Способ оценки воздействия света, генерируемого светодиодными источниками освещения, на функции нейтрофильных гранулоцитов периферической крови


 


Владельцы патента RU 2545871:

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Южно-Уральский государственный университет" (национальный исследовательский университет) (ФГБОУ ВПО "ЮУрГУ" (НИУ)) (RU)

Изобретение относится к области медицины, а именно к исследованиям нейтрофилов крови при действии факторов различной природы, и может быть использовано для оценки влияния света, генерируемого светодиодными источниками освещения, на клеточные факторы врожденного иммунитета. Для этого на нейтрофильные гранулоциты, выделенные из периферической крови здоровых доноров, воздействуют светом, генерируемым светодиодами с цветовой температурой 4000-4500K в диапазоне длин волн 320-400 нм и интенсивностью светового потока 0,003 Вт/м в течение трех различных временных интервалов. Затем регистрируют повышение или понижение фагоцитарной, лизосомальной, НСТ-редуцирующей активности нейтрофильных гранулоцитов более чем на 15% от референсных значений, по изменению функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов делают вывод о биологических эффектах воздействия светодиодного освещения на функциональную активность нейтрофильных гранулоцитов.

Использование данного способа позволяет объективно оценивать действия физических факторов на организм человека при использовании моделей клеточных культур нейтрофильных гранулоцитов. 3 табл.

 

Изобретение относится к области медицины, в частности к исследованиям нейтрофилов крови при действии факторов различной природы, и может быть использован для оценки влияния света, генерируемого светодиодными источниками освещения, на клеточные факторы врожденного иммунитета.

В настоящее время для оценки влияния света, генерируемого светодиодными источниками, используется анализ функций зрительного анализатора, который позволяет не только диагностировать патофизиологические процессы органа зрения, но и предложить решение гигиенических проблем, связанных с использованием осветительных приборов [Кучма В.Р. Гигиенические основы использования светодиодов в системах искусственного освещения / В.Р. Кучма, Л.М. Текшева // М.: - ФГБУ «Научный центр здоровья детей» РАМН, 2013. - 246 С.].

С обнаружением нового типа фоторецепторов в глазу и фотоакцепторов у нейтрофилов, появилось понимание невизуального биологического влияния света на организм [Брейнард Г.К. Восприятие света как стимула незрительных реакций человека / Г.К. Брейнард, И. Провенсио // Светотехника. - 2008. - №1. - С.6-12.]. При попадании света в клетки-рецепторы начинается сложная химическая реакция (с участием фотопигмента меланопсина) с продуцированном электрических импульсов. Эти клетки имеют тесные связи с двумя образованиями в мозгу: супрахиазматическими клетками (SCN) и с эпифизом, регулирующим секрецию определенных гормонов в организме [Brainard G.C. Photoreception for regulation of melatonin and the circadian system in humans / G.C. Brainard // Fifth International LRO Lighting research symposium, Orlando. 2002. - С.23-26].

В сетчатке глаза световые волны определенной длины превращаются в энергию нервного импульса, которая передается по зрительному нерву в верхнюю часть спинного и в затылочную долю головного мозга, влияя на основные центры управления организмом, расположенные в головном мозге, в том числе на деятельность врожденных иммунных механизмов регуляции, осуществляемых нейтрофилами - клетками, имеющими рецепторы, специфичными к восприятию кванта света [Долгушин, И.И. Нейтрофилы и гомеостаз / И.И. Долгушин, О.В. Бухарин; УрО РАН. - Екатеринбург, 2001. - 258 С.; Гизингер О. А., Исследовательские подходы в области безопасности освещения в условиях мегаполиса / О.А. Гизингер, М.В. Осиков, О.Р. Бокова, и др. // Полупроводниковая светотехника. - 2013. - Т.1, №21. - С.60-61].

Способ оценки биологических эффектов действия искусственных источников света имеет важное значение для определения риска возникновения, как патологии органа зрения, так и системных патологических процессов [Биске К. Субъективные оценки цветопередачи в зависимости от спектра излучения источников света / К. Биске, К. Вандаал, К. Юнгнич // Светотехника. - 2007. - №5. - С.14-17]. Однако используемый в качестве монометодики способ оценки действия света на организм имеет определенные недостатки. В частности, использование человека как объекта исследования, а также дискомфорт, создаваемый для обследуемых при проведении эксперимента, приводящий к субъективной оценке результатов при проведении исследований in vivo, приводит к снижению валидности (достоверности) получаемых результатов.

