Способ количественного определения бенз(а)пирена в крови методом жидкостной хроматографии


 

G01N33/50 - химический анализ биологических материалов, например крови, мочи; испытания, основанные на способах связывания биоспецифических лигандов; иммунологические испытания (способы измерения или испытания с использованием ферментов или микроорганизмов иные, чем иммунологические, составы или индикаторная бумага для них, способы образования подобных составов, управление режимами микробиологических и ферментативных процессов C12Q)

Владельцы патента RU 2546530:

Федеральное бюджетное учреждение науки "Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения" (ФБУН "ФНЦ медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения") (RU)

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения бенз(а)пирена в крови, для оценки риска здоровью человека и разработки мероприятий по обеспечению химической безопасности. Способ осуществляется следующим образом. Каждую пробу крови анализируют дважды. Свежеотобранную пробу крови центрифугируют со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин. Разделяют на фракции плазмы и форменных элементов. Проводят твердофазную экстракцию плазмы путем последовательного пропускания под вакуумом через картридж с сорбентом Oasis HLB 3 сс 100%-ного ацетонитрила, дистиллированной воды, плазмы, дистиллированной воды, 50%-ного водного раствора ацетонитрила. Затем картридж с сорбентом высушивают под вакуумом и пропускают через сорбент 100%-ный метиленхлорид. Аликвотную часть полученного экстракта хроматографируют. Для получения экстракта форменных элементов проводят дисперсионную твердофазную экстракцию: добавляют к ним 100%-ный ацетонитрил, интенсивно встряхивают. Добавляют набор солей QuECHeRS для экстракции, встряхивают интенсивно, центрифугируют 10 минут со скоростью 2000 об/мин, при этом образуется 3 слоя, верхний слой переносят в другую пробирку, в которой содержится набор солей QuECHeRS для очистки, центрифугируют со скоростью 2000 об/мин, отбирают верхний слой. Экстракт плазмы и форменных элементов анализируют на жидкостном хроматографе Agilent серии 1200 с флуориметрическим детектором на колонке Zorbax длиной 50 мм и внутренним диаметром 4,6 мм с сорбентом Eclipse РАН C18 при температуре колонки 27°C, при использовании в качестве подвижной фазы смеси ацетонитрила и воды со скоростью потока 1,5 см3/мин и оптимизации элюирования в градиентном режиме (1 мин подача подвижной фазы 60 об.% ацетонитрила и 40 об.% воды, увеличение ацетонитрила с 60 об.% до 68 об.% в течение 3 мин, увеличение ацетонитрила с 68 об.% до 70 об.% в течение 0,5 мин, увеличение ацетонитрила с 70 об.% до 90 об.% в течение 1,5 мин, увеличение ацетонитрила с 90 об.% до 100 об.% в течение 4,5 мин, подача 100%-ного ацетонитрила в течение 1,5 мин, затем снижение ацетонитрила до 60 об.% и подача 60%-ного ацетонитрила в течение 4 мин до уравновешивания колонки). При этом длина волны возбуждения флуориметрического детектора составляла 265 нм и длина волны эмиссии 412 нм. По градуировочному графику отдельно определяют содержание бенз(а)пирена в плазме и форменных элементах, а результаты суммируют. Изобретение обеспечивает высокую чувствительность способа при одновременном обеспечении селективности и его доступности для серийных анализов. 2 з.п. ф-лы, 6 табл., 1 пр.

 

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения бенз(а)пирена в крови, для оценки риска здоровью человека и разработки мероприятий по обеспечению химической безопасности.

Бенз(а)пирен является одним из наиболее сильных канцерогенов среди полиароматических углеводородов (далее ПАУ). Концентрация бенз(а)пирена в воздухе на уровне 3-6 нг/м3 при длительном воздействии может привести к увеличению частоты рака легкого у населения. Поэтому в России и многих других странах законодательно введены максимально допустимые пределы для бенз(а)пирена, что, в свою очередь, обусловливает необходимость разработки и применения соответствующих методов контроля.

Для определения бенз(а)пирена и других ПАУ в различных средах используют методы газовой и жидкостной хроматографии, масс-спектроскопии и т.д. Наиболее высокую достоверность идентификации и чувствительность имеют методы, основанные на использовании высокоэффективной жидкостной хроматографии с обращенной фазой. Определение бенз(а)пирена в различных объектах окружающей среды сильно осложняется тем, что он присутствует обычно в очень малых концентрациях. При определении возможны потери вещества на различных этапах анализа, в частности в результате улетучивания его в процессе отгонки растворителей.

Анализ литературы показал, что известные химико-аналитические методы касаются в основном определения метаболитов бенз(а)пирена в биологических средах при его экспозиции различными путями. Это связано, вероятнее всего, с тем, что бенз(а)пирен является «латентным» химическим веществом. При попадании в организм он метаболизирует с образованием более токсичных соединений, которые вызывают канцерогенный и другие опасные для организма эффекты.

Известны различные способы определения бенз(а)пирена: в пищевых продуктах, в биологических объектах (жире, мышцах и тканях).

В соответствии с СанПиН 2.3.2.560-96 допустимый уровень содержания бенз(а)пирена в пищевых продуктах составляет 0,001 мг/кг. Загрязнение пищевых продуктов бенз(а)пиреном происходит из воздуха, воды и в результате переработки пищевых продуктов. Применение открытого огня или жаровен, для которых используют древесный уголь, могут вызывать загрязнения ПАУ не только воздуха, но и пищи, которая готовится таким способом.

