Способ культивирования двустворчатых моллюсков

Изобретение относится к культивированию двустворчатых моллюсков с планктонной личинкой. Способ предусматривает сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям и доращивание личинок в морской воде. При доращивании личинок со стадии велигера до стадии педивелигера в морскую воду добавляют неомицин в количестве 30-50 мкмоль/л. Изобретение повышает эффективность выращивания личинок морских двустворчатых моллюсков в плотной культуре посредством одновременного повышения выживаемости личинок и ускорения процесса их развития. 1 з.п. ф-лы, 5 ил., 1 табл., 4 пр.

 

Изобретение относится к марикультуре, в частности к способам культивирования двустворчатых моллюсков с планктонной личинкой.

Многие виды двустворчатых моллюсков имеют большое экономическое значение. Они являются важными промысловыми объектами, имеющими большую ценность в качестве деликатесных пищевых продуктов. Кроме того, двустворчатые моллюски имеют большое экологическое значение. Взрослые особи являются биофильтраторами, и оголение участков дна в результате антропогенных воздействий может приводить к усилению последствий техногенных загрязнений в водных (как пресноводных, так и морских) экосистемах. Личинки двустворчатых моллюсков составляют до 70% зоопланктона, таким образом, являясь важным звеном водных пищевых цепей. Большое значение это имеет для роста молоди и нагула массы промысловых видов рыб, обитающих в прибрежной шельфовой зоне. Очевидно, что продуктивность плантации зависит как от количества особей, так и от скорости их роста. Пополнение молодью литоральных популяций двустворчатых моллюсков крайне нестабильно при сильной зависимости от абиотических и биотических факторов среды. В дополнение к колебаниям температуры и солености нередки вспышки бактериальных и вирусных инфекций, приводящие к массовой гибели моллюсков и наносящие значительный урон экологии и промысловой индустрии. Также среди факторов, влияющих на численность двустворок, можно отметить различные химические загрязняющие вещества. Одним из способов, позволяющих быстро восстанавливать численность популяций двустворчатых моллюсков как в природе, так и на промысловых фермах, является искусственное оплодотворение и культивация моллюсков до момента их выседания.

Известен способ экологического культивирования двустворчатого моллюска Ruditapes philippinarum. Для повышения уровня выживаемости и одновременного ускорения метаморфоза у личинок в воду с культурой добавляют сок чеснока (Заявка КНР, №101347105, A01K61/00; A61K36/8962; A61P43/00, опубл. 21.01.2009).

Недостатками данного способа являются сравнительно небольшой эффект действия сока чеснока на выживаемость личинок, небольшой прирост в скорости метаморфоза, общее время культивирования изменяется не существенно, не обнаруживается личинок особо крупного размера.

Известен способ культивирования моллюсков, включающий размещение моллюсков в ваннах, получение яиц и спермы от родительских животных, помещение оплодотворенных яйцеклеток в ванны, где ведут выращивание личинок. Весь процесс культивирования ведут в морской воде, освобожденной от бактерий (обеззараживание) и взвесей. Для обеззараживания используют последовательность различных антибиотиков. Антибиотики берут из группы, состоящей из polymyxin B, хлорамфеникола, ампициллина, эритомицина, chlortetracycline, неомицина, стрептомицина и gentamycin (п. США, №4532883, A01K61/00, опубл. 06.08.1985).

Недостатком данного способа является необходимость проведения всего процесса культивирования в воде, обеззараженной различными антибиотиками. Процесс культивирования является длительным, сложным, требует последовательного использования большого числа различных антибиотиков. Цель использования антибиотиков - уничтожение бактерий, при этом неизвестно, каким образом используемые антибиотики действуют на личинок моллюсков.

Наиболее близким к заявляемому способу культивирования двустворчатых моллюсков является способ культивирования гребешка, включающий сбор и содержание в искусственных условиях взрослых особей гребешка, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок в морской воде с присутствием неомицина, перидический отбор и ресуспендирование личинок по отдельным емкостям, доращивание личинок в морской воде низкой температуры (15оС) с последующей высадкой на субстрат (п. США, №5144907, A01K61/00, опубл. 08.09. 1992).