Используется также биохимическая оценка влияния света, генерируемая различными искусственными носителями, в том числе и светодиодными, позволяющая выявлять возможные эндокринные нарушения [Анисимов В.Н. Эпифиз, биоритмы и старение организма / В.Н. Анисимов // Успехи физиологических наук. - 2008. - Т.39. - №4. - С.52-60]. Однако чувствительность и специфичность такого способа не может быть очень высокой из-за вариабельности биохимических показателей, отсутствия строгих критериев включения и исключения испытуемых из обследования, высокой стоимости химических реактивов, человеческих трудозатрат.

Из уровня техники известен способ изучения воздействия света путем проведения анализа умственной работоспособности и утомляемости, светового и цветового восприятия с применением психологического тестирования. При этом психологическое тестирование может установить лишь нервно-психическое состояние обследуемых [Кришталь B.C. Влияние цветности освещения на психофизиологическое состояние человека / B.C. Кришталь, Ф.П. Говоров // Свiтлотехнiка та електроенергетика. - №5. - 2005. - С.20-24]. Вместе с тем значения отдельно взятых параметров, полученных по результатам тестирования, анкетирования либо комплекса тестирование и анкетирование, не всегда отражают истинное состояние влияния искусственного света на все органы и системы человека, что связано с многообразием системных и локальных дисфункций, возникающих на фоне длительного воздействия искусственного света [Долгушин И.И. Нейтрофилы и гомеостаз / И.И. Долгушин, О.В. Бухарин, УрО РАН. - Екатеринбург, 2001. - 258 С.].

Известен способ прогнозирования риска возникновения патологии сердечно-сосудистой системы при воздействии освещения, генерируемого светодиодами или иными искусственными источниками освещения по оценке степени вариабельности сердечного ритма и анализе вегетативного показателя ритма сердца [Кудряшов Е.А. Применение вариабельности сердечного ритма для оценки организма и прогноза заболеваний / Е.А. Кудряшов, Л.М. Лавров // Нижегородский медицинский журнал. - №5. - 2008. - С.52-60]. Данный способ используется в медицине, но имеет ограниченное применение, вследствие сложного дорогостоящего оборудования.

Существуют способы, позволяющие при помощи анкетирования оценить влияние света на психосоматическое состояние обследуемых, однако при их использовании также не исключено влияние субъективных эндогенных и экзогенных факторов, влияющих на результаты исследования [Кучма В.Р. Гигиенические основы использования светодиодов в системах искусственного освещения / В.Р. Кучма, Л.М. Текшева // М.: - ФГБУ «Научный центр здоровья детей» РАМН, 2013. - 246 с.]. Поскольку значения, полученные при данных методах исследований могут быть ошибочными, например при проведении анкетирования или анализе биохимических показателей крови, что наиболее точным отражением выраженности действия света, генерируемого светодиодными носителями, может стать изучение действия света на модели клеток имеющих фоторецепторы для квантов света [Козель А.И. Механизм действия лазерного излучения на тканевом и клеточном уровне / А.И. Козель, Г.К. Попов // Вести. РАМП. - 2000. - №2. - С.41-43.; Karu, T.I. Photobiological fundamentals of low-level laser therapy / T.I. Karu // IEEE J. Quant. Elect. - 1987. - Vol.QE-23. - P.1703-1717].

Известен способ оценки эффективности дезинтоксикационной терапии при воздействии токсинов различной природы [патент РФ №2334989 «Способ оценки эффективности дезинтоксикационной терапии при воздействии токсинов различной природы», МПК G01N 33/68, опубл. 27.09.2008 - прототип]. Данный способ применяется в медицине, в частности при исследованиях нейтрофилов крови при действии токсинов различной природы, но имеет ограниченное применение, вследствие трудностей изучения ферментных систем нейтрофилов in vivo, дороговизны трудозатрат при проведении методики и невозможности его широкого использования в лабораториях.

В основу изобретения положена задача, заключающаяся в создании способа, позволяющего статистически грамотно оценить воздействие света, генерируемого светодиодными источниками освещения на нейтрофильные гранулоциты, выделенные из периферической крови здоровых доноров.

Поставленная задача достигается тем, что в способе оценки воздействия света, генерируемого светодиодными источниками освещения на функции нейтрофильных гранулоцитов, выделенных из периферической крови здоровых доноров, согласно изобретению оценку эффективности и биобезопасности светодиодных излучений оптического диапазона проводят на культуре нейтрофильных гранулоцитов-клеток иммунной системы, максимально быстро реагирующих на любые экзогенные воздействия, причем воздействуют светом, генерируемым светодиодами с цветовой температурой 4500K в диапазоне длин волн 320-400 нм в течение трех различных временных интервалов, затем регистрируют повышение или понижение фагоцитарной, лизосомальной, НСТ-редуцирующей активности нейтрофильных гранулоцитов более чем на 15% от референсных значений, по изменению функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов делают вывод о биологических эффектах воздействия светодиодного освещения на функциональную активность нейтрофильных гранулоцитов.