Например, известен способ определения бенз(а)пирена в пищевых продуктах животного происхождения (копченых мясных и рыбных продуктах) [1]. Пробоподготовка включает следующие процедуры: гомогенизированную пробу экстрагируют хлористым метиленом, экстракт фильтруют через бумажный фильтр и слой безводного сульфата натрия. Фильтрат упаривают на роторном испарителе, перерастворяют в 100 см3 гексана, переносят в делительную воронку емкостью на 1000 см3 и двумя порциями по 50 см3 смеси диметилформамида и воды переэкстрагируют. Отделяют нижний слой, а из верхнего гексанового экстрагируют ПАУ повторно. Гексановый слой отбрасывают, а объединенный диметилформамидный экстракт разбавляют 100 см3 и экстрагируют ПАУ гексаном трижды по 40 см3. Гексановые экстракты объединяют и промывают водой двумя порциями по 50 см3. Фильтруют через бумажный фильтр и слой безводного сульфата натрия помещают в грушевидную колбу на 200 см3. Обезвоженный экстракт упаривают до объема 1-1,5 см3 а остаток растворителя удаляют током азота или воздуха. Высушенный экстракт растворяют в 200 мм3 ацетонитрила и анализируют методом тонкослойной хроматографии. Способ позволяет определить 0,5-1 мкг бенз(а)пирена в 1 кг массы биоматериала.

Также известен метод определения бенз(а)пирена в копченостях методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) с флуориметрической и УФ-детекцией [2]. Навеску массой 5 г измельчают, перетирают с 0,2 г безводного сульфата натрия и помещают в коническую колбу. Туда же добавляют 50 мл изопропанола и проводят экстракцию в течение 15 минут. Экстракт фильтруют в круглодонную колбу, добавляют 6 мл воды и 0,2 г гидроксида калия. Проводят гидролиз экстракта в течение 30 минут в колбе с обратным холодильником. Гидролизат фильтруют в стакан, добавляют 60 мл воды и экстрагируют 3×10 мл хлороформа (нижний слой). Органические вытяжки объединяют, осушают над хлоридом кальция и упаривают на роторном испарителе до объема 3-5 мл. Упаренную вытяжку переносят на стеклянную колонку диаметром 1-2 см, заполненную на 5 см силикагелем с зернением 60-140 мкм, и элюируют полиароматические углеводороды 30 мл смеси «гексан-хлороформ» 80:20. Элюат упаривают на роторном испарителе до объема 3-5 мл, переносят в пробирку на 5 мл и отгоняют растворитель током воздуха. Сухой остаток перерастворяют в 500 мкл ацетонитрила (смеси «ацетонитрил-вода» 95:5) и анализируют на колонке с Диасорбом C16 с использованием УФ- и флуориметрической детекции.

Также известны: Способ определения ПАУ в биологических объектах [3] и Способ количественного определения углеводородов в биологических объектах [4]. Однако их недостатком является то, что определение производится только суммы ПАУ, без разделения на составляющие, что делает известные способы неселективными.

Наиболее близким к предлагаемому изобретению является способ определения бенз(а)пирена в биологическом объекте - мышечной ткани, методом ВЭЖХ с флуориметрическим детектором [5]. Для определения бенз(а)пирена 3 г мускула гомогенизировали жидким азотом и извлекали из матрицы 50 см3 гексана при действии ультразвуком в течение 30 минут. Гомогенаты фильтровали через безводный сульфат натрия и концентрировали приблизительно до 1 см3 при 45°C в ротационном испарителе. Сконцентрированный раствор очищали, используя активизированный патрон Florisil. Бенз(а)пирен элюировали с патрона 18 см3 раствора гексана и дихлорметана в соотношении 3:1, элюат высушивали при 45°C, затем растворяли в 1 см3 ацетонитрила и обрабатывали ультразвуком. Затем 20 мм3 фильтрованного раствора анализировали, используя жидкостную хроматографию с детектором флюоресценции. Недостатком указанного известного способа является низкая чувствительность определения (нижний предел определения 1 мкг/кг), поэтому способ применяется в токсикологических исследованиях.

Технический результат, достигаемый предлагаемым изобретением, заключается в обеспечении высокой чувствительности способа при одновременном обеспечении селективности и его доступности для серийных анализов.

