Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного



Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного
Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного

 


Владельцы патента RU 2553940:

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Казанский национальный исследовательский технический университет им. А.Н. Туполева-КАИ" (RU)
Шакиров Мансур Исхакович (RU)

Изобретение относится к медицине, в частности к гастроэнтерологии, патофизиологии, и касается моделирования острого панкреатита. Для этого способ включает лигирование основного ствола выводного протока поджелудочной железы, введение в систему протоков поджелудочной железы агрессивного раствора для проявления панкреатита, удаление лигатуры. При этом в качестве агрессивного раствора используют 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната в равных соотношениях и в объеме 0,3-0,5 мл из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного. Способ обеспечивает создание модели острого жирового, геморрагического или смешанного панкреатита у животного, что позволяет использовать его для усовершенствования известных способов консервативных и оперативных методов лечения. 15 ил.

 

Изобретение относится к медицине, в частности к гастроэнтерологии, патофизиологии, и касается острого панкреатита.

Запросы практической медицины не могут быть удовлетворены только на основании клинических наблюдений. Неизмеримо возросшие возможности клинических дисциплин, прежде всего в хирургии, для повышения эффективности лечения требуют решения фундаментальных проблем патологии, теоретического осмысления новых и усовершенствования известных способов оперативных вмешательств. В большинстве случаев решить эти задачи можно только в опытах на животных, в том числе путем создания моделей заболевания.

Моделирование острого панкреатита можно объединить в три известных группы моделей: 1 - каналикулярно-гипертензионные, 2 - сосудисто-аллергические, 3 - травматические и токсико-инфекционные (Шалимов С.А., Радзиховский А.П., Кейсевич Л.В. Руководство по экспериментальной хирургии. Москва, Изд. «Медицина», 1989 г., с. 190-205) - [1].

Перельман А.Д. (Перельман А.Д. Способ моделирования острого панкреатита. Авторское свидетельство №1105191, МПК А61В 10/00, Бюл. №28, 1984) - [2] моделировал панкреатит путем перевязки главного выводного протока с введением непосредственно в проток и ткань железы 0,05-0,1% раствора пилокарпина из расчета 0,22-0,29 мг/кг массы тела, добиваясь при этом не резко выраженного панкреатита с дальнейшим фиброзом экзокринной ткани поджелудочной железы. Недостатком данного способа является наличие не резко выраженного панкреатита, проявления которого далее быстро проходили.

Моделирование по гипертензионному типу требует введения не менее 4-5 мл объема жидкости с давлением, превышающим 50 см вод. ст. для изотонического раствора хлорида натрия, для желчи - 30 см вод. ст. Чем выше давление, объем и длительнее застой, тем более выражен панкреатит [1, стр. 192]. Создание гипертензии в протоках позволяет создать лишь модель геморрагического панкреатита. Регулировка давления подачи жидкости достаточно кропотлива.

Введение одновременно в проток стафилококкового α-токсина, антитоксической сыворотки и фермента лецитовителлазы вызывает лишь очаговый некроз, использование скипидара, кислот, солей, масла, хлорэтила, термокоагуляции вызывает склероз паренхимы (Трояшкин А.А. Геморрагический панкреонекроз у морских свинок, вызванный стафилококком // Стафилококковая инфекция - Л., 1972 - С. 43-44) - [3].

Модели чисто сосудистого генеза относительно сложны для воспроизведения, так как окклюзия экстраорганных и магистральных артерий или вен не приводит к развитию острого панкреатита - [1, стр. 197].

Аллергическая модель острого панкреатита, воспроизводимая путем сенсибилизации гемологичного антигена поджелудочной железы в дозе 2-5 мг белка/кг приводит к развитию только геморрагического панкреатита на 2 день, а на 3-5 день собака погибает - [1, стр. 198].

Существует способ создания острого панкреатита - [1, стр. 192-193], где после выделения основного ствола выводного протока поджелудочной железы специальной тонкой иглой (27G-30G) пунктируют двенадцатиперстную кишку, вводят ее в отверстие выводного протока, фиксируют иглу в протоке лигатурой и заполняют систему протоков 2-4 мл 1% раствора перманганата калия, стараясь не повредить протоки. Затем снимают лигатуру, удаляют иглу и герметизируют стенку кишки. Через 10-20 минут возникает отек поджелудочной железы с последующим развитием острого панкреатита.

