MnhF антипорта Na+/H+ | 0,194663 | 0,411647 | 0,331549 |
| TON_0273 | Гипотетический белок | 0,269222 | 0,652722 | 0,482705 |
| TON_0274 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 0,385799 | 0,627629 | 0,614487 |
| TON_0275 | Субъединица 6 формиат-водород-лиазы | 0,313283 | 0,621333 | 0,511819 |
| TON_0276 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 0,275138 | 0,724228 | 0,692331 |
| TON_0277 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 0,460646 | 0,357836 | 0,387126 |
| TON_0278 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,720779 | 0,623875 | 0,510273 |
| TON_0279 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,80929 | 0,515429 | 0,54289 |
| TON_0280 | Оксидоредуктаза, содержащая железо-серу | 0,3913 | 0,690322 | 0,647104 |
| TON_0281 | Формиат-дегидрогеназа fdhA, альфа-субъединица | 0,584576 | 0,446401 | 0,44946 |
| TON_0282 | Предполагаемый регулятор транскрипции | 1,340444 | 1,195043 | 0,883294 |
| TON_0283 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypC | 1,007318 | 1,853137 | 2,021914 |
| TON_0284 | Гипотетический белок hypD, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы длиной 367 аминокислот | 1,036497 | 1,385466 | 1,182663 |
| TON_0285 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypD | 0,904687 | 1,066448 | 0,758981 |
| TON_0286 | Белок, участвующий в созревании гидрогеназы HypF | 0,685606 | 0,778307 | 0,719973 |
| TON_0287 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы HypE | 0,851301 | 1,399569 | 1,257059 |
| TON_0288 | Гипотетический белок | 1,004008 | 1,964442 | 2,27641 |
| TON_0289 | Цистеин-десульфураза | 0,666768 | 1,534991 | 1,148004 |
| Кластер гидрогеназы mbx | ||||
| TON_0486 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,821271 | 0,718277 | 0,504388 |
| TON_0487 | NADH-дегидрогеназа I, nuoD, субъединица D | 0,606823 | 0,730138 | 0,517528 |
| TON_0488 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,703506 | 0,618352 | 0,49939 |
| TON_0489 | NADH-дегидрогеназа I, nuoB, субъединица В | 0,797159 | 0,618863 | 0,547462 |
| TON_0490 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,372425 | 0,469467 | 0,278163 |
| TON_0491 | Гипотетический белок длиной 617 аминокислот | 0,459201 | 0,532164 | 0,388201 |
| TON_0492 | Субъединица MbxH | 0,862715 | 0,484349 | 0,423606 |
| TON_0493 | Предполагаемый антипорт Na+/H+ мультисубъединицы | 0,70216 | 1,591408 | 1,138149 |
| TON_0494 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,765286 | 0,716126 | 0,711304 |
| TON_0495 | Субъединица MbxD | 0,658086 | 0,817339 | 0,749402 |
| TON_0496 | Субъединица MbxC | 0,609819 | 1,200655 | 0,995067 |
| TON_0497 | Субъединица MbxB | 0,860304 | 0,889029 | 0,810902 |
| TON_0498 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая мультисубъединица | 0,675578 | 0,564247 | 0,483617 |
| Кластер гидрогеназы sulfI | ||||
| TON_0533 | Ответственная за созревание гидрогеназо-специфическая эндопептидаза | 0,977803 | 0,516234 | 0,73084 |
| TON_0534 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, альфа-субъединица | 1,283309 | 1,334781 | 1,071667 |
| TON_0535 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, дельта-субъединица | 0,652099 | 1,080516 | 0,800955 |
| TON_0536 | Гидрогеназа (гамма-субъединица) | 1,100959 | 1,192121 | 0,759086 |
| TON_0537 | Бета-субъединица сульфгидрогеназы | 1,025726 | 1,458113 | 1,160718 |
| TON_0538 | Предполагаемый переносчик формиата | 0,989789 | 1,113613 | 0,960108 |
| TON_0539 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 1,158997 | 1,791123 | 1,314525 |
| TON_0540 | Белок оксидоредуктазы, содержащий железо-серу | 0,987581 | 1,525167 | 0,82485 |
| TON_0541 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 1,112648 | 1,320761 | 0,855465 |
| TON_0542 | Оксидоредуктаза, родственная бета-цепи глутамат-синтазы | 0,842213 | 1,602828 | 0,936949 |
| TON_0543 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,9185 | 1,257283 | 1,019564 |
| TON_0544 | Алкоголь-дегидрогеназа | 0,87473 | 0,419323 | 0,605934 |
| Кластер codh-mch-mnh3 | ||||
| TON_1016 | Предполагаемый регулятор транскрипции семейства ModE | 1,187798 | 0,634394 | 0,731218 |
| TON_1017 | Домен, связывающийся с 4Fe-4S-ферроредоксином, содержащим железо-серу | 1,713085 | 4,46107 | 3,621394 |
| TON_1018 | Монооксид углерода-дегидрогеназа, каталитическая субъединица | 1,474238 | 2,204944 | 1,785437 |
| TON_1019 | Предполагаемый АТФ-связывающий белок | 0,824732 | 2,016924 | 0,974466 |
| TON_1020 | Гипотетический белок | 3,375546 | 9,366047 | 5,425704 |
| TON_1021 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 1,112538 | 1,711122 | 1,250867 |
| TON_1022 | NADH-дегидрогеназа дыхательной цепи, субъединица 1 | 0,877363 | 1,428883 | 0,57715 |
| TON_1023 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,927395 | 6,118015 | 4,270288 |
| TON_1024 | NADH-дегидрогеназа (убихинон), 20 кДа-субъединица | 1,816315 | 3,578841 | 2,009973 |
| TON_1025 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 2,443938 | 3,389037 | 1,333503 |
| TON_1026 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 1,337719 | 0,605839 | 0,623499 |
| TON_1027 | Гипотетический белок | 0,991048 | 1,43866 | 0,778446 |
| TON_1028 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 1,019583 | 1,203407 | 0,836452 |
| TON_1029 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 2,648286 | 2,171138 | 1,123898 |
| TON_1030 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 3,779798 | 4,956998 | 1,592196 |
| TON_1031 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,030507 | 2,788588 | 1,982091 |
| Кластер frh(F 420 -восстанавливающая гидрогеназа)гидрогеназы | ||||
| TON_1559 | Альфа-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 0,695408 | 0,64447 | 0,726535 |
| TON_1560 | Гамма-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 0,56769 | 0,715513 | 0,635236 |
| TON_1561 | Нитрит/сульфит-редуктаза, связывающаяся с 4Fe-4S-ферредоксином, содержащим железо-серу | 0,824149 | 0,834127 | 0,807754 |
| TON_1562 | Формиат-дегидрогеназа, субъединица FdhD | 0,908701 | 1,54082 | 1,468288 |
| Кластер fdh2-mfh2-mnh2 | ||||
| TON_1563 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 1,008259 | 3,037865 | 3,330042 |
| TON_1564 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 1,178705 | 1,221574 | 1,445098 |
| TON_1565 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,811937 | 1,787894 | 2,088693 |
| TON_1566 | NADH-дегидрогеназа (хинон) | 1,011779 | 0,736029 | 0,787627 |
| TON_1567 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 1,091992 | 1,057076 | 1,184573 |
| TON_1568 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 1,471267 | 1,365925 | 1,382301 |
| TON_1569 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,204795 | 2,281342 | 1,780033 |
| TON_1570 | Формиат-водород-лиаза, субъединица 6 | 1,257649 | 2,427962 | 1,99559 |
| TON_1571 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 1,030626 | 2,15871 | 1,806722 |
| TON_1572 | Гипотетический белок | 0,844948 | 0,504955 | 0,692272 |
| TON_1573 | Предполагаемый переносчик формиата | 1,451628 | 1,459657 | 1,158131 |
| TON_1574 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 1,53015 | 1,602287 | 1,244315 |
| TON_1575 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,752784 | 0,646406 | 0,578467 |
| TON_1576 | Гипотетический белок | 1,168966 | 0,564328 | 0,60819 |
| TON_1577 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,726511 | 0,655031 | 0,556386 |
| TON_1578 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,989286 | 1,061599 | 0,900044 |
| TON_1579 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,903028 | 0,812346 | 0,816319 |
| TON_1580 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,015786 | 0,756283 | 0,529199 |
| TON_1581 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, ответственный за биосинтез белка А | 0,61468 | 1,708744 | 1,243367 |
| TON_1582 | Гипотетический белок | 0,753301 | 0,998059 | 0,952751 |
| Кластер гидрогеназы mbh | ||||
| TON_1583 | Субъединица MbhB | 1,038442 | 0,519366 | 0,533773 |
| TON_1584 | Субъединица MbhC | 0,947559 | 0,514932 | 0,5099 |
| TON_1585 | Субъединица MbhD | 0,774604 | 1,015909 | 0,670497 |
| TON_1586 | Субъединица MbhE | 1,101069 | 0,811262 | 0,659266 |
| TON_1587 | Субъединица MbhF | 1,129566 | 0,811366 | 0,872572 |
| TON_1588 | Субъединица MbhG | 1,027148 | 0,563686 | 0,510924 |
| TON_1589 | Субъединица MbhH | 1,362042 | 0,948034 | 0,71984 |
| TON_1590 | Субъединица MbhI | 1,334732 | 1,227655 | 0,904813 |
| TON_1591 | NiFe-гидрогеназа, небольшая субъединица | 1,627315 | 1,158127 | 0,856929 |