Указанный технический результат достигается предлагаемым способом количественного определения бенз(а)пирена в крови методом жидкостной хроматографии, включающим отбор пробы крови, ее твердофазную экстракцию и исследование экстракта путем жидкостной хроматографии, при этом новым является то, что после отбора пробы крови проводят ее консервацию добавлением гепарина, подвергают пробу крови центрифугированию со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин с отделением при этом плазмы и форменных элементов, далее осуществляют раздельную пробоподготовку указанных плазмы и форменных элементов крови, при этом для пробоподготовки плазмы осуществляют твердофазную экстракцию плазмы на сорбенте Oasis HLB путем последовательного пропускания через указанный сорбент ацетонитрила, дистиллированной воды, плазмы, дистиллированной воды, 50%-ного водного раствора ацетонитрила, затем картридж с сорбентом высушивают под вакуумом и далее пропускают через него экстрагент - 100%-ный метиленхлорид, экстракт высушивают в потоке воздуха и сухой остаток перерастворяют в 100%-ном ацетонитриле, получая экстракт плазмы, а пробоподготовку форменных элементов пробы крови осуществляют дисперсионной твердофазной экстракцией путем добавления к ним 100%-ного ацетонитрила, перемешивания, добавления набора солей по методу QuECHeRS для экстракции, перемешивания, дальнейшего центрифугирования, отбора верхней фазы и добавления к ней набора солей по методу QuECHeRS для очистки, перемешивания, повторного центрифугирования этой очищенной верхней части и вновь отбора верхней фазы - экстракта форменных элементов пробы крови для анализа, затем полученные экстракты плазмы и форменных элементов пробы крови анализируют по отдельности методом жидкостной хроматографии, используя в качестве подвижной фазы смесь ацетонитрила и воды при их изменяющемся соотношении от 60:40 об.% до 90:10 об.% соответственно, а также 100%-ный ацетонитрил в градиентном режиме, который осуществляют при хроматографии путем подачи вначале в течение 1 мин подвижной фазы, состоящей из смеси ацетонитрила и воды в соотношении 60:40 об.%, затем путем увеличения в течение 3 мин в подвижной фазе ацетонитрила до 68 об.%, дальнейшего увеличения его концентрации в течение 1,5 мин до 70 об.%, затем увеличения концентрации ацетонитрила в течение 1,5 мин до 90 об.%, а также увеличения ацетонитрила до 100% в течение следующих 4,5 мин. и пропускания такой подвижной фазы в течение еще 1,5 мин с последующим резким снижением объемного количества ацетонитрила до 60 об.% и пропусканием такой подвижной фазы через колонку в течение 4 мин до уравновешивания колонки, а количество бенз(а)пирена в крови устанавливают по градуировочному графику, причем результаты анализов, полученные при хроматографировании экстрактов плазмы и форменных элементов, суммируют.

Скорость потока подвижной фазы составляет 1,5 мл/мин.

Жидкостную хроматографию проводят на жидкостном хроматографе «Agilent 1200» с флуориметрическим детектором при длине волны возбуждения 265 нм и длине волны эмиссии 412 нм при температуре колонки 27°C.

Указанный технический результат достигается за счет следующего.

Благодаря тому, что отобранную пробу крови подвергают консервации путем добавления гепарина, обеспечивается стабилизация цельной крови для дальнейшего разделения на плазму и форменные элементы.

Благодаря тому, что отобранную пробу крови подвергают центрифугированию со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин, происходит разделение пробы на фракции, что обеспечивает раздельный анализ плазмы и форменных элементов при определении бенз(а)пирена.

Экспериментальным путем было установлено, что высокая чувствительность и точность определения бенз(а)пирена в крови достигается лишь при строго определенной последовательности пробоподготовки плазмы и форменных элементов, полученных из пробы.

Пропускание через указанный сорбент Oasis HLB ацетонитрила и дистиллированной воды обеспечивает очистку сорбента от возможного присутствия посторонних примесей и увлажнение сорбента перед пропусканием плазмы (в целом - это подготовка сорбента к анализу). А промывка сорбента после пропускания плазмы дистиллированной водой и 50%-ным водным раствором ацетонитрила необходима для цели удаления с сорбента слабоудерживаемых компонентов биоматериала и повышения селективности извлечения. Использование водного раствора ацетонитрила именно такой концентрации обеспечивает хорошее удаление ненужных компонентов, и в то же время не производится экстракция целевого компонента.

Сушка картриджа с сорбентом под вакуумом необходима для удаления остатков воды, которые мешают дальнейшему проведению анализа (вода переходит в экстракт метиленхлорида, при выпаривании которого капля воды неизвестного объема не испаряется, а остается в пробирке, в которой перерастворяют высушенный экстракт. Таким образом остается неизвестным общий объем анализируемой жидкости, что влияет на точность расчета концентрации бенз(а)пирена в плазме крови.

Сушка экстракта после пропускания через сорбент экстрагента 100%-ного метиленхлорида необходима для перевода аналита в совместимый с подвижной фазой растворитель (ацетонитрил). А перерастворение сухого остатка в 100%-ном ацетонитриле обеспечивает полный переход аналита (бенз(а)пирена) в анализируемый раствор.

Предложенная последовательность пробоподготовки форменных элементов пробы крови также обусловлена указанным выше химизмом.

Проведение последующего анализа экстракта плазмы и форменных элементов методом жидкостной хроматографии с особыми режимами, а именно: используя в качестве подвижной фазы смесь ацетонитрила и воды при их изменяющемся соотношении от 60:40 об.% до 90:10 об.% соответственно, а также 100%-ный ацетонитрил в градиентном режиме, который осуществляют при хроматографии путем подачи вначале в течение 1 мин подвижной фазы, состоящей из смеси ацетонитрила и воды в соотношении 60:40 об.%, затем путем увеличения в течение 3 мин в подвижной фазе ацетонитрила до 68 об.%, дальнейшего увеличения его концентрации в течение 1,5 мин до 70 об.%, затем увеличения концентрации ацетонитрила в течение 1,5 мин до 90 об.%, а также увеличения ацетонитрила до 100% в течение следующих 4,5 мин и пропускания такой подвижной фазы в течение еще 1,5 мин с последующим резким снижением объемного количества ацетонитрила до 60 об.% и пропусканием такой подвижной фазы через колонку в течение 4 мин до уравновешивания колонки, соответствует оптимизации элюирования, а значит, обеспечивает высокую чувствительность предлагаемого способа. Следует пояснить, что изменение объемного соотношения ацетонитрила и воды в подвижной фазе осуществляется за счет работы градиентного насоса Agilent 1200, смешивающего от 2 до 4 компонентов подвижной фазы.

