Способ получения биомассы каротинсинтезирующих микроорганизмов

Авторы патента:

Шакир Ирина Васильевна (RU)

Панфилов Виктор Иванович (RU)

Кузнецов Александр Евгеньевич (RU)

Червякова Ольга Петровна (RU)

Суясов Николай Александрович (RU)

C12P23/00 - Получение соединений, содержащих циклогексеновое кольцо с ненасыщенной боковой цепью, содержащей по меньшей мере десять атомов углерода, связанных сопряженными двойными связями, например каротинов (содержащих гетероциклические кольца C12P 17/00)

C12N1/38 - химическая стимуляция роста или активности путем введения химических соединений, не являющихся существенными факторами роста; стимуляция роста путем удаления химического соединения (C12N 1/34 имеет преимущество)

C12N1/16 - дрожжи; питательные среды для них

C07C403/24 - с боковыми цепями, замещенными шестичленными неароматическими кольцами, например бета-каротин

Владельцы патента RU 2553213:

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский химико-технологический университет им. Д.И. Менделеева" (РХТУ им. Д.И. Менделеева) (RU)

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к области культивирования микроорганизмов для получения кормовых продуктов, и может быть использовано в промышленности для получения биомассы каротинсинтезирующих дрожжей как источника каротиноидов. Способ предусматривает культивирование культуры микроорганизма, в качестве которого используют дрожжи Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608 при концентрации пероксида водорода в ферментационной среде 5,0 - 6,5 г/л, внесенного на 24-27 час культивирования, и выдержку не менее 2 часов с получением целевого продукта. Изобретение позволяет повысить выход каротиноидов. 3 табл.,29 пр.

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к области культивирования микроорганизмов для получения кормовых продуктов, и может быть использовано в промышленности для получения биомассы каротинсинтезирующих дрожжей как источника каротиноидов.

Известен способ получения каротиноидов с использованием микроводорослей (патент US 2010184194, 22.07.2010). Предлагается способ выращивания микроводорослей, основанный на изменении соотношения источника углерода к азоту в культуральной среде в процессе культивирования с добавлением цитратов и ацетатов, что позволяет повысить выход каротиноидов.

Известен также способ культивирования микроскопических грибов порядка Mucorales, а именно гетероталличного гриба Blakeslea trispora для микробиологического производства β-каротина (патент RU 2211862 С2, 10.09.2001). Предложен состав питательной среды, в которой в качестве органического источника азота предлагается использовать ячменную муку, соевую муку, гречневую муку, кукурузный экстракт, причем массовая доля этих компонентов питания достаточно велика и составляет от 4,0 до 8,0%. Также обязательным компонентом среды является растительное масло (3,0-6,0 мас.%).

Недостатки вышеуказанных способов состоят в том, что для культивирования микроскопических грибов и микроводорослей используют сложные многокомпонентные питательные среды. При этом не уделяется должного внимания подготовке посевного материала.

За прототип выбран способ стимулирования синтеза β-каротина посредством внесения пероксида водорода в культуру гетероталличного гриба Blakeslea trispora (JAE-CHEOL JEONG, 1999).

Сущность способа заключается в совместном культивировании двух штаммов Blakeslea trispora ATCC 14271 (+) и АТСС 14272 (-) на питательной среде следующего состава: 70 г глюкозы, 2 г L-аспарагина, 1 г дрожжевого экстракта, 1,5 г КН₂РO₄, 0,5 г MgSO₄·7H₂O, 5 мг тиамина гидрохлорида в 1 л дистиллированной воды. рН питательной среды - 5,5. Культивирование проводят в колбах Эрленмейера объемом 250 мл с содержанием питательной среды 50 мл при 27°С и постоянном встряхивании (180 об/мин). В полуторасуточную культуру Blakeslea trispora вносят 10 µМ пероксида водорода (0,0136 г/л - концентрация пероксида водорода в ферментационной среде). Это позволяет увеличить выход β-каротина на 46%.

Недостатком предлагаемого метода является незначительное увеличение выхода каротиноидов.

Задачей изобретения является увеличение выхода каротиноидов при культивировании каротинсинтезирующих микроорганизмов.

Поставленная задача решается тем, что культивирование микроорганизмов проводят путем последовательных пересевов в количестве не менее 8-10 пассажей при концентрации пероксида водорода в ферментационной среде 5,0-6,5 г/л, внесенного на 24-27 час культивирования, с последующей выдержкой не менее 2 часов, причем в качестве каротинсинтезирующего микроорганизма используют дрожжи Rhodotorula glutinis Y-608.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.

Пример 1.