| TON_1592 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 1 | 0,940698 | 1,573248 | 0,956935 |
| TON_1593 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 2 | 1,609483 | 2,286207 | 1,354849 |
| TON_1594 | Субъединица MbhM | 0,982323 | 0,742211 | 0,458623 |
| TON_1595 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 1,589684 | 1,280298 | 0,491906 |
| М - среда 1; СО - монооксид углерода; YE - дрожжевой экстракт |
| Таблица 5 | |||||
| Иерархическая кластеризация 112 ОРС, включая кластеры гидрогеназы от T. onnurineus NA1 |
|||||
| Генный кластер | ОРС | Аннотация | М+СО+0,5 г YE/YPS | М+СО+1 г YE/YPS | М+СО+3 г YE/YPS |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0272 | Предполагаемая субъединица MnhF антипорта Na+/H+ | 0,194663 | 0,411647 | 0,331549 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0267 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,296945 | 1,215972 | 0,838087 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0273 | Гипотетический белок | 0,269222 | 0,652722 | 0,482705 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0275 | Субъединица 6 формиат-водород-лиазы | 0,313283 | 0,621333 | 0,511819 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0276 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 0,275138 | 0,724228 | 0,692331 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0274 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 0,385799 | 0,627629 | 0,614487 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0280 | Оксидоредуктаза, содержащая железо-серу | 0,3913 | 0,690322 | 0,647104 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0271 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,410417 | 0,328062 | 0,51901 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0266 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,38336 | 0,338185 | 0,333459 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0277 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 0,460646 | 0,357836 | 0,387126 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0268 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,648077 | 0,424896 | 0,386235 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0281 | Формиат-дегидрогеназа fdhA, альфа-субъединица | 0,584576 | 0,446401 | 0,44946 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0265 | Нуклеотидилтрансфераза, предполагаемая | 0,421398 | 0,554433 | 0,503557 |
| mbx | TON_0491 | Гипотетический белок длиной 617 аминокислот | 0,459201 | 0,532164 | 0,388201 |
| mbx | TON_0490 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,372425 | 0,469467 | 0,278163 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0261 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypA | 0,658409 | 0,78969 | 0,746964 |
| mbx | TON_0495 | Субъединица MbxD | 0,658086 | 0,817339 | 0,749402 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0286 | Белок, участвующий в созревании гидрогеназы HypF | 0,685606 | 0,778307 | 0,719973 |
| mbx | TON_0494 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,765286 | 0,716126 | 0,711304 |
| frh | TON_1559 | Альфа-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 0,695408 | 0,64447 | 0,726535 |
| mbx | TON_0487 | NADH-дегидрогеназа I, nuoD, субъединица D | 0,606823 | 0,730138 | 0,517528 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0262 | АТФаза, участвующая в распределении хромосом, Mrp-гомолог | 0,640277 | 0,776389 | 0,619674 |
| frh | TON_1560 | Гамма-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 0,56769 | 0,715513 | 0,635236 |
| SufII | TON_0054 | Гамма-субъединица гидрогеназы | 0,606088 | 0,517724 | 0,630549 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0269 | Предполагаемая субъединица MnhB антипорта мультисубъединицы Na+/H+ | 0,591411 | 0,571996 | 0,600235 |
| mbx | TON_0486 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,821271 | 0,718277 | 0,504388 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0278 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,720779 | 0,623875 | 0,510273 |
| mbx | TON_0488 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,703506 | 0,618352 | 0,49939 |
| mbx | TON_0498 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая мультисубъединица | 0,675578 | 0,564247 | 0,483617 |
| mbx | TON_0489 | NADH-дегидрогеназа I, nuoB, субъединица В | 0,797159 | 0,618863 | 0,547462 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1575 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,752784 | 0,646406 | 0,578467 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1577 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,726511 | 0,655031 | 0,556386 |
| sulfI | TON_0544 | Алкоголь-дегидрогеназа | 0,87473 | 0,419323 | 0,605934 |
| sulfI | TON_0533 | Ответственная за созревание гидрогеназо-специфическая эндопептидаза | 0,977803 | 0,516234 | 0,73084 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1572 | Гипотетический белок | 0,844948 | 0,504955 | 0,692272 |
| mbx | TON_0492 | Субъединица MbxH | 0,862715 | 0,484349 | 0,423606 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0279 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,80929 | 0,515429 | 0,54289 |
| mbh | TON_1584 | Субъединица MbhC | 0,947559 | 0,514932 | 0,5099 |
| mbh | TON_1583 | Субъединица MbhB | 1,038442 | 0,519366 | 0,533773 |
| mbh | TON_1588 | Субъединица MbhG | 1,027148 | 0,563686 | 0,510924 |
| sufII | TON_0052 | Альфа-субъединица гидрогеназы | 1,085002 | 0,652365 | 0,550585 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1580 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,015786 | 0,756283 | 0,529199 |
| mbh | TON_1594 | Субъединица MbhM | 0,982323 | 0,742211 | 0,458623 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1016 | Предполагаемый регулятор транскрипции семейства ModE | 1,187798 | 0,634394 | 0,731218 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1026 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 1,337719 | 0,605839 | 0,623499 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1576 | Гипотетический белок | 1,168966 | 0,564328 | 0,60819 |
| codh-mck-mnkl | TON_1022 | NADH-дегидрогеназа дыхательной цепи, субъединица 1 | 0,877363 | 1,428883 | 0,57715 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0264 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, участвующий в биосинтезе белка А | 0,538102 | 0,957335 | 0,826924 |
| sulfI | TON_0535 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, дельта-субъединица | 0,652099 | 1,080516 | 0,800955 |
| mbx | TON_0496 | Субъединица MbxC | 0,609819 | 1,200655 | 0,995067 |
| fdh2-mfn2-nmh2 | TON_1582 | Гипотетический белок | 0,753301 | 0,998059 | 0,952751 |
| fdh1-mfn1-mnh1 | TON_0270 | Гипотетический белок | 0,827927 | 0,85379 | 0,581906 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0285 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypD | 0,904687 | 1,066448 | 0,758981 |
| mbh | TON_1585 | Субъединица MbhD | 0,774604 | 1,015909 | 0,670497 |
| mbx | TON_0497 | Субъединица MbxB | 0,860304 | 0,889029 | 0,810902 |
| frh | TON_1561 | Нитрит/сульфит-редуктаза, связывающаяся с 4Fe-4S- ферредоксином, содержащим железо-серу | 0,824149 | 0,834127 | 0,807754 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1579 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,903028 | 0,812346 | 0,816319 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1566 | NADH-дегидрогеназа (хинон) | 1,011779 | 0,736029 | 0,787627 |
| mbh | TON_1587 | Субъединица MbhF | 1,129566 | 0,811366 | 0,872572 |
| mbh | TON_1586 | Субъединица MbhE | 1,101069 | 0,811262 | 0,659266 |
| sufII | TON_0051 | Гипотетический белок | 1,273306 | 3,1454 | 2,569546 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1563 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 1,008259 | 3,037865 | 3,330042 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0283 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypC | 1,007318 | 1,853137 | 2,021914 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0288 | Гипотетический белок | 1,004008 | 1,964442 | 2,27641 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1571 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 1,030626 | 2,15871 | 1,806722 |
