Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)



Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)
Конверсия соматических клеток в индуцированные репрограмированные нейрональные стволовые клетки (ирнск)

 


Владельцы патента RU 2562111:

Ф.ХОФФМАНН-ЛЯ РОШ АГ (CH)

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен In vitro способ получения нейральных стволовых клеток (НСК), включающий получение соматических клеток, выбранных из группы фибробластов, кератиноцитов или адипоцитов, и репрограммирование указанных соматических клеток в НСК с помощью введения в указанные соматические клетки по меньшей мере двух генов, Bmi1 и Sox2; и культивирования указанных соматических клеток в питательной среде, содержащей ростовые факторы, выбранные из группы FGF2, EGF и BDNF и малой молекулы ингибитора ROCK. Также предложены применение нейральных стволовых клеток в качестве модели заболеваний ЦНС in vitro, терапевтическая композиция и биобанк для применения в регенеративной медицине. 5 н. и 10 з.п. ф-лы, 16 ил., 1 пр.

 

Данная заявка относится к способу конверсии соматических клеток в нейральные стволовые клетки (НСК). Кроме того, данная заявка относится к способу конверсии человеческих фибробластов, кератиноцитов или адипоцитов в нейральные стволовые клетки на основании сопряженной пошаговой трансдукции генов и индукции средой определенного химического состава.

Длительное время считалось общепринятой догмой, что полностью дифференцированные соматические клетки не способны изменять свои свойства в обратном направлении. Эта догма начала меняться, как только серия новаторских экспериментов показала, что профиль экспрессии «молчащих» генов может быть полностью реактивирован с помощью слияния клеток различных типов (Blau, Н.М. How fixed is the differentiated state? Lessons from heterokaryons. Trends Genet. 5, 268-272 (1989)). Относительно недавно было показано, что перенос ядра из соматической клетки в энуклеированную яйцеклетку способен привести к полной реверсии профиля экспрессии генов соматических клеток и формированию состояния плюрипотентной клетки, способной воспроизвести целое животное (например, Gurdon, J.В. & Melton, D.A. Nuclear reprogramming in cells. Science 322, 1811-1815 (2008)). Яманака с коллегами (Takahashi, К. & Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell 126, 663-676 (2006)) продемонстрировали, что соматические клетки могут быть репрограммированы в индуцированные плюрипотентные стволовые клетки (ипСК) с помощью трансдукции четырех определенных факторов (Sox2, Oct4, Klf4, с-Мус). В плюрипотентное состояние ипСК были репрограммированы различные типы соматических клеток, включая фибробласты, кератиноциты и адипоциты. В последние годы возник вопрос, все ли специфические типы соматических клеток способны трансдифференцироваться в совершенно другой тип соматических клеток, таких как нейроны. Этот вопрос изучали Вениг с коллегами, продемонстрировав прямую конверсию мышиных фибробластов в функциональные нейроны с помощью трансдукции трех критических генов: Mash1, Brn2 and Myt1I (Wernig at al. Direct conversion of fibroblasts to functional neurons by defined factors. Nature 25; 463(7284): 1035-41 (2010)). Однако полученные нейроны являются постмитотическими клетками, которые по определению не способны пролиферировать и не переносят процедуры замораживания-оттаивания. US 2010/0021437 раскрывает способ получения индуцированных плюрипотентных стволовых клеток из фибробластов и индукции таких клеток к дифференцировке в нейральный фенотип.

Однако прямая конверсия дифференцированных соматических клеток в нейральные стволовые клетки до сих пор не описана. Показано, что нейральные стволовые клетки являются мультипотентными стволовыми клетками, накапливаемыми в специфических условиях. Они требуют определенной химической среды, например, среды N2B27 (N2B27 является смесью 1:1 сред DMEM/F12 (Gibco, Пейсли, Великобритания) с добавлением N2 и В27 (обе от Gibco)) с добавлением FGF (фактор роста фибробластов 2) и EGF (эпидермальный ростовой фактор). Они способны расти как монослойная адгезивная культура, например, в плашках, покрытых полиорнитином/ламином, или как плавучие нейросферы в плашках для неадгезивных клеточных культур. Было показано, что два типа культур нейральных стволовых клеток (нейросферы, адгезивные культуры) полностью взаимно трансформируемы. Нейральные стволовые клетки растут бесконечно и действительно остаются полностью мультипотентными. В определенных условиях они дифференцируются в клеточные типы, из которых состоит взрослый мозг, включая нейроны, астроциты и олигодендроциты. Нейральные стволовые клетки рассматриваются как возможное лечебное средство для лечения пациентов с нейродегенеративными заболеваниями, такими как болезнь Альцгеймера, болезнь Паркинсона, нарушение мозгового кровообращения, и травмы спинного мозга.