К недостаткам данного способа следует отнести:

- содержание только оплодотворенных яиц в морской воде с присутствием неомицина не приводит к ускорению развития и уменьшению срока культивирования личинок;

- неомицин, присутствующий в морской воде, используемой только после оплодотворения личинок, выполняет функцию вещества, предотвращающего развитие бактерий и микроорганизмов, и при этом не оказывает никакого влияния на культивируемые организмы;

- длительный срок культивирования личинок, более 30 суток;

- личинок отбирают и периодически ресуспендируют в глубокие емкости, что приводит к травмированию личинок и уменьшению их количества;

- низкая плотность культуры (2 личинки на 1 мл), используемая в способе, в конечном результате делает данный способ неэффективным, поскольку требует больших объемов специально обработанной морской воды и емкостей большого объема;

- необходимость поддержания низкой температуры в течение всего срока культивирования.

Задачей, на решение которой направлено заявляемое изобретение, является повышение эффективности выращивания личинок морских двустворчатых моллюсков в плотной культуре посредством одновременного повышения выживаемости личинок и ускорения процесса их развития за счет воздействия на естественные механизмы физиологической регуляции активности нейронов личинки.

Поставленная задача решается тем, что в известном способе культивирования двустворчатых моллюсков, включающем сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям, доращивание личинок в морской воде, включая стадии бластулы, велигера и педивелигера, и высадку на субстрат, согласно изобретению при доращивании личинок со стадии велигера до стадии педивелигера, т.е. на стадии велигера, в морскую воду добавляют неомицин в количестве 30-50 мкмоль/л.

В качестве двустворчатых моллюсков могут быть использованы виды с планктонной личинкой, в частности разные виды мидий, устриц, морских гребешков. Использование при доращивании личинок на стадии велигера морской воды, содержащей неомицин в количестве 30-50 мкмоль/л, оказывает воздействие на нервные клетки личинки, приводя к увеличению содержания пептида FMRFамида, вследствие чего происходит ускорение развития личинок и увеличение числа выживших личинок. В конечном результате это приводит к снижению продолжительности сроков культивирования и повышению эффективности культивирования двустворчатых моллюсков.

Добавление в морскую воду при культивировании личинок на стадии велигера неомицина в количестве большем 50 мкмоль/л является неэффективным, так как возрастает расход неомицина, а количество выживших личинок и срок их культивирования существенно не меняются.

Культивирование личинок на стадии велигера в морской воде, содержащей неомицин в количестве меньшем 30 мкмоль/л не приводит к существенному изменению содержания пептида FMRFамида в нейронах личинки, не наблюдается сокращения времени развития личинок. В результате снижения продолжительности культивирования не происходит, кроме того, наблюдается высокая смертность личинок при высокой плотности культуры.

С целью дальнейшего увеличения количества выживающих личинок на ранних сроках культивирования, для личинок от стадии бластулы до стадии велигера целесообразно повышать соленость морской воды до 40-42 ‰. В этом случае снижается содержание серотонина в нейронах личинки, что приводит к повышению их выживаемости даже при высокой плотности содержания.

Однако культивирование личинок от стадии бластулы до стадии велигера в морской воде, имеющей соленость более 42‰ недопустимо, так как вызывает повышенную гибель личинок, а снижение солености морской воды менее 40 ‰ неэффективно, так как существенно не влияет на содержание серотонина в нейронах личинки, а, следовательно, не обеспечивает выживаемость личинок со стадии бластулы до стадии велигера в достаточной степени.

