Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких



Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких
Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких
Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких
Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких
Способ получения и индукции направленной дифференцировки культуры мультипотентных клеток легких

 


Владельцы патента RU 2554843:

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт фармакологии и регенеративной медицины имени Е.Д.Гольдберга" (НИИФиРМ им.Е.Д.Гольдберга) (RU)

Изобретение относится к биотехнологии и медицине. Предложен способ дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких в фибробластные клетки, характеризующийся тем, что из правой доли фиброзированных легких выделяют клетки с фенотипом мезенхимальных стволовых клеток (CD44+, CD73+, CD90+, CD106+, CD31-, CD34-, CD45-), способные самообновляться in vitro в течение 60 дней, затем при добавлении в культуру мезенхимальных стволовых клеток фактора роста фибробластов 2 мкг/мл получают фибробластные клетки. Способ позволяет получить донорские клетки больных идиопатическим фиброзом из тканей фиброзированных легких. 3 ил., 1 пр.

 

Изобретение относится к биотехнологии, конкретно к клеточным технологиям и регенеративной медицине, и касается способа дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких в фибробластные клетки. Изобретение может быть использовано для решения практических задач регенеративной медицины: поиска потенциальных антифибротических средств, механизм которых связан с избирательной ингибицией дифференцировки мультипотентных клеток легких фиброзированных легких в фибробласты.

Идиопатический фиброз легкого является хроническим активно прогрессирующим заболеванием неизвестной этиологии. Прогноз заболевания в большинстве своем неблагоприятный, состояние пациентов ухудшается быстрыми темпами [1, 2]. Существующий набор лечебных мероприятий для легочного фиброза ограничен и не эффективен. Клиническая практика сосредоточена преимущественно на лечении осложнений и поддерживающей терапии [1].

Перспективным подходом лечения такого хронического заболевания легких, как идиопатический фиброз, может являться клеточная терапия с использованием донорских мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток [2, 3]. В эксперименте показано, что введение донорских мезенхимальных стволовых клеток (МСК) уменьшает блеомицин-индуцированное повреждение легких у мышей, препятствует отложению коллагена, способствует увеличению числа клеток альвеолярного эпителия [4, 5, 6]. Однако терапия экзогенными стволовыми клетками сопровождается повышенным риском бактериальных и вирусных инфекций, аллергических реакций [7, 8]. Серьезным препятствием для терапии стволовыми клетками выступают трудности, связанные с получением достаточного количества клеток для трансплантации и отсутствием стандартизированных и эффективных методов получения стволовых клеток [9]. В этой связи рассматривается вопрос о фармакологической регуляции эндогенных стволовых клеток взрослого организма. Взрослые регионарные стволовые клетки сохраняются в постнатальном периоде, созревают в клетки органа, из которого получены, по пролиферативному и дифференцировочному потенциалу незначительно уступают стволовым клеткам костного мозга и периферической крови, многие исследователи считают их мультипотентными [10].

Адекватных аналогов предлагаемый способ не имеет.

Задачей данного изобретения является получение фибробластных клеток путем дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких для оптимизации поиска лекарственных средств, способных препятствовать развитию фиброза легких.

Способ дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких в фибробластные клетки, характеризующийся тем, что из правой доли фиброзированных легких выделяют клетки с фенотипом мезенхимальных стволовых клеток (CD44+, CD73+, CD90+, CD106+, CD31-, CD34-, CD45-), способные самообновляться in vitro в течение 60 дней, затем при добавлении в культуру мезенхимальных стволовых клеток фактора роста фибробластов (2 мкг/мл) получают фибробластные клетки.

Новым в предлагаемом способе является получение фибробластных клеток путем индукции дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток из фиброзированных легких фактором роста фибробластов.