Известно, что нейральные стволовые клетки также можно получить in vitro из эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) (Chambers et al. Nature 27; 3 (2009)), либо они могут быть выделены напрямую из образцов мозга (Reynolds BA, Rietze RL (2005) Nat Methods 2: 333-336). Однако, также известно, что до сих пор эти методы обладают существенными недостатками, такими как повышенное число высокочувствительных этических вопросов и/или они требуют сложных и трудоемких технологий, которые страдают от серьезных проблем с воспроизводимостью. До сих пор не было описано способов, с помощью которых нейральные стволовые клетки могли быть напрямую получены из дифференцированных соматических клеток. В принципе, нейральные стволовые клетки можно получить из ипСК, полученных из дифференцированных клеток. Однако это подразумевает культивирование ипСК. Было показано, что ипСК растут бесконечно, но условия культивирования сложны и требуют гигантских усилий. В дополнение было отмечено, что образование нейральных стволовых клеток из плюрипотентных стволовых клеток колеблется из-за стохастических механизмов. Общим препятствием ипСК и ЭСК является тот факт, что даже минимальное число недифферецированных клеток может привести к формированию тератом (опухоли из зародышевых клеток, включающие несколько клеточных типов), которые являют собой внушающую опасения контаминацию, которую нельзя игнорировать. Следовательно, остается потребность в легко доступной и воспроизводимой технологии получения нейральных стволовых клеток. В настоящем изобретении предложен способ конвертации соматических клеток напрямую в нейральные стволовые клетки. Новый способ ослабляет необходимость получения ипСК и следовательно устраняет риск формирования тератом. Подобные клетки без способности формировать тератомы пригодны и безопасны для применения в регенеративной медицине. Предпочтительные соматические клетки - это соматические клетки млекопитающих, наиболее предпочтительны человеческие соматические клетки. Предпочтительные соматические клетки - это фибробласты, адипоциты или кератиноциты, наиболее предпочтительны фибробласты. Вышеупомянутые фибробласты, адипоциты или кератиноциты могут быть без труда и безопасно получены от пациента или здорового человека с помощью, например, неинвазивных методов, таких как биопсия кожи, или из выщипанных волос. Способ настоящего изобретения позволяет конвертировать соматические клетки, такие как фибробласты, адипоциты или кератиноциты от здоровых или больных людей напрямую в нейральные стволовые клетки. Такие нейральные стволовые клетки от здоровых людей, или пациент-специфичные, способны делиться бесконечно. Их культивирование удобно и хорошо охарактеризовано. Аликвоты нейральных стволовых клеток от здоровых людей и пациент-специфичных возможно воспроизводимо замораживать и оттаивать. В частности, нейральные стволовые клетки, полученные от пациента, представляют соответствующую заболеванию in vitro модель для изучения патофизиологии заболеваний ЦНС. Конверсия пациент-специфичных соматических клеток напрямую в нейральные стволовые клетки представляет легко доступную и воспроизводимую технологию создания БиоБанков пациент-специфичных нейральных стволовых клеток. Подобные БиоБанки имеют огромное значение для заболеваний ЦНС, патология которых была описана в клетках по меньшей мере трех типов, развивающихся из нейральных стволовых клеток: нейронов, олигодендроцитов и астроцитов. Таким образом, полученные с помощью описываемого способа нейральные стволовые клетки являются чрезвычайно ценной моделью заболеваний для поиска эффективных и безопасных лекарственных препаратов.

Множество нейродегенеративных заболеваний характеризуются потерей нервных клеток. Регенеративная способность взрослого мозга в ответ на черепно-мозговые травмы и нейродегенеративные заболевания весьма ограничена. Более того, фармакологическое воздействие часто все в большей степени теряет эффективность из-за прогрессирующей гибели популяции чувствительных к нему нейронов. Полученные с помощью описываемого здесь способа нейральные стволовые клетки также могут быть использованы в регенеративной медицине для лечения нейродегенеративных заболеваний, таких как болезнь Паркинсона, болезнь Альцгеймера, хорея Хантингтона, боковой амиотрофический склероз (болезнь Лу Герига) и травм спинного мозга. С помощью описываемого новаторского способа теперь возможно производить достаточное количество нейральных клеток-предшественников для использования при лечении методами клеточной трансплантации. Нейральные стволовые клетки могут быть получены из соматических клеток, выделенных как из здорового человека, так и из пациента. Пациент-специфичные нейральные стволовые клетки, полученные с помощью описываемого способа, являются новым привлекательным донорским источником для лечения методами аутологичной клеточной трансплантации вследствие подавления любого иммунного отторжения, вызванного иммунологической несовместимостью между пациентом и донором. Данная стратегия способна устранить необходимость иммунной супрессии при лечении методами клеточной трансплантации. Более того, создание БиоБанков нейральных стволовых клеток, полученных от здоровых людей с различными гомозиготными HLA аллелями, может быть использовано как донорский банк для лечения пациентов, нуждающихся в помощи. Гетерологичная трансплантация нейральных стволовых клеток с совместимым HLA-типом снижает риск нежелательных иммунных ответов, которые могут привести к отторжению пересаженных клеток.

Для достижения описываемого крупного научного прорыва, было необходимо обойти некоторые существующие ограничения репрограммирования, а также объединить трансдукцию генов с использованием стадии индукции в специальной среде.

В настоящем изобретении предложен способ конверсии соматических клеток в нейральные стволовые клетки (НСК), вышеупомянутый способ включает в себя следующие стадии:

а) получение соматических клеток

б) репрограммирование упомянутых соматических клеток в нейральные стволовые клетки с помощью введения по меньшей мере двух генов и

в) индукция репрограммирования с помощью факторов роста и малой молекулы;

В дополнительном воплощении указанный способ дополнительно включает в себя

г) инкубацию продуктов стадий б) и в) в условиях, подходящих для пролиферации нейральных стволовых клеток. Обычно, продукты стадий б) и в) могут быть легко идентифицированы в клеточной культуре как нейросферы. Предпочтительно вышеупомянутые условия пролиферации нейральных стволовых клеток включают сбор описываемых нейросфер и их рост в среде определенного химического состава. Предпочтительно, указанная среда является средой для роста, а нейросферы культивируются в неадгезивных условиях. Неограниченные примеры ростовых сред описываются ниже.

Используемый здесь термин «соматическая клетка» подразумевает любую клетку, которая формирует тело организма и не является клеткой зародышевой линии (такой как сперматозоид и яйцеклетка, и клетками из которых они происходят (гаметоциты)) и недифференцированной стволовой клеткой. Внутренние органы, кожа, кости, кровь и соединительная ткань, все состоят из соматических клеток. Предпочтительные соматические клетки, используемые в описываемом здесь способе, являются фибробластами, адипоцитами или кератиноцитами, и предпочтительно получены с помощью биопсии кожи.