Заявленный способ иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1

Отбирают в море 30 половозрелых мидий и помещают их в 5 л емкость с морской водой, имеющей температуру 8оС, и аэрируют. Через 8 часов производят стимуляцию выметывания половых продуктов путем замены воды в емкости на подогретую до температуры 25оС морскую воду (термошок). Начало выметывания половых продуктов контролируют визуально в течение 1 часа. После начала выметывания половых продуктов по визуальным признакам определяют пол особей. Точный контроль пола производится путем исследования половых продуктов под микроскопом проходящего света. Самцов и самок распределяют отдельно по одной особи по емкостям со свежей водой объемом 200 мл и температурой 20оС. В течение 30 мин ожидают полного выметывания половых продуктов. Полученную первичную суспензию половых продуктов (отдельно яйцеклетки, отдельно сперматозоиды) процеживают через сито с ячеей 100 мкм. Оплодотворение производят в 10 л емкостях с морской водой нормальной солености (33‰) и высотой столба воды 10 см, при температуре 20оС. На 10 л взвеси яйцеклеток плотностью около 500 яйцеклеток/мл3 добавляют порционно 100 мкл взвеси спермы (приблизительно 15000 сперматозоидов/10 мкл3) при плавном перемешивании. Все дальнейшее развитие проводят при 20оС. Через 12 часов после оплодотворения всплывших личинок собирают с поверхности емкости, аккуратно зачерпывая верхний слой воды стеклянным стаканом (200 мл), и перемещают в 5 л стеклянные стаканы с морской водой, в которых личинок содержат в течение 6 дней (со стадии выплыва до стадии велигера) при плотности около 1000 личинок/10 мл. Перемешивание столба воды осуществляют при помощи механической мешалки (10 об/мин). Смену воды производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 30 мкм. Кормление личинок начинают на третий день после выплыва добавлением раствора водорослей (Isochrisis) из расчета 100 мкл плотной культуры на 5 л каждый день. Через 6 дней культивирования при очередной смене воды добавляют неомицин до концентрации 50 мкмоль/л. Дальнейшее развитие проводят в воде с неомицином 50 мкмоль/л. Кормление проводят смесью водорослей (Isochrisis и Dunaliella). Смену воды с неомицином производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 60 мкм. Через 12 дней культивирования, когда большинство личинок достигают стадии педивелигера, перемешивание личинок мешалкой прекращают, личинок собирают и с помощью сита с ячеей газа 60 мкм и высаживают на субстрат.

Количество выживших личинок в 7 раз превышает контроль, средний размер личинок на 20% больше чем в воде без неомицина, личинки достигали стадии педивелигера на 6 дней раньше, чем личинки, культивировавшиеся в воде без неомицина. Относительная яркость нейронов, содержащих серотонин, у личинок при выращивании в воде с неомицином была на 10% ниже, а содержащих FMRFамид на 23% выше, чем у личинок, культивировавшихся в воде без неомицина.

Пример 2

Отбирают в море 30 половозрелых гребешков Свифта и производят стимуляцию выметывания половых продуктов путем инъекции серотонина в мантийную полость (1 мг/мл, 5 мл на 1 кг моллюска). Начало выметывания половых продуктов контролируют визуально в течение 1 часа. После начала выметывания половых продуктов по визуальным признакам определяют пол особей. Точный контроль пола производится путем исследования половых продуктов под микроскопом проходящего света. Самцов и самок распределяют отдельно по одной особи по емкостям со свежей водой объемом 500 мл и температурой 20оС. В течение 30 мин ожидают полного выметывания половых продуктов. Полученную первичную суспензию половых продуктов (отдельно яйцеклетки, отдельно сперматозоиды) процеживают через сито с ячеей 100 мкм. Оплодотворение производят в 10 л емкостях с морской водой нормальной солености (33‰) и высотой столба воды 10 см. На 10 л взвеси яйцеклеток плотностью около 500 яйцеклеток/мл3 добавляют порционно 100 мкл взвеси спермы (приблизительно 15000 сперматозоидов/10 мкл3) при плавном перемешивании. Все дальнейшее развитие проводят при 20оС. Через 12 часов после оплодотворения всплывших личинок собирают с поверхности емкости, аккуратно зачерпывая верхний слой воды стеклянным стаканом (200 мл), и перемещают в 5 л стеклянные стаканы с морской водой с повышенной соленостью 42‰, в которых личинок содержат в течение 6 дней (со стадии выплыва до стадии велигера) при плотности около 1000 личинок/10 мл. Перемешивание столба воды осуществляют при помощи механической мешалки (10 об/мин). Смену воды производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 30 мкм. Кормление личинок начинают на третий день после выплыва добавлением раствора водорослей (Isochrisis) из расчета 100 мкл плотной культуры на 5 л каждый день. Через 6 дней культивирования при очередной смене воды воду с соленостью 42‰ заменяют на воду с соленостью 33 промилле, в которую добавляют неомицин до концентрации 50 мкмоль/л. Дальнейшее развитие проводят в воде с соленостью 33‰ с неомицином 50 мкмоль/л. Кормление проводят смесью водорослей (Isochrisis и Dunaliella). Смену воды с неомицином производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 60 мкм. Через 12 дней культивирования, когда большинство личинок достигают стадии педивелигера, перемешивание личинок мешалкой прекращают, личинок собирают и с помощью сита с ячеей газа 60 мкм и высаживают на субстрат.