| fdh2-mch2-mnh2 | TON_1565 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,811937 | 1,787894 | 2,088693 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1031 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,030507 | 2,788588 | 1,982091 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1018 | Монооксид углерода-дегидрогеназа, каталитическая субъединица | 1,474238 | 2,204944 | 1,785437 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1569 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,204795 | 2,281342 | 1,780033 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1570 | Формиат-водород-лиаза, субъединица 6 | 1,257649 | 2,427962 | 1,99559 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0287 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы HypE | 0,851301 | 1,399569 | 1,257059 |
| sufII | TON_0055 | Бета-цепь сульфгидрогеназы II | 0,84527 | 1,44889 | 1,452254 |
| frh | TON_1562 | Формиат-дегидрогеназа, субъединица FdhD | 0,908701 | 1,54082 | 1,468288 |
| sufII | TON_0053 | Дельта-цепь сульфгидрогеназы II | 0,896129 | 1,898148 | 1,337585 |
| sufI | TON_0539 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 1,158997 | 1,791123 | 1,314525 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1021 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 1,112538 | 1,711122 | 1,250867 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0263 | Протеаза, участвующая в созревании гидрогеназы HycI | 0,775719 | 1,531337 | 1,090123 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0289 | Цистеин-десульфураза | 0,666768 | 1,534991 | 1,148004 |
| mbx | TON_0493 | Предполагаемый антипорт Na+/H+ мультисубъединицы | 0,70216 | 1,591408 | 1,138149 |
| fdh2-mfn2-mnh2 | TON_1581 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, ответственный за биосинтез белка А | 0,61468 | 1,708744 | 1,243367 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1019 | Предполагаемый АТФ-связывающий белок | 0,824732 | 2,016924 | 0,974466 |
| sulfI | TON_0542 | Оксидоредуктаза, родственная бета-цепи-глутамат-синтазы | 0,842213 | 1,602828 | 0,936949 |
| mbh | TON_1592 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 1 | 0,940698 | 1,573248 | 0,956935 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0284 | Гипотетический белок hypD, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы длиной 367 аминокислот | 1,036497 | 1,385466 | 1,182663 |
| sulfI | TON_0537 | Бета-субъединица сульфгидрогеназы | 1,025726 | 1,458113 | 1,160718 |
| sulfI | TON_0534 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, альфа-субъединица | 1,283309 | 1,334781 | 1,071667 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1564 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 1,178705 | 1,221574 | 1,445098 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1567 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 1,091992 | 1,057076 | 1,184573 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1568 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 1,471267 | 1,365925 | 1,382301 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1573 | Предполагаемый переносчик формиата | 1,451628 | 1,459657 | 1,158131 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1574 | антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 1,53015 | 1,602287 | 1,244315 |
| sulfI | TON_0541 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 1,112648 | 1,320761 | 0,855465 |
| sulfI | TON_0536 | Гидрогеназа (гамма-субъединица) | 1,100959 | 1,192121 | 0,759086 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1028 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 1,019583 | 1,203407 | 0,836452 |
| sulfI | TON_0540 | Белок оксидоредуктазы, содержащий железо-серу | 0,987581 | 1,525167 | 0,82485 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1027 | Гипотетический белок | 0,991048 | 1,43866 | 0,778446 |
| sulfI | TON_0543 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,9185 | 1,257283 | 1,019564 |
| sulfI | TON_0538 | Предполагаемый переносчик формиата | 0,989789 | 1,113613 | 0,960108 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1578 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,989286 | 1,061599 | 0,900044 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0282 | Предполагаемый регулятор транскрипции | 1,340444 | 1,195043 | 0,883294 |
| mbh | TON_1590 | Субъединица MbhI | 1,334732 | 1,227655 | 0,904813 |
| mbh | TON_1591 | NiFe-гидрогеназа, небольшая субъединица | 1,627315 | 1,158127 | 0,856929 |
| mbh | TON_1589 | Субъединица MbhH | 1,362042 | 0,948034 | 0,71984 |
| mbh | TON_1595 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 1,589684 | 1,280298 | 0,491906 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1030 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 3,779798 | 4,956998 | 1,592196 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1024 | NADH-дегидрогеназа (убихинон), 20 кДа-субъединица | 1,816315 | 3,578841 | 2,009973 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1025 | антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 2,443938 | 3,389037 | 1,333503 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1029 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 2,648286 | 2,171138 | 1,123898 |
| mbh | TON_1593 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 2 | 1,609483 | 2,286207 | 1,354849 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1020 | Гипотетический белок | 3,375546 | 9,366047 | 5,425704 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1017 | Домен, связывающийся с 4Fe-4S-ферроредоксином, содержащим железо-серу | 1,713085 | 4,46107 | 3,621394 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1023 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,927395 | 6,118015 | 4,270288 |
3) Нарушение гена и анализ фенотипов мутантов по нарушению
Транскриптомный анализ дает основание предположить, что гидрогеназный кластер mch, который является близкородственным кластеру codh (фиг.9A), может играть важную роль в карбоксидотропном гидрогенезе в T. onnurineus NA1. Однако в связи с активацией кластера fdh2-mfh2-mnh2 и образованием большого числа копий мРНК других кластеров возникает вопрос, может ли сам кластер codh-mch-mnh3 участвовать в карбоксидотропном гидрогенезе и могут ли другие гидрогеназы действовать по альтернативному пути для mch посредством образования комплексов в комбинации с дегидрогеназами или рециклинга электронных носителей, таких как FADH2 или NADH. Таким образом, авторами настоящего изобретения были сконструированы мутанты по нарушению крупной субъединицы каждой из гидрогеназ mch и mfh2 (Matsumi, R., K. Manabe, T. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2007. Disruption of a sugar transporter gene cluster in a hyperthermophilic archaeon using a host-marker system based on antibiotic resistance. J. Bacteriol. 189:2683-2691). Метод конструирования мутантов по нарушению проиллюстрирован на фиг.9A. Крупную субъединицу кластера гена гидрогеназы Mch или Mfh2 подвергали нарушению путем инсерционной инактивации кластера Pgdh-hmg Pfu посредством гомологичной рекомбинации в области мишени, что приводило к сверхэкспрессии гена hmg-CoA. Нарушение гена-мишени подтверждали путем анализа на присутствие кластера Pgdh-hmg Pfu с помощью ПЦР-амплификации после скрининга групп-кандидатов в среде YPS, в которую было добавлено 10 мкМ симвастатина (фиг.9B). Pgdh-hmg Pfu может быть амплифицирован в группах-кандидатах с нарушением ( Δ mch TNA1 и Δ mfh2 TNA1 ), тогда как амплификация крупных субъединиц mch или mfh2 не происходила. Полученные результаты показали, что система нарушения генов, сообщаемая для T. kodakaraensis KOD1 (Sapra, R., K. Bagramyan и M. W. W. Adams. 2003. A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550), может быть также применена к T. onnurinues NA1.
Поскольку мутанты с нарушением ( Δ mch TNA1 и Δ mfh2 TNA1 ) могут быть получены в среде YPS, то очевидно, что Mch или Mfh2 не играют важной роли в метаболическом поглощении среды YPS. Как видно на фиг.10, изменения в росте и морфологии мутантных штаммов Δ mch TNA1 и Δ mfh2 TNA1 подтвердили, что эти гены необязательно должны присутствовать в среде YPS. Кроме того, штамм Δ mfh2 TNA1 обладает способностью расти и продуцировать водород в СО-содержащей среде для культивирования на уровне, аналогичном уровню, наблюдаемому для штамма дикого типа (фиг.7 и 10). С другой стороны, мутант Δ mch TNA1 не обладает способностью расти в СО-содержащей среде для культивирования и не способен продуцировать водород в данной среде (фиг.10). Полученные данные показали, что отсуствие крупной субъединицы Mch приводит к полному подавлению способности штамма T. onnurineus NA1 выживать в карбоксидотропных условиях в присутствии СО. Полученные результаты в целом показали, что при подаче CO в качестве субстрата в росте и продуцировании водорода участвует только гидрогеназа Mch.