Предпочтительно, чтобы соматические клетки, используемые для конверсии в нейральные стволовые клетки, происходили от млекопитающих, наиболее предпочтительно - от человека. Данные человеческие соматические клетки могут быть получены от здоровых людей или от пациентов. Упомянутые предпочтительные соматические клетки выбраны из группы фибробластов, адипоцитов или кератиноцитов. Данные донорские клетки могут быть легко получены от любого подходящего источника. В данном случае предпочтительным источником является такой, который позволяет изолировать донорские клетки без инвазивных процедур для человеческого тела. Методы изоляции фибробластов хорошо известны в уровне техники. Фибробласты могут быть получены из любого подходящего источника, например, из тканей различных органов или из тканей кожи. Предпочтительны фибробласты легких, фибробласты крайней плоти и фибробласты взрослой кожи. В одном из воплощений настоящего изобретения вышеупомянутые человеческие фибробласты получены от пациента, например, с помощью биопсии кожи (например, Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors. George Q. Daley et al. Nature 2008; A method for the isolation and serial propagation of keratinocytes, endothelial cells, and fibroblasts from a single punch biopsy of human skin, Normand et al. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Animal, 1995). Адипоциты и кератиноциты также могут быть легко получены с помощью биопсии кожи или из выщипанных волос (Isolation and cultivation of human keratinocytes from skin or plucked hair for the generation of induced pluripotent stem cells, Belmonte et al. Nature Protocols 2010) и также являются предпочтительными донорскими клетками для способа данного изобретения.

В одном из предпочтительных аспектов настоящее изобретение представляет собой способ создания пациент-специфичных нейральных стволовых клеток. Другим аспектом представленного изобретения является способ создания нейральных стволовых клеток из соматических клеток, полученных от здоровых людей.

Как используется в настоящем изобретении, «нейральные стволовые клетки» относятся к подклассу плюрипотентных клеток, которые экспрессируют некоторые нейральные маркеры, включая, например, нестин. Полученные с помощью представленного здесь способа нейральные стволовые клетки также относятся к «ирНСК»: индуцированные репрограммированные нейральные стволовые клетки. Нейральные стволовые клетки могут делиться бесконечно и могут деффиренцироваться в нейроны или глиальные клетки (такие как астроциты и олигодендроциты). Термин «пациент-специфичная нейральная стволовая клетка» относится к нейральным стволовым клеткам, полученным из соматических клеток пациента, также как и к аутологичным нейральным стволовым клеткам. Используемый здесь термин «нейральные стволовые клетки от здорового человека» относится к нейральным стволовым клеткам, полученным из соматических клеток человека, который считается, что не страдает ни от каких болезней или расстройств.

Как здесь используется, термин «репрограммирование» относится к одному или более стадиям, необходимым для того, чтобы конвертировать соматическую клетку в менее дифференцированную клетку, например, чтобы конвертировать фибробласт, адипоцит или кератиноцит в нейральную стволовую клетку. Репрограммирование соматической клетки в нейральную стволовую клетку достигается введением по меньшей мере двух генов, вовлеченных в поддержание свойств нейральной стволовой клетки. Список генов, подходящих для репрограммирования соматических клеток в нейральные стволовые клетки, включает Sox2 (Seq ID No. 1), Brn2 (Seq ID No. 2), Bmi1 (Seq ID No. 3), Mash1 (Seq ID No. 4), Sox11 (Seq ID No. 5), NCam (Seq ID No. 6), Kpna1 (Seq ID No. 7), Foxg1 (Seq ID No. 8), Emx2 (Seq ID No. 9) и Рах6 (Seq ID No. 10), но не ограничивается ими. В предпочтительном варианте вводятся по меньшей мере два гена в другом предпочтительном варианте вводится три гена. Предпочтительная комбинация генов для введения в соматические клетки включает в себя Bmi1 и Sox2. В дальнейшем предпочтительный вариант такой комбинации по меньшей мере двух генов дополнительно включает в себя Mash1. В другом варианте данная комбинация по меньшей мере двух генов дополнительно включает в себя один ген, выбранный из группы Mash1, Emx2, Foxg1, Рах6 и Sox11. В дополнительном варианте комбинация по меньшей мере двух генов включает в себя Bmi1, и Sox2, и Mash1.