Количество личинок, выживших при выращивании в воде с соленостью 42‰, а затем в воде соленостью 33‰ с неомицином, в 4 раза больше, их средний размер на 12% больше, личинки достигали стадии педивелигера на 5 дней раньше, чем личинки, культивировавшиеся в воде соленостью 33‰ без неомицина. Относительная яркость нейронов, содержащих серотонин, у личинок при описанном способе выращивания была на 11% ниже, а содержащих FMRFамид на 17% выше, чем у личинок, культивировавшихся в воде без неомицина.

Пример 3

Берут 30 половозрелых устриц и помещают на 8 часов в 5 л морской воды с температурой 8оС и аэрацией. Через 8 часов производят стимуляцию выметывания половых продуктов путем замены воды в емкости на подогретую до температуры 25оС морскую воду (термошок). Начало выметывания половых продуктов контролируют визуально в течение 1 часа. После начала выметывания половых продуктов по визуальным признакам определяют пол особей. Точный контроль пола производится путем исследования половых продуктов под микроскопом проходящего света. Самцов и самок распределяют отдельно по одной особи по емкостям со свежей водой объемом 500 мл и температурой 20оС. В течение 30 мин ожидают полного выметывания половых продуктов. Полученную первичную суспензию половых продуктов (отдельно яйцеклетки, отдельно сперматозоиды) процеживают через сито с ячеей 100 мкм. Оплодотворение производят в 10 л емкостях с морской водой нормальной солености (33 промилле) и высотой столба воды 10 см. На 10 л взвеси яйцеклеток плотностью около 500 яйцеклеток/мл3 добавляют порционно 100 мкл взвеси спермы (приблизительно 15000 сперматозоидов/10 мкл3) при плавном перемешивании. Все дальнейшее развитие проводят при 20оС. Через 12 часов после оплодотворения всплывших личинок собирают с поверхности емкости, аккуратно зачерпывая верхний слой воды стеклянным стаканом (200 мл), и перемещают в 5 л стеклянные стаканы с морской водой с повышенной соленостью 42 ‰, в которых личинок содержат в течение 6 дней (со стадии выплыва до стадии велигера) при плотности около 1000 личинок/10 мл. Перемешивание столба воды осуществляют при помощи механической мешалки (10 об/мин). Смену воды производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 30 мкм. Кормление личинок начинают на третий день после выплыва добавлением раствора водорослей (Isochrisis) из расчета 100 мкл плотной культуры на 5 л каждый день. Через 6 дней культивирования при очередной смене воды воду с соленостью 42 ‰ заменяют на воду с соленостью 33 ‰, в которую добавляют неомицин до финальной концентрации 30 мкмоль/л. Дальнейшее развитие проводят в воде с соленостью 33 ‰ с неомицином 30 мкмоль/л. Кормление проводят смесью водорослей (Isochrisis и Dunaliella). Смену воды с неомицином производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 60 мкм. Через 12 дней культивирования, когда большинство личинок достигают стадии педивелигера, перемешивание личинок мешалкой прекращают, личинок собирают и с помощью сита с ячеей газа 60 мкм и высаживают на субстрат. В описанном примере количество личинок, выживших при выращивании в воде с неомицином, было в 3 раза больше, их средний размер был на 12% больше, чем в воде без неомицина, личинки достигали стадии педивелигера на 3 дня раньше, чем личинки, культивировавшиеся в воде без неомицина. Относительная яркость нейронов, содержащих серотонин, у личинок при описанном способе выращивания была на 5% ниже, а содержащих FMRFамид на 10% выше, чем у личинок, культивировавшихся в воде без неомицина.

