Способ биологической оценки токсичности морской среды



Способ биологической оценки токсичности морской среды
Способ биологической оценки токсичности морской среды
Способ биологической оценки токсичности морской среды
Способ биологической оценки токсичности морской среды

 


Владельцы патента RU 2541456:

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского (RU)

Способ биологической оценки токсичности морской среды относится к биологическим способам оценки экологического риска и анализа загрязнения водной среды и может быть использован в марикультуре, водной токсикологии, рыбоводстве.

В способе в качестве биологических тест-объектов используются личинки черноморских рыб атерины (Atherina hepsetus, Atherina mochon pontica), которые помещаются в тестируемую среду и в стерилизованную морскую воду. Контролем служит тестируемая среда и стерилизованная морская вода без токсиканта. Проводят микрокалориметрические измерения теплопродукции личинок и на основании расчета удельной теплопродукции, а также ее снижения у тест-объектов, подвергнувшихся действию токсикантов по отношению к показателям интактных личинок, делают вывод об уровне токсичности морской среды.

Способ отличается высокой чувствительностью и позволяет произвести достоверную оценку состояния морской среды при низких уровнях концентрации токсикантов. Это дает возможность проводить раннюю диагностику уровня токсичности водной среды.

 

Предполагаемое изобретение относится к биологическим способам оценки экологического риска, предназначено для анализа загрязнения водной среды и может быть использовано в марикультуре, водной токсикологии, рыбоводстве.

Анализ качества водной среды в целом, и морской, в частности, имеет не только экологическое значение, но и экономическое, что определяет необходимость оценки пригодности использования.водных ресурсов в рекреационных, пищевых, марикультурных и других целях. В связи с этим, разработка быстрых, хорошо воспроизводимых и адекватных способов тестирования морской среды является актуальной задачей.

Существующие способы анализа содержания химических и микробиологических загрязнителей длительны и дорогостоящи, требуют наличия специальной технической базы, которая состоит из комплекса дорогостоящих приборов и реагентов, специального оборудования и обученного персонала. Кроме того, получаемые данные, как правило, сравнивают с предельно допустимыми нормативами (ПДК и ПДС), которые отличаются в разных странах и не всегда отражают истинную опасность среды для живых организмов. В настоящее время все большую популярность приобретают способы биотестирования, то есть исследование ответных реакций различных живых организмов на действие токсических веществ или их смеси.

Известно, что пагубный эффект стрессового воздействия инициирует, в первую очередь, ответную реакцию клеточных систем, что предполагает проводить анализ именно этих откликов, как наиболее чувствительных. Молекулярные параметры ответных реакций (биомаркеры) имеют то преимущество, что отражают эффекты основных обменных процессов на клеточном уровне. Биомаркеры дают возможность оценить как ранние проявления стресса, предшествующие видимому ухудшению общего состояния жизнедеятельности, так и соответствующие параметры, измеряемые на уровне организма. В то же время, они позволяют определить механизмы адаптации и восстановления гомеостаза организма в условиях действия неблагоприятных факторов среды. В качестве таких биомаркеров используются ферменты защитных систем организма (МОГ и антиоксидантной, показатели перекисного окисления липидов и др.), индукция которых под действием неблагоприятных факторов у разных морских организмов была показана нами и другими авторами (Руднева, Жерко, 1994; Руднева и др., 2004 а, б, в; Goksoyr et al., 1996; Viarengo, 1989; Winston, 1991). Вместе с тем, реакции вышеперечисленных биохимических показателей не всегда четко выражены и имеют одинаковую направленность, их вектор во многом зависит от концентрации действующего фактора и физиологического состояния организма. Следует учитывать также, что все эти биохимические измерения возможны только после гибели животных, что вносит дополнительный стрессовый фактор. Именно поэтому особую значимость приобретают такие тест-системы, которые позволяют оценить среду обитания организма прижизненно в течение достаточно короткого времени и, не травмируя тест-объект.