Указанная задача решается за счет того, что в заявляемом способе биологическая оценка действия света, генерируемого светодиодными источниками освещения, происходит в более короткие сроки с полноценным клиническим и функциональным результатом, исключая прямое участие человека как модели для проведения эксперимента.

Применение способа не требует дорогостоящей аппаратуры, дефицитных химических реактивов, способ доступен в практике санитарно-гигиенических служб, особенно важен при оценке биобезопасности новых, внедряемых в цветосветовую среду светодиодных источников, расширяет информацию о биологических эффектах света оптического диапазона.

Заявляемый способ позволяет объективно оценивать действия физических факторов на организм человека при использовании моделей клеточных культур нейтрофильных гранулоцитов. Ранее с помощью анализа клеточных культур проводилась оценка влияния низкоинтенсивного лазерного излучения на нейтрофилы периферической крови доноров и секретов урогенитального тракта в условиях эксперимента [Гизингер, О.А. Влияние низкоинтенсивного лазерного излучения на нейтрофилы периферической крови доноров в условиях эксперимента / О.А. Гизингер, К.Г. Ишпахтина, О.Л. Колесников // Иммунология. - 2009. - Т.30, №5. - С.263-267].

Для решения вышеуказанной задачи была исследована функциональная активность нейтрофилов клинически здоровых людей - добровольцев в возрасте от 18 до 22 лет. Для выделения нейтрофилов кровь забирали из локтевой вены в объеме 10 мл с антикоагулянтом гепарином в количестве 50 ЕД/мл. Для выделения чистой фракции нейтрофилов 2 мл крови смешивали с 3 мл стерильного физиологического раствора (0,9% раствор натрия хлористого), наслаивали на градиент плотности стерильных растворов фиколла («Pharmacia», Швеция) и верографина («Spofa», Чехия), плотность верхнего слоя 1,075-1,077 г/см3, нижнего - 1,093-1,095 г/см3 и центрифугировали 40 мин при 1500 оборотах в минуту. Кольцо нейтрофилов собирали, переносили в стерильные центрифужные пробирки, отмывали от градиента стерильным раствором Хенкса путем центрифугирования при 1500 оборотах в минуту дважды по 7 минут, доводили до концентрации 5×106 клеток/мл, случайным образом делили на 4 группы, на которые в течение 10, 20 и 30 мин при температуре 37°С в диапазоне длин волн 320-400 нм, цветовой температуре 4000-4500K при интенсивности действия светового потока 0,03 Вт/м2 воздействовали различными искусственными источниками света: группа 1 (контрольная) - пробы находились при естественном освещении; группа 2 - на пробы воздействовали светом, генерируемым лампами накаливания; группа 3 - на пробы воздействовали светом, генерируемым люминесцентными лампами; группа 4 - на пробы воздействовали светом, генерируемым светодиодами. Опытные и контрольные пробы, содержащие суспензию нейтрофилов, во время облучения находились в специально оборудованных для проведения эксперимента термостатах. Световое поле было конфигурировано таким образом, чтобы в любой точке суспензии нейтрофилов отклонение плотности светового потока составляло не более 10% от заданных параметров излучения. Полученные результаты были подвергнуты статистической с вычислением средней арифметической и ее стандартной ошибки. О достоверности различий средних величин судили с помощью непараметрического критерия Манна-Уитни. Различия считали значимыми при р≤0,05.

Качественный анализ показал, что десятиминутное воздействие света, генерируемого как светодиодными источниками, так и лампами накаливания на взвесь нейтрофильных гранулоцитов не привело к достоверным изменениям их лизосомальной и фагоцитарной активности, кислородзависимого метаболизма, функционального резерва (р>0,05). НСТ-редуцирующая активность нейтрофилов в спонтанном режиме возрастала после воздействия света люминисцентных ламп по сравнению с естественным и светодиодным освещением (р=0,05). Результаты влияния различных источников света на функциональную активность нейтрофилов периферической крови в условиях in vitro представлены в таблице 1.