Пример 4

Берут 30 половозрелых мидий и помещают на 8 часов в 5 л морской воды с температурой 8оС и аэрацией. Через 8 часов производят стимуляцию выметывания половых продуктов путем замены воды в емкости на подогретую до температуры 25оС морскую воду (термошок). Начало выметывания половых продуктов контролируют визуально в течение 1 часа. После начала выметывания половых продуктов по визуальным признакам определяют пол особей. Точный контроль пола производится путем исследования половых продуктов под микроскопом проходящего света. Самцов и самок распределяют отдельно по одной особи по емкостям со свежей водой объемом 200 мл и температурой 20оС. В течение 30 мин ожидают полного выметывания половых продуктов. Полученную первичную суспензию половых продуктов (отдельно яйцеклетки, отдельно сперматозоиды) процеживают через сито с ячеей 100 мкм. Оплодотворение производят в 10 л емкостях с морской водой нормальной солености (33 ‰) и высотой столба воды 10 см при температуре 20оС. На 10 л взвеси яйцеклеток плотностью около 500 яйцеклеток/мл3 добавляют порционно 100 мкл взвеси спермы (приблизительно 15000 сперматозоидов/10 мкл3) при плавном перемешивании. Все дальнейшее развитие проводят при 20оС. Через 12 часов после оплодотворения всплывших личинок собирают с поверхности емкости, аккуратно зачерпывая верхний слой воды стеклянным стаканом (200 мл), и перемещают в 5 л стеклянные стаканы с морской водой с повышенной соленостью 40 ‰, в которых личинок содержат в течение 6 дней (со стадии выплыва до стадии велигера) при плотности около 1000 личинок/10 мл. Перемешивание столба воды осуществляют при помощи механической мешалки (10 об/мин). Смену воды производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 30 мкм. Кормление личинок начинают на третий день после выплыва, добавлением раствора водорослей (Isochrisis) из расчета 100 мкл плотной культуры на 5 л каждый день. Через 6 дней культивирования при очередной смене воды добавляют неомицин до финальной концентрации 50 мкМ. Дальнейшее развитие проводят в воде с неомицином 50 мкМ. Кормление проводят смесью водорослей (Isochrisis и Dunaliella). Смену воды с неомицином производят каждые третьи сутки, концентрируя личинок с помощью сита с ячеей газа 60 мкм. Через 12 дней культивирования, когда большинство личинок достигают стадии педивелигера, перемешивание личинок мешалкой прекращают, личинок собирают и с помощью сита с ячеей газа 60 мкм и высаживают на субстрат. В описанном примере количество личинок, выживших при выращивании в воде с неомицином, было в 10 раз больше, их средний размер был на 25% больше, чем в воде без неомицина, личинки достигали стадии педивелигера на 7,5 дней раньше, чем личинки, культивировавшиеся в воде без неомицина. Относительная яркость нейронов, содержащих серотонин, у личинок при описанном способе выращивания была на 15% ниже, а содержащих FMRFамид на 25% выше, чем у личинок, культивировавшихся в воде без неомицина.

Заявленный технический результат также иллюстрируются чертежами 1-5 и таблицей. На фиг. 1 показаны апикальные нейроны личинки мидии, культивированной по Примеру 4. Нейроны окрашены антителами против серотонина. Видно, что яркость окрашивания, и, следовательно, содержание серотонина существенно ниже у личинок, культивированных в воде соленостью 40‰ с 50 мкмоль/л неомицина.

На фиг. 2 показана нервная система личинки мидии, культивированной по Примеру 4. Нейроны окрашены антителами против пептида FMRFамида. Видно, что яркость окрашивания и количество выявленных нервных отростков, и, следовательно, содержание FMRFамида, существенно выше у личинок, культивированных в воде соленостью 40‰ с 50 мкмоль/л неомицина.

На фиг. 3 представлен график выживаемости личинок мидии при культивировании в воде различной солености. Видно, что количество личинок в воде с соленостью 40‰ в 2,5 раза больше, чем в воде с соленостью 33‰.

На фиг. 4 представлен график выживаемости личинок мидии при культивировании в воде с 50 мкмоль/л неомицина. Видно, что количество личинок в воде с неомицином в 8,5 раз больше, чем в контроле (без неомицина).

На фиг. 5 представлен график размеров личинок мидии при культивировании в воде с 50 мкмоль/л неомицина. Видно, что средний размер личинок в воде с неомицином на 62 мкм (32%), а максимальный на 89 мкм больше, чем у контрольных (культивировавшихся в воде без неомицина).

В Таблице показан процент личинок, достигших стадии педивелигера (готовой к оседанию личинки), у различных двустворчатых моллюсков на 17 день развития. Видно, что процент готовых к оседанию личинок у всех трех видов моллюсков в 7-18 раз больше, чем при культивировании в воде нормальной солености без неомицина.

Таким образом, представленные иллюстрации не только подтверждают результаты, полученные в примерах 1-4, но и наглядно демонстрируют, что добавление неомицина в морскую воду при доращивании личинок со стадии велигера до стадии педивелигера, а также дополнительное использование морской воды с повышенной соленостью 40-42‰ со стадии бластулы до стадии велигера, оказывают значительное влияние на содержание медиаторов серотонина и FMRFамида в нейронах личинки, что приводит к увеличению выживаемости и увеличению среднего размера личинок. В конечном результате, повышается продуктивность и уменьшается продолжительность культивирования личинок с момента оплодотворения до момента их высадки на субстрат.