В основе многих заболеваний лежит нарушение целостности ткани организма. Повреждение тканей может быть следствием различных стимулов, включая инфекции, аутоиммунные реакции, токсины, радиацию или механическое повреждение. Процесс восстановления обычно включает в себя две фазы: регенеративную фазу, в которой поврежденные клетки заменяются клетками того же типа, без видимого повреждения, и фазу, известную как фиброплазия или фиброз, в которой соединительная ткань заменяет нормальные паренхиматозные ткани. При преобладании фиброгенеза первоначально полезный процесс восстановления ткани становится неконтролируемым, что приводит к существенному осаждению компонентов экстрацеллюлярного матрикса, где нормальная ткань замещается рубцовой тканью. При некоторых заболеваниях, таких как идиопатический легочный фиброз, цирроз печени, сердечно-сосудистый фиброз, системная склеродермия и нефрит, обширная реконструкция ткани и фиброз, в конечном итоге, может привести к органной недостаточности и смерти. В этой связи огромную роль в патогенезе пневмофиброза отводят зрелым клеткам мезенхимопоэза - фиброцитам, как одним из ведущих источников коллагена [11].

Термин мезенхимальные стромальные клетки в настоящее время рекомендован Международным обществом клеточной терапии для обозначения фибробластоподобных, прилипающих к пластику клеток с определенными характеристиками (в частности, по способности in vitro дифференцироваться в различные клетки стромальной линии), иногда их называют мезенхимальными стволовыми клетками [12]. Дифференцировка в остеобласты, адипоциты, хондроциты была обнаружена у взрослых стволовых клеток мезенхимального происхождения костного мозга, жировой ткани [11, 13]. МСК выделены из бронхо-альвеолярной жидкости [14]. Необходимость получения фибробластных клеток из МСК легких при пневмофиброзе возрастает многократно, так как при этой патологии потенциальные возможности регионарных стволовых клеток взрослого организма - участие в патогенезе фиброза путем дифференцировки в фибробластные клетки, продуцирующие коллаген, могут определять тактику лечения: поиск/назначение препаратов, ингибирующих дифференцировку МСК.

Отличительные признаки проявили в заявляемой совокупности новые свойства явным образом не вытекающие из уровня техники в данной области и неочевидные для специалиста.

Идентичной совокупности признаков не обнаружено в проанализированной патентной и научно-медицинской литературе.

Техническим результатом изобретения является получение фибробластных клеток индукцией дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких фактором роста фибробластов.

Способ может быть использован для изучения интенсивности дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток паренхимы фиброзированных легких в фибробластные клетки с целью поиска антифибротических средств для регенераторной медицины, в частности для лечения хронических заболеваний легких, действие которых направлено на ингибицию фибробластной дифференцировки МСК. Исходя из вышеизложенного, заявляемое изобретение соответствует критериям патентоспособности изобретения «Новизна», «Изобретательский уровень» и «Промышленная применимость».

Предлагаемый способ был изучен в экспериментах на 8-10 -недельных мышах линии C57BL/6J в количестве 70 штук. Животные первой категории, инбредные мыши, получены из питомника отдела экспериментального биомедицинского моделирования ФГБУ «НИИ фармакологии» СО РАМН (сертификат имеется). Использование животных в экспериментах обосновано и согласовано с Комиссией по контролю за содержанием и использованием лабораторных животных ФГБУ «НИИ фармакологии» СО РАМН.

Изобретение будет понятно из следующего описания и приложенных к нему рис. 1, 2, 3.

На рис. 1 изображены дот-плоты, представляющие данные анализа количественной и качественной экспрессии CD31, CD34, CD44, CD45, CD73, CD90, CD106, полученные с помощью флуоресцентной цитометрии, на прилипающих клетках, выделенных из легких мышей линии С57В1/6 на 21 день эксперимента.

1 - животные, получавшие интратрахеально 0,9% NaCl; 2 - животные, получавшие интратрахеально блеомицин; a1, а2 - подтверждение фенотипа и качественный анализ экспрессии CD45/CD73/CD106 на двухмерных гистограммах; б1, б2 - подтверждение фенотипа и качественный анализ экспрессии CD73/CD31/CD90 на двухмерных гистограммах; в - подтверждение фенотипа и качественный анализ экспрессии CD73/CD34/CD44 на двухмерных гистограммах.

На рис. 2 изображена динамика и морфология клеток в первичной культуре адгезирующих мононуклеаров легкого мышей линии С57В1/6. Содержание клеток эпителиального, эндотелиального вида и фибробластоподобных клеток при образовании монослоя у животных после интратрахеального введения блеомицина (А) и физиологического раствора (Б). Г, Д, Е - клетки с фибробластной морфологией; В - клетки эпителиального типа; Ж, З - эндотелиального типа клетки. Увеличение - ×100.