Таблица 1
Влияние различных источников света на функциональную активность нейтрофилов периферической крови в условиях in vitro (время экспозиции 10 минут), (М±m)
Показатели функциональной активности нейтрофилов Действие на нейтрофилы естественного освещения Действие на нейтрофилы светом, генерируемым лампами накаливания Действие на нейтрофилы светом, генерируемыми люминесцентными лампами Действие на нейтрофилы светом, генерируемым светодиодами
люминесценция лизосом, у.е 305,81±14,1 302,91±14,31 306,81±13,92 304,91±14,7
активность лизосом, % 93,79±1,22 94,72±1,22 94,71±1,22 95,79±1,19
НСТ- спонтанный, % клеток 36,59±1,51 35,59±1,51 37,05±1,51 37,09±1,51
НСТ спонтанный, у.е./клетку 0,41±0,05 0,45±0,03 0,47±0,03 0,47±0,03
НСТ-индуциров., % клеток 60,24±1,41 63,66±1,62 67,47±1,54*† 60,67±1,47
НСТ-индуциров. у.е./клетку 0,69±0,03 0,74±0,033 0,76±0,032 0,81±0,030
функциональный резерв нейтрофилов 2,33±0,13 2,54±0,14 2,61±0,13 2,66±0,13
активность фагоцитоза, % клеток 57,13±1,50 60,49±1,60 62,21±1,57 64,01±1,34
интенсивность фагоцитоза, у.е./клетку 1,81±0,12 1,83±0,17 1,84±0,12 1,84±0,09
Примечание: * - различие по показателям функциональной активности находящихся при естественном освещении и облученных искусственным светом нейтрофилов in vitro недостоверно, р≥0,05. † - различие по показателям функциональной активности нейтрофилов in vitro между группами при воздействии света, генерируемого лампами накаливания и генерируемого светодиодами недостоверно, р>0,05.

Анализ данных, полученных после изучения лизосомальной, фагоцитарной активности и биоцидных возможностей нейтрофилов в НСТ-тесте, функционального резерва нейтрофильных гранулоцитов после 20-минутного воздействия также выявил различия в показателях лизосомальной и фагоцитарной активности, освещенных естественным светом лампами накаливания и светодиодными источниками (р>0,05). После воздействия света люминесцентных ламп резко увеличивалось количество активных клеток в спонтанном НСТ-тесте (р=0,05) по сравнению с естественным освещением и освещением светом, генерируемым светодиодами, усиливался их фагоцитоз и секреторная активность.

Полученные результаты свидетельствуют о выраженном иммуностимулирующем влиянии света, генерируемого люминесцентными лампами, тогда как лампы накаливания и светодиодные носители генерируют свет, не вызывающий выраженных иммунологических изменений нейтрофильных гранулоцитов. Результаты представлены в таблице 2.

Таблица 2
Влияние различных источников света на функциональную активность нейтрофилов периферической крови в условиях in vitro (время экспозиции 20 минут), (М±m)
Показатели функциональной активности нейтрофилов Действие на нейтрофилы естественного освещения Действие на нейтрофилы светом, генерируемым лампами накаливания Действие на нейтрофилы светом, генерируемыми люминесцентными лампами Действие на нейтрофилы светом, генерируемым светодиодами
люминесценция лизосом, у.е 285,81±15,19 281,91±12,00 387,81±12,92* 299,91±11,71**
активность лизосом, % 83,22±1,22 84,77±1,00 94,91±0,22* 85,69±1,09**
НСТ-спонтанный, % клеток 26,49±1,51 25,00±1,33 45,05±1,22* 26,09±1,09**
НСТ спонтанный, у.е./клетку 0,37±0,05 0,41±0,034 0,59±0,03* 0,40±0,026**
НСТ-индуциров., % клеток 60,00±1,56 61,22±1,22 71,47±1,00* 61,67±1,33**
НСТ-индуциров. у.е./клетку 0,59±0,03 0,54±0,033 0,96±0,032* 0,51±0,013**
функциональный резерв нейтрофилов 2,00±0,13 2,04±0,14 2,91±0,13* 2,06±0,09**
активность фагоцитоза, % клеток 47,13±1,36 50,49±1,44 71,21±1,67* 50,01±1,24**
интенсивность фагоцитоза, у.е./клетку 1,61±0,12 1,63±0,67 1,94±0,42* 1,64±0,29**
Примечание: * - различие по показателям функциональной активности находящихся при естественном освещении и облученных искусственным светом нейтрофилов in vitro достоверно, р<0,05, ** - различие по показателям функциональной активности нейтрофилов, облученных светом, генерируемым люминесцентными лампами и светодиодами, находящихся при различие по показателям функциональной активности нейтрофилов in vitro между группами при воздействии света, генерируемого лампами накаливания и генерируемого светодиодами недостоверно, р>0,05.