1. Способ культивирования двустворчатых моллюсков, включающий сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям, доращивание личинок в морской воде, включая стадии бластулы, велигера и педивелигера, с последующим высаживанием на субстрат, отличающийся тем, что при доращивании личинок со стадии велигера до стадии педивелигера в морскую воду добавляют неомицин в количестве 30-50 мкмоль/л.

2. Способ по 1, отличающийся тем, что при доращивании личинок от стадии бластулы до стадии велигера используют морскую воду соленостью 40-42 ‰.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к аквакультуре и может найти применение для искусственного разведения рыб в условиях малых рыбоводных предприятий. Способ защиты рыб на ранних этапах онтогенеза осуществляют обработкой масляным раствором серусодержащего антиоксиданта (3,5-диметил-4-гидрокси)бензилтиододекан в процессе обесклеивания оплодотворенной икры.

Изобретение относится к области насосной техники и используется для перекачки живой взрослой рыбы, личинок и молоди с потоком воды в рыбоотводах рыбозащитных сооружений и при промышленном лове рыбы.
Способ предусматривает прием однодневных личинок и высаживание их с плотностью посадки 5000 экз./м2 в садки, где личинки проходят адаптацию. После перехода личинок на активное питание плотность посадки уменьшают до 1500 экз./м2, при этом до достижения средней массы тела рыб 1 г в садке используют стенки из сита №9-12, а дно из сита №17.
Способ предусматривает круглогодичное регулирование температурных режимов и их длительности с изменением температуры воды на 1-2°C в сутки. Производителям осетровых рыб в период выращивания и межнерестового нагула вводят путем внутримышечных инъекций препарат Гамавит.
Изобретение относится к способу искусственного размножения морского огурца. Способ включает сбор и стимуляцию особей к размножению путем деления.

Сетка представляет собой плетенку, изготовленную из отдельных спирально изогнутых продольных элементов. Изогнутые с образованием цилиндрической формы продольные элементы переплетают со смежными продольными элементами и расплющивают таким образом, что у отдельных изогнутых продольных элементов образуются приблизительно прямые проволочные участки.
Способ включает облов исследуемого водоема мелкоячейным неводом с коэффициентом вылова не более 0,2 при селективном и не более 0,3-0,4 при неселективном промысле. Затем определяют прирост ихтиомассы выживших рыб в возрастных и размерно-весовых классах и популяции в целом за год, а также коэффициенты восстановления ихтиомассы выживших рыб в возрастных и размерно-весовых классах и популяции в целом с последующим расчетом общего допустимого улова рыбы исходя из зависимостей: B-Y=By; By×ΔP/B=Py; By+Py=B, где B - исходная ихтиомасса рыбы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; Y - общий допустимый улов рыбы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; By - оставшаяся ихтиомасса отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; ΔP - прирост ихтиомассы выживших рыб отдельных возрастных классов или всей популяции в целом за год, кг/га; ΔP/B - коэффициент восстановления ихтиомассы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом; Py - прирост, создаваемый оставшейся ихтиомассой отдельных возрастных классов или всей популяции в целом (By), кг/га.

Изобретение относится к области рыбного хозяйства. Первый вариант рыбозаградительного экрана включает электронный блок управления и однорядную систему токопроводящих электродов, в котором отдельные электроды или электроды, объединенные в секции, размещены горизонтально.
Изобретение относится к области аквакультуры. Способ предусматривает получение 2-3 генераций жизнестойкой молоди в год от самок тропических раков, которых содержат на протяжении всего годового цикла в одной и той же, общей с самцами емкости с плотностью посадки не более четырех семейных групп на 1 м2.
Изобретение относится к рыбоводству. Способ предусматривает проведение нереста, подращивание личинок и дальнейшее выращивание молоди в бассейнах.
Способ предусматривает обработку икры и личинок рыб биологически активными веществами, содержащими микробную массу бактерий. До нереста в состав ежедневного рациона для производителей вводят пробиотик "Пролам" в количестве 0,6% по отношению к массе корма. Оплодотворенную икру, а затем личинки обрабатывают пробиотиком "Пролам" в количестве 0,4% от массы икры с экспозицией 15 мин. После перехода личинок на экзогенное питание в течение следующих 30 дней вводят в состав рациона пробиотик «Пролам» в количестве 0,6% по отношению к массе корма. Начиная с момента перехода личинок на экзогенное питание и до полного выращивания сеголеток, в состав рациона дополнительно вводят пробиотик «Бацелл» в количестве 0,2% по отношению к массе корма. Изобретение позволяет повысить плодовитость самок, оплодотворяемость икры и выход личинок при инкубации. 4 табл.
Способ мелиорации прибрежных экосистем относится к морской биотехнологии и предназначен для ликвидации негативных последствий антропогенного влияния на прибрежные морские экосистемы. В способе определяются основные параметры, отражающие негативное состояние района, акватории, сообщества, экосистемы, например переэфтрофикация среды, дисбаланс биогенов, недостаток организмов-фильтраторов, дефицит меро- или ихтиопланктона. Из арсенала марикультуры подбирается тип гидробиотического сооружения и технологический процесс, корректирующие состояние среды, уровень биоразнообразия и съем биомассы пищевого, кормового или технологического значения. Предлагаемый способ комплексно позволяет нейтрализовать негативные последствия влияния антропогенных факторов, сохранять санитарно-рекреационные качества среды и воспроизводить продукционный потенциал акваторий.

Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) относится к области морской аквакультуры и может быть использован для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской токсикологии, а также при выращивании личинок ценных морских рыб. В способе, отловленных из природных условий самок калянуса выдерживают в дезинфекционном растворе при температуре 15°С в течение 1,5 часов с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata, после чего осуществляют процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц, получают синхронную массовую продукцию яиц, из которых производят синхронный выклев науплиев и получают синхронные возрастные когорты калянуса. Преимущества способа заключаются в том, что впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования яиц самками калянусов, развития и выклева яиц калянусов, развития и роста молоди калянусов до достижения последней жизненной стадии. Проведение дезинфекции яиц позволяет освободиться от патогенных микроорганизмов, влияющих как на выживаемость самих калянусов, так и при использовании их в качестве живых кормов на выживаемость личинок рыб. Предлагаемый способ позволяет осуществлять предварительную оценку количества и качества получаемого материала.

Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море относится к марикультуре и предназначен для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях. В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaeíoceros calcitróos в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaeíoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./мл в при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией. Разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.

Способ диагностики и профилактики проктэкозиса черноморских мидий в условиях марикультуры. Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для диагностики и профилактики паразитарного заболевания черноморской мидии Mytilus galloprovincialis на мидийных фермах. У мидий изучают клинические признаки заболевания, по которым отбирают мидий для паразитологического анализа. Моллюсков считают слабо зараженными при содержании в одной мидии до 100 экз. спороцист, средне зараженными при содержании в одном моллюске до 150-500 партенит, сильно зараженными при содержании в одной мидии от 600 до 5000 партенит, гиперинвазироваными, если в одной мидии содержится свыше 6000 спороцист. В зависимости от этого проводят профилактические меры. Если мидия слабо зараженная, то увеличивают частоту отбора контрольных проб на ферм в 2-3 раза. Если средне зараженная мидия, то увеличивают объем выборки в пробе в 2 раза и регулируют плотность размещения коллекторов на носителях. Если сильно зараженная, то осуществляют выбраковывание ослабленных мидий на коллекторах и сбор опавших на дно мидий. Если мидия гиперинвазированная, то перемещают фермы в другое место.

Изобретение относится к рыбоводству и может быть использовано для учета биомассы и количества личинок. Устройство включает подвижную камеру, снабженную сеткой, резервуар для накопления гидробионтов и счетчик. Камера выполнена в виде эксцентрического ковша на шарнирах и соединена с механическим счетчиком. Личинки поступают с потоком воды из инкубационного аппарата в ковш через переходной лоток. Резервуар для накопления личинок расположен под эксцентрическим ковшом. Все элементы конструкции крепятся на несущей раме. Изобретение позволяет повысить точность учета личинок и уменьшить их травматизм. 1 ил.

Устройство состоит из абсорбционного аммиачного холодильного агрегата, включающего, в частности, термосифон и испаритель. Устройство оснащено параболическим зеркалом, концентрирующим солнечные лучи на термосифоне холодильного агрегата. Параболическое зеркало механически соединено с солнечной батареей, которая, в свою очередь, соединена с аккумуляторной батареей, блоком определения положения солнца и двигателем, приводящим в движение параболу с солнечной батареей. Изобретение позволяет использовать солнечную энергию для понижения температуры воды. 1 ил.