Используемый здесь термин «введение генов» относится к любому способу, который приводит к стабильной экспрессии указанного гена в соматической клетке. Указанные гены вводятся в соматическую клетку с помощью известных в уровне техники способов, таких как доставка в клетку через репрограммирующие векторы, или через активацию указанных генов с помощью малых молекул. Примерами репрограммирующих векторов являются ретровирусы, лентивирусы, аденовирусы, плазмиды и транспозоны. В данном случае для доставки указанных генов преимущество отдается использованию лентивируса. Примерами малых молекул, подходящих для надежной активации указанных генов, являются ингибиторы метилирования ДНК, ингибиторы деацетилирования гистонов, эрголины (например, этиламид лизергиновой кислоты), флавоны (например, 7'гидроксифлавон), пауллоны (например, кенпауллон) (Reprogramming of murine fibroblasts to induced pluripotent stem cells with chemical complementation of Klf4 PNAS 2009 106 (22) 8912-8917), антогонисты каналов L-типа (например, BIX01294), BayK8644 и 5'азоцитидин (Induction of Pluripotent Stem Cells from Mouse Embryonic Fibroblasts by Oct4 and Klf4 with Small-Molecule Compounds Yan Shi et al. Cell Stem Cell - 6 November 2008 (Vol. 3, Issue 5, pp.568-574)). Для успешной индукции репрограммирования соматические клетки выращивались в соответствующей среде с добавлением факторов роста и малых молекул. Используемый здесь термин «фактор роста» подразумевает биологически активный полипептид, который вызывает клеточную пролиферацию, и включает как сами факторы роста, так и их аналоги. Они включают, без ограничений, эпидермальный ростовой фактор, трансформирующий ростовой фактор, фактор роста нервов, кислый и основной факторы роста фибробластов и фактор ангиогенеза, фактор роста тромбоцитов, инсулин и инсулиноподобный ростовой фактор, включая соматомедины, миксома и оспавакциновый ростовые факторы из вирусов. Предпочтительно использовались ростовые факторы BDNF (мозговой нейротрофический фактор), FGF2 (фактор роста фибробластов 2) и EGF (эпидермальный ростовой фактор). Факторы роста можно использовать поодиночке или в попарной комбинации, но наиболее предпочтительно использовать все три фактора вместе. Кроме того, фибробласты культивировались в присутствии по меньшей мере одной малой молекулы. Используемый здесь термин «малая молекула», или «малое соединение» подразумевает органические или неорганические молекулы, как искусственно синтезированные, так и природные, как правило имеющие молекулярный вес менее чем 10000 г/моль, желательно менее 5000 г/моль, и желательно менее 2000 г/моль. В одном предпочтительном варианте данная малая молекула включает в себя ингибитор Rho-ассоциированной суперспирализованной серин/треонин киназы (ROCK) семейства протеинкиназ. Неограничивающие примеры ингибиторов ROCK включают в себя фасудил (1-(5-изокинолинсульфонил)гомопиперазин), тиазовивин (N-бензил-2-(пиримидин-4-иламино)тиазол-4-карбоксамид), Y27632 ((+)-(R)-транс-4-(1-аминоэтил)-N-(4-пиридил)циклогексанкарбоксамид дигидрохлорид) и баланолоподобное-324 соединение (N-{(3R,4R)-4-[4-(2-фтор-6-гидрокси-3-метокси-бензоил)-бензоиламино]-азепан-3-ил}-4-гидрокси-3,5-диметилбензамид). В другом варианте осуществления малая молекула выбрана среди ингибиторов одной или более киназ: АМРК (АМФ-активируемая протеинкиназа, бета 1 некаталитическая субъединица; официальное обозначение: PRKAB1), СНК2 (СНК2 чекпойнт гомолог (S.pombe), официальное обозначение СНЕК2), MSK1 (рибосомальный белок S6 киназа, 90 кДа, полипептид 5; официальное обозначение PRKACA), PKGa (протеинкиназа, цГМФ-зависимая, типа I; официальное обозначение PRKG1) и SGK1 (сывороточная и регулируемая глюкокортикоидами киназа 1, официальный символ: SGK1).

Используемый термин «среда, подходящая для индукции репрограммирования», он же «среда для индукции» обозначает любую среду определенного химического состава, пригодную для индукции репрограммирования соматических клеток. Предпочтительна бессывороточная среда с добавлением инсулина, трансферрина и прогестерона. Предпочтительная используемая здесь среда содержит 10-50 мкг/мл инсулина, 10-100 мкг/мл трансферрина и 10-50 нМ прогестерона. Примерами бессывороточной среды, подходящей для индукции репрограммирования, являются среда N2B27 (N2B27 является смесью 1:1 сред DMEM/F12 (Gibco, Пейсли, Великобритания) с добавлением N2 и В27 (обе от Gibco)), среда N3 (состоит из DMEM/F12 (Gibco, Пейсли, Великобритания), 25 мкг/мл трансферрина, 30 нМ селенита натрия, 20 нМ прогестерона (Sigma), 100 нМ путресцина (Sigma), или среда для пролиферации NeuroCult® NS-A Proliferation medium (Stemcell Technologies). Наиболее предпочтительно применение описанной выше бессывороточной среды с дополнительным добавлением FGF2, EGF, BDNF и ингибиторов ROCK. Предпочтительно, чтобы данные ингибиторы ROCK включали в себя фасудил или баланолоподобное-324 соединение. В предпочтительном варианте среда дополнялась 10-50 нг/мл FGF2, 10-50 нг/мл EGF, 1-20 нг/мл BDNF и 1-50 мкМ фусидила или 1-10 мкМ баланолоподобного-324 соединения. После введения по меньшей мере двух генов соматические клетки, предназначенные для репрограммирования, предпочтительно выращиваются на вышеупомянутой среде для индукции в течение по меньшей мере 1 дня, предпочтительно от 1 до 7 дней, наиболее предпочтительно в течение от 2 до 3 дней.

В одном варианте осуществления соматические клетки на стадии а) предварительно обработаны ингибитором деацетилазы гистонов (HDAC). Как используется здесь «предварительная обработка», или «обработка перед воздействием» подразумевает инкубацию соматических клеток в подходящей среде с добавками вышеуказанных ингибиторов HDAC в течение от 4 до 60 часов, предпочтительно 48 часов. Пригодные для данной процедуры ингибиторы HDAC выбраны из группы, содержащей бутират натрия (натриевая соль масляной кислоты), трихостатин A (TSA, 7-[4-(диметиламино)фенил]-N-гидрокси-4,6-диметил-7-оксогепта-2,4-диенамид) и вальпроевую кислоту (2-пропил-пентановая кислота). В одном варианте осуществления соматические клетки на стадии а) предварительно обработаны вальпроевой кислотой. Во втором варианте осуществления соматические клетки на стадии а) предварительно обработаны вальпроевой кислотой в течение 48 часов.