При анализе данных, полученных после 30-минутного воздействия света, генерируемого различными источниками на функциональную активность нейтрофилов, также не выявлено статистически значимых различий по показателям активности и интенсивности лизосомального аппарата нейтрофилов, фагоцитарной способности между лампами накаливания, светодиодами и естественным освещением. Отмечены значимые изменения активности нейтрофилов в спонтанном и индуцированном НСТ-тесте, их фагоцитарной функции у клеток, облученных светом, генерируемым люминесцентными лампами по сравнению с результатами, полученными при естественном освещении клеточной взвеси, воздействии лампами накаливания и светодиодами. Результаты исследования влияния различных источников света на функциональную активность нейтрофилов периферической крови в условиях in vitro представлены в таблице 3.

Таблица 3
Влияние различных источников света на функциональную активность нейтрофилов периферической крови в условиях in vitro (время экспозиции 30 минут), (М±m)
Показатели функциональной активности нейтрофилов Действие на нейтрофилы естественного освещения Действие на нейтрофилы светом, генерируемым лампами накаливания Действие на нейтрофилы светом, генерируемыми люминесцентными лампами Действие на нейтрофилы светом, генерируемым светодиодами
люминесценция лизосом, у.е 280,81±14,19 277,91±12,99 377,81±12,00* 280,91±11,98**
активность лизосом, % 80,22±1,02 81,77±1,12 92,91±0,22* 83,69±1,13**
НСТ-спонтанный, % клеток 22,09±1,51 23,00±1,11 46,05±1,09* 24,09±1,12**
НСТ- спонтанный, у.е./клетку 0,27±0,02 0,26±0,004 0,47±0,03* 0,28±0,016**
НСТ-индуциров., % клеток 50,00±1,16 51,22±1,13 76,47±1,20* 53,67±1,00**
НСТ-индуциров., у.е./клетку 0,59±0,03 0,54±0,011 0,76±0,02* 0,51±0,01**
функциональный резерв нейтрофилов 2,10±0,13 2,04±0,14 2,89±0,13* 2,06±0,19**
активность фагоцитоза, % клеток 27,13±1,36 30,49±1,44 41,21±1,67* 30,01±1,24**
интенсивность фагоцитоза, у.е./клетку 1,61±0,12 1,63±0,67 1,44±0,42* 1,64±0,29**
Примечание: * - различие по показателям функциональной активности находящихся при естественном освещении и облученных искусственным светом нейтрофилов in vitro достоверно, р<0,05, ** - различие по показателям функциональной активности нейтрофилов, облученных светом, генерируемым люминесцентными лампами и светодиодами, находящихся при различие по показателям функциональной активности нейтросфилов in vitro между группами при воздействии света, генерируемого лампами накаливания и генерируемого светодиодами недостоверно, р>0,05.

Таким образом, воздействие света, генерируемого лампами накаливания, светодиодными источниками света в пределах световой температуры 4000-4500K, с интенсивностью светового воздействия 0,03 Вт/м2 в диапазоне длин волн 320-400 нм в течение 10-30 минут не приводит к статистически значимому изменению функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов, выделенных из периферической крови клинически здоровых людей-добровольцев при сравнении с естественным освещением. Воздействие на нейтрофилы света люминесцентных ламп приводит к активации кислородзависимого метаболизма и фагоцитарной активности по показателям активности НСТ-теста.

Применение способа оценки воздействия света, генерируемого светодиодными и иными искусственными источниками на функции нейтрофильных гранулоцитов периферической крови позволяет решить проблему лабораторного контроля эффективности и биобезопасности искусственных источников света, генерируемых лампами накаливания, люминесцентными лампами и светодиодами.

Предлагаемый способ отличается от существующих тем, что, используя культуру клеток врожденного иммунитета, имеющих фоточувствительные рецепторы, есть возможность более качественно, без использования человека как объекта при проведении исследований, в in vitro условиях лаборатории оценить биобезопасность искусственных источников света, спрогнозировать возможные риски, возникающие при использовании люминесцентных ламп, светодиодов и ламп накаливания при создании цветосветовой среды обитания человека. Ввиду дешевизны метода и простоты выполнения указанный способ оценки доступен большинству санитарно-гигиенических, иммунологических и микробиологических лабораторий.

Заявляемый способ может найти широкое применение в иммунологии, при проведении санитарно-гигиенической оценки освещенности, что свидетельствует о его соответствии критерию "промышленная применимость".