Известен Способ биологической оценки токсичности водной среды (см. А.с. № 1294315, СССР, МКИ А01K 61/00), в котором тест-объекты - непитавшуюся молодь пиявок (Hirudo redicinalis), разделяли на 2 группы - опытную и контрольную и размещали в соответствующие емкости. Осуществляли подачу чистой и исследуемой воды в емкости, периодически регистрировали поведенческие функции тест-объектов в группах, сравнивали полученные результаты и определяли наличие токсичности веществ в воде по изменению поведенческой функции опытных тест-объектов по сравнению с контрольными. Недостатки способа заключаются в субъективности, вследствие визуального определения изменения поведенческой функции тест-объектов и его низкой чувствительности.

Известен Способ определения токсичности водных сред (см. А.с. № 1328756 G01N 33/18, СССР), который состоит в том, что гидробионтов предварительно адаптировали к условиям содержания в чистой водной среде, строили калибровочные кривые зависимости концентрации эталонного токсиканта от времени появления экстремумов показателей гидробионтов, и относительной величины этих экстремумов. Затем исследуемую водную среду нагревали и аэрировали до получения значения температуры и концентрации кислорода в ней, соответствующих тем, к которым ранее адаптировались гидробионты. Заменяли чистую водную среду в сосудах с гидробионтами на исследуемую водную среду, регистрировали изменения во времени величин показателей у гидробионтов в исследуемой водной среде, определяли время появления экстремумов показателей или относительную величину этих экстремумов. После этого определяли с помощью калибровочных кривых концентрацию эталонного токсиканта, соответствующую времени появления экстремумов показателей гидробионтов, находящихся в исследуемой водной среде, или относительной величины этих экстремумов. В качестве тест-объектов использовали рыб, моллюсков, речных раков, высшие водные растения. В качестве регистрируемого показателя рассматривали или двигательную активность, или интенсивность потребления кислорода гидробионтами, или их термоустойчивость. Известный способ имеет ряд недостатков:

- при проведении ранней диагностики состояния водной среды используемые в способе двигательная активность, интенсивность потребления кислорода, анализ поведенческих реакций, термоустойчивость являются субъективными, не способными продемонстрировать отклик системы и не обладают высокой чувствительностью;

- в способе ведется сравнение с ПДК;

- способ не позволяет зафиксировать ранние патологические изменения в физиологическом состоянии организма при действии неблагоприятных факторов в малых дозах;

- способ не способен дать экспресс-оценку состояния водной среды из-за длительности проведения.

В основу изобретения «Способ биологической оценки токсичности морской среды» поставлена задача путем микрокалориметрических измерений параметров биологических тест-объектов в прижизненном состоянии, обеспечить проведение ранней диагностики токсичности водной морской среды и повышение чувствительности способа.

Поставленная задача достигается тем, что в Способе биологической оценки токсичности морской среды в качестве биологических тест-объектов используются личинки черноморской рыбы атерины (Atherina hepsetus, Atherina mochon pontica). Личинки атерины помещаются в исследуемую среду и в стерилизованную морскую воду, а контролем является исследуемая среда и стерилизованная морская вода без токсиканта. Проводят микрокалориметрические измерения теплопродукции личинок и на основании расчета удельной теплопродукции, а также ее снижения у тест-объектов, подвергнувшихся действию токсикантов по отношению к показателям интактных личинок, делают вывод об уровне токсичности морской среды.

Применение микрокалориметрического метода имеет ряд преимуществ:

Во-первых, он позволяет провести прижизненные измерения основных энергетических параметров гидробионтов: общий метаболизм организма и его изменения при действии неблагоприятных факторов;

Во-вторых, микрокалориметрический метод наиболее адекватен при измерении показателей теплопродукции, отражающей состояние общей метаболической активности организма, и отличается высокой чувствительностью;

В-третьих, предлагаемый способ отражает неспецифические реакции биологических тест-объектов на действие неблагоприятных факторов.

Использование в качестве контроля 2-х ампул, содержащих морскую воду с токсикантом и стерилизованную морскую воду соответственно, позволяет получить достоверные данные.