Для стимуляции пролиферации нейральных стволовых клеток в виде культивируемых нейросфер, индуцированные нейральные стволовые клетки выращивались в ростовой среде, включающей в себя бессывороточную среду с добавлением инсулина, трансферрина, прогестерона и ростовых факторов, как описано выше. Предпочтительно, указанные ростовые факторы включают в себя FGF2, BDNF и EGF. В другом варианте осуществления вышеуказанная ростовая среда дополнительно включает в себя одну или более добавок, выбранных из группы гепарина, аскорбиновой кислоты, SHH (рекомбинантный человеческий сигнальный белок Sonic Hedgehog), FGF8 (Рекомбинантный человеческий FGF8a изоформа), DLL4 (рекомбинантный человеческий DLL4), Jagged1 (рекомбинантный человеческий Jagged1 Fc химера), фасудил и баланолоподобное-324 соединение.

В другом варианте осуществления изобретения, на следующей стадии стимулировали дифференцировку полученных описанным здесь способом нейральных стволовых клеток посредством удаления по меньшей мере одного из ростовых факторов из репрограммирующей среды. Предпочтительно факторы роста для изъятия включали в себя EGF и FGF.

В другом предпочтительном осуществлении данного изобретения, для облегчения оценки и количественного определения успешно репрограммированных нейральных стволовых клеток был использован маркерный ген. Например, в целевые соматические клетки методом лентивирусной трансдукции вводился ген, кодирующий флуоресцентный маркерный белок. Примерами флуоресцентных маркерных белков являются GFP, YFP, EGFP или DsRed. Предпочтительно вышеупомянутый маркерный ген для удобства использования сцеплен с промотором нестина.

Нестин характерно экспрессируется в нейральных стволовых клетках, таким образом, маркерный ген под контролем промотора нестина позволяет быстро оценить и идентифицировать индуцированные репрограммированные нейральные стволовые клетки. Впоследствие, проводят скрининг таких клеток для идентификации клеток демонстрирующих желаемый фенотип, то есть нейросферы. Нейросферы больше, чем 20 мкм, предпочтительно больше чем 50 мкм, были выбраны и собраны для дальнейшего выращивания.

В другом аспекте данного изобретения, предложена популяция нейральных стволовых клеток, произведенная любым из вышеперечисленных способов. Предпочтительно, чтобы популяция нейральных стволовых клеток была пациент-специфичной, то есть происходила из соматических клеток, полученных от больного человека. В другом варианте осуществления указанная популяция стволовых клеток получена от здорового человека. Нейральные стволовые клетки могут расти бесконечно. Культивирование является легким и хорошо охарактеризовано. Аликвоты нейральных стволовых клеток возможно воспроизводимо замораживать и оттаивать.

Полученные от пациента нейральные стволовые клетки представляют in vitro модель соответствующего заболевания для изучения патофизиологии болезней ЦНС. Конверсия пациент-специфичных соматических клеток напрямую в нейральные стволовые клетки представляет легко доступную и воспроизводимую технологию для формирования БиоБанков пациент-специфичных нейральных стволовых клеток. Следовательно, дополнительным предпочтительным аспектом изобретения предусматривается БиоБанк, охватывающий пациент-специфичные нейральные стволовые клетки. В другом варианте осуществления, создается БиоБанк, включающий различные популяции нейральных стволовых клеток, полученных от здоровых людей.

Используемый здесь термин «БиоБанк» подразумевает библиотеку биологических образцов, полученных от различных людей или видов. Архивная коллекция образцов с сопроводительными данными предназначена для исследовательских задач с целью изучения неврологических заболеваний, таких как болезнь Альцгеймера, болезнь Паркинсона, хорея Хантингтона, боковой амиотрофический склероз (ALS/болезнь Лу Герига) и травм спинного мозга, или для лечения вышеуказанных неврологических заболеваний.

Еще одним аспектом изобретения является применение нейральных стволовых клеток, полученных с помощью данного способа. В предпочтительном воплощении, нейральные стволовые клетки, полученные с помощью данного способа, применяются в качестве модели для изучения in vitro патофизиологии заболеваний ЦНС. Например, полученные с помощью способа данного изобретения нейральные стволовые клетки могут быть использованы для скрининга соединений, которые вызывают обратное развитие, ингибируют или предотвращают неврологические заболевания. Дополнительно, они могут применяться для скрининга соединений, которые вызывают обратное развитие, ингибируют или предотвращают нейральные побочные эффекты медикаментов, например, лекарств от диабета. Предпочтительно, чтобы полученные с помощью вышеописанного способа изобретения нейральные стволовые клетки происходили от больного человека.

В другом аспекте изобретения предложена терапевтическая композиция, содержащая произведенные любым из вышеупомянутых способов клетки, или содержащая любые из вышеупомянутых клеточных популяций. Предпочтительно, терапевтическая композиция дополнительно включает физиологически совместимый раствор, включая, например, искусственную спинномозговую жидкость или фосфатно-солевой буфер. Данная терапевтическая композиция может быть использована для лечения, предотвращения, или стабилизации неврологических заболеваний, таких как, например, болезнь Альцгеймера, болезнь Паркинсона, хорея Хантингтона, или ALS, болезнь лизосомального накопления, рассеянный склероз, или травмы спинного мозга. Например, фибробласты, кератиноциты или адипоциты могут быть получены с помощью биопсии кожи от человека, нуждающегося в лечении, или от здорового человека, и репрограммированы в нейральные стволовые клетки с помощью способа данного изобретения. В одном варианте изобретения нейральные стволовые клетки собираются и вводятся человеку для лечения заболевания. В другом варианте вышеуказанные нейральные стволовые клетки до введения человеку культивируются в условиях, подходящих для дифференцировки в нейроны, олигодендроциты или астроциты, и могут быть использованы для замены или для помощи в функционировании больной или поврежденной ткани. Большим преимуществом данного изобретения является то, что оно обеспечивает практически неограниченный источник пациент-специфичных человеческих нейральных стволовых клеток или совместимых нейральных стволовых клеток от здоровых людей с одинаковым HLA-типом, пригодным для трансплантации. Использование аутологичных и/или совместимых клеток в клеточной терапии является основным преимуществом по сравнению с использованием неаутологичных клеток, которые являются вероятной причиной иммунологического отторжения. В противоположность, маловероятно, что аутологичные клетки повлекут существенные иммунологические ответы.