Способ оценки воздействия света, генерируемого светодиодными источниками освещения, на функции нейтрофильных гранулоцитов, выделенных из периферической крови здоровых доноров, отличающийся тем, что оценку эффективности и биобезопасности светодиодных излучений оптического диапазона проводят на культуре нейтрофильных гранулоцитов-клеток иммунной системы, причем воздействуют светом, генерируемым светодиодами с цветовой температурой 4000-4500К в диапазоне длин волн 320-400 нм и интенсивностью светового потока 0,003 Вт/м в течение трех различных временных интервалов, затем регистрируют повышение или понижение фагоцитарной, лизосомальной, НСТ-редуцирующей активности нейтрофильных гранулоцитов более чем на 15% от референсных значений, по изменению функциональной активности нейтрофильных гранулоцитов делают вывод о биологических эффектах воздействия светодиодного освещения на функциональную активность нейтрофильных гранулоцитов.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области медицины и может быть использовано в медицинской диагностике и терапии. Способ определения физико-биологических параметров кожи и концентраций производных гемоглобина в крови путем посылки на кожу поляризованного оптического излучения с известным спектром, регистрации сигналов диффузно-отраженного кожей света с поляризацией, ортогональной поляризации посылаемого на кожу излучения.

Изобретение относится к медицине и может быть применено в практическом здравоохранении для повышения точности диагностики и снижения риска тромботических, геморрагических и тромбоэмболических осложнений.
Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству и гинекологии, и позволяет осуществить прогнозирование преэклампсии у беременных с плацентарной недостаточностью.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использована для тестирования функции тромбоцитов. Для этого предоставляют возможность антикоагулированной крови проходить через капилляр, имеющий склеивающую тромбоциты поверхность, и наблюдают или измеряют поведение крови в капилляре для оценки функции тромбоцитов.

Изобретение относится к области медицины, а именно к клинической лабораторной диагностике, и описывает способ оценки функционального состояния лимфоцита человека.

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для in vitro оценки прогнозирования иммунного ответа пациента на действие внешних факторов.

Изобретение относится к области лабораторной диагностики и может быть использовано в клинической практике для оценки эффективности антибактериальной терапии у больных с бактериальной инфекцией, в том числе с бактериальным сепсисом.

Изобретение относится к области медицины, а именно к медицинской диагностике и описывает способ прогнозирования эффективности химиотерапии у больных со злокачественными новообразованиями эпителиальных тканей с помощью исследования свойств биологических жидкостей химическими и физическими методами.

Изобретение относится к области медицины. Изобретение представляет кристалломорфологический способ диагностики опухолевого заболевания почек, включающий отбор у пациента мочи, введение в пробу мочи кристаллообразующего вещества, в качестве которого используют спиртовой раствор нингидрина с добавлением тинктуры спиртовой вытяжки из растения, борщевика Сосновского с примесью трутовика гапалопилуса в соотношении 3:1, с последующим высушиванием смеси методом испарения, получение изображения, визуальное определение морфологии кристаллов, выделение фрактальных объектов и расчет по ним среднего фрактального масштаба F, и при значении фрактального масштаба в интервале F = 4,0 - 5,9 диагностируют доброкачественную опухоль, а в интервале F = более 6,0 диагностируют злокачественную опухоль.