Исследование экстрактов на жидкостном хроматографе «Agilent 1200» с флуориметрическим детектором при длине волны возбуждения 265 нм и длине волны эмиссии 412 нм при температуре колонки 27°C обусловлено достижением максимального сигнала флуориметрического детектора, что влияет на чувствительность и точность определения.

Скорость потока подвижной фазы 1,5 мл/мин является оптимальной при проведении исследований.

Количество бенз(а)пирена в крови устанавливают по градуировочному графику, причем результаты анализов, полученные при хроматографировании экстрактов плазмы и форменных элементов, суммируют. Это позволяет повысить точность определения, т.к. пробоподготовку плазмы и форменных элементов следует производить по-разному.

Для осуществления предлагаемого способа проводят следующие операции в нижеуказанной последовательности:

- производят отбор пробы крови в количестве 2 см3;

- переносят указанную пробу в центрифужную пробирку и центрифугируют со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин;

- верхнюю часть - плазму, отделяют от нижней части - форменных элементов;

- проводят по отдельности их экстракцию.

Алгоритм экстракций

Твердофазную экстракцию плазмы проводят по следующей схеме: кондиционирование картриджа Oasis HLB 1 сс (30 мг) 1 см3 ацетонитрила, 1 см3 дистиллированной воды, далее загрузка 0,5 см3 плазмы на картридж Oasis HLB 1 сс (30 мг), промывка картриджа с нанесенной пробой 1 см3 дистиллированной воды, 0,2 см3 50%-ного водного раствора ацетонитрила, высушивание картриджа в токе воздуха посредством вакуумного насоса, элюирование 1 см3 100%-ным метиленхлоридом. Затем метиленхлорид высушивают в токе воздуха, сухой остаток перерастворяют в 0,5 см3 100%-ного ацетонитрила. Полученный экстракт плазмы в дальнейшем анализируют в количестве 20 мм3 на жидкостном хроматографе.

Дисперсионная твердофазная экстракция форменных элементов: к 0,5 см3 форменных элементов прибавляют 2 см3 100-%-ного ацетонитрила, интенсивно встряхивая 1 мин, при этом белки крови сворачиваются, добавляют 250 мг набора солей по методу QuECHeRS для экстракции (состав: магния сульфат, натрия хлорид, натрия цитрат, динатриевая соль лимонной кислоты), встряхивают интенсивно в течение 1 минуты, центрифугируют 10 минут со скоростью 2000 об/мин, при этом образуется 3 слоя, 1,5 см3 верхнего слоя переносят в другую пробирку, в которой содержится 120 мг набора солей по методу QuECHeRS для очистки (состав: магния сульфат, сорбент С18), встряхивают 1 мин, вновь центрифугируют 10 минут со скоростью 2000 об/мин, отбирают верхний слой экстракта форменных элементов и анализируют 20 мм3 на жидкостном хроматографе.

Условия проведения анализа жидкостной хроматографии для обоих экстрактов соответствуют следующим характеристикам:

Колонка Zorbax Eclipse РАН C18; 4,6×50 мм; размер частиц 3,5 микрон
Флуориметрический детектор:
длина волны возбуждения
длина волны эмиссии
265 нм
412 нм
Подвижная фаза А: вода; В: ацетонитрил
Градиентное изменение состава подвижной фазы (в смеси с водой) 0-1 мин - 60 об.% ацетонитрила
1-4 мин - 68 об.% ацетонитрила
4-4,5 мин - 70 об.% ацетонитрила
4,5-6,0 мин - 90 об.% ацетонитрила
6-10,5 мин - 100% ацетонитрила
10,5-12 мин - 100% ацетонитрила
в 12 мин - резкое снижение до 60 об.% ацетонитрила
12-16 мин - 60 об.% ацетонитрила
Скорость протока 1,5 мл/мин
Температура колонки 27°C
Вводимый объем 20 мкл

Количество бенз(а)пирена в крови устанавливают по градуировочному графику, причем результаты анализов, полученные при хроматографировании экстрактов плазмы и форменных элементов, суммируют.

Для построения градуировочного графика в мерную колбу вместимостью 100 см3 вносят 1 см3 стандартного образца (ГСО) бенз(а)пирена в ацетонитриле с концентрацией 100 мкг/см3, доводят содержимое колбы до метки ацетонитрилом и перешивают. Концентрация бенз(а)пирена в исходном растворе (раствор №1) составляет 1 мкг/см3. Затем 2,5 см3 раствора №1 вносят в мерную колбу вместимостью 100 см3 и доводят ацетонитрилом до метки. Концентрация бенз(а)пирена в разбавленном растворе (раствор №2) составляет 25 нг/см3. Используют свежеприготовленный раствор.

Градуировочную характеристику устанавливают методом абсолютной градуировки. Она выражает зависимость площади пика на хроматограмме (мм2) от массовой концентрации бенз(а)пирена в крови (мг/дм3) и строится по 5 сериям рабочих стандартных растворов. Каждую серию, состоящую из 3 стандартных растворов, готовят в мерных пробирках вместимостью 5 см3. Для этого в каждую пробирку вносят растворы бенз(а)пирена для градуировки №1 и 2 в соответствии с таблицей 1, доводят содержимое пробирки до метки 5 см3 цельной кровью и перемешивают.