При введении большего количества раствора эпителий и стенка протоков повреждаются, что ведет к геморрагическому некрозу и деструктивному панкреатиту. Если же количество введенного раствора будет минимальным (2-3 мл), возникает склерозирование поджелудочной железы, развивающееся без клинически выраженной фазы острого и деструктивного панкреатита.

Наиболее близким способом к предлагаемому, взятым за прототип, является способ создания острого панкреатита путем инфузии 5% раствора хенодезоксихолевой кислоты в проток поджелудочной железы, с последующим лигированием поджелудочной железы. (SUN W et al. Beneficial effects of hydrocortisone in induced acute pancreatitis of rats. Chin Med J (Engl). 2007 Oct 20; 120(20):1757-61, реф.; OSMAN MO Beneficial effects of hydrocortisone in a model of experimental acute pancreatitis Dig Surg. 1999; 16(3):214-21, реф.) - [4].

Технический результат, на достижении которого направлено заявляемое изобретение, заключается в повышении эффективности создания экспериментального острого панкреатита - создание модели острого жирового, геморрагического или смешанного панкреатита для усовершенствования известных способов консервативных и оперативных методов лечения.

Технический результат достигается тем, что по способу создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного, включающему лигирование основного ствола выводного протока поджелудочной железы, введение в систему протоков поджелудочной железы агрессивного раствора для проявления панкреатита, удаление лигатуры и определение морфологических изменений в тканях поджелудочной железы, новым является то, что в качестве агрессивного раствора для проявления панкреатита используют 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната в объеме 0,3-0,5 мл из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного, при этом 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната вводят в равных соотношениях.

Способ осуществляют следующим образом.

После вводного наркоза: кетамин 0,5 мг/кг внутримышечно, проведения лапаротомии у крыс 200-220 грамм обоего пола выделяют основной ствол выводного протока поджелудочной железы. Во избежание попадания раствора хенодеоксихолевой кислоты в проксимальные отделы протоков проводят лигирование основного ствола выводного протока. Специальной тонкой иглой (27G-30G) пунктируют выводной проток, увеличенный в диаметре после лигирования, у стенки двенадцатиперстной кишки, фиксируют иглу в протоке и заполняют систему протоков 0,3-0,5 мл 1% раствора хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната в равных соотношениях из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного. Процентное содержание растворов вычислено экспериментальным путем. Затем снимают лигатуру, удаляют иглу. Лапаротомная рана ушивается наглухо. Через 10-20 минут возникает отек поджелудочной железы с последующим развитием морфологических изменений в железе через 1-1,5 и более часов в виде острого жирового, геморрагического или смешанного панкреатита.

Предлагаемое изобретение позволяет создать острый геморрагический, жировой или смешанный панкреатит путем введения 0,3-0,5 мл. 1% раствора хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната в равных соотношениях из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного в перевязанный проток с последующим снятием лигатуры, при этом дает возможность для динамического изучения течения геморрагического, жирового или смешанного панкреатита при осмотре тканей поджелудочной железы в различных промежутках времени.

На базе вивария Казанской ветеринарной академии проводились следующие лабораторные и морфологические исследования, представленные на чертежах (фото) 1-15, где показано следующее.

Фиг. 1 - перевязка общего желчного протока для блокирования поступления хенодезоксехолевой кислоты в печеночные протоки.

Фиг. 2 - введение в ампулу БДС для попадания в ткань поджелудочной железы.

Фиг. 3 - поджелудочная железа после введения препарата.

Фиг. 4 - поджелудочная железа после введения препарата через 15 мин.

Фиг. 5 - поджелудочная железа через 30 минут.

Фиг. 6 - геморрагический некроз в тканях поджелудочной железы.

Фиг. 7 - ткань поджелудочной железы через 40 мин. после воспроизведения экспериментального острого панкреатита. Гематоксилин-эозин, увел. 120х.

Фиг. 8 - ткань поджелудочной железы через 1 час после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Гематоксилин-эозин. Увеличение 120х.

Фиг. 9, 10 - ткань поджелудочной железы через 1-1,5 часа после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Гематоксилин-эозин. Увеличение 120х.

Фиг. 11 - ткань поджелудочной железы через 3 часа после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Окраска Ван-Гизон. Увеличение 120х.

Фиг. 12 - ткань поджелудочной железы через 6 часов после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Гематоксилин-эозин. Увеличение 120х.