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике во внутренних болезнях. Изобретение представляет способ дифференциальной диагностики хронического вирусного гепатита и жирового поражения печени у больных с синдромом дислипидемии, заключающийся в том, что у больного в сыворотке крови определяют активность фермента антиоксидантной системы супероксиддисмутазы (СОД), которую оценивают спектрофотометрическим методом, и при значении СОД менее или равно 23 Ед/мг белка диагностируют жировую болезнь печени, при концентрации СОД более 23 Ед/мг белка - хронический вирусный гепатит.
Изобретение относится к медицине, в частности к гематологии, и описывает способ повышения проницаемости мембраны клеток крови для депонирования ими лекарственных средств, включающий добавление к клеточной массе, полученной путем центрифугирования крови, лекарственных препаратов и последующее проведение фотогемотерапии, причем в качестве «контейнеров» для лекарственного вещества используют отмытые в физиологическом растворе эритроциты, выделенные из клеточной массы после удаления тромбоцитарно-лейкоцитарной пленки, образовавшейся в процессе центрифугирования, помещают их в среду с лекарственным веществом и воздействуют на эритроциты ультрафиолетовым облучением (УФО) с длиной волны 360 нм и общей дозой облучения 0,72 Дж/см2. Способ повышает точность и информативность исследования. 3 табл., 1 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно к гепатологии, и может быть использовано для определения прогноза эффективности комбинированной противовирусной терапии (ПВТ) хронического вирусного гепатита С (ХГС). Для этого с использованием регрессионного анализа вычисляли значение коэффициента прогнозирования вида вирусологического ответа (КУВО). КУВО=-3,581+эозиноф. *0,073- моноциты *0,012+лимфоциты *0,0772- билирубин *0,098+АЛТ*0,7357+глюкоза *0,1049, где эозиноф. - относительное (%) количество эозинофилов в периферической крови; моноциты - относительное (%) количество моноцитов в периферической крови; лимфоциты - относительное (%) количество лимфоцитов в периферической крови; билирубин - количество билирубина свободного в венозной крови, мкмоль/л; АЛТ - количество аланинаминотрансферазы в венозной крови, в единицах на литр; глюкоза - количество глюкозы в венозной крови, ммоль/л. При значении КУВО 319 и менее прогнозируют отсутствие устойчивого вирусологического ответа. При значении КУВО более 319 прогнозируют формирование устойчивого вирусологического ответа в результате лечения противовирусными препаратами. Использование данного способа позволяет прогнозировать результат противовирусного лечения путем персонифицированного подхода и проводить индивидуализацию выбора схемы терапии. 2 пр.
Изобретение относится к медицине и представляет собой способ прогнозирования развития полипозного риносинусита у больных бронхиальной астмой, который осуществляется путем определения в крови пациентов показателей эндотоксикоза: лейкоцитов, молекул средней массы, креатинина, мочевины и скорости оседания эритроцитов; прогноз осуществляют с помощью дискриминантного уравнения: D=6,900×лейкоциты(×10^9/л)+2,640×скорость оседания эритроцитов (мм/ч)+17,819×молекулы средней массы (ед. оп. пл.)+1,127×креатинин (мкмоль/л)+24,801×мочевина(ммоль/л), где D - дискриминантная функция с граничным значением, равным - 223,12; при D, равном или большим граничного значения, прогнозируют развитие полипозного риносинусита у больных бронхиальной астмой, а при D меньше граничного значения прогнозируют отсутствие полипозного риносинусита у больных бронхиальной астмой. Техническим результатом заявленного изобретения является обеспечение прогнозирования полипозного риносинусита у больных с бронхиальной астмой с повышенной точностью. 2 пр.
Изобретение относится к медицине, а именно к способу оценки устойчивости мембран эритроцитов к ишемии. Сущность способа состоит в том, что определяют: СОЭ, фибриноген, общий билирубин, простациклин, агрегацию эритроцитов, вязкость крови в сосудах микроциркуляции, мочевину, адгезию тромбоцитов, плазминоген и нитриты. Используя полученные данные, оценку устойчивости мембраны эритроцитов проводят по коэффициенту (Кум). При величине Kум меньше или равной -0,1 мембрану эритроцитов оценивают неустойчивой к ишемии, а при величине Кум больше или равной 0,0 - устойчивой. Использование заявленного способа позволяет быстро, точно и объективно оценить индивидуальную устойчивость эритроцитов к ишемии. 2 пр.
Изобретение относится к клинической иммунологии и может быть использовано для экспресс-определения атерогенности иммунных комплексов (ИК) сыворотки крови человека. Сущность изобретения состоит в том, что в предлагаемом способе преципитат ИК из сыворотки крови человека готовят путем обработки буфером, содержащим 10% раствор полиэтиленгликоля с молекулярной массой 3350 (ПЭГ-3350), в соотношении 1:3,5, инкубируют в течение 10 мин при комнатной температуре. Агрегаты ИК осаждают центрифугированием, растворяют в буфере без ПЭГ-3350, определяют содержание холестерина в иммунных комплексах (ХИК) и степень связывания комплемента (ССК) морской свинки преципитированными иммунными комплексами. Рассчитывают атерогенность ИК как отношение ССК к ХИК и при величине менее 4 ЕД констатируют повышенную атерогенность крови. ! табл.
Изобретение относится к клинической иммунологии и может быть использовано для определения атерогенности иммунных комплексов, содержащих множественно модифицированные липопротеины низкой плотности (ИК-ммЛПНП). Для этого преципитат ИК-ммЛПНП из сыворотки крови человека готовят путем обработки буфером, содержащим 10%-ный раствор полиэтиленгликоля с молекулярной массой 3350 (ПЭГ-3350), в соотношении 1:2,5, инкубируют в течение 10 мин при комнатной температуре. Агрегаты ИК-ммЛПНП осаждают центрифугированием, растворяют в буфере без ПЭГ-3350, определяют содержание холестерина в иммунных комплексах (ХИК) и степень связывания комплемента (ССК) морской свинки преципитированными иммунными комплексами. Рассчитывают атерогенность ИК-ммЛПНП как отношение ССК к ХИК. При величине менее 24 ЕД констатируют повышенную атерогенность крови из-за сниженной комплементактивирующей функции IgG в ИК-ммЛПНП. Использование данного способа позволяет проводить оценку атерогенности ИК-ммЛПНП, диагностировать атеросклероз на доклинической стадии, а также прогнозировать как течение атеросклеротического процесса у индивидуумов, так и эффективность проводимой терапии. 1 табл.