На рис. 3 изображена фибробластная дифференцировка клеток первичной культуры прилипающих клеток легкого мышей линии С57В1/6, получавших интратрахеально 0,9% NaCl либо блеомицин.

По оси ординат - содержание фибробластов (% от общего числа мононуклеаров).

Светлые столбики - значения, полученные при культивирование клеток без добавления ростового фактора, темные - с добавлением ростового фактора.

Способ осуществляют следующим образом.

Фиброз легкого моделировали однократным интратрахеальным введением 80 мкг блеомицина («Blenoxane», «Sao Paulo», Бразилия) в 30 мкл физиологического раствора. Контрольным животным в аналогичных условиях вводили эквивалентный объем физиологического раствора (контроль). Блеомицин относится к группе противоопухолевых антибиотиков. Его механизм действия до конца не выяснен, хотя известно, что он способен подавлять синтез нуклеиновых кислот (преимущественно ДНК) и белка. Препарат активен в отношении клеток, находящихся как в митотическом цикле, так и вне его, но проявляет большую активность в фазе G2. Основное токсическое действие цитостатик оказывает на легкие: вызывает пневмонию, фибротические изменения в паренхиме легких [15].

На 21-й день после введения блеомицина или NaCl проводили эвтаназию мышей передозировкой СО2 и забор легких, получали прилипающие клетки легких [16].

Полученные клетки разделяли на две группы.

У клеток первой группы на проточном цитофлюориметре FACS Canto II (BD Biosciences, США) был проведен фенотипический анализ с помощью набора моноклональных антител: CD44 (Hyaloronate receptor), CD73 (Ecto-5-nucleotidase), CD90 (Thy-1 glycoprotein), CD106 (Vascular cell adhesion molecule-1), CD31 (Platelet Endothelial Cell Adhesion Molecule-1), CD34 (stem/progenitor hemopoietic cell), CD45 (Leukocyte Common Antigen), которые являются маркерами характерными для мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток. Исследование проводилось согласно протоколу производителя. Адгезирующие клетки легких второй группы в количестве 3-4×106 вносили в культуральный флакон («ТРР Techno Plastic Products AG», Швейцария) и инкубировали в стандартных условиях (37°C, 5% CO2, 100% влажность воздуха) в течение 2-2,5 месяцев в среде следующего состава: 90% DMEM-LG («HyClone», США), 10% FBS («HyC1one», USA), 2 mML-глютамина («Sigma», США), раствор антибиотиков (пенициллин/стрептомицин 100 U/ml и 100 mg /мл («HyClone», США)). Каждые 3-4 дня проводилась смена базовой среды и морфологическая оценка клеточной культуры. Рассчитывалось время удвоения (tD) эндотелиальных и эпителиальных клеток и фибробластных клеток по формуле: tD=(log2×t)/(logNh-logN0) [16]. N0 - количество клеток во время второй смены среды, Nh - количество клеток в изучаемый период культивирования t. После достижения максимального слияния (70-90% покрытия поверхности флакона) клетки снимали с поверхности пластика и оценивали их иммунный профиль. Часть клеток в количестве 8-10×105 на 10-15 мл базовой среды использовали для последующего культивирования (проводили 3 пассажа).

У полученных после обогащения клеток в стандартных условиях изучалась дифференцировка в фибробластные клетки. Фибробластную дифференцировку клеток изучали в 50% среды DMEM-HG (HyClone, США) с фактором роста фибробластов 2 мкг/мл (ФРФ, («Sigma», США)), дополненной 20% инактивированной FBS («HyClone», США), 280 мг/л L-глутамина («Sigma», США), 50 мг/л гентамицина («Serva», Германия). Концентрация клеток составила 6×105 клеток в 2 мл. 18-е дневные культуры фиксировали и окрашивали основным красителем Май-Грюнвальда.

Математическую обработку результатов производили с применением стандартных методов вариационной статистики. Достоверность различий оценивали с использованием параметрического t-критерия Стьюдента или непараметрического U-критерия Манна-Уитни.