Таблица 1
Градуировочные растворы для определения бенз(а)пирена в крови в диапазоне массовых концентраций 0,0001-3,002 мг/дм3
Номер раствора 1 2 3 4 5
Объем раствора №1, мм3 - 2,5 5,0 7,5 10,0
Объем раствора №2, мм3 20,0 - - - -
Количество бенз(а)пирена, в 5 см3 градуировочного раствора, нг 0,5 2,5 5,0 7,5 10,0
Массовая концентрация бенз(а)пирена в крови, мг/дм3 0,0001 0,0005 0,001 0,0015 0,002
Таблица 2
Градуировочные растворы для определения бенз(а)пирена в крови в диапазоне массовых концентраций 0,00001-0,0001 мг/дм3
Номер раствора 1 2 3 4 5
Объем раствора №2, мм3 2,0 4,0 10,0 16,0 20,0
Количество бенз(а)пирена, в 5 см3 градуировочного раствора, нг 0,05 0,1 0,25 0,4 0,5
Массовая концентрация бенз(а)пирена в крови, мг/дм3 0,00001 0,00002 0,00005 0,00008 0,0001

Отработка оптимальных жидкостно-хроматографических параметров для определения бенз(а)пирена в крови предлагаемым способом осуществлялась с использованием жидкостного хроматографа «Agilent 1200», оснащенного термостатом колонок, градиентным насосом и флуориметрическим детектором.

Полнота разделения бенз(а)пирена в присутствии компонентов матрицы достигнута на колонке Zorbax длиной 50 мм и внутренним диаметром 4,6 мм с сорбентом Eclipse РАН (C18) зернением 3,5 мкм при температуре колонки 27°C, при использовании режимов указанного выше градиентного изменения состава подвижной фазы. Максимальный сигнал флуориметрического детектора получен при длине волны возбуждения 265 нм и длине волны эмиссии 412 нм. В случае, если не был применен градиентный режим элюирования чувствительность способа резко изменялась.

В процессе исследований по выбору оптимальных условий проведения твердофазной экстракции (ТФЭ) бенз(а)пирена из плазмы крови, включающей кондиционирование сорбента Oasis HLB растворителем - 100%-ным ацетонитрилом и дистиллированной водой, промывку картриджа от мешающих компонентов матрицы дистиллированной водой и 50%-ным водным раствором ацетонитрила после нанесения анализируемой пробы плазмы на указанный сорбент и последующую десорбцию бенз(а)пирена 100%-ным метиленхлоридом, были апробированы 2 варианта пробоподготовки: без предварительной деглюкуронизации и с деглюкуронизацией путем добавления в плазму раствора β-глюкуронидазы в ацетатном буфере (2500 ME), перемешивания и термостатирования на водяной бане при температуре 37°C в течение 1 часа. Данные, полученные в ходе испытаний, приведены в таблице 3.

Таблица 3
Эффективность извлечения бенз(а)пирена из плазмы крови методом твердофазной экстракции
№ режима Режимы пробоподготовки Степень экстракции, %
1 Элюирование метиленхлоридом без деглюкуронизации 38,7
2 Предварительная деглюкуронизация и элюирование
метиленхлоридом
13,2

Данные, приведенные в таблице 3, показывают, что максимальная степень экстракции бенз(а)пирена из плазмы крови была достигнута при использовании режима №1, который применяли в дальнейших исследованиях.

Экспериментальным путем также были установлены, наряду с необходимостью применения в качестве экстрагента 100%-ного метиленхлорида, и другие характеристики и режимы предлагаемого способа, обеспечивающие эффективное и селективное извлечение бенз(а)пирена из пробы крови и повышение чувствительности и точности определения, а именно: центрифугирование пробы крови при 2000 об/мин, использование при твердофазной экстракции 1 см3 100%-ного ацетонитрила и 1 см3 дистиллированной воды для конденционирования сорбента, промывание картриджа 1 см3 дистиллированной воды и 0,2 см3 50%-ного водного раствора ацетонитрила после пропускания фракции плазмы крови перед экстракцией 1,0 см3 100%-ного метиленхлорида.

При изучении выбора оптимальных условий извлечения бенз(а)пирена из форменных элементов методом дисперсионной твердофазной экстракции, включающей добавление к клеткам крови 100%-ного ацетонитрила и набора солей по методу QuECHeRS «для экстракции», а также отделение и очистку экстракта набором солей по методу QuECHeRS «для очистки», было установлено, что степень экстракции составляет 64%.