Известно, что рыбы, особенно на ранних стадиях онтогенеза (икра, личинки, мальки), наиболее чувствительны к действию неблагоприятных факторов, что создает дополнительную возможность повысить чувствительность биотестирования с использованием в качестве тест-объекта икру или личинок рыб. Часто используются пресноводные рыбы (гуппи, данио), но для анализа морской среды выбор ихтиологических объектов крайне ограничен. Авторами был проведен анализ теплопродукции личинок черноморской атерины Atherina hepsetus и было показано снижение их теплопродукции при действии неблагоприятных факторов. Одновременно, по изменению биохимических маркеров было установлено, что личинки атерины являются весьма чувствительными объектами к действию токсикантов. Другими исследователями личинки атерины также были использованы в качестве тест-объектов в экотоксикологических исследованиях, однако, измеряемые параметры ограничивались исключительно оценкой выживаемости, роста и развития некоторых биологических параметров.

Изобретение поясняется фигурами: фиг. 1 - Действие ПХБ для личинок атерины; фиг. 2 - Действие фунгицида купросата; фиг. 3 - Действие сточных вод; фиг. 4 - Уровни метаболизма личинок рыб из чистого и загрязненного районов

Способ реализуется следующим образом.

Личинок атерины длиной 6-7 мм отлавливают с помощью сака в прибрежной части моря и переносят в емкости с профильтрованной морской водой в лабораторию. Исследование теплопродукции личинок осуществляют на Мониторе биологической активности ТАМ 2277 (Швеция, Thermometric). В две ампулы, содержащие по 2 мл морской воды с токсикантом и стерилизованной морской воды соответственно, помещают по одной личинке черноморской атерины Atherina hepsetus в прижизненном состоянии. Контролем служат ампулы с морской водой с токсикантом и со стерилизованной морской водой. Ампулы герметически закрывают и помещают в измерительные цилиндры Монитора биологической активности, где проводят измерение теплопродукции при температуре +20°С в течение 15-24 часов. Сигнал калориметра фиксируют через каждые 10 минут и пересчитывают интегральное значение теплопродукции с помощью специально адаптированной компьютерной программы Digitam. Дальнейший анализ результатов проводят по калориметрическим кривым, полученным в результате 3-4 параллельных измерений. При этом средние показатели теплопродукции рассчитывали на основании значений, полученных через каждый час, и обрабатывали статистически (М+т); достоверность различий анализировали с помощью критерия Стьюдента (р<0.05).

Примеры реализации способа

Пример 1.

Оценка токсичности морской среды, содержащей ПХБ, для личинок атерины Оценивали влияние ПХБ на теплопродукцию личинок атерины. Арохлор 1254 растворяли в гексане и добавляли в морскую воду из расчета 1 нг/л. Личинку атерины помещали в ампулу, содержащую 2 мл морской воды с токсикантом. Одновременно, в другую ампулу, содержащую чистую стерилизованную морскую воду, также помещали личинку атерины. Обе ампулы устанавливали в измерительные цилиндры Монитора биологической активности против контроля, которым в первом случае служила морская вода с растворенным токсикантом, во втором - стерилизованная морская вода. Исследования проводили в течение 15 часов и рассчитывали средние значения теплопродукции личинок атерины, подвергнутых действию ПХБ и интактных. Результаты показали снижение уровня теплового потока более, чем в 2 раза у личинок в среде с ПХБ (14.87 против 5.46 мквт/личинка, р<0.01) (см. фиг. 1).

Пример 2.

Оценка токсичности морской среды, содержащей фунгицид купроксат, для личинок атерины

Оценивали влияние фунгицида купроксата на теплопродукцию личинок атерины. Подготовку эксперимента проводили так же, как описано выше. Личинок атерины помещали в ампулы, содержащие морскую воду с соответствующей концентрацией фунгицида и стерилизованную морскую воду. Измерения теплопродукции проводили против холостой пробы, содержащей по 2 мл стерилизованной морской воды с соответствующими концентрациями купроксата. Купроксат использовали в концентрациях 0.156, 0.312, 0.625, 1.25 и 2.5 мг/л. Исследования проводили в течение 24 часов при температуре +20°С. Во всех опытных вариантах наблюдали достоверное снижение теплопродукции (р<0.01) (см. фиг. 2).

Пример 3.