Еще одним вариантом осуществления изобретения является применение биобанков нейральных стволовых клеток для лечения неврологических заболеваний. Биобанки предпочтительно включают нейральные стволовые клетки, полученные от пациентов, или от здоровых людей с несколькими HLA-типами. Трансплантация нуждающемуся в лечении человеку полученных от здорового донора клеток с совместимым HLA-типом позволяет избежать значительных проблем реакций отторжения, обычно связанных с гетерологичными клеточными трансплантатами

Традиционно, отторжение предотвращается или снижается назначением иммуносуппрессантов или препаратов против отторжения, таких как циклоспорин. Однако, подобные препараты обладают существенными неблагоприятными побочными эффектами, такими как угнетение иммунитета, канцерогенные свойства, почечная токсичность, а также являются очень дорогими. Настоящее изобретение должно устранить, или по меньшей мере, сильно снизить необходимость в препаратах против отторжения, таких как циклоспорин, имулан, FK-506, глюкокортикоиды, и рапамицин, и их производных.

В отношении способов лечения изобретения, предполагается, что применение нейральных стволовых клеток на млекопитающих не ограничено определенным способом введения, дозой, частотой дозирования; настоящее изобретение предусматривает все способы введения, включая внутримышечный, внутривенный, внутрисуставной, в место повреждения, подкожный, или любой другой способ доставки, подходящий для предоставления дозы, достаточной для предотвращения или лечения заболевания. Нейральные стволовые клетки могут быть введены млекопитающим за один прием, или многократными дозами. Когда применяется многократная дозировка, дозы могут быть отделены одна от другой периодом, например, одна неделя, один месяц, один год, или десять лет. Один или более ростовых факторов, гормонов, интерлейкинов, цитокинов, малых молекул или других клеток также могут вводиться до, во время, или после введения клеток для дополнительного направления их к определенному клеточному типу.

Краткое описание графических материалов

Фиг.1: Схематическое изображение способа конвертации человеческих фибробластов в ирНСК. День 0: человеческие фибробласты были трипсинизированы и трансфецированы в небольшом объеме комбинацией генов и нестиновым GFP репортером с использованием среды для индукции (N2B27 с FGF, EGF 30 нг/мл; BDNF 20 нг/мл; фасудил 10 мкМ, полибрен 4 мкг/мл). Фибробласты были посеяны в нормальной плашке для культивирования в концентрации 10000-30000 клеток/см2. День 1: Среда заменена свежей средой для индукции. GFP/нестин позитивные (GFP+) ирНСК начали появляться с очень низкой частотой (~50 ирНСК GFP+ из 100000). День 2: GFP+ ирНСК увеличились в числе и начали двигаться друг к другу, формируя клеточные кластеры. День 3: Клеточные кластеры организовались в четкие сферические структуры, которые оторвались и начали плавать как GFP+ нейросферы. Нейросферы больше, чем 20 мкм были посчитаны и собраны для дальнейшего выращивания.

Фиг.2: Схематическое изображение репортерного лентивируса с человеческим нестином и GFP. Флуоресцентный белок copGFP и селектирующий маркер зеоцин были клонированы под контролем экспрессии фрагмента энхансера в 1,8 тыс. оснований из интрона 2 человеческого нестина, соединенного с минимальным CMV промотером.

Фигура 3: ирНСК в день 1 способа индукции репрограммирования. Верхняя панель: человеческие нетрансформированные фибробласты зародышевого легкого IMR90 (фазовый контраст). Нижняя панель: генерация ирНСК GFP+ клеток (фазовый контраст и GFP канал).

Фигура 4: ирНСК в день 2 способа индукции репрограммирования. Клетки проявляют тенденцию к миграции друг к другу и начинают формировать сферическую структуру с ядром из ирНСК GFP+ (фазовый контраст и GFP канал).

Фигура 5: ирНСК в день 3 способа индукции репрограммирования. Сфероидные структуры, сформировавшиеся на день 2 теперь полностью созрели и представляют собой нейросферы, плавающие в среде. Нейросферы имеют размер в диапазоне 20-100 мкм с высокой плотностью клеток. ИрНСК помечены экспрессией нестина GFP и могут быть обнаружены практически во всех нейросферах, хотя не все нейросферы имеют одинаковую пропорцию ирНСК GFP+ (фазовый контраст и GFP канал).

Фигура 6: Число нейросфер, образовавшихся при различных комбинациях генов.

Фигура 7: Прикрепленные нейросферы после трансдукции Sox2-Bmi1. Прикрепленные нейросферы демонстрируют типичную морфологию удлиненных биполярных клеток. Нижняя панель: ирНСК GFP+ нейросферы под сильным увеличением.

Фигура 8: Дифференцированные клетки через 1 неделю после удаления EGF и FGF. ИрНСК из-за удаления пролиферативных ростовых факторов вырастают в клетки с очень тонкими отростками, позитивно окрашенными нейральным маркером tuj1.