Объектом исследования являются дрожжи Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608, которые продуцируют такие каратиноиды, как β-каротин, торулин,торулародин. Культивирование дрожжей проводят в колбах Эрленмейера объемом 250 мл с содержанием питательной среды 50 мл на термостатируемой качалке (оптимальная температура 28-30°С) с числом оборотов 200-220 об/мин при начальном значении рН среды 5,5 в течение 4 суток.

Состав среды для культивирования дрожжей Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608, г/л: КН₂РO₄ - 1,0, (NH₄)₂SO₄ - 5,0, MgSO₄·7H₂O - 0,5, CaCl₂ - 0,1, NaCl - 0,1, дрожжевой экстракт - 0,5, глюкоза - 40,0, вода - водопроводная. Компоненты среды стерилизуют при 0,5 кгс/см² в автоклаве в течение 30 мин.

Вначале готовят посевной материал. Для этого делают смыв культуры стерильной водой с агаризованной среды и переносят в колбу со стерильной питательной средой. Культивирование проводят 1-1,5 суток.

В колбу с питательной средой вносят посевной материал в количестве 10% об. и культивируют в течение 1 суток. На 24-й час культивирования в колбу с дрожжевой суспензией вносят пероксид водорода в количестве 1,0 г/л (концентрация пероксида водорода в ферментационной среде) и продолжают инкубирование в течение 3 суток. В конце процесса культивирования в биомассе дрожжей определяют содержание каротиноидов.

В конце процесса культивирования в биомассе дрожжей определяют количество каротиноидов. Дрожжевые клетки отделяют от культуральной жидкости центрифугированием в течение 15 мин при 5000 об/мин. Надосадочную жидкость сливают, а оставшиеся капли удаляют с помощью фильтровальной бумаги.

Навеску сырой биомассы растирают в фарфоровой ступке и экстрагируют каротиноиды ацетоном. Экстракт сливают в делительную воронку, а экстракцию проводят до полного обесцвечивания биомассы. Далее каротиноиды в делительной воронке переводят в петролейный эфир. Для получения разделения смеси прибавляют дистиллированную воду. Эфирную фракцию собирают в сухую градуированную пробирку с притертой пробкой. Экстракты фотометрируют на спектрофотометре при длинах волн 450,509 и 537 нм.

Определение концентрации каротиноидов в экстракте, мкг/мл:

С₁=3,9·D₄₅₀+ 1,8· D₃₅₇-3,6· D₅₀₉

С₂= 5,3·D₅₀₉-6,7·D₅₃₇

С₃= 6,7·D₅₃₇-1,1·D_509,

где С₁ - концентрация β-каротина, С₂- концентрация торулина, С₃- концентрация торулародина, D₄₅₀ - оптическая плотность экстракта при длине волны 450 нм, D₅₀₉ - оптическая плотность экстракта при длине волны 509 нм, D₅₃₇- оптическая плотность экстракта при длине волны 537 нм.

Определение общего количества каротиноидов, мкг/г АСБ:

А=(С₁+С₂+С₃)·V/m,

где А - общее количество каротиноидов,V - объем экстракта (мл), m - сухой вес биомассы (г), взятой на экстракцию.

В примерах 2-9 культивирование дрожжей проводят, как в примере 1, а концентрация пероксида водорода в ферментационной среде и полученные результаты сведены в таблицу 1.

Таблица 1
Примеры	Концентрация Н₂O₂ в ферментационной среде, г/л	Содержание каротиноидов, % от контроля
контроль	-	100,0
1	1,0	80,9
2	4,0	103,7
3	4,5	127,4
4	5,0	161,9
5	5,5	177,8
6	6,0	217,2
7	6,5	165,7
8	7,0	130,0
9	10,0	73,7

Показано, что пероксид водорода в определенных пределах концентраций оказывает стимулирующее действие на биосинтез каротиноидов дрожжей Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608. Из приведенных примеров 1-9 видно, что при культивировании дрожжей с концентрацией пероксида водорода в ферментационной среде 5,0-6,5 г/л выход каротиноидов увеличивается более чем на 60%, при этом максимальный выход каротиноидов достигается при концентрациии пероксида водорода в ферментационной среде 6,0 г/л и превышает контрольное значение на 117,2%.

В диапазоне концентраций пероксида водорода в ферментационной среде 1,0-4,5 г/л и 7,0-10,0 г/л увеличение выхода каротиноидов незначительно (или ниже контрольного значения) и не превышает заявленного в прототипе.

В примерах 10-14 культивирование дрожжей проводят, как в примере 1, но концентрация пероксида водорода в ферментационной среде составляет 6,0 г/л, а пероксид водорода вносят в среду культивирования на 18, 21, 24, 27 и 30-й часы инкубирования. Полученные результаты сведены в таблицу 2.