Пример 4: Формиатзависимое продуцирование H 2 штаммом Thermococcus onnurineus NA1: идентификация восприимчивых к формиату гидрогеназ
(1) Методы тестирования
1) Условия культивирования
T. onnurineus NA1 культивировали в анаэробных условиях при 80°С в среде, содержащей дрожжевой экстракт-пептон-серу (YPS). Для оценки параметров роста мутантного штамма в качестве базовой среды использовали модифицированную среду 1, в которую было добавлено 30,0 г/л NaCl (Uffen, R. L., 1976, Anaerobic growth of a Rhodopseudomonas species in the dark with carbon monoxide as sole carbon and energy substrate. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 73:3298-3302). Среду автоклавировали, а затем в модифицированную среду 1 в аэробной камере добавляли 1,0 мл/л раствора витамина (Balch, W. E., G. E. Fox, L. J. Magrum, C. R. Woese, and R. S. Wolfe. 1979. Methanogens: reevaluation of a unique biological group. Microbiol. Rev. 43:260-296) и 0,5 г/л дрожжевого экстракта. pH базовой среды доводили до 8,0 путем добавления 1 н. NaOH в базовую среду. 30 мл полученной среды распределяли по 150-миллилитровым бутылям с сывороткой, и газовую фазу (120 мл) заменяли на 80% N2-20% CO2 (105 Па). Все культуры для проведения физиологических тестов выращивали при 80°С в анаэробных условиях в течение 24 часов, и эти тесты проводили в дубликате.
2) Экстракция РНК и конструирование микромассивов
Культуры центрифугировали при 4°C при 3500g в течение 10 минут, и всю РНК экстрагировали из культур с использованием реагента Тризола в соответствии с протоколом, рекомендованным производителями (Invitrogen, Carlsbad, California). Все РНК-образцы количественно и качественно анализировали на спектрофотометре NanoDrop (ND-1000, Thermo Scientific) и с помощью электрофореза. Микромассив, используемый в этом эксперименте, представляет собой микромассив Roche NimbleGen. Вкратце, было сконструировано всего 31994 уникальных 60-мерных олигонуклеотидов, и эти олигонуклеотиды были синтезированы in situ химическим методом путем снятия защиты под действием света. Каждый уникальный олигонуклеотид был повторен на массиве дважды (всего ~72000 элементов).
3) Синтез кДНК и условия гибридизации
Эксперименты с использованием микромассивов осуществляли в соответствии с протоколом, рекомендованным производителем. Каждый образец полноразмерной РНК (5 мкг) метили Cy5-dCTP (Amersharm, Piscataway, NJ) путем проведения реакции обратной транскрипции с использованием обратной транскриптазы Superscript II (Invitrogen, Carlsbad, California). Затем смесь меченой кДНК концентрировали путем преципитации этанолом. 30 мкл концентрированных Cy5-меченых кДНК суспендировали в растворе для гибридизации (GenoCheck, Korea). Меченые кДНК локализовали на микромассиве, а затем помещали в камеру для гибридизации MAUI Mixer X4 (BioMicro Systems, Salt Lake City, UT). Гибридизацию на предметных стеклах осуществляли с использованием 12-секционных систем MAUI (BioMicro Systems, Salt Lake City, UT) при 42°C в течение 12 часов. Гибридизованные предметные стекла промывали при комнатной температуре в 2 X SSC, 0,1% ДСН в течение 2 минут, 1X SSC в течение 3 минут, а затем 0,2 X SSC в течение 2 минут. Предметные стекла центрифугировали при 1000g в течение 20 секунд, а затем сушили.
4) Сканирование предметных стекол, нормализация и анализ данных
Массивы сканировали с использованием сканера GenePix 4000B (Molecular Devices Corporation, Union City, CA), и данные получали с помощью компьютерной программы NimbleScan 2.4. Нормализацию массивов осуществляли методом уточнения среднего и нормализации квантилей (Amaratunga, D., and J. Cabrera. 2001. Statistical analysis of viral microchip data. J. Am. Stat. Assoc. 96:1161-1170). Нормализованные величины экспрессии для отдельных зондов использовали в целях получения величин экспрессии для данной ОРС методом RMA (надежным методом вычисления средних с использованием множества массивов), ранее описанным Irizarry et al. (Karl, D. M. 1995. The microbiology of deep-sea hydrothermal vents. CRC Press, Boca Raton, FL). И наконец, n-кратные изменения отношений (R) определяли с использованием RMA-обработанных величин экспрессии (RMA-запрос), полученных для конкретного гена в образце. Анализ данных осуществляли с использованием программы GeneSpring GX 7.3.1 (Agilent Technologies, CA). Программы-фильтры для кратных изменений требуют, чтобы стимулируемые гены составляли по меньшей мере 200% от контролей, а ингибируемые гены составляли менее 50% от контролей. Данные были объединены в группы генов с аналогичным поведением в экспериментах, проводимых с использованием GeneSpring GX 7.3.1 (Agilent technologies, CA). Для разделения генов с аналогичными паттернами был использован алгоритм, разработанный на основе евклидова расстояния и усреднения связей.
5) Количественная оценка, проводимая с помощью ОТ-ПЦР
Геноспецифические праймеры были сконструированы на основе геномной последовательности T.onnurineus NA1 (Genbank рег. №: CP000855). (см. выше таблицу 3).
кДНК синтезировали из 350 нг всей РНК с использованием обратной транскриптазы, SuperScrip II (Invitrogen, Carlsbad, California), в соответствии с протоколом, рекомендованным производителем. ПЦР-реакции осуществляли с использованием ДНК-полимеразы rTaq (Takara) в термоячейке T1 (Biometra). Реакции проводили в 50 мкл смеси, содержащей кДНК для реакции первой цепи, 10 пмоль праймеров, 250 мкМ dNTP и буфер от производителя. Кроме того, реакции ПЦР-амплификации проводили в следующих условиях: денатурация в течение 2 минут при 94°С, а затем 25 циклов денатурации (30 секунд при 94°С), отжига (30 секунд при 56°С) и удлинения (1 минута при 72°С). ПЦР-продукты анализировали с помощью электрофореза на 0,8% агарозном геле. Уровни экспрессии измеряли с использованием GelPro32.EXE v4.6 (Media Cybernetics, Inc.). Шаперонинкодирующий ген, обозначенный “cha”, использовали в качестве контроля для нормализации уровней экспрессии.
6) Нарушение гена-мишени
Для анализа функции гидрогеназ in vivo T. onnurineus мутанты инсерционной инактивации крупной субъединицы гидрогеназы Mfh конструировали с использованием системы нарушения генов, используемой для гипертермофильной архебактерии Т. kodakaraensis KOD1 (Sapra, R., K. Bagramyan, and M. W. W. Adams. 2003. A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550). В частности, ДНК-фрагменты, содержащие фланкирующую область крупных субъединиц ((TON_0276 и TON_1569) каждой из гидрогеназ mfh1 и mfh2, амплифицировали из геномной ДНК T. onnurineus NA1 с использованием наборов праймеров (таблица 3) для Flk-mfh1 или Flk-mfh2. Каждый из амплифицированных фрагментов гидролизовали ферментом HincII и лигировали в pUC118. Затем матрицу (рекомбинантную плазмиду Flk-Mfh1_pUC118 или Flk-mfh2_pUC118) подвергали обратной ПЦР с использованием набора праймеров (Ivs-Mfh1 или Ivs-mfh2) (таблица 3), после чего лигировали в кластер Pgdh-hmgPfu (Sapra, R., K. Bagramyan, and M. W. W. Adams. 2003. A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550). Лигированный продукт переносили в клетки Escherichia coli DH5α. Рекомбинантные плазмиды (Mfh1::Pgdh-hmgPfu и mfh2::Pgdh-hmgPfu) получали с использованием мининабора для плазмид (Qiagen, Hilden, Germany). И наконец, плазмиды переносили в T. onnurineus NA1 с применением слегка модифицированного метода Sato et al. (Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2003. Targeted gene disruption by homologous recombination in the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis KOD1. J. Bacteriol. 185:210-220., Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2005. Improved and versatile transformation system allowing multiple genetic manipulations of the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis. Appl. Environ. Microbiol. 71:3889-3899). Трансформанты скринировали в среде ASW-YT-S в присутствии 10 мкМ симвастатина, и присутствие гена-мишени может быть подтверждено путем анализа на присутствие кластера Pgdh-hmg Pfu в области-мишени.