Пример конкретного выполнения предлагаемого способа

Анализируют пробы крови (обследуемая группа населения). Каждую пробу крови анализируют дважды. Свежеотобранную пробу крови объемом 2 см3 центрифугируют со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин. Разделяют на фракции плазмы и форменных элементов. Отбирают 0,5 см3 плазмы и проводят твердофазную экстракцию, последовательно пропуская под вакуумом через картридж с сорбентом Oasis HLB 3 сс 1 см3 100%-ного ацетонитрила, 1 см3 дистиллированной воды, 0,5 см3 плазмы, 1 см3 дистиллированной воды, 0,2 см3 50%-ного водного раствора ацетонитрила. Затем картридж с сорбентом высушивают под вакуумом, переносят в накопительный сосуд (бюкс) и пропускают через сорбент 1,0 см3 100%-ного хлористого метилена. Скорость экстракции (скорость потока) не более см3/мин. Аликвотную часть полученного экстракта отбирают и хроматографируют на жидкостном хроматографе Agilent серии 1200 с флуориметрическим детектором на колонке Zorbax длиной 50 мм и внутренним диаметром 4,6 мм с сорбентом Eclipse РАН C18 при температуре колонки 27°C, при использовании в качестве подвижной фазы смеси ацетонитрила и воды со скоростью потока 1,5 см3/мин и оптимизации элюирования в градиентном режиме (1 мин подача подвижной фазы: смеси 60 об.% ацетонитрила и 40 об.% воды, увеличение ацетонитрила с 60 об.% до 68 об.% в течение 3 мин, увеличение ацетонитрила с 68 об.% до 70 об.% в течение 0,5 мин, увеличение ацетонитрила с 70 об.% до 90 об.% в течение 1,5 мин, увеличение ацетонитрила с 90 об.% до 100 об.% в течение 4,5 мин, подача 100%-ного ацетонитрила в течение 1,5 мин, затем резкое снижение ацетонитрила до 60 об.% и подача 60 об.% ацетонитрила в течение 4 мин до уравновешивания колонки). При этом длина волны возбуждения флуориметрического детектора составляла 265 нм и длина волны эмиссии - 412 нм.

По градуировочному графику определяют содержание бенз(а)пирена в плазме (пробы 1-5). Полученные результаты приведены в таблице 4.

Отбирают 0,5 см3 форменных элементов и проводят дисперсионную твердофазную экстракцию: к 0,5 см3 форменных элементов прибавляют 2 см3 100%-ного ацетонитрила, интенсивно встряхивают в течение 1 мин, добавляют 250 мг набора солей по методу QuECHeRS «для экстракции», встряхивают интенсивно в течение 1 минуты, центрифугируют 10 минут со скоростью 2000 об/мин, при этом образуется 3 слоя, 1,5 см3 верхнего слоя переносят в другую пробирку, в которой содержится 120 мг набор солей по методу QuECHeRS «для очистки», встряхивают 1 мин, вновь центрифугируют 10 минут со скоростью 2000 об/мин, отбирают верхний слой и анализируют 20 мм3 на жидкостном хроматографе Agilent серии 1200 аналогично плазме.

По градуировочному графику определяют содержание бенз(а)пирена в форменных элементах (пробы 1-5). Полученные результаты приведены в таблице 4.

Таблица 4
Результаты исследования образцов крови на содержание бенз(а)пирена в диапазоне массовых концентраций 0,00001-0,002 мг/дм3

образца
Плазма крови Форменные элементы крови Цельная кровь
Результаты
параллельных
определений,
мг/дм3
Результат измерения,
мг/дм3
Результаты
параллельных
определений,
мг/дм3
Результат измерения,
мг/дм3
Результат измерения (суммированный),
мг/дм3
Относительная погрешность,
%
1 0,000010 0,000011±0,0000026 0,000028 0,000031±0,0000074 0,000042±0,000005 20,7
0,000012 0,000034
2 0 0 0,000017 0,000018±0,0000043 0,000018±0,0000021 17,6
0 0,000020
3 0,000011 0,000012±0,0000029 0,000011 0,000010±0,0000024 0,000022±0,0000026 20,1
0,000013 0,000009
4 0,000010 0,000010±0,0000024 0,000011 0,000010±0,0000024 0,000021±0,0000024 18,5
0,000010 0,000008
5 0,000023 0,000021±0,000005 0,000024 0,000046±0,000011 0,000067±0,000008 15,0
0,000019 0,000022

Чувствительность определения бенз(а)пирена в анализируемом объеме крови (10 мм3) составила 0,2 пг (или 0,00001 мг/дм3). Погрешность определения не превышает 23,6%.

Методика выполнения измерений обеспечивает получение результатов измерений с погрешностью, не превышающей значений, приведенных в таблицах 5 и 6.

Таблица 5
Значения показателей повторяемости, воспроизводимости, точности
Наименование определяемого компонента и диапазон измерений, мг/дм3 Показатель повторяемости, σr, % Показатель воспроизводимости, σR, % Показатель точности, ±δ, % (Р=0,95)
Бенз(а)пирен от 0,00001 до 0,002 вкл. 2,3 7,7 23,6
Таблица 6
Значения пределов повторяемости и воспроизводимости при доверительной вероятности р=0,95
Наименование определяемого компонента и диапазон измерений, мкг/дм3 Предел повторяемости, rn, % Предел внутрилабораторной воспроизводимости,
R C ¯ , %
Бенз(а)пирен от 0,00001 до 0,002 вкл. 6,2 21,4

Применение предлагаемого способа позволяет повысить чувствительность определения бенз(а)пирена, как минимум, в 10 раз, например, по сравнению с прототипом.

Заявляемый способ прост и может быть рекомендован для серийных анализов.

Источники информации

1. Патент РФ №2153167.

2. Сычев С.Н. Методы совершенствования хроматографических систем и механизмы удерживания в ВЭЖХ. Орел, Орловский ГТУ, 2000 г., с.211.

3. Патент РФ №2187106.

4. Патент РФ №1337764.

5. Kang Н., Jeong S., Cho М., Cho J. Changes of biomarkers with oral exposure to benzo(a)pyrene, phenanthrene and pyrene in rats // J. Vet. Sci. 2007. - 8(4). - p.361-368.