Способ получения питательной основы микробиологических сред относится к биотехнологии. Способ предназначен для получения основы для приготовления микробиологических питательных сред из сырья морского генеза и может быть использован в медицинской и технической микробиологии, в научно-исследовательской и практической работе для выделения и культивирования микроорганизмов. В способе получают щелочной гидролизат из моллюсков и соединяют с кислотным гидролизатом из рыбного сырья в соотношении 1:3-3:1, чтобы количество аминного азота была в пределах 600-900 мг %. Гидролиз гомогената рыбного сырья выполняют в кислотной среде. При приготовлении кислотного гидролизата из рыбного сырья к гомогенату рыбного сырья прибавляют 18-20%-ный раствор соляной кислоты до рН 4,5-5,0 и нагревают до 45-50°С на протяжении 22-26 ч, затем прибавляют концентрированную ортофосфорную кислоту до остаточной концентрации кислоты на равные 2% и осуществляют прогревание гомогената рыбного сырья при 100°С на протяжении 22-26 ч, затем гидролизат из рыбного сырья нейтрализуют добавлением 40%-ного раствора едкого натра до рН 6,8-7,4. При приготовлении щелочного гидролизата из моллюсков к измельченному сырью из моллюсков прибавляют 1,0%-ный раствор едкого натра в соотношении 1:1 и осуществляют гидролиз при 80°С на протяжении 20 - 24 ч, затем гидролизат из моллюсков нейтрализуют с добавлением концентрированной соляной кислоты до рН 6,8-7,4. Гидролиз сырья из моллюсков осуществляют к получению количества аминного азота в пределах 240-450 мг %. Соединение кислотного гидролизата из рыбного сырья со щелочным гидролизатом из моллюсков осуществляют с операцией нейтрализации гидролизата из рыбного сырья со следующим корректированием кислотности биомассы до pH 6,8-7,4. Кислотность полученной основы для микробиологических питательных сред корректируют до pH 7,0. Достигнуто расширение сырьевой базы и улучшение экологических условий производства.

Способ выращивания гетерозисных личинок гигантской устрицы Crassostrea gigas (Th) при культивировании в питомнике относится к марикультуре и предназначен для промышленного культивирования гигантской устрицы на Черном море в условиях питомника. В питомнике Института биологии южных морей НАН Украины (Севастополь) в 2006 г. получены гетерозисные гибриды гигантской устрицы Crassostrea gigas. В качестве производителей были использованы трехлетние устрицы из двух географически изолированных поселений: черноморского (инбредная линии) и атлантического. Черноморская когорта устриц отличалась более плоской формой раковины: индекс формы раковины (IF) равнялся соответственно 2,15 и 2,50. Инбредная линия устриц была выведена в результате скрещиваний между сибсами и при возвратных скрещиваниях. В пятом поколении достигнут «инбредний минимум», о чем можно было судить при сравнении с выживаемостью личинок четвертого поколения. Гетерозисные личинки, выращиваемые в условиях плотности посадки в три раза превышающей оптимальные значения, по скорости роста (в 1,2 раза) и выживаемости (в 2,5 и 4 раза) превышали потомков атлантической когорты устриц и личинок инбредной линии.

Способ изучения пополнения поселений мидии, митилястера и анадары в прибрежной зоне Черного моря относится к научным исследованиям в области экологии. Способ состоит в том, что в фиксированной точке исследуемой акватории в сезон оседания личинок (для мидий - на протяжении всего года, для митилястера и анадары - летом и осенью) ежемесячно экспонируется носитель с экспериментальными субстратами. После окончания 30 дней проводят замену носителя и определяют число личинок, которые осели на экспонированный субстрат. Перед экспонированием на носителе размещают не менее чем 2 субстрата с ворсистой поверхностью, а каждый субстрат выполняют в виде полосы шириной 3-6 см из акриловой комплексной нити, которую размещают плотно в один слой на цилиндрической части пластикового каркаса.

Изобретение относится к культивированию двустворчатых моллюсков с планктонной личинкой. Способ предусматривает сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям и доращивание личинок в морской воде. При доращивании личинок со стадии велигера до стадии педивелигера в морскую воду добавляют неомицин в количестве 30-50 мкмольл. Изобретение повышает эффективность выращивания личинок морских двустворчатых моллюсков в плотной культуре посредством одновременного повышения выживаемости личинок и ускорения процесса их развития. 1 з.п. ф-лы, 5 ил., 1 табл., 4 пр.

Наверх