Оценка токсичности морской среды, содержащей бытовые сточные воды, для личинок атерины

Оценивали влияние бытовых сточных вод, полученных на очистных сооружениях г. Севастополя, на теплопродукцию личинок атерины. Подготовку эксперимента проводили по схеме, описанной выше. Сточные воды использовали в концентрациях 1, 10, 100 мл/л. В качестве холостой пробы, против которой проводили измерения теплопродукции, использовали стерилизованную морскую воду, содержащую сточные воды в соответствующих концентрациях. Исследования проводили в течение 24 часов при температуре +20°С. Наблюдали достоверное снижение теплопродукции в опытных вариантах по отношению к контролю( р<0.01),

в качестве которого, как и в предыдущих случаях, использовали личинок атерины, помещенных в ампулу с 2-мл стерилизованной морской воды (см. фиг. 3). Пример 4.

Оценка токсичности морской среды для личинок атерины, отловленной в условно чистом и загрязненном районах

Оценивали влияние токсичности естественной морской среды с разным уровнем загрязнения на теплопродукцию личинок атерины. Подготовку эксперимента проводили так же, как описано выше. Личинок атерины отлавливали в условно чистом районе и в загрязненном. Исследования проводили в течение 24 часов при температуре +20°С. В качестве холостой пробы, против которой проводили измерения теплопродукции, использовали стерилизованную морскую воду из двух исследуемых районов. Наблюдали достоверное снижение теплопродукции (р<0.01) у личинок, отловленных в загрязненном районе по сравнению с соответствующими показателями личинок рыб из условно чистого района (см. фиг. 4).

Таким образом, результаты примеров свидетельствуют о снижении теплопродукции личинок атерины, подвергнутых действию различных токсикантов и их смеси (сточные воды, общее загрязнение естественной среды обитания).

Преимущества предложенного способа по сравнению с известным способом заключаются в том, что, благодаря использованию микрокалориметрии, а также личинок атерины в прижизнненном состоянии, он отличается высокой чувствительностью. Известные способы не в состоянии дать оценки состояния морской среды при низких уровнях концентрации токсикантов. Это позволяет проводить раннюю диагностику уровня токсичности водной среды.

Раннее определение сублетальных эффектов может быть использовано для разработки мероприятий по восстановлению локальных экосистем, подвергнутых действию стрессовых факторов. Способ может быть реализован для экспресс-оценки морской среды с положительным результатом.

1. Способ биологической оценки токсичности морской среды включающий внесение в исследуемую среду биологических тест-объектов, измерение параметров физиологического состояния биологических тест-объектов и сравнение их с контролем, отличающийся тем, что в качестве биологических тест-объектов используют личинок черноморской рыбы атерины (Atherina hepsetus, Atherina mochon pontica), у которых измеряют теплопродукцию микрокалориметрическим методом и на основании расчета удельной теплопродукции у тест-объектов, подвергнувшихся действию токсикантов относительно показателей интактных личинок, делают вывод о токсичности морской среды.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что измеряют теплопродукцию личинок черноморской рыбы атерины (Atherina hepsetus, Atherina mochon pontica, помещенных в морскую воду с токсикантом и в стерилизованную морскую воду соответственно.

3. Способ по пп. 1 и 2, отличающийся тем, что контролем служит морская вода с токсикантом и стерилизованная морская вода соответственно.



 

Похожие патенты:

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Более подробно группа изобретений относится к способу определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях и тест-системе.

Изобретение относится к экологии, охране окружающей среды, к способам и средствам мониторинга окружающей среды и может быть использовано для контроля загрязнений водоемов полихлорированными бифенилами.

Изобретение относится к водной токсикологии и может быть использовано для биоиндикации и биотестирования загрязненных вод и отдельных поллютантов и может быть использовано в качестве дополнительного метода к биотестам обязательного применения при определении качества вод, в которых (представительным) доминирующим видом является губка (Spongia).

Изобретение относится к аналитической химии, конкретно к химическим индикаторам на твердофазных носителях, и может быть использовано для экспрессного определения металлов в водных средах и бензинах с помощью реагентных индикаторных трубок на основе хромогенных дисперсных кремнеземов.

(57) Изобретение относится к области экологии и предназначено для оценки токсичности воды и донных отложений Азовского и Черного морей. Способ включает помещение флуоресцирующих тест-объектов в контрольные и анализируемые пробы, облучение возбуждающим светом, определение флуоресцентных характеристик, по изменению которых судят о токсичности контролируемой среды.