Фиг. 13 - ткань поджелудочной железы через 24 часов после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Окраска Ван-Гизон. Увеличение 120х.

Фиг. 14 - ткань поджелудочной железы через 12 суток после воспроизведения экспериментального острого панкреатита. Гематоксилин-эозин. Увеличение 120х.

Фиг. 15 - ткань поджелудочной железы через 12 суток после воспроизведения острого экспериментального панкреатита. Окраска Ван-Гизон. Увеличение 120х.

Лабораторные исследования.

1. Производим расчет хенодеоксихолевой кислоты сухого вещества для создания 1% раствора. (Учебник «Фармакология», 2006, Харкевич Д.А.) - [4]. Хенодеоксихолевой кислоты сухого вещества (в капсуле Хеносан, Хенофалк, Хенофальк, Хенохол) содержится 250 мг. Для создания 1% раствора необходимо перевести миллиграммы сухого вещества в граммы сухого вещества, известно что1 гр = 1000 мг, т.о. 250 гр:1000 мг=0,25 гр. Далее 0,25 гр. сухого вещества растворяем в 100 мл (NaCl 0,9% или дистиллированной воды)=0,25% хенодеоксихолевой кислоты. 250 гр сухого вещества хенодеоксихолевой кислоты растворяем в 250 мл (NaCl 0,9% или дистиллированной воды) = 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты.

Далее вычисляем количество объема вводимого раствора, для чего необходимо рассчитать количество сухого вещества 1% хенодеоксихолевой кислоты в мг на 1 кг массы тела животного. Берем 1000 мг 1% хенодеоксихолевой кислоты, растворяем в 100 мл (NaCl 0,9% или дистиллированной воды) 1000:100=10 мг хенодеоксихолевой кислоты 1%. Далее, 1% хенодехоксехолевую кислоту, 10 мг, взятую на 1 кг массы тела животного, переводим в мл.

100 мл × 10 мг:1000 мг=1 мл, т.е. 10 мг=1 мл.

Животное 200 мг (Доза препарата в гр?) сухого вещества.

10 мг - 1000 г

X - 200 г

X=2 мг (на животное 200 гр)

Количество 1% (хенодезоксехолевой кислоты в мл?) в жидком виде.

1000 мг - 100 мл

2 мг - X

X=0,2 мл (на животное 200 гр).

2. Смешиваем в равных соотношениях 1% раствора хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного.

3. Полученный раствор вводят в проток поджелудочной железы, заполняя систему протоков.

Данные морфологических исследований.

Через 20 мин после воспроизведения экспериментального острого панкреатита определяется выраженный интерстициальный отек, сосуды паретически расширены. Определяются стаз в капиллярах. Ацинарные клетки сохранены. Эпителий выводных протоков сохранен (фиг. 7).

Через 1 час после экспериментального острого панкреатита определяется выраженный межуточный отек, очаговые некрозы жировой ткани, очаговая лейкоцитарная инфильтрация паренхимы, дистрофические изменения панкреацитов, паретическое расширение сосудов, стазы в капиллярах (фиг. 8).

Через 1,5-3 часа от начала воспроизведения экспериментального острого панкреатита определяется дискомплексация и дистрофия панкреоцитов вплоть до некроза групп клеток, очаговая лейкоцитарная инфильтрация паренхимы, некроз жировой ткани с диффузной лейкоцитарной инфильтрацией, паретическое расширение сосудов, стазы в капиллярах (фиг. 9). Также на этих сроках определяется выраженный межуточный отек, диффузная лейкоцитарная инфильтрация, некроз жировой ткани междолькового пространства, дистрофия ацинарных клеток вплоть до некроза отдельных групп клеток. Эпителий выводных протоков сохранен (фиг. 10). Вокруг кровеносных сосудов и выводных протоков выявляется соединительная ткань, (фиг. 11). Через 6 часов после воспроизведения определяется в основном жировая ткань с очаговой лейкоцитарной инфильтрацией. Среди некротизированной жировой ткани участки поджелудочной железы с очаговой лейкоцитарной инфильтрацией, дистрофическими изменениями ацинарных клеток (фиг. 12). Явления смешанного панкреатита. Соединительная ткань через 24 часа после воспроизведения острого экспериментального панкреатита не выявляется (фиг. 13). На 12 сутках развития экспериментального острого панкреатита определяются очаги некротизированной жировой ткани с наличием гигантских многоядерных клеток (липофаги), окруженные разрастаниями грануляционной ткани местами с наличием бурого пигмента гемосидерина (фиг. 14). На этих же сроках определяется выводной проток с метаплазией эпителия с образованием многослойных структур. Соединительная ткань окрашивается в красный цвет вокруг очагов жирового некроза (фиг. 15).