Пример.

Проведенные нами эксперименты показывают, что выделенные на 21 день опыта (в период интенсивного отложения коллагена) из легких мышей контрольной и опытной групп прилипающие к пластику клетки позитивны по маркерам поверхности CD44, CD73, CD90, CD106 и не экспрессируют CD31, CD34, CD45, что позволяет нам отнести данную популяцию клеток к мезенхимальным стромальным клеткам (рис. 1).

В культурах прилипающих клеток контрольных и блеомициновых легких выявляются клетки с морфологическими особенностями фибробластов (длинные и тонкие, веретенообразный вид), эндотелиальных клеток (форма булыжника) и эпителиальных клеток (кубические). На протяжении первых 6-7 смен среды основное увеличение биомассы флакона осуществляется за счет эндотелиоподобных и эпителиоподобных клеток (рис. 2). Количество клеток с морфологией фибробластов составляет 5-10% от общей клеточности флакона. Начиная с 8-й смены среды наблюдается обогащение культуры фибробластами, количество эндотелиоподобных и эпителиоподобных клеток поступательно снижается. К окончанию исследования (17-18 смена среды) в образцах выявляются клетки преимущественно с фибробластной морфологией. Следует отметить, что по скорости формирования монослоя и времени удвоения клеток отдельных популяций опытная группа (клетки, полученные от животных, получавших блеомицин) существенно превосходит контрольную группу (клетки, полученные от животных, получавших физиологический раствор).

После достижения слияния 80% у клеток контрольной и опытной групп при исследовании иммунного профиля оказалось, что клетки экспрессируют на поверхности CD44, CD73, CD90, CD106 и не экспрессируют CD31, CD34, CD45.

При изучении дифференциации клеток первичной культуры показано, что обнаруженные в фибробластной среде (с фактором роста фибробластов и без фактора роста фибробластов) клетки из всех источников имеют веретенообразную морфологию (рис. 3). Окрашивание основным красителем Май-Грюнвальдом подтверждает присутствие фибробластов в культуре. В культуре клеток блеомициновых мышей количество фибробластов было достоверно (n-8, р<0,05) больше, чем в культуре клеток контрольных животных.

Предлагаемый способ оценивает один из механизмов накопления фибробластных клеток (продуцентов коллагена) в фиброзированных легких - дифференцировку легочных мезенхимальных стволовых клеток в фибробластные клетки. Применение способа позволит выявить основное звено патогенеза пневмофиброза и провести таргетную терапию заболевания препаратами, фармакологический эффект которых был бы основан на ингибиции фибробластной дифференцировки МСК.

Способ дифференцировки мезенхимальных стволовых клеток фиброзированных легких в фибробластные клетки, характеризующийся тем, что из правой доли фиброзированных легких выделяют клетки, с фенотипом мезенхимальных стволовых клеток (CD44+, CD73+, CD90+, CD106+, CD31-, CD34-, CD45-), способные самообновляться in vitro в течение 60 дней, затем при добавлении в культуру мезенхимальных стволовых клеток фактора роста фибробластов 2 мкг/мл получают фибробластные клетки.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к области биотехнологии. ВНК-21/13-13 - перевиваемая монослойно-суспензионная сублиния клеток почки новорожденного сирийского хомячка задепонированна в Российской коллекции клеточных культур (РКК) в специализированной коллекции перевиваемых соматических клеточных культур сельскохозяйственных и промысловых животных при Всероссийском научно-исследовательском институте экспериментальной ветеринарии им.

Настоящее изобретение касается способа получения популяции клеток, экспрессирующих маркеры плюрипотентности и маркеры, характерные для линии сформированной эндодермы.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к иммунологии, и может быть использована в лабораторной диагностике как тест-система и способ определения антивирусной активности интерферона альфа (ИФН-α) в сыворотке крови человека.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для лечения инфекционного перитонита в эксперименте. Для этого крысам внутривенно вводят суспензию аллогенных мезенхимальных стволовых клеток из расчета 1,5×106 на 100 г массы животного в 2 мл физиологического раствора.

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к выращиванию колоний клеток. Система культивирования плюрипотентных стволовых клеток состоит из соединенных между собой системы управления и блока культивирования.