Изобретение относится к медицине и предназначено для прогнозирования умеренного и выраженного гемолиза у больных ишемической болезнью сердца после операции коронарного шунтирования. Проводят оценку состояния здоровья пациента до операции, причем, учитывают наличие/отсутствие заболеваний легких и почек, С-антигена системы Резус на эритроцитах, гиперфибриногенемию величиной более 4 г/л и содержание эритроцитов в крови в количестве 4,81×1012/л и менее, и рассчитывают гемолитический риск перфузии (ГРП) по формуле ГРП=(6,38×Хлег+8,93×ХГФб+3,32×ХЭр)-(4,10×Хпоч+2,95×ХС), где 6,38; 8,93; 3,32; 4,10; 2,95 - числовые значения являются коэффициентами; Хлег - наличие (1)/отсутствие (0) болезней легких; ХГФб - наличие (1)/отсутствие (0) гиперфибриногенемии до операции; ХЭр - наличие (1)/отсутствие (0) концентрации эритроцитов в крови до операции 4,81x1012/л и менее; Хпоч - наличие (1)/отсутствие (0) болезней почек; ХС - наличие (1)/отсутствие (0) на эритроцитах С-антигена системы Резус; и при значении ГРП>6,1 прогнозируется развитие выраженного гемолиза после операции, при ГРП<6,1 - развитие умеренного гемолиза. Способ позволяет повысить точность, информативность и доступность прогнозирования гемолиза. 2 пр., 1ил., 3 табл.

Изобретение относится к области медицины, а именно к неонатологии, реаниматологии и респираторной терапии, и описывает способ прогнозирования эффективности неинвазивной вентиляции легких у недоношенных новорожденных. Способ включает анализ клинико-функциональных показателей здоровья ребенка, а именно параметров вентиляции: фракционной концентрации кислорода во вдыхаемой смеси, среднего давления в дыхательных путях, парциального давления кислорода в артериальной постдуктальной крови, и расчет индекса оксигенации. При значении индекса оксигенации, равного или меньше 3,5, прогнозируют эффективность проводимой неинвазивной вентиляции легких, а при значении индекса оксигенации больше 3,5 - неэффективность. Способ позволяет прогнозировать успешность проведения различных методов неинвазивной вентиляции легких у недоношенных новорожденных с очень низкой и экстремально низкой массой тела при рождении с диагнозом респираторный дистресс-синдром. 2 пр.

Изобретение относится к области медицины, а именно к неонатологии, реаниматологии и респираторной терапии, и описывает способ прогнозирования эффективности неинвазивной вентиляции легких у недоношенных новорожденных. Способ включает анализ клинико-функциональных показателей здоровья ребенка, а именно параметров вентиляции: фракционной концентрации кислорода во вдыхаемой смеси, среднего давления в дыхательных путях, парциального давления кислорода в артериальной постдуктальной крови, и расчет индекса оксигенации. При значении индекса оксигенации, равного или меньше 3,5, прогнозируют эффективность проводимой неинвазивной вентиляции легких, а при значении индекса оксигенации больше 3,5 - неэффективность. Способ позволяет прогнозировать успешность проведения различных методов неинвазивной вентиляции легких у недоношенных новорожденных с очень низкой и экстремально низкой массой тела при рождении с диагнозом респираторный дистресс-синдром. 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к кардиологии, гериатрии, и может быть использовано для прогнозирования течения системной воспалительной реакции (СВР) у пациентов с острым инфарктом миокарда (ОИМ). Для этого определяют содержание лейкоцитов в крови, определяют величины индекса сдвига лейкоцитов крови (ИСЛК), индекса соотношения нейтрофилов и лимфоцитов (ИСНЛ), лейкоцитарного индекса интоксикации (ЛИИ). При их значениях: ИСЛК >4, ИСНЛ >5, ЛИИ >4 и выявлении мутации гена TNFα G-308A прогнозируют увеличение интенсивности системной воспалительной реакции у данной категории больных. Использование данного способа позволяет прогнозировать степень выраженности системной воспалительной реакции у гериатрических больных с ОИМ, проводить первичную профилактику у лиц с выявленным полиморфизмом TNFα G-308A и отягощенным семейным анамнезом по ИБС, а также вторичную профилактику осложнений ОИМ. 3 пр.
Наверх