7) Влияние кинетики на рост микроорганизмов и продуцирование водорода
Рост микроорганизмов наблюдали визуально. Образцы разводили в стерильной воде, содержащей морскую соль (30,0 г/л), формалин (2,5%) и 4',6'-диамидино-2-фенилиндол (0,01%) (Sato, Т., Т. Fukui, H. Atomi, and T. Imanaka. 2005. Improved and versatile transformation system allowing multiple genetic manipulations of the hyperthermophilic archaeon Thermococcus kodakaraensis. Appl. Environ. Microbiol. 71:3889-3899). Разведенные образцы фильтровали через черный поликарбонатный фильтр (размер пор: 0,2 мкм; Whatman), а затем анализировали на оптическом фазово-контрастном микроскопе (Zeiss Axioplan). Состав газа водорода определяли на газовом хроматографе HP 5890 серии II (Hewlett Packard), снабженном колонкой с молекулярными ситами HP-PLOT (Agilent) и детектором TCD. В качестве газа-носителя использовали аргон. Температура печи составляла 40°C. 10 мкл газового образца для анализа брали с помощью газонепроницаемого шприца через бутилкаучуковую пробку. Состав детектируемого газа водорода определяли путем сравнения площади пика с площадью пика калибровочной кривой, построенной с помощью регрессионного анализа с использованием стандартного газа, содержащего 40% водорода в азоте.
(2) Результаты теста
1) Гидрогеназы T. onnurineus NA1
Предварительный геномный анализ Т. onnurineus NA1 указывал на присутствие восьми кластеров генов гидрогеназы (Porter, K. G. and Y. S. Feig. 1980. The use of DAPI for identifying and counting microflora. Limnol. Oceanogr. 25:943-948), которые включают пять мембраносвязанных [NiFe]-гидрогеназ (Mbh, TON_1583-1595; Mbx, TON_0486-0498; Mfh1, TON_0273-0278; Mfh2, TON_1566-1573; и Mch, TON_1021-1024), и три цитоплазматических [NiFe]-гидрогеназ (Fru, TON_1559-1562; Sulf I, TON_0533-0544; и Sulf II, TON_0051-0055). В результате проведения сравнительного анализа кластеров генов гидрогеназы и штаммов Thermococcales, секвенирование генома которых было завершено, было обнаружено, что кластеры, Mbh, Mbx, Sulf I и Sulf II присутствовали в избытке в других штаммах Thermococcales (см. Fox, J. D., R. L. Kerby, G. P. Roberts, and P. W. Ludden. 1996. Characterization of the CO-induced, СО-tolerant hydrogenase from Rhodospirillum rubrum and the gene encoding the large subunit of the enzyme. J. Bacteriol. 178:1515-1524). С другой стороны, кластеры, гомологичные кластерам Mfh1, Mfh2 или Mch, встречаются очень редко, и эти кластеры были обнаружены в штаммах Thermococcales, у которых были недавно определены последовательности геномов, а именно, такие как T. barophilus MP (гомологи Mfh1 и Mch), Thermococcus sp. AM4 (гомологи Mfh1 и Mch). В частности, сравнительный анализ кластеров Mfh1 и Mfh2 в T. onnurineus NA1 показал, что организация генов в обоих кластерах почти аналогична организации генов в T. litoralis (Wu, M., Q. Ren, A. S. Durkin, S. C. Daugherty, L. M Brinkac, R. J. Dodson, R. Madupu, S. A. Sullivan, J. F. Kolonay, W. C. Nelson, L. J. Tallon, К. М. Jones, L. E. Ulrich, J. M. Gonzalez, I. B. Zhulin, F. T. Robb, and J. A. Eisen. 2005. Life in hot carbon monoxide: the complete genome sequence of Carboxydothermus hydrogenoformans Z-2901. PLoS Genet. 1:е65), Т. barophilus MP (неопределенная последовательность, GenBank рег. № ABSF00000000), Thermococcus sp. AM4 (неопределенная последовательность, GenBank рег. № ABXN00000000) и Pyrococcus abyssi (GenBank рег. № AL096836). Генные кластеры состоят из формиатдегидрогеназной единицы (FDH), преобразующей энергию гидрогеназной единицы (ECH) и H+/Na+-Mnh-единицы. Помимо FDH, ассоциированных с мембраносвязанными гидрогеназами, в геноме было обнаружено по меньшей мере два FDH-репликата, которые не кластеризуются в мембраносвязанные [NiFe]-гидрогеназы.
2) Экспрессия генов гидрогеназы в формиатсодержащей среде для культивирования
Как показано на фиг.11, T. onnurineus NA1 может расти в присутствии экзогенного формиата, используемого в качестве субстрата, и рост этого штамма в высокой степени коррелирует с продуцированием водорода. В среде 1, в которую был добавлен формиат, количество газа водорода и число клеток увеличивалось по мере увеличения времени культивирования. Для того чтобы идентифицировать гидрогеназы, ответственные за продуцирование водорода в формиатсодержащей среде, был проведен анализ на микромассивах, целью которого было сравнение уровней экспрессии мРНК в генных кластерах гидрогеназы в случае культивирования в формиатсодержащей среде с уровнями экспрессии мРНК в случае культвирования в комплексной среде (YPS). Как показано ниже в таблицах 6 и 7 и на фиг.12А, уровни экспрессии мРНК в 10 ОРС из 20 ОРС в кластере fdh2-mfh2-mnh2 (обозначенном выше “Hyg4-III”) значительно (по меньшей мере в два раза) повышались в формиатсодержащей среде по сравнению со средой YPS. Кроме того, уровни экспрессии 6 ОРС в кластере codh-mch-mnh3 (обозначенном выше “Hyg4-II”) также повышались только в формиатсодержащей среде, включающей 3,0 г дрожжевого экстракта. Кроме того, уровни экспрессии ОРС в кластере fdh2-mfh2-mnh2 варьировались в зависимости от количества дрожжевого экстракта, что дает основание предположить, что количество дрожжевого экстракта коррелирует с ингибированием или активацией катаболизма в индуцированном формиатом метаболизме (таблицы 6 и 7). С другой стороны, уровни экспрессии ОРС в других кластерах генов гидрогеназы были относительно постоянными (mbx, frh и mch) или снижались (mbh, sulfI и mfh1). Интересно отметить, что уровни экспрессии большинства генов (25 генов из 29 ОРС) в кластере fdh1-mfh1-mnh1 (обозначенном выше Hyg4-I) снижались, что дает основание предположить, что экзогенный формиат может усиливать экспрессию fdh2-mfh2-mnh2, но ингибировать экспрессию fdh1-mfh1-mnh1. Результаты количественного OT-ПЦР-анализа, проводимого для крупной субъединицы каждого из кластеров генов гидрогеназы, также соответствовали результатам, полученным с использованием микромассивов. Амплификация крупной субъединицы (TON_1569) гидрогеназы mfh2 в формиатсодержащей среде проходила быстрее, по меньшей мере за два цикла, чем в среде YPS (см. фиг.12B). Полученные результаты дают основание предположить, что кластер fdh2-mfh2-mnh2 может быть восприимчивым к формиату. Интересно отметить, что только кластер fdh2-mfh2-mnh2 имеет ген, идентифицированный как ген предполагаемого переносчика формиата (TON_1573), и его функция заключается во введении формиата.