При создании модели экспериментального острого панкреатита в сравнении с аналогом позволяет поэтапно воспроизводить патологические изменения в поджелудочной железе. Разработанная модель экспериментального острого панкреатита отражает основные морфофункциональные нарушения, происходящие при данной патологии. В ранние сроки экспериментального острого панкреатита при отсутствии лечебного воздействия стадия компенсации переходит в субкомпенсацию, а при прогрессировании течения заболевания переходит в стадию декомпенсации.

Таким образом, предложенный способ решает задачу воссоздания за короткое время после начала проведения способа острого геморрагического, жирового или смешанного панкреатита, экономичен, прост в техническом исполнении, применим в условиях любой экспериментальной лаборатории.

Способ создания экспериментальной модели острого панкреатита у животного, включающий лигирование основного ствола выводного протока поджелудочной железы, введение в систему протоков поджелудочной железы агрессивного раствора для проявления панкреатита, удаление лигатуры и определение морфологических изменений в тканях поджелудочной железы, отличающийся тем, что в качестве агрессивного раствора для проявления панкреатита используют 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната в объеме 0,3-0,5 мл из расчета 10-15 мг/кг массы тела животного, при этом 1% раствор хенодеоксихолевой кислоты с 5% раствором натрия гидрокарбоната вводят в равных соотношениях.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, в частности к офтальмологии, и касается моделирования коркового вида катаракты in vivo. Для этого у экспериментального животного проводят хирургическую двустороннюю десимпатизацию путем иссечения верхнего шейного симпатического ганглия.
Изобретение относится к медицине, а именно к фармакологии, и может быть использовано для моделирования состояния ингибирования функциональной активности гликопротеина-Р линестренолом в организме.
Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной онкологии, и может быть использовано для изучения механизмов лимфатического канцерогенеза и разработки новых методов лечения лимфом.

Изобретение относится к медицине, в частности к фармакологии, и касается расширения арсенала средств для коррекции патологических изменений состояния жизнеспособного потомства при цитостатическом воздействии.
Изобретение относится к экспериментальной медицине, в частности разработке способов лечения лучевой болезни. Способ осуществляют путем проведения лабораторным мышам через час после облучения внутривенной аллогенной трансплантации мультипотентных мезенхиальных стромальных клеток (ММСК) и гемопоэтических стволовых клеток (ГСК).

Изобретение относится к медицине, ветеринарии и предназначено для профилактики и лечения острой лучевой болезни. Животным после облучения в дозах, вызывающих костномозговую форму радиационного поражения, перорально вводят меланин с водорастворимостью не менее 80% и концентрацией парамагнитных центров не менее 8·1017 спин/г, в растворенном виде в дистиллированной воде в эффективной концентрации.

Изобретение относится к области медицины, а именно к физиологии поведения животных. Ориентировочно-исследовательское и двигательное поведение крыс исследуют на фоне выработки пищедобывательного навыка посредством дифференциации траектории движения животных в Ж-образном лабиринте.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, патологической анатомии, патологической физиологии и может быть использовано для оценки остеоинтеграции пористых проволочных материалов в эксперименте.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, патологической анатомии и патологической физиологии. Выполняют общее обезболивание.

Изобретение относится к экспериментальной медицине. Способ экспресс-моделирования износа полиэтиленового вкладыша металлической чашки или полиэтиленовой чашки в динамических условиях при разных углах горизонтальной инклинации в экспериментальном модуле эндопротеза тазобедренного сустава заключается в проведении в условиях эксперимента долговременных и многократных циклических движений в модуле эндопротеза тазобедренного сустава.

Изобретение относится к рентгеноскопии, а именно к элементам медицинской рентгенодиагностики. Тест-фантом состоит из двух частей, образующих единое целое. Одна часть имеет постоянную высоту в продольном направлении, а другая часть имеет непрерывно меняющуюся высоту в этом же направлении, образуя клин. На боковой стороне клиновой части выполнены калиброванные вырезы. Использование изобретения обеспечивает повышение точности определения минеральной плотности костной ткани по рентгеновским снимкам, получаемым с помощью рентгеновских аппаратов общего применения, и упрощение конструкции. 7 ил.