Таблица 2
Примеры	Концентрация Н₂O₂ в ферментационной среде, г/л	Время внесения Н₂О₂ в ферментационную среду, ч	Содержание каротиноидов, % от контроля
контроль	-	-	100,0
10	6,0	18	123,7
11		21	143,8
12		24	217,2
13		27	194,1
14	30	145,7

Установлено, что существенное влияние на накопление каротиноидов оказывает время внесения пероксида водорода в ферментационную среду. В примерах 10-14 показано, что при внесении пероксида водорода на 24-27 часы культивирования выход каротиноидов увеличивается на 94,1-117,2%.

Пример 15.

Получение культуры первого пассажа. В колбу с питательной средой вносят посевной материал в количестве 10% об., приготовленный в соответствии с примером 1, и культивируют в течение 1 суток. На 24-й час культивирования в колбу с дрожжевой суспензией вносят пероксид водорода в количестве 6,0 г/л (концентрация пероксида водорода в ферментационной среде) и продолжают инкубирование в течение 3 суток. В конце процесса культивирования в биомассе дрожжей определяют содержание каротиноидов.

Пример 16.

Получение культуры второго пассажа. Через 2 часа после внесения пероксида водорода в ферментационную среду культуры первого (предыдущего) пассажа дрожжевую суспензию в количестве 10% об. переносят в колбу с питательной средой и культивируют в течение 1 суток. Через 24 часа культивирования в колбу вносят пероксид водорода в количестве 6,0 г/л и продолжают инкубирование в течение 3 суток. В конце процесса культивирования в биомассе дрожжей определяют содержание каротиноидов.

В примерах 17-29 культивирование дрожжей проводят как в примере 16, но для каждого последующего пассажа в качестве инокулята используют суспензию дрожжей предыдущего пассажа. Полученные результаты сведены в таблицу 3.

Таблица 3.
Пример	Пересев/пассаж №	Характеристики культивирования
Концентрация Н₂О₂ в ферментационной среде, г/л	Время внесения Н₂О₂ в ферментационную среду, ч	Содержание каротиноидов, % от контроля
контроль	-	-	-	100,0
15	1	6,0	24	217,2
16	2			274,8
17	3			297,0
18	4			313,5
19	5			301,5
20	6			322,8
21	7			313,5
22	8			336,9
23	9			336,1
24	10	361,3
25	11	-	-	358,3
26	12			377,0
27	13			373,9
28	14			372,0
29	15	247,6

Из приведенных примеров видно, что культивирование дрожжей Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608 необходимо проводить при концентрации пероксида водорода в ферментационной среде 5,0-6,5 г/л, внесенного на 24-27 час инкубирования. При этом выход каротиноидов от пассажа к пассажу существенно увеличивается (примеры 15-24) и в 8-10 пассаже выход каротиноидов увеличивается на 236,1-261,3%, что примерно в 3,5 раза больше по сравнению с контролем (примеры 22-24). Показано, что дрожжевая культура, адаптированная к действию пероксида водорода (примеры 25-28), сохраняет свою активность в отношении биосинтеза каротиноидов в течение не менее четырех последовательных пересевов. Учитывая все эти факторы, можно в значительной степени увеличить выход каротиноидов, а адаптированная культуру дрожжей Rhodotorula gkitinis ВКПМ Y-608 может быть использована в промышленности в качестве источника каротиноидов.

Способ получения биомассы каротинсинтезирующих микроорганизмов путем внесения в культуру пероксида водорода, отличающийся тем, что культивирование микроорганизмов проводят путем последовательных пересевов в количестве не менее 8-10 пассажей при концентрации пероксида водорода в ферментационной среде 5,0-6,5 г/л, внесенного на 24-27 час культивирования, с последующей выдержкой не менее 2 часов, причем в качестве каротинсинтезирующего микроорганизма используют дрожжи Rhodotorula glutinis ВКПМ Y-608.

Изобретение относится к способу получения транс-фукоксантинола из кристаллического фукоксантина, который включает применение липазы, полученной из поджелудочной железы свиньи, растворение фукоксантина в этиловом спирте до полного растворения, введение альбумина и хлористого кальция в раствор, выдерживание смеси 5-10 часов при последующем соотношении компонентов, г: Спиртовой 10%-ный раствор кристаллического фукоксантина 0,8-8,0 Липаза, выделенная из поджелудочной железы свиньи 0,01-0,5 4%-ный раствор хлористого кальция 1,0-10,0 Альбумин 0,01-0,1 Фосфатный буфер 105-525 .