| Таблица 6 | |||
| Уровни экспрессии ОРС каждого из кластеров генов гидрогеназы в формиатсодержащей среде по сравнению с уровнем экспрессии в среде YPS |
|||
| Генный кластер и ОРС | Аннотация | М+формиат + 0,5 г YE/YPS | M+формиат+3 г YE/YPS |
| Кластер гидрогеназы sulfII | |||
| TON_0051 | Гипотетический белок | 2,102325 | 1,996031 |
| TON_0052 | Альфа-субъединица гидрогеназы | 1,203768 | 0,802758 |
| TON_0053 | Дельта-цепь сульфгидрогеназы II | 1,065323 | 1,367881 |
| TON_0054 | Гамма-субъединица гидрогеназы | 0,737077 | 0,849314 |
| TON_0055 | Бета-цепь сульфгидрогеназы II | 0,867926 | 0,808351 |
| Кластер fdh1-mfh1-mnh1 | |||
| TON_0261 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypA | 0,727489 | 0,848653 |
| TON_0262 | АТФаза, участвующая в распределении семейства ParA/MinD, Mrp-гомолога в хромосоме | 0,810405 | 0,474952 |
| TON_0263 | Протеаза, участвующая в созревании гидрогеназы HycI | 0,929162 | 1,474294 |
| TON_0264 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, участвующий в биосинтезе белка А | 0,483945 | 0,66368 |
| TON_0265 | Нуклеотидилтрансфераза, предполагаемая | 0,316634 | 0,585297 |
| TON_0266 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,318627 | 0,458616 |
| TON_0267 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,450192 | 1,592257 |
| TON_0268 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,575413 | 0,478743 |
| TON_0269 | Предполагаемая субъединица MnhB антипорта мультисубъединицы Na+/H+ | 0,575645 | 0,850024 |
| TON_0270 | Гипотетический белок | 0,754546 | 0,615634 |
| TON_0271 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,658151 | 0,60018 |
| TON_0272 | Предполагаемая субъединица MnhF антипорта Na+/H+ | 0,265459 | 0,481402 |
| TON_0273 | Гипотетический белок | 0,251284 | 0,533794 |
| TON_0274 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 0,769351 | 0,759056 |
| TON_0275 | Субъединица 6 формиат-водород-лиазы | 0,542026 | 0,622878 |
| TON_0276 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 0,358736 | 0,446038 |
| TON_0277 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 0,741095 | 0,623746 |
| TON_0278 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,741675 | 0,678797 |
| TON_0279 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,817573 | 0,613605 |
| TON_0280 | Оксидоредуктаза, содержащая железо-серу | 0,77206 | 0,704646 |
| TON_0281 | Формиат-дегидрогеназа fdhA, альфа-субъединица | 0,366492 | 0,363246 |
| TON_0282 | Предполагаемый регулятор транскрипции | 1,517388 | 1,556418 |
| TON_0283 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypC | 1,601742 | 1,508267 |
| TON_0284 | Гипотетический белок hypD, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы длиной 367 аминокислот | 1,092018 | 0,699213 |
| TON_0285 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypD | 1,045483 | 0,489843 |
| TON_0286 | Белок, участвующий в созревании гидрогеназы HypF | 0,529731 | 0,665571 |
| TON_0287 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы HypE | 0,770546 | 0,834498 |
| TON_0288 | Гипотетический белок | 0,798203 | 2,193867 |
| TON_0289 | Цистеин-десульфураза | 0,972411 | 0,894363 |
| Кластер гидрогеназы mbx | |||
| TON_0486 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,912618 | 0,560754 |
| TON_0487 | NADH-дегидрогеназа I, nuoD, субъединица D | 0,947824 | 0,64502 |
| TON_0488 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,74442 | 0,331352 |
| TON_0489 | NADH-дегидрогеназа I, nuoB, субъединица В | 0,761859 | 0,54662 |
| TON_0490 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,514819 | 0,256304 |
| TON_0491 | Гипотетический белок длиной 617 аминокислот | 0,445818 | 0,43555 |
| TON_0492 | Субъединица MbxH | 0,786868 | 0,427415 |
| TON_0493 | Предполагаемый антипорт Na+/H+ мультисубъединицы | 0,67054 | 0,631248 |
| TON_0494 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,682815 | 1,042934 |
| TON_0495 | Субъединица MbxD | 0,886482 | 0,784067 |
| TON_0496 | Субъединица MbxC | 0,74959 | 0,923091 |
| TON_0497 | Субъединица MbxB | 0,905817 | 0,796591 |
| TON_0498 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая мультисубъединица | 0,841502 | 0,512737 |
| Кластер гидрогеназы sulfI | |||
| TON_0533 | Ответственная за созревание гидрогеназо-специфическая эндопептидаза | 0,736449 | 1,021127 |
| TON_0534 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, альфа-субъединица | 0,650022 | 0,677196 |
| TON_0535 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, дельта-субъединица | 0,741138 | 0,667442 |
| TON_0536 | Гидрогеназа (гамма-субъединица) | 0,576788 | 0,558566 |
| TON_0537 | Бета-субъединица сульфгидрогеназы | 0,624364 | 0,629266 |
| TON_0538 | Предполагаемый переносчик формиата | 0,714736 | 0,690887 |
| TON_0539 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 0,852292 | 1,341748 |
| TON_0540 | Белок оксидоредуктазы, содержащий железо-серу | 1,063573 | 0,561844 |
| TON_0541 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,811281 | 0,78328 |
| TON_0542 | Оксидоредуктаза, родственная бета-цепи глутамат-синтазы | 0,812768 | 0,926217 |
| TON_0543 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,983984 | 1,160664 |
| TON_0544 | Алкоголь-дегидрогеназа | 1,029043 | 0,862232 |
| Кластер codh-mch-mnh3 | |||
| TON_1016 | Предполагаемый регулятор транскрипции семейства ModE | 1,219563 | 1,440116 |
| TON_1017 | Домен, связывающийся с 4Fe-4S-ферроредоксином, содержащим железо-серу | 1,537494 | 2,172151 |
| TON_1018 | Монооксид углерода-дегидрогеназа, каталитическая субъединица | 1,420438 | 1,274753 |
| TON_1019 | Предполагаемый АТФ-связывающий белок | 0,698035 | 0,930505 |
| TON_1020 | Гипотетический белок | 1,971922 | 3,839171 |
| TON_1021 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,972559 | 1,151527 |
| TON_1022 | NADH-дегидрогеназа дыхательной цепи, субъединица 1 | 1,771932 | 1,186361 |
| TON_1023 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,863412 | 4,045911 |
| TON_1024 | NADH-дегидрогеназа (убихинон), 20 кДа-субъединица | 1,353224 | 3,47523 |
| TON_1025 | антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 0,923065 | 2,35011 |
| TON_1026 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,964696 | 0,621115 |
| TON_1027 | Гипотетический белок | 0,932259 | 0,97379 |
| TON_1028 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,916306 | 1,019604 |
| TON_1029 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 1,207926 | 0,928939 |
| TON_1030 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,712484 | 2,238387 |
| TON_1031 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,955361 | 2,246413 |
| Кластер frh(F 420 -восстанавливающая гидрогеназа)гидрогеназы | |||
| TON_1559 | Альфа-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 1,183388 | 0,530475 |
| TON_1560 | Гамма-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 1,415197 | 1,018573 |
| TON_1561 | Нитрит/сульфит-редуктаза, связывающаяся с 4Fe-4S-ферредоксином, содержащим железо-серу | 1,355412 | 1,07094 |
| TON_1562 | Формиат-дегидрогеназа, субъединица FdhD | 1,00278 | 0,973292 |
| Кластер fdh2-mfh2-mnh2 | |||
| TON_1563 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 4,251498 | 2,533032 |
| TON_1564 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 3,005736 | 1,806787 |
| TON_1565 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 2,572148 | 1,499477 |
| TON_1566 | NADH-дегидрогеназа (хинон) | 1,807319 | 0,972802 |
| TON_1567 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 3,431877 | 1,536872 |
| TON_1568 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 2,936933 | 1,620744 |
| TON_1569 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 3,631759 | 1,932512 |
| TON_1570 | Формиат-водород-лиаза, субъединица 6 | 2,69592 | 2,206621 |
| TON_1571 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 2,061174 | 1,799012 |
| TON_1572 | Гипотетический белок | 1,247346 | 1,037087 |
| TON_1573 | Предполагаемый переносчик формиата | 2,315563 | 1,228123 |
| TON_1574 | антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 3,337596 | 2,209765 |
| TON_1575 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 1,446144 | 0,801728 |
| TON_1576 | Гипотетический белок | 1,558306 | 0,954677 |
| TON_1577 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 1,43188 | 1,026239 |
| TON_1578 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 1,656445 | 1,198853 |
| TON_1579 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 1,382536 | 1,135341 |
| TON_1580 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,804806 | 1,031391 |
| TON_1581 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, ответственный за биосинтез белка А | 1,42751 | 1,994937 |
| TON_1582 | Гипотетический белок | 1,086162 | 0,6947 |
| Кластер гидрогеназы mbh | |||
| TON_1583 | Субъединица MbhB | 0,67072 | 0,367439 |
| TON_1584 | Субъединица MbhC | 0,715606 | 0,384515 |
| TON_1585 | Субъединица MbhD | 0,649744 | 0,488634 |
| TON_1586 | Субъединица MbhE | 0,579611 | 0,376248 |
| TON_1587 | Субъединица MbhF | 0,660332 | 0,683508 |
| TON_1588 | Субъединица MbhG | 0,667072 | 0,521087 |
| TON_1589 | Субъединица MbhH | 0,439735 | 0,343741 |