Фигура 9: Получение партии нейросфер ирНСК для дальнейшего выращивания и характеристики. 3,6 миллиона человеческих фибробластов IMR90 были трипсинизированы и инфицированы в небольшом объеме репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP с использованием среды для индукции (N2B27 с FGF, EGF 30 нг/мл BDNF 20 нг/мл) с добавлением фасудила 10 мкМ и полибрена 4 мкг/мл. От дня 4 до дня 8: GFP+ нейросферы, большие, чем 50 мкм, были собраны и в дальнейшем использованы для выращивания. Половина нейросфер была выращена с использованием среды для роста (N2B27 с FGF, EGF 30 нг/мл BDNF 20 нг/мл) с фасудилом, а другая половина без фасудила. День 15: Нейросферы, выращенные на среде для роста с фасудилом, обладают лучшей морфологией и чистыми и четкими границами (отличительный признак хорошо сформированных нейросфер, панель В); без фасудила нейросферы имеют неясные границы (панель А).

Фигура 10: Иммуноцитохимическая характеристика ирНСК нейросфер для экспрессии маркеров НСК Sox2 и нестина. На день 15 ирНСК нейросферы, выращенные с фасудилом, были посеяны на плашки, покрытые PO/Lam, и через 48 часов покрашены на экспрессию Sox2 и нестина. Прикрепленные ирНСК нейросферы и ирНСК, распространяющиеся из сфер. ирНСК имели типичную морфологию НСК и были Sox2 и нестин позитивны. Панель А: Объединенные и раздельные каналы DAPI, Sox2, нестин; увеличение 20х; Панель В: Объединенные каналы DAPI, Sox2, нестин; увеличение 10х.

Фигура 11: Сравнение стимуляции производства ирНСК нейросфер с помощью фасудила и баланолоподобного-324 соединения. Человеческие фибробласты IMR90 были трипсинизированы и инфицированы в небольшом объеме репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP, с использованием среды для индукции (NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл; полибреном 4 мкг/мл) с добавлением фасудила 10 мкМ (заштрихованный столбец), или баланолоподобного-324 соединения 2 мкМ (черный столбец). Фибробласты были посеяны на нормальной плашке для культур тканей в концентрации 10000-30000 клеток/см2. День 1: Среда заменена свежей средой для индукции. День 4: Нейросферы GFP+ большие, чем 50 мкм были подсчитаны. Баланолоподобное-324 малое соединение увеличивает эффективность генерации нейросфер приблизительно вдвое (1,9) и обладает большей воспроизводимостью (STDEV, n=3).

Фигура 12: Предобработка человеческих фибробластов вальпроевой кислотой (VPA) увеличивает выход GFP+ ирНСК нейросфер. Человеческие фибробласты IMR90 были предварительно обработаны в течение 48 часов с или без ингибитором HDAC вальпроевой кислотой (мононатриевая соль 2-пропил-пентановой кислоты) (1 мМ) перед инфекцией репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP. Среда для индукции (NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл; баланолоподобным-324 соединением 2 мкМ). День 7: Нейросферы большие, чем 50 мкм, подсчитали (Панель А) и представили среднее колчество клеток GFP+ ирНСК на нейросферу (Панель В). Типичные изображения произведенных с предобработкой VPA ирНСК нейросфер (Панель С). Предобработка VPA существенно не влияет на число нейросфер ко дню 7; хотя обработка VPA увеличивает (в 2,1 раза) число GFP+ ирНСК (STDEV, n=3).

Фигура 13: Определение минимального набора генов в комбинации с Sox2 и Bmi1 для эффективной индукции ирНСК нейросфер. Человеческие фибробласты IMR90 были предварительно обработаны VPA (1 мМ) в течение 48 часов перед инфекцией репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP, плюс различные гены-кандидаты для усиления их синергитического действия. Среда для индукции: NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл и баланолоподобным-324 соединением 2 мкМ. Определение количества ирНСК нейросфер, больших чем 50 мкм, на день 7. Mash1, Emx2, Foxg1, Рах6 и Sox11 действуют синергично с Bmi1 и Sox2 на генерацию ирНСК нейросфер.

Фигура 14: Формирование ирНСК нейросфер из взрослых человеческих фибробластов кожи (HDFa). Взрослые человеческие кожные фибробласты предоставлены GIBCO (Кат. номер: С-013-5С). Взрослые человеческие фибробласты кожи были трипсинизированы и инфицированы в небольшом объеме репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP, с использованием среды для индукции (NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл) с добавлением фасудила 10 мкМ. День 8: Обнаружены ирНСК нейросферы (типичные изображения при 2,5 и 10× увеличении).

Фигура 15: Выращивание ирНСК нейросфер с использованием аскорбиновой кислоты, сигнального белка Sonic Hedgehog (Shh), Jagged1, DLL4 и FGF8 для получения монослойной культуры ирНСК GFP+. Человеческие фибробласты IMR90 инфицировали репортером с Sox2, Bmi1, нестином GFP с использованием среды для индукции (NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл; баланолоподобным-324 соединением 2 мкМ). День 7: Нейросферы больше, чем 50 мкм, собрали и далее выращивали на среде для роста (NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл; баланолоподобным-324 соединением 2 мкМ; аскорбиновой кислотой 0,2 мМ, SHH (рекомбинантный человеческий сигнальный белок Sonic Hedgehog, каталожный номер: 1845SH) 500 нг/мл, FGF8 (рекомбинантный человеческий FGF8a изоформа, каталожный номер: 4745F8) 100 нг/мл, DLL4 (рекомбинантный человеческий DLL4, каталожный номер: 1506D4) 500 нг/мл, Jagged1 (рекомбинантный человеческий Jagged1 Fc химера, каталожный номер: 1277JG) 500 нг/мл, 1/10 кондиционированной среды от НСК, происходящих от чЭСК, культивированных в течение двух дней на NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Human, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл. Типичное изображение ирНСК нейросфер на день 14, выращенных на среде для роста, как описано выше (Панель А). Нейросферы имеют определенные границы, и возможно наблюдать выпячивание отростков из нейросфер (Панель В, увеличено). На день 21 выращенные ирНСК нейросферы были диссоциированы и посеяны на плашки с покрытием PO/Lam для получения гомогенной монослойной культуры ирНСК GFP+ (Панель С, фазовый контраст и GFP канал ирНСК монослоя после 4 дней культивирования в монослое).