Изобретение относится к области экологии. Способ оценки экологического благополучия прибрежных морских донных экосистем заключается в изучении морфофункциональных характеристик массовых двустворчатых моллюсков, при этом в качестве показателя благополучия используют морфофункциональные характеристики хамелей: измеряют содержание АТФ в гемоцитах, концентрацию гемоцитов в гемолимфе, уровень гистопатологий, определяемый как процентное содержание особей с гистопатологией, и об уровне загрязнения судят по изменению этих показателей в сравнении с аналогичными показателями у хамелей, обитающих в оптимальных условиях обитания, при этом, чем меньше концентрация АТФ и гемоцитов и больше уровень гистопатологий, тем менее благополучная ситуация наблюдается в морской донной экосистеме.

Группа изобретений относится к определению токсичности и может найти широкое применение в аналитической практике при определении токсичности разнообразных жидких сред без привлечения дорогостоящих и трудоемких методов анализа.

Изобретение относится к области экологии и гидробиологии и предназначено для оценки трофического статуса экосистем минерализованных озер. При оценке трофического статуса озерной экосистемы с минерализацией воды более 3 г/дм3 по уровню развития водных сообществ учитывают негативное действие уровня минерализации путем расчета величины потерянной биомассы с помощью полученной эмпирической зависимости и ее аппроксимации в виде степенной функции вида: где В' - расчетная биомасса, X - минерализация воды, а к1 и к2 - эмпирические коэффициенты. где Bp - потенциально потерянная биомасса при возрастании минерализации, В'' - расчетная биомасса при минерализации 3 г/дм3.

Изобретение относится к приборостроению и теории измерений и вычислений и предназначено для непрерывного измерения биохимического потребления кислорода (БПКт), биохимической потребности в кислороде (БПК) и скорости биохимического потребления кислорода в водной среде (k1). Предлагается принципиально новый способ и устройство, позволяющее в непрерывном режиме одновременно измерять БПКт, БПК и k1 как в проточной воде (река, коллектор сточных вод и др.), так и в водоеме. Способ непрерывного измерения упомянутых показателей характеризуется тем, что организуют непрерывный поток забираемой на анализ воды из водного объекта в трубопровод, причем скорость течения воды в трубопроводе подбирают так, чтобы за требуемый период времени Т (где Т-длительность биохимического потребления) вода проходила расстояние между двумя соседними створами трубопровода, в которых установлены датчики для непрерывного измерения концентрации растворенного кислорода в проточной воде. Устройство для осуществления данного способа состоит из водозаборного модуля и трубопровода с непрозрачными стенками, на котором в створах установлены датчики непрерывного измерения концентрации растворенного кислорода, позволяющие вести мониторинг одновременно трех упомянутых показателей качества воды.

Группа изобретений относится к системам и средствам контроля безопасности использования объектов промышленного и бытового назначения. Система контроля водоотводов содержит множество объектов, сообщенных отводящим трубопроводом с водоочистителями, каждый из которых расположен на территории объекта и сообщен с магистральным трубопроводом.

Изобретение относится к измерительной технике и предназначено для определения концентраций сахаросодержащих растворов непосредственно в технологической цепи сахарного производства теплофизическим методом по зависимости выходного напряжения термопреобразователей от концентрации сахаросодержащих растворов.

Способ определения влияния токсичности сточных вод на водные соленые среды относится к водной токсикологии и предназначен для оценки токсичности морской среды, содержащей сточные воды. Способ состоит из определения показателей роста культуры морской одноклеточной водоросли в тестируемой воде и включает культивирование культуры морской одноклеточной водоросли, процедуру биотестирования, состоящую из отбора проб воды, внесения в контроль и в тестируемую среду инокулята культивируемой водоросли, подсчета численности клеток водоросли. В качестве тест объектов используют культуры одноклеточных морских микроводорослей Platymonas viridis Rouch и Dunaliella salina Teod, на которых проводят долгосрочный (15-суточный) эксперимент. Микроводоросль Platymonas viridis Rouch используют для оценки влияния токсичности стоков на морскую среду.