1. Способ количественного определения бенз(а)пирена в крови методом жидкостной хроматографии, включающий отбор пробы крови, ее твердофазную экстракцию и исследование экстракта путем жидкостной хроматографии, отличающийся тем, что после отбора пробы крови проводят ее консервацию добавлением гепарина, подвергают пробу крови центрифугированию со скоростью 2000 об/мин в течение 5 мин с отделением при этом плазмы и форменных элементов, далее осуществляют раздельную пробоподготовку указанных плазмы и форменных элементов крови, при этом для пробоподготовки плазмы осуществляют твердофазную экстракцию плазмы на сорбенте Oasis HLB путем последовательного пропускания через указанный сорбент ацетонитрила, дистиллированной воды, плазмы, дистиллированной воды, 50%-ного водного раствора ацетонитрила, затем картридж с сорбентом высушивают под вакуумом и далее пропускают через него экстрагент - 100%-ный метиленхлорид, экстракт высушивают в потоке воздуха и сухой остаток перерастворяют в 100%-ном ацетонитриле, получая экстракт плазмы, а пробоподготовку форменных элементов пробы крови осуществляют дисперсионной твердофазной экстракцией путем добавления к ним 100%-ного ацетонитрила, перемешивания, добавления набора солей по методу QuECHeRS для экстракции, перемешивания, дальнейшего центрифугирования, отбора верхней фазы и добавления к ней набора солей по методу QuECHeRS для очистки, перемешивания, повторного центрифугирования этой очищенной верхней части и вновь отбора верхней фазы - экстракта форменных элементов пробы крови для анализа, затем полученные экстракты плазмы и форменных элементов пробы крови анализируют по отдельности методом жидкостной хроматографии, используя в качестве подвижной фазы смесь ацетонитрила и воды при их изменяющемся соотношении от 60:40 об.% до 90:10 об.% соответственно, а также 100%-ный ацетонитрил в градиентном режиме, который осуществляют при хроматографии путем подачи вначале в течение 1 мин подвижной фазы, состоящей из смеси ацетонитрила и воды в соотношении 60:40 об.%, затем путем увеличения в течение 3 мин в подвижной фазе ацетонитрила до 68 об.%, дальнейшего увеличения его концентрации в течение 1,5 мин до 70 об.%, затем увеличения концентрации ацетонитрила в течение 1,5 мин до 90 об.%, а также увеличения ацетонитрила до 100% в течение следующих 4,5 мин и пропускания такой подвижной фазы в течение еще 1,5 мин с последующим резким снижением объемного количества ацетонитрила до 60 об.% и пропусканием такой подвижной фазы через колонку в течение 4 мин до уравновешивания колонки, а количество бенз(а)пирена в крови устанавливают по градуировочному графику, причем результаты анализов, полученные при хроматографировании экстрактов плазмы и форменных элементов, суммируют.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что скорость потока подвижной фазы составляет 1,5 мл/мин.

3. Способ по п.1, отличающийся тем, что жидкостную хроматографию проводят на жидкостном хроматографе «Agilent 1200» с флуориметрическим детектором при длине волны возбуждения 265 нм и длине волны эмиссии 412 нм при температуре колонки 27°C.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к области медицины, в частности к способу диагностики когнитивных нарушений у детей при воздействии марганца техногенного происхождения. Сущность способа: по результатам клинической диагностики и нейропсихологического тестирования устанавливают у ребенка наличие когнитивных нарушений.

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения пентахлорфенола в крови.

Изобретение относится к области медицины, в частности к способам лабораторной диагностики токсического действия никеля, и описывает способ диагностики окислительного стресса у детского населения в условиях внешнесредового воздействия никеля, при этом осуществляют определение содержания никеля в пробе крови и определение лабораторных показателей: в сыворотке крови - содержание гидроперекиси липидов, а в моче - содержание 8-гидрокси-2-деоксигуанозина, далее проводят корреляционный анализ между указанными лабораторными показателями и уровнем никеля в крови, и при одновременном установлении достоверных зависимостей: повышенное содержание в крови ребенка никеля более 0,083 мг/дм3 и повышенное, по сравнению с референтным уровнем, содержание гидроперекиси липидов в сыворотке крови и повышенное, по сравнению с референтным уровнем, содержание 8-гидрокси-2-деоксигуанозина в моче, диагностируют наличие окислительного стресса в организме на уровне ДНК клетки и мембраны клетки.

Изобретение относится к биологии и токсикологической химии и может быть использовано в практике химико-токсикологических, экспертно-криминалистических и клинических лабораторий.

Изобретение относится к медицине и токсикологической химии, а именно к способам определения 3-метоксигидроксибензола в биологическом материале, и может быть использовано в практике санэпидстанций, химико-токсикологических, экспертно-криминалистических и ветеринарных лабораторий.
Изобретение относится к медицине, в частности к медицинской диагностике в области онкологии, и описывает способ прогнозирования развития метастазов у больных меланомой кожи.