Изобретение относится к области биотехнологии и иммунологии. Раскрыт способ промотирования регенеративных процессов в культуре ткани или культуре клеток.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к лентивирусной доставке апоптина в опухолевые ткани, и может быть использовано в медицине. Способ включает получение лентивирусного конструкта, экспрессирующего модифицированный апоптин, слитый с секреторным сигналом лактотрансферрина и трансдукторным сигналом (ST-CTP-апоптин), с последующим получением рекомбинантных лентивирусных частиц, дефектных по репликации и несущих модифицированный апоптин, которые затем вводятся в Т-лимфоциты (TILs), полученные при хирургическом удалении опухоли или в процессе получения биопсии, которые обладают способностью проникать в опухолевые ткани.
Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение представляет собой питательную среду для микроразмножения кальцефильных растений в культуре in vitro, включающую растворенные в дистиллированной воде витамины и аминокислоты по прописи Мурасиге и Скуга, сахарозу в количестве 20000 мг/л, агар-агар в количестве 8000 мг/л, а также регуляторы роста 6-бензиламинопурин, гибберелловую кислоту и 3-индолил уксусную кислоту, минеральный состав Woody Plant Medium, кинетин, при этом регуляторы роста взяты в следующей концентрации, мг/л: 6-бензиламинопурин 0.1-0.3 кинетин 0.9-1.1 гибберелловая кислота 0.9-1.1 3-индолил уксусная кислота 0.4-0.6 Изобретение позволяет увеличить коэффициент размножения посредством активации пазушных меристем без ущерба качеству регенерантов.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ индукции в культуре in vitro гибели плюрипотентных стволовых клеток и клеток, отличных от кардиомиоцитов, происходящих из плюрипотентных стволовых клеток, путем культивирования клеточной популяции, включающей плюрипотентные стволовые клетки, клетки, отличные от кардиомиоцитов, происходящих из плюрипотентных стволовых клеток, и кардиомиоциты, происходящие из плюрипотентных стволовых клеток, в гипертоническом растворе, содержащем сахариды (углеводы) и имеющем осмотическое давление от 370 мОсм/кг до 1000 мОсм/кг.

Изобретение относится к области биотехнологии. Описан способ закрепления плюрипотентных стволовых клеток человека на плоском носителе.

Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Предложен способ дифференцировки популяции полипотентных стволовых клеток, полученных из установленных линий полипотентных стволовых клеток, в популяцию клеток, экспрессирующих маркеры, характерные для линии панкреатической энтодермы, которая ко-экспрессирует PDX1, NKX6.1, но не экспрессирует CDX2 и NGN3.

Изобретение относится к биотехнологии и представляет собой выращенную прикрепленной к субстрату клетку из плаценты. Данная клетка культивирована в трехмерных (3D) условиях культивирования, которые обеспечивают возможность размножения клетки.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к клеточным технологиям, и может быть использовано в медицине. Способ включает масштабирование диплоидных клеток линии М-20 из криобанка ИПВЭ им.

Изобретение относится к области клеточной биологии, клеточной трансплантологии и тканевой инженерии. Способ повышения ангиогенной активности стромальных клеток жировой ткани в тканях и органах включает выделение стромальных клеток жировой ткани, культивирование выделенных клеток в присутствии фактора некроза опухолей-альфа в количествах 5 или 100 нг/мл в течение 24-72 часов с последующим трансплантированием в ткани или органы.

Изобретение относится к области биотехнологии, клеточным технологиям и тканевой хирургии. Способ получения культуры гладкомышечных клеток заключается в том, что вырезают фрагмент кровеносного сосуда, измельчают его на кусочки до размеров не более 2 мм в любом измерении и инкубируют кусочки в культуральном флаконе с предварительно нанесенными на дно флакона царапинами, содержащем среду для культивирования, содержащую 10% эмбриональной фетальной сыворотки, в течение по меньшей мере 10 дней, но не более 24 дней, при температуре 37°С в условиях СО2-инкубатора, отличающийся тем, что упомянутым фрагментом кровеносного сосуда является фрагмент восходящего отдела грудной аорты, вырезаемый в ходе процедуры аортокоронарного шунтирования, а упомянутые кусочки фрагмента восходящего отдела грудной аорты перед инкубированием выдерживают в среде для культивирования, содержащей 0,1% коллагеназы, в течение по меньшей мере 30 минут, но не более 60 минут, при температуре 37°С, после чего промывают средой для культивирования клеток.