Изобретение относится к медицине, экспериментальной биологии и может быть использовано для моделирования экспериментальной амилоидной кардиопатии у животных. Способ заключается в однократном введении старым крысам-самцам смеси, состоящей из гомогенезированной ткани миокарда крыс - 25%, яичного альбумина - 25% и адъюванта Фрейнда - 50%. Введение осуществляют по 0,3 мл в 5 точек инъекции: внутрибрюшинно, в паховые и подмышечные области подкожно слева и справа. Способ, являясь легко воспроизводимым и экономически выгодным, эффективен в отношении создания модели с целью получения возможности изучения патогенеза, профилактики и лечения кардиопатии. 2 ил., 1 табл., 1 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к сосудистой хирургии, и может быть использовано при разработке способов лечения хронических облитерирующих заболеваний артерий нижних конечностей. Для этого моделируют ишемию конечности у крысы-самца породы Вистар путем иссечения бедренной, подколенной артерий и начальных отделов артерий голени под наркозом хлоралгидратом в дозе 250-300 мг/кг. Затем вводят предварительно полученную мононуклеарную фракцию аутологичного костного мозга в дозе 4×106 клеток в объеме 200 мкл. Введение осуществляют в ишемизированную конечность из двух точек, в каждую по 100 мкл. Одна точка - это непосредственно под паховой связкой паравазально в зоне анатомического расположения коллатералей внутренней подвздошной артерии и ее ветвей. Другая точка - в икроножной мышце переднелатеральной поверхности средней трети голени. Способ обеспечивает повышение эффективности лечения в эксперименте за счет стимуляции развития коллатерального кровотока в ишемизированной конечности и улучшения артериального притока крови из проксимальных отделов конечности в дистальные. 1 пр., 1 табл.

Изобретение относится к экспериментальной фармакологии и экспериментальной хирургии и может быть использовано для стимуляции регенерации резецированной печени. Для этого лабораторному животному на вторые сутки эксперимента осуществляют резекцию печени в объеме 70%. В качестве стимулятора регенерации печени вводят L-норвалин внутрижелудочно в суточной дозе 10,0 мг/кг каждые 46 часов первые 7 суток эксперимента. Способ обеспечивает эффективную стимуляцию регенерации резецированной печени, подтверждаемую снижением летальности животных, улучшением микроциркуляции в печени, уменьшением выраженности цитолиза, улучшением синтетической функции печени. 2 табл., 1 пр.