Предложенная группа изобретений относится к области медицины. Предложен способ прогнозирования у пациента с влажной возрастной дегенерацией желтого пятна (AMD) повышенной вероятности эффекта от лечения высокоаффинным антителом против VEGF, в частности ранибизумабом.
Изобретение относится к области медицины и представляет собой способ дифференциальной диагностики стеатоза печени и стеатогепатита путем биохимического исследования, отличающийся тем, что в сыворотке крови определяют фосфолипазу A2, оксид азота и эндотоксин и при значении фосфолипазы A2 199,7-252,5 нг/мл, оксида азота 93-94,6 мкмоль/л и эндотоксина 2,2-2,6 ЕЭ/мл диагностируют стеатоз печени, а при значении фосфолипазы A2 412,5-576,5 нг/мл, оксида азота 137,5-168,5 мкмоль/л и эндотоксина 3,32-4,18 ЕЭ/мл диагностируют стеатогепатит.
Изобретение относится к медицине и описывает способ прогнозирования высокого риска развития производственно обусловленных и профессиональных заболеваний у работников химического комплекса, занятых во вредных условиях труда, включающий определение в сыворотке крови общего антиоксидантного статуса, при этом дополнительно в сыворотке крови определяют количественное содержание продуктов перекисного окисления липидов и при одновременном увеличении количественного содержания перекисей в липидах более 4,31 мкмоль/л и снижении общего антиоксидантного статуса менее 1,3 ммоль/л прогнозируют высокий риск развития производственно обусловленных и профессиональных заболеваний.

Изобретение относится к медицине, а именно к педиатрии, и может быть использовано для лечения вторичной митохондриальной дисфункции у детей с патологией мочевой системы.

Изобретение относится к области аналитического приборостроения и может найти применение при разработке газоаналитических приборов. Устройство приготовления поверочных газовых смесей содержит смеситель газов, по меньшей мере, один канал для подвода целевого газа в смеситель газов, по меньшей мере, два канала для подвода газа-разбавителя в смеситель газов и канал для вывода газовой смеси из смесителя газов.
Изобретение относится к аналитической химии, в частности к способам определения бензойной кислоты, и описывает способ количественного определения бензойной кислоты по ее метильному производному - метиловому эфиру в водных матрицах с чувствительностью определения 5,0·10-5 мг/см3 с погрешностью определения, не превышающей 25%.

Изобретение относится к способу оценки чистоты воздуха гермокабин летательных аппаратов, поступающего от компрессоров газотурбинных двигателей, на содержание продуктов разложения смазочных масел, включающий проведение параллельных отборов проб воздуха гермокабины путем его прокачки через патроны с сорбентом с последующим наземным газохроматографическим анализом на колонках разной селективности и полярности для идентификации компонентов-примесей.

Изобретение относится к лабораторным методам анализа и касается способа количественного определения марганца, свинца и никеля в желчи методом атомно-абсорбционного анализа с атомизацией в пламени.

Изобретение относится к метрологическому обеспечению приборов газового анализа. .

Изобретение относится к области газоаналитического приборостроения и может быть применено при поверке работоспособности и градуировки газоанализаторов. .

Изобретение относится к средствам метрологического обеспечения газоаналитической аппаратуры, а именно к устройствам для создания потока парогазовой смеси с заданной концентрацией пара.

Изобретение относится к способу получения перфторированного производного сложного эфира посредством химической реакции, где указанная реакция представляет собой реакцию фторирования служащего сырьем исходного соединения, реакцию химического превращения фрагмента перфторированного производного сложного эфира с получением другого перфторированного производного сложного эфира или реакцию взаимодействия карбоновой кислоты со спиртом при условии, что по меньшей мере один из реагентов - карбоновая кислота или спирт - представляет собой перфторированное соединение, причем указанное перфторированное производное сложного эфира представляет собой соединение, в состав которого входит фрагмент приведенной ниже формулы 1 и имеет температуру кипения самое большее 400°С, согласно которому время проведения упомянутой химической реакции является достаточным для того, чтобы выход перфторированного производного сложного эфира достиг заранее заданного значения, и при этом указанный выход перфторированного производного сложного эфира определяют посредством газовой хроматографии с использованием неполярной колонки.

Изобретение относится к области аналитической химии органических соединений, а именно, области определения органических соединений при их совместном присутствии методом газожидкостной колоночной хроматографии, и может быть использовано для раздельного определения фенолов в жидких средах, преимущественно в промышленных стоках, а также при анализе природных вод.

Изобретение относится к области газового анализа и может быть использовано для градуировки газоаналитической аппаратуры. .

Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной фармакологии, и может быть использовано для количественного определения карнозина в тканях и физиологических жидкостях. Определение карнозина в биологических материалах осуществляют высокоселективным методом масс-спектрометрии с применением электроспрейной ионизации. При этом предварительно осуществляют депротеинизацию плазмы крови с помощью 10% водного раствора трихлоруксусной кислоты. Затем к депротеинизированному образцу добавляют аликвоту раствора внутреннего стандарта L-аланил-карнозина. А разделение продуктов экстракции проводят на обращенно-фазной хроматографической колонке 4,6×150 мм с температурой разделения 35°C и скоростью подачи элюента 0,7 мл/мин. Причем в качестве элюента применяют 10 мМ ацетат аммония, подкисленный ледяной уксусной кислотой до pH 3.7, и смесь ацетонитрила с 10 мМ ацетатом аммония в соотношении 90:10, взятые в процентном соотношении 10:90 соответственно. Детектирование карнозина проводят по четырем дочерним ионам с m/z 110.0, 156.1, 180.0, 210.1, образующимся в результате распада молекулярного иона карнозина с m/z 227.1. А концентрацию карнозина рассчитывают по отношению площади хроматографического пика карнозина к площади пика внутреннего стандарта - L-аланил-карнозина. Изобретение обеспечивает высокоселективный и чувствительный хроматомасс-спектрометрический метод количественного определения карнозина в биологических субстратах. 6 ил., 2 табл., 1 пр.
Наверх