| TON_1590 | Субъединица MbhI | 0,555557 | 0,42006 |
| TON_1591 | NiFe-гидрогеназа, небольшая субъединица | 0,278923 | 0,289092 |
| TON_1592 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 1 | 0,497784 | 0,493123 |
| TON_1593 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 2 | 0,355 | 0,852904 |
| TON_1594 | Субъединица MbhM | 0,373076 | 0,289584 |
| TON_1595 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,421286 | 0,597661 |
| М - среда 1; СО - монооксид углерода; YE - дрожжевой экстракт |
| Таблица 7 | ||||
| Иерархическая кластеризация 112 ОРС, включая кластеры гидрогеназы от Т. onnurineus NA1 | ||||
| Генный кластер и ОРС | Аннотация | М+формиат+0,5г YE/YPS | М+формиат +1г YE/YPS | Генный кластер и ОРС |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0262 | АТФаза, участвующая в распределении хромосом, Mrp-гомолог | 0,810405 | 0,474952 |
| Mbx | TON_0498 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая мультисубъединица | 0,841502 | 0,512737 |
| Mbx | TON_0489 | NADH-дегидрогеназа I, nuoB, субъединица В | 0,761859 | 0,54662 |
| Mbx | TON_0492 | Субъединица MbxH | 0,786868 | 0,427415 |
| Mbx | TON_0486 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,912618 | 0,560754 |
| Mbx | TON_0487 | NADH-дегидрогеназа I, nuoD, субъединица D | 0,947824 | 0,64502 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1026 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,964696 | 0,621115 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0285 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypD | 1,045483 | 0,489843 |
| sulfI | TON_0540 | Белок оксидоредуктазы, содержащий железо-серу | 1,063573 | 0,561844 |
| Frh | TON_1559 | Альфа-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 1,183388 | 0,530475 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0269 | Предполагаемая субъединица MnhB антипорта мультисубъединицы Na+/H+ | 0,575645 | 0,850024 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0270 | Гипотетический белок | 0,754546 | 0,615634 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0277 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 0,741095 | 0,623746 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0279 | NADH-убихинон-оксидоредуктаза | 0,817573 | 0,613605 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0280 | Оксидоредуктаза, содержащая железо-серу | 0,77206 | 0,704646 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0278 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,741675 | 0,678797 |
| sulfI | TON_0535 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, дельта-субъединица | 0,741138 | 0,667442 |
| sulfI | TON_0538 | Предполагаемый переносчик формиата | 0,714736 | 0,690887 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0271 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 0,658151 | 0,60018 |
| mbx | TON_0493 | Предполагаемый антипорт Na+/H+ мультисубъединицы | 0,67054 | 0,631248 |
| sulfI | TON_0537 | Бета-субъединица сульфгидрогеназы | 0,624364 | 0,629266 |
| sulfI | TON_0534 | NiFe-гидрогеназа цитозоля, альфа-субъединица | 0,650022 | 0,677196 |
| mbh | TON_1587 | Субъединица MbhF | 0,660332 | 0,683508 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0264 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, участвующий в биосинтезе белка А | 0,483945 | 0,66368 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0275 | Субъединица 6 формиат-водород-лиазы | 0,542026 | 0,622878 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0286 | Белок, участвующий в созревании гидрогеназы HypF | 0,529731 | 0,665571 |
| mbh | TON_1595 | Субъединица, связывающаяся с 4Fe-4S-кластером | 0,421286 | 0,597661 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0268 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 0,575413 | 0,478743 |
| mbh | TON_1592 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 1 | 0,497784 | 0,493123 |
| sulfI | TON_0536 | Гидрогеназа (гамма-субъединица) | 0,576788 | 0,558566 |
| mbh | TON_1585 | Субъединица MbhD | 0,649744 | 0,488634 |
| mbh | TON_1588 | Субъединица MbhG | 0,667072 | 0,521087 |
| SufII | TON_0055 | Бета-цепь сульфгидрогеназы II | 0,867926 | 0,808351 |
| mbx | TON_0495 | Субъединица MbxD | 0,886482 | 0,784067 |
| mbx | TON_0497 | Субъединица MbxB | 0,905817 | 0,796591 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0274 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 0,769351 | 0,759056 |
| sulfI | TON_0541 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,811281 | 0,78328 |
| sufII | TON_0054 | Гамма-субъединица гидрогеназы | 0,737077 | 0,849314 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0261 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypA | 0,727489 | 0,848653 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0287 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы HypE | 0,770546 | 0,834498 |
| mbx | TON_0496 | Субъединица MbxC | 0,74959 | 0,923091 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1019 | Предполагаемый АТФ-связывающий белок | 0,698035 | 0,930505 |
| sulfI | TON_0542 | Оксидоредуктаза, родственная бета-цепи-глутамат-синтазы | 0,812768 | 0,926217 |
| mbx | TON_0494 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,682815 | 1,042934 |
| sulfI | TON_0533 | Ответственная за созревание гидрогеназо-специфическая эндопептидаза | 0,736449 | 1,021127 |
| sulfI | TON_0543 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 0,983984 | 1,160664 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1021 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 0,972559 | 1,151527 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0289 | Цистеин-десульфураза | 0,972411 | 0,894363 |
| sulfI | TON_0544 | Алкоголь-дегидрогеназа | 1,029043 | 0,862232 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1027 | Гипотетический белок | 0,932259 | 0,97379 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1028 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 0,916306 | 1,019604 |
| frh | TON_1562 | Формиат-дегидрогеназа, субъединица FdhD | 1,00278 | 0,973292 |
| sufII | TON_0052 | Альфа-субъединица гидрогеназы | 1,203768 | 0,802758 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0284 | Гипотетический белок hypD, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы длиной 367 аминокислот | 1,092018 | 0,699213 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1582 | Гипотетический белок | 1,086162 | 0,6947 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1575 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 1,446144 | 0,801728 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0267 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,450192 | 1,592257 |
| mbh | TON_1593 | NiFe-гидрогеназа, крупная субъединица 2 | 0,355 | 0,852904 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0265 | Нуклеотидилтрансфераза, предполагаемая | 0,316634 | 0,585297 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0272 | Предполагаемая субъединица MnhF антипорта Na+/H+ | 0,265459 | 0,481402 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0273 | Гипотетический белок | 0,251284 | 0,533794 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0266 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,318627 | 0,458616 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0276 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 0,358736 | 0,446038 |
| mbx | TON_0491 | Гипотетический белок длиной 617 аминокислот | 0,445818 | 0,43555 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0281 | Формиат-дегидрогеназа fdhA, альфа-субъединица | 0,366492 | 0,363246 |
| mbh | TON_1589 | Субъединица MbhH | 0,439735 | 0,343741 |
| mbh | TON_1594 | Субъединица MbhM | 0,373076 | 0,289584 |
| mbh | TON_1591 | NiFe-гидрогеназа, небольшая субъединица | 0,278923 | 0,289092 |
| mbx | TON_0490 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,514819 | 0,256304 |
| mbx | TON_0488 | Субъединица NADH-дегидрогеназы | 0,74442 | 0,331352 |
| mbh | TON_1583 | Субъединица MbhB | 0,67072 | 0,367439 |
| mbh | TON_1584 | Субъединица MbhC | 0,715606 | 0,384515 |
| mbh | TON_1586 | Субъединица MbhE | 0,579611 | 0,376248 |
| mbh | TON_1590 | Субъединица MbhI | 0,555557 | 0,42006 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0288 | Гипотетический белок | 0,798203 | 2,193867 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1030 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 0,712484 | 2,238387 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1025 | Антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 0,923065 | 2,35011 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1031 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 0,955361 | 2,246413 |
| sufII | TON_0051 | Гипотетический белок | 2,102325 | 1,996031 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1571 | Компонент I или формиат-водород-лиаза | 2,061174 | 1,799012 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1017 | Домен, связывающийся с 4Fe-4S-ферроредоксином, содержащим железо-серу | 1,537494 | 2,172151 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1581 | Молибдоптерин-гуанин-динуклеотид, ответственный за биосинтез белка А | 1,42751 | 1,994937 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0263 | Протеаза, участвующая в созревании гидрогеназы HycI | 0,929162 | 1,474294 |