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для повышения эффективности и достоверности определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проведения твердофазного иммуноферментного анализа. Способ определения уровня токсикантов в воде, продуктах питания или физиологических жидкостях путем проводимого в колонке тест-системы твердофазного иммуноферментного анализа заключается в том, что в колонке тест-системы размещают носитель, в качестве которого используют активированную твердую фазу физической сорбции - активированную пористую подложку с привитыми ковалентно связанными молекулами токсиканта, производят обработку носителя блокирующим раствором для закрытия на носителе оставшихся свободными мест неспецифического связывания, вносят тестируемые образцы, содержащие определенное количество предварительно введенных специфичных к токсиканту антител, при этом производят обработку носителя конъюгатсодержащим раствором, в качестве которого используют раствор конъюгата антивидовых антител, химически связанных с люминесцентными квантовыми точками или с липосомами, содержащими люминесцентные квантовые точки, а уровень токсикантов определяют путем освещении обработанного носителя возбуждающим излучением по интенсивности люминесценции, возбужденной в квантовых точках. Тест-система для данного способа включает колонку, в которой установлен носитель в виде активированной твердой фазы физической сорбции - активированной пористой подложки с привитыми ковалентно связанными молекулами токсиканта, при этом колонка снабжена устройством для измерения уровня люминесценции, включающим источник возбуждающего излучения и фотоприемник, причем перед фотоприемником дополнительно установлена фокусирующая оптическая система, а выход фотоприемника электрически подключен через усилитель сигнала и аналого-цифровой преобразователь к блоку управления - контроллеру, к выходу которого подключены блок индикации и через блок стабилизации источник возбуждающего излучения, при этом боковые стенки колонки выполнены из прозрачного для возбуждающего и люминесцентного излучения материала. Изобретение повышает эффективность и достоверность определения. 2 н. и 2 з.п. ф-лы, 3 пр., 1 ил.

Изобретение относится к области аналитической химии применительно к анализу природных, поверхностных, подземных, сточных и технологических вод. Способ включает разделение с последующей идентификацией ацетона и метанола на капиллярной хроматографической колонке в потоке газа-носителя, представляющем собой азот; образование и регистрацию пламенно-ионизационным детектором исследуемых ионов, образующихся в пламени, при этом готовят основной раствор, хорошо сохраняющийся 2 месяца, при температуре от -2°C до -5°C, готовят промежуточный раствор с концентрацией 6,32 мг/дм3 разведением основного раствора очищенной водой, готовят градуировочные растворы для диапазона концентраций: ацетон 0,025-6,32 мг/дм3, метанол 0,025-6,32 мг/дм3 разведением водой промежуточного раствора, градуируют хроматограф, вводя в него предварительно отобранную паровую фазу градуировочных растворов, строят градуировочный график, после термостатирования исследуемого раствора отбирают паровую фазу парофазным шприцем и вводят в испаритель хроматографа, данные обрабатывают компьютерной программой ChemStation, которой комплектуется хроматографический комплекс МАЭСТРО 7820А. Достигается повышение точности и надежности, а также ускорение анализа. 2 ил., 6 табл., 1 пр.

Изобретение относится к устройству и способу детектирования качества жидкости, используемых в устройствах очистки воды. Устройство детектирования «визуализирует» качество воды в виде видимого излучения вместо преобразования интенсивности ультрафиолетового излучения в цифровую форму и содержит первое окно детектирования, покрытое первым материалом для преобразования принятого первого ультрафиолетового излучения, которое испускается источником ультрафиолетового излучения и проходит через жидкость, в первое видимое излучение. Устройство дополнительно смешивает первое видимое излучение со вторым видимым излучением для генерации третьего видимого излучения. Различный цвет третьего видимого излучения отражает разное качество воды. Изобретение позволяет упростить устройство и способ за счет отсутствия в воде датчиков ультрафиолетового излучения, детектирующих интенсивность ультрафиолетового излучения. 3 н. и 11 з.п. ф-лы, 6 ил.

Изобретение относится к исследованию и анализу материалов и может быть использовано для определения структурного состояния талой воды в разное время после таяния. Представлен способ индикации структурного состояния воды, в котором определяют потенциал стеклоуглеродного электрода, погруженного в исходную воду, затем определяют потенциал электрода, погруженного в талую воду, за время релаксации талой воды до состояния исходной воды по полученным тестовым релаксационным зависимостям потенциала от времени, температуры и значению потенциала φ в данный момент времени τ судят о структурном состоянии воды и времени возврата t в исходное структурное состояние. Достигается повышение точности, достоверности, экспрессности и информативности индикации. 5 табл., 2 ил.