Золотистые водоросли и способ их производства // 2478700

Изобретение относится к культивированию сине-зеленых микроскопических водорослей рода Spirulina с образованием водорослей желто-золотистого цвета с высоким содержанием каротиноидов.

Способ получения деиноксантина - каротиноида микроорганизма deinococcus radiodurans // 2475541

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для выделения каротиноидов, в частности деиноксантина, который применяется для разработки новых антиоксидантных и радиопротекторных препаратов для повышения адаптационных возможностей человека и животных, профилактики и лечения заболеваний.

Способ ферментативного получения каротиноидов // 2461628

Изобретение относится к области микробиологии и микробной ферментации. .

Способ получения биологически активного средства на основе ликопина // 2415916

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению биологически активного средства на основе ликопина. .

Штамм дрожжей rhodosporidium diobovatum - продуцент каротиноидов // 2406757

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к микробиологии. .

Штамм дрожжей rhodosporidium diobovatum - продуцент каротиноидов // 2399659

Изобретение относится к биотехнологии. .

Штамм дрожжей phaffia rhodozyma - продуцент астаксантина // 2385925

Изобретение относится к микробиологической промышленности. .

Улучшенный способ получения ликопена путем ферментации выбранных штаммов blakeslea trispora, композиции и применения полученного ликопена // 2296161

Штамм дрожжей xanthophyllomyces dendrorhous - продуцент астаксантина // 2273667

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению каротиноидных пигментов, и может быть использовано в микробиологической промышленности. .

Контроль бактериального заражения в процессах спиртовой ферментации // 2539792

Группа изобретений относится к контролю микробной контаминации в процессе спиртовой ферментации. Предложена противомикробная композиция, включающая от 1% до 5% по массе противомикробного агента семейства гуанидиновых, представляющего собой поли(гексаметилбигуанид); от 0,05% до 0,5% по массе антибиотика; и от примерно 94,5% до примерно 98,95% по массе поверхностно-активного вещества.

Способ получения стимулятора роста listeria monocytogenes из активированной эмбрионально-яичной массы перепелок // 2535980

Изобретение относится к биотехнологии. Способ получения стимулятора роста Listeria monocytogenes предусматривает инкубацию яйца птицы с последующим охлаждением в течение 6-7 суток при температуре 2-4°C, гомогенизацию, фильтрацию, центрифугирование, фильтрацию, тиндализацию в течение 5-6 суток, фасовку.

Способ ускоренного выращивания золотистого стафилококка для диагностики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи // 2511031

Изобретение относится к области биохимии и клинической микробиологии. Проводят выращивание золотистого стафилококка Staphylococcus aureus на питательной среде, содержащей желточно-солевой агар.

Способ получения спорового материала бактерий рода clostridium // 2509151

Изобретение относится к биотехнологии. Способ получения спорового материала бактерий рода Clostridium предусматривает получение инокулята бактерий в полноценной синтетической питательной среде, засев инокулята и культивирования в подходящих условиях в питательной среде, включающей картофель, глюкозу, сернокислый аммоний и мел.

Стимулятор роста yersinia pseudotuberculosis // 2502796

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к применению экзометаболитов морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum. Экзометаболиты, выделенные из морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum путем экстракции этилацетатом культуральной жидкости, получаемой в процессе выращивания морской микроводоросли Phaeodactylum tricornutum с последующим удалением растворителя из этилацетатного экстракта и сушкой этилацетатного экстракта до постоянного веса, применяются в качестве стимулятора роста Yersinia pseudotuberculosis.

Способ получения биогаза с контролируемыми концентрациями микроэлементов // 2499049

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ контроля получения биогаза из биомассы в биогазовом реакторе.

Способ изотопного обогащения клеток e.coli // 2499042

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано для получения изотопно-меченых клеток микроорганизмов. Способ обогащения клеток E.coli изотопами магния предусматривает культивирование клеток E.coli в течение 10-16 ч при температуре 37°C в водном растворе, обогащенном изотопом магния 24Mg или 25Mg, или 26Mg.

Способ активации дрожжей // 2492230

Способ повышения продуктивности микроорганизмов e.coli // 2476593

Изобретение относится к микробиологии и медицине и может быть использовано в фармацевтической промышленности. .

Ростостимулирующее средство для культивирования сульфатвосстанавливающих бактерий // 2459865

Изобретение относится к области биохимии. .

Способ получения α-кетоглутаровой кислоты из рапсового масла с помощью дрожжей yarrowia lipolytica // 2551964

Изобретение относится к биотехнологии. Способ получения α-кетоглутаровой кислоты предусматривает аэробное культивирование на питательной среде штамма дрожжей Yarrowia lipolytica BKM Y-2412.