| sulfI | TON_0539 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 0,852292 | 1,341748 |
| sufII | TON_0053 | Дельта-цепь сульфгидрогеназы II | 1,065323 | 1,367881 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1016 | Предполагаемый регулятор транскрипции семейства ModE | 1,219563 | 1,440116 |
| fdh1-mfh1-nmh1 | TON_0282 | Предполагаемый регулятор транскрипции | 1,517388 | 1,556418 |
| fdh1-mfh1-mnh1 | TON_0283 | Белок, участвующий в экспрессии/образовании гидрогеназы hypC | 1,601742 | 1,508267 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1018 | Монооксид углерода-дегидрогеназа, каталитическая субъединица | 1,420438 | 1,274753 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1022 | NADH-дегидрогеназа дыхательной цепи, субъединица 1 | 1,771932 | 1,186361 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1578 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 1,656445 | 1,198853 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1029 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF67 | 1,207926 | 0,928939 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1572 | Гипотетический белок | 1,247346 | 1,037087 |
| frh | TON_1560 | Гамма-субъединица кофермент F420-гидрогеназы | 1,415197 | 1,018573 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1577 | Антипорт Na+/H+ мультисубъединицы, предполагаемая субъединица MnhB | 1,43188 | 1,026239 |
| frh | TON_1561 | Нитрит/сульфит-редуктаза, связывающаяся с 4Fe-4S- ферредоксином, содержащим железо-серу | 1,355412 | 1,07094 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1579 | Предполагаемый интегральный мембранный белок семейства DUF68 | 1,382536 | 1,135341 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1566 | NADH-дегидрогеназа (хинон) | 1,807319 | 0,972802 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1580 | Компонент F или формиат-водород-лиаза | 1,804806 | 1,031391 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1576 | Гипотетический белок | 1,558306 | 0,954677 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1020 | Гипотетический белок | 1,971922 | 3,839171 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1023 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 1,863412 | 4,045911 |
| codh-mch-mnh3 | TON_1024 | NADH-дегидрогеназа (убихинон), 20 кДа-субъединица | 1,353224 | 3,47523 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1563 | Предполагаемая формиат-дегидрогеназа, альфа-субъединица | 4,251498 | 2,533032 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1564 | Белок, связывающийся с 4Fe-4S-кластером | 3,005736 | 1,806787 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1568 | Компонент С или формиат-водород-лиаза | 2,936933 | 1,620744 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1567 | Компонент В или формиат-водород-лиаза | 3,431877 | 1,536872 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1570 | Формиат-водород-лиаза, субъединица 6 | 2,69592 | 2,206621 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1569 | Компонент G или формиат-водород-лиаза | 3,631759 | 1,932512 |
| fdh2-nfh2-mnh2 | TON_1574 | антипорт Na+/H+, предполагаемая субъединица MnhF | 3,337596 | 2,209765 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1565 | Субъединица антипорта Na+/H+ | 1,446144 | 0,801728 |
| fdh2-mfh2-mnh2 | TON_1573 | Предполагаемый переносчик формиата | 2,315563 | 1,228123 |
3) Нарушение гена и анализ фенотипов мутантов по нарушению
Транскриптомный анализ дает основание предположить, что Mfh2 может играть важную роль в продуцировании водорода в присутствии экзогенного формиата в T. onnurineus NA1. Однако в связи с активацией нескольких ОРС кластера codh-mch-mnh3 в формиатсодержащей среде или в связи с высоким уровнем экспрессии других генов гидрогеназ, таких как Mbx или Frh, возникает вопрос, может ли сам Mfh2 участвовать в продуцировании водорода в присутствии экзогенного формиата и могут ли другие гидрогеназы действовать по альтернативному пути для Mfh2 посредством образования комплексов в комбинации с формиатдегидрогеназами или рециклинга электронных носителей, таких как FADH2 или NADH. Таким образом, авторами настоящего изобретения были сконструированы мутанты по нарушению крупной субъединицы гидрогеназы Mfh1 (TON_0276) или Mfh2 (TON_1569). Метод конструирования мутантов по нарушению проиллюстрирован на фиг.13A. Крупную субъединицу каждого из кластеров гена гидрогеназы Mfh1 и Mfh2 подвергали нарушению путем инсерционной инактивации кластера Pgdh-hmg Pfu посредством гомологичной рекомбинации в области мишени, что приводило к сверхэкспрессии гена hmg-CoA. Нарушение гена-мишени подтверждали путем анализа на присутствие кластера Pgdh-hmg Pfu с помощью ПЦР-амплификации после скрининга групп-кандидатов в среде YPS, в которую было добавлено 10 мкМ симвастатина (фиг.13B). Так, например, Pgdh-hmg Pfu может быть амплифицирован в группах-кандидатах с нарушением ( Δ mfh1 TNA1 и Δ mfh2 TNA1 ), тогда как амплификация крупных субъединиц Mfh2 или Mfh2 не происходила. Полученные результаты показали, что нарушение гена-мишени происходило точно в нужном локусе гена-мишени и что такая система нарушения генов, сообщаемая микроорганизму T. kodakaraensis KOD1 (Sapra, R., K. Bagramyan и M. W. W. Adams. 2003. A simple energy-conserving system: Proton reduction coupled to proton translocation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:7545-7550), может быть также применена к T. onnurineus NA1.
Поскольку мутанты с нарушением Δ mfh1 TNA1 и Δ mfh2 TNA1 могут быть получены в среде YPS, то очевидно, что Mfh1 и Mfh2 не играют важной роли в метаболическом поглощении среды YPS. Изменения в росте и морфологии мутантных штаммов гидрогеназы Mfh1, Mfh2 и Mch (Δ mfh1 TNA1 , Δ mfh2 TNA1 и Δ mch TNA1) показали, что эти гены необязательно должны присутствовать в среде YPS (фиг.14). Кроме того, штаммы Δ mfh1 TNA1 и Δ mch TNA1 обладают способностью расти и продуцировать водород в формиатсодержащей среде на уровне, аналогичном уровню, наблюдаемому для штамма дикого типа (фиг.11 и 14). Полученные данные показали, что генные кластеры не способны продуцироваться в среде, в которую был введен экзогенный формиат. С другой стороны, мутант Δ mfh2 TNA1 не обладает способностью к росту и не продуцирует водород (фиг.14). Полученные результаты в целом показали, что при подаче формиата в качестве субстрата в росте и продуцировании водорода участвует только гидрогеназа Mfh2.
ПРОМЫШЛЕННОЕ ПРИМЕНЕНИЕ
Как описано выше, новые гидрогеназы согласно изобретению могут продуцировать большое количество водорода благодаря их специфической восприимчивости к различным субстратам, таким как монооксид углерода, формиат или крахмал. В соответствии со способами получения водорода согласно изобретению большое количество водорода может быть получено просто путем культивирования вышеописанного штамма в специфических условиях культивирования. Таким образом, способы согласно изобретению имеют преимущества, заключающиеся в том, что они являются экономически более выгодными и более эффективными, чем известные способы получения водорода, и могут быть применены для получения водорода даже при высоких температурах.
1. Выделенная гидрогеназа, содержащая аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 7.
2. Выделенный ген, кодирующий гидрогеназу по п.1.
3. Ген по п.2, содержащий последовательность оснований SEQ ID NO: 18.
4. Способ получения водорода с помощью Thermococcus spp., включающий стадии:
приготовления среды в сосуде для культивирования;
культивирования Thermococcus spp., имеющего гены, кодирующие гидрогеназу, содержащую аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 7, и дегидрогеназу, содержащую аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 11, в сосуде для культивирования с формиатом в качестве добавки к среде; и
извлечения водорода из сосуда для культивирования.
5. Способ по п.4, где Thermococcus spp. представляет собой Thermococcus onnurineus NA1 (рег. №: KCTC 10859BP).
6. Способ по любому из пп.4 или 5, где культивирование осуществляют при высокой температуре 80°С.
7. Способ по любому из пп.4 или 5, где культивирование осуществляют в анаэробных условиях.
8. Дегидрогеназа, содержащая аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 11.
9. Ген, кодирующий дегидрогеназу по п.8.
10. Ген по п.9, содержащий последовательность оснований SEQ ID NO: 22.
11. Рекомбинантный вектор для получения водорода, содержащий гены SEQ ID NO: 22 и SEQ ID NO: 18 (гены, которые организованы в кластер FDH2-MFH2-MNH2), где указанные гены являются функционально связанными.
12. Прокариотическая клетка для получения водорода, трансформированная рекомбинантным вектором по п.11.
13. Способ получения водорода с использованием трансформанта по п.12, включающий стадии:
приготовления среды в сосуде для культивирования;
подачи формиата в газовую фазу, присутствующую в сосуде для культивирования;
культивирования указанного трансформанта в сосуде для культивирования; и
извлечения водорода из сосуда для культивирования.