Изобретение относится к аналитической химии, а именно к способу определения концентрации гидрохлорида полигексаметиленгуанидина (ПГМГ) в водах различных типов. Способ основан на взаимодействии катионов ПГМГ с реагентом, представляющим собой предварительно полученный коллоидный раствор отрицательно заряженных наночастиц серебра в цитратном буфере. В ходе определения образуются агрегаты наночастиц, рэлеевское рассеяние которых измеряют путем синхронного сканирования спектра флуоресценции с нулевой разностью длин волн эмиссии и регистрации, сигнал измеряют при 485 нм. В водопроводной воде линейность градуировочной зависимости наблюдается в диапазоне 0,07-2,2 мг/л, в сточной воде ливневой канализации - в диапазонах 0,007-0,7 и 0,7-2,2 мг/л, относительное стандартное отклонение составляет 0,02-0,03. Использование способа позволяет расширить диапазон определяемых концентраций ПГМГ в воде, в частности определять концентрации ПГМГ в сточной воде на уровне ПДК для воды водоемов рыбохозяйственного назначения (0,01 мг/мл) и ниже. При этом определению ПГМГ (4·10-7 М ПГМГ в чистой воде) не мешает наличие примесей в количестве не более: 0,05 М NaCl, 200 мг/л ионов кальция, 120 мг/л ионов магния, 0,5 мг/л ионов меди (II), 0,14 мг/л н-додецилсульфата натрия, 0,1 мг/л гуминовых кислот, 0,25 мг/л неионных поверхностно-активных веществ, 0,025 мг/л катионных поверхностно-активных веществ, 0,1 мг/л бычьего сывороточного альбумина, 2,5 мкг/л полиэтиленимина. 4 табл., 3 пр., 2 ил.

Изобретение относится к анализам количественного определения содержания изотопа дейтерия в жидкостях различной природы с использованием методов ядерного магнитного резонанса. Воздействие на исследуемую пробу производят электромагнитным излучением радиочастотного диапазона в постоянном магнитном поле спектрометра ядерного магнитного резонанса для чего исследуемое вещество помещают в ампулу, затем в эту ампулу вставляют эталонный образец, представляющий собой запаянную ампулу меньшего диаметра, содержащую водный раствор лантаноидного сдвигающего реагента и воды с известным содержанием дейтерия, после чего эту систему ампул опускают в спектрометр ядерного магнитного резонанса и регистрируют спектр на ядрах дейтерия, в котором наблюдают разнесенные по частоте резонанса пики исследуемого и эталонного образцов, затем измеряют интегральную интенсивность каждого пика, сопоставляют их значения и методом пропорции определяют концентрацию дейтерия в исследуемом образце. В качестве лантаноидного сдвигающего реагента используют трифторметансульфонат европия(III) ((Eu(CF3SO3)3), который способен индуцировать парамагнитный химический сдвиг сигнала ядерного магнитного резонанса. Достигается повышение точности и чувствительности, а также упрощение и ускорение анализа. 1 пр., 1 ил.

Изобретение относится к области исследований экологического состояния водоемов. Способ включает определение среднемесячной температуры воды, уровня выпавших осадков и уровня влажности воздуха. Показатель риска размножения сине-зеленых водорослей в водоеме вычисляют по математической зависимости: -0,896+0,709×A-1,195×В+0,175×С. При этом А - средняя температура воды водоема (в градусах по шкале Цельсия), В - уровень выпавших осадков (мм), С - влажность воздуха (%). При значении K от 0 до 3 риск размножения сине-зеленых водорослей в водоеме оценивают как «низкий», при значении K от 3 до 7 риск размножения сине-зеленых водорослей в водоеме оценивают как «средний», при значении K выше 7 риск размножения сине-зеленых водорослей в водоеме оценивают как «высокий». Изобретение обеспечивает оперативную оценку риска размножения сине-зеленых водорослей в водоеме. 2 пр.
Наверх