Изобретение относится к области испытаний изделий медицинской техники, а именно к вопросу производственных испытаний эндопротезов суставов с металлической парой трения, состояние которой в процессе испытаний оценивается с применением электрических (электрорезистивных) методов диагностирования. Способ диагностирования эндопротезов суставов с металлической парой трения заключается в том, что эндопротез закрепляют в испытательном стенде, нагружают осевой силой, формируют смазочный слой между поверхностями компонентов эндопротезов и определяют физические характеристики поверхностного слоя компонентов в зоне трения. При этом пропускают через зону трения эндопротеза малый по значению переменный электрический ток, регистрируют временную функцию комплексного сопротивления трибосопряжения эндопротеза, по параметрам активной и реактивной составляющих которой судят о фактической толщине смазочного слоя и о доминирующем в трибосопряжении виде смазки и режиме трения. По отношению временных отрезков, в которых активная часть комплексного сопротивления больше реактивной части, к общему времени измерения оценивают фактическое техническое состояние трибосопряжения эндопротеза сустава. Изобретение обеспечивает сокращение времени испытаний, оценку реального времени контактного взаимодействия поверхностей трения, повышение мощности выделяемого полезного сигнала, его помехоустойчивость в формировании объективной исходной диагностической информации из зоны трения для последующего прогнозирования долговечности эндопротеза сустава с металлической парой трения. 5 ил.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и касается разработки тактики лечения химических ожогов пищевода и желудка. Для этого у лабораторных крыс моделируют химический ожог. Начиная с 5-х суток после создания модели осуществляют внутрибрюшное введение лекарственных средств. При этом вводят цефатаксим в дозе 100 мг/кг в течение 7 суток. Преднизолон вводят в дозе 1 мг/кг в течение 3 суток. Введение 3%-ного раствора ксимедона осуществляют в дозе 30 мг/кг 1 раз в течение 40 суток. Способ обеспечивает эффективное лечение ожогов пищевода и желудка за счет быстрого восстановления толщины мышечной пластинки слизистой оболочки и предупреждения образования рубцов. 1 табл., 16 ил.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной патофизиологии и трансплантологии, и касается моделирования посттрансплантационных изменений почки. Для этого лабораторному животному - крысе выполняют одностороннюю нефрэктомию, денервацию и делимфатизацию второй почки. Затем пережимают почечные артерию и вену на 40-60 минут. После выполнения хирургического вмешательства проводят трехкратную иммунизацию лабораторного животного почечным антигеном, полученным из удаленной почки, адъювантным методом. При этом за 5 недель до хирургического вмешательства у лабораторного животного производят забор клеток костного мозга, получают из них in vitro культуру мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток. Денервацию и делимфатизацию оставшейся почки выполняют путем удаления адвентиции и клетчатки, окутывающих мочеточник, почечные артерию и вену, в области ворот почки на протяжении 7-10 мм и декапсуляции почки в области ее медиального края шириной 7-10 мм, протяженностью от одного полюса почки до другого с захватом области ее ворот. Для получения почечного антигена используют целую почку и доводят содержание белка в нем до 70 мг/мл. На 35-40 сутки после выполнения хирургической операции вводят полученную культуру мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток тому же животному внутривенно в дозе 1,5-3,0 млн клеток в 1 мл физиологического раствора. Способ позволяет создать адекватную, доступную для выполнения модель хронического отторжения в аутологичных почках у мелких лабораторных животных с ускоренным развитием визуализируемых деструктивных посттрансплантационных процессов. 1 пр., 1 табл., 9 ил.
Изобретение относится к экспериментальной медицине, травматологии и ортопедии, хирургическому лечению травматических повреждений спинного мозга с одновременным ускорением его регенерации. По задней поверхности травмированного спинного мозга экспериментального животного (ЭЖ) без его компрессии размещают биосовместимый имплантат (БИ) из магнитного материала в биосовместимой матрице (БМ). Затем периодически помещают ЭЖ в постоянное магнитное поле. Вектор напряженности его воздействия совпадает с кранио-каудальной ориентацией проводящих путей спинного мозга. В качестве БМ БИ используют желатин животного или растительного происхождения, в котором иммобилизованы в качестве магнитного материала БИ наполнитель в виде наночастиц ферромагнитного магнетита или ферромагнитного феррита в количестве 18-42 мас.% с размером наночастиц 2,0-38 нм и с напряженностью магнитного поля (Н) 5-10 мТл. Магнитное воздействие на травматические повреждения спинного мозга проводят сочетанным воздействием магнитного поля БИ и внешнего вращающегося постоянного магнитного поля с магнитной индукцией 0,15-0,35 Тл. Периодичность внешнего магнитного воздействия 1-2 раза в сутки, длительность 2-8 мин за один сеанс, количество сеансов 2-4. В качестве желатина животного происхождения БМ БИ можно использовать агар-агар, желатина растительного происхождения - пектин. В БМ БИ могут быть дополнительно введены способствующие росту и пролиферации клеток полиамины, например спермин или спермидин, в количестве 1-5 мас.%. Способ обеспечивает достаточно полное восстановление функции спинного мозга дистальнее зоны его повреждения, обеспечение благоприятных условий для достаточного роста нейроглии с прорастанием аксонов реципиента из неповрежденного проксимального отдела спинного мозга в дистальный для восстановления его проводящей функции, обеспечение уменьшения образования рубцовой ткани в области травмы спинного мозга, устранение отека мозговой ткани. 2 з.п. ф-лы, 8 пр.
Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной хирургии. Для моделирования инфравезикальной обструкции у мелких животных проводят перевязку уретры. Дополнительно в естественное отверстие уретры вводят стержень из ахиллова сухожилия крупного рогатого скота до полного погружения. Перевязку уретры осуществляют в области наружного отверстия. Изобретение обеспечивает высокую физиологичность модели при низкой травматичности способа ее создания.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной офтальмологии, и предназначено для получения модели пролиферативной витреоретинопатии. Для этого крысам в полость стекловидного тела глаза вводят 2 мкл раствора диспазы, содержащего фермент в дозе 0,03U. Устанавливают признаки витреоретинопатии через 6 недель после введения фермента. Способ позволяет получить адекватную модель заболевания. 3 ил., 1 пр.
Наверх