Фигура 16: Иммуноцитохимическая характеристика ирНСК нейросфер в отношении экспрессии маркера НСК нестина и раннего нейрального маркера Tuj1. На день 21 ирНСК нейросферы, полученные как описано на Рисунке 15, были диссоциированы и посеяны в условиях для самоподдержания НСК (NeuroCult® NS-А Proliferation Kit (Человеческий, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарин 2 мкг/мл) для оценки экспрессии маркера нестина (Панель А после 48 часов, все клетки являются нестин+ и Tuj1-), или посеяны в условиях для дифференцировки (NeuroCult® NS-A differentiation Kit (Человеческий, StemCells Technologies) c BDNF 20 нг/мл) и покрашены на Tuj1 и нестин на день 7 (Панель В, все клетки являются Tuj1+, и некоторые клетки нестин+).

Примеры

Способ может быть иллюстрирован имеющейся здесь ссылкой на Фигуру 1, которая изображает способ согласно настоящему изобретению, используемый для превращения человеческих фибробластов в нейральные стволовые клетки (НСК). В этом способе человеческие фибробласты на день 0 были трипсинизированы, подсчитаны, и была определена их жизнеспособность. Затем 1.0×105 - 3.0×105 трипсинизированных фибробластов было ресуспендировано в среде для индукции, и в виде лентивирусов была доставлена комбинация генов. Для увеличения эффективности лентивирусной трансдукции в среду для индукции был добавлен полибрен (гексадиметрин бромид). Инфицирование проводили за 15 минут в пробирках эппендорфах. В комбинации с генами был использован человеческий репортер нестин GFP. Нестин является хорошо известным маркером, специфично экспрессирующимся в НСК. В нестин репортере экспрессия флуоресцентного белка GFP находится под контролем промотера нестина человека (Фигура 2), с помощью него, таким образом, можно легко отследить индуцированные репрограммированные нейральные стволовые клетки (ирНСК) GFP+.

Инфицированные клетки были посеяны в плашки для культур тканей в концентрации 10000-30000 клеток/см2 в соответствующем объеме среды для индукции. На день 1 вся среда для индукции была заменена. Было возможно идентифицировать некоторые ирНСК GFP+ (Фигура 3) по четкой смене морфологии по сравнению с человеческими фибробластами. ИрНСК GFP+ приобретали биполярную удлиненную морфологию с более конденсированной цитоплазмой, типичной для НСК. Более того, ирНСК растут в насыщенной монослойной культуре, напоминающей типичные взаимодействия клетка-к-клетке, приобретаемые традиционными культурами НСК для активации пролиферативного сигнала пути Notch. На день 2 ирНСК GFP+ были в более зрелом состоянии и начали формировать достаточно плотные кластеры клеток. Такие кластеры ирНСК начали формировать сфероидные структуры с плотным ядром, содержащим ирНСК GFP+ (Фигура 4). На день 3 сфероидные структуры были полностью сформированы и начали отрываться от культуральной плашки, плавая в среде как нейросферы. Нейросферы обладают размерами примерно 20-100 мкм с четкими границами и ядром с высокой плотностью клеток, которые возможно отождествлять с ирНСК GFP+ (Фигура 5).

Чтобы достигнуть изобретательского прорыва, было необходимо использовать специфическую комбинацию генов. Следующий список генов, вовлеченных в поддержание характеристик НСК in vivo и in vitro, был получен из литературных данных: Sox2 (Sox транскрипционный фактор и важный маркер НСК), Brn2 (POU домен белка известен, что связывается с белком Sox. Репортер, связывающий Sox2 и Brn2 с промотером нестина. Мыши, нокаутные по Brn2, обладают нарушением развития ЦНС), Bmi1 (Белок вовлечен в регуляцию клеточного цикла, вероятно, усиливает экспрессию р21 и р27 - ингибиторов комплекса циклинЕ/cdk2. Ингибирование циклинЕ/cdk2 устанавливает потерю белком ретинобластомы контроля над клеточным циклом, что влечет быстрый клеточный цикл во время состояния самовоспроизводства НСК), Mash1 (предполагаемый важный регулятор пролиферации нейральных предшественников in vivo), Sox11 (описано, что белок Sox экспрессируется в субгранулярной зоне SGZ in vivo), NCam (НСК маркер для проточной цитометрии и экспрессирующийся в различных районах ЦНС), Kpna1 (более известный как импортин альфа5, ответственный вместе с импортином бета за ядерный транспорт белков в тканях - производных эктодермы).

Все гены были клонированы как кДНК в лентивирусных плазмидах, и впоследствии упакованы в лентивирусы. Упакованные лентивирусные частицы с Sox2, Bmi1, Mash1, Sox11, NCam, Kpna1, нестин GFP репортером были трансдуцированы напрямую в человеческие фибробласты. В описанном выше способе были протестированы различные комбинации генов. На день 3 было возможно оценить успешность продукции ирНСК с помощью подсчета образовавшихся нейросфер. Подсчету подлежали только нейросферы, большие чем 50 мкм.

Как представлено на Фигуре 6, трансдукция лентивируса с нестин репортером без добавления в среду для индукции фасудила не репрограммировала человеческие фибробласты в ирНСК. С добавлением фасудила в среду для индукции отмечалось образование нейросфер (около 50 мкм), и более мелких (около 20 мкм, не подсчитывались).

Нейросферы, образованные с помощью нашего инновационного способа с использованием комбинации генов Sox2-