Настоящее изобретение касается способа размножения и дифференцирования плюрипотентных клеток. Описанный способ включает стадии: культивирование плюрипотентных клеток и обработку плюрипотентных клеток ингибитором активности фермента GSK-3B, где указанный ингибитор представляет собой 3-[1-(2-гидроксиэтил)-1H-индол-3-ил]-4-(1-пиридин-3-ил-1H-индол-3-ил)-пиррол-2,5-дион.

Изобретение относится к области генетической инженерии, тканевых технологий и медицины. Способ получения мезенхимальных стволовых клеток из плюрипотентных линий стволовых клеток человека включает получение эмбриоидных телец из плюрипотентных стволовых клеток человека, прикрепление эмбриоидных телец к чашке Петри для индукции спонтанной дифференцировки эмбриоидных телец в мезенхимальные стволовые клетки, культивирование с пролиферацией мезенхимальных стволовых клеток при сохранении идентичности мезенхимальных стволовых клеток, и где индукция спонтанной дифференцировки стадии происходит путем формирования петель аутологичного цитокина без добавления внешнего цитокина, также соответствующие клетки, их применение, набор и способ культивирования.

Изобретение относится к области молекулярной биологии, биохимии и медицины. Предложена композиция для индукции миграции стволовых клеток жировой ткани взрослых, которая содержит в качестве активного ингредиента человеческие мезенхимальные стволовые клетки из жировой ткани взрослых в количестве от 1х107 до 1х1010, которые экспрессируют на клеточной поверхности рецептор хемокина или фактора роста, или секреторный продукт из этих стволовых клеток включает рецептор хемокина или фактора роста; где секретируемый продукт стволовых клеток жировой ткани взрослых представляет собой адипонектин; и где человеческие стволовые клетки жировой ткани взрослых подвергаются первичному воздействию смесью, содержащей хемокин или фактор роста.

Изобретение относится к биотехнологии и медицине. Предложен способ экспансии мононуклеарных клеток пуповинной крови (пкМНК) ex vivo в присутствии мультипатентных мезенхимальных клеток (ММСК), включающий культивирование ММСК из стромально-васкулярной фракции жировой ткани до достижения монослоя при концентрации O2 в среде 5%, добавление суспензии пкМНК к монослою ММСК, культивирование в течение 72 часов при концентрации O2 в среде 5%, отбор неприкрепленных пкМНК и замену среды, продолжение культивирования ММСК с прикрепившимися к ним пкМНК в течение 7 дней при концентрации O2 в среде 5%.
Изобретение относится к области биотехнологии и медицины. Предложена композиция, содержащая стволовые клетки из амниотической жидкости человека с фенотипом CD73+/CD90+/CD105+/CK19+, питательную среду, эритропоэтин, эпидермальный фактор роста и коллаген, взятые в эффективном количестве.

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при производстве питательных сред для суспензионного культивирования клеток, в частности суспензионного культивирования клеток почки сирийского хомячка. Питательная среда содержит натрий хлористый, калий хлористый, магний сернокислый, натрий фосфорнокислый двузамещенный, калий фосфорнокислый однозамещенный, кальций хлористый, натрий двууглекислый, L-аргинин, L-глутамин, L-тирозин, L-триптофан, пантотенат кальция, пиридоксаль HCl, тиамин, мезо-инозит, никотинамид, рибофлавин, фолиевую кислоту, глюкозу, ферментативный гидролизат мышечных белков, ферментативный гидролизат лактальбумина, бензилпенициллина натриевую соль с активностью 0,09×105-1,1×105, канамицина сульфат с активностью 0,09×105-1,1×105, нистатин с активностью от 6×104 до 6,5×104 ЕД/л, холина хлорид, янтарную кислоту и дистиллированную воду в заданном соотношении компонентов. Изобретение позволяет повысить качество получаемого продукта. 1 табл., 1 пр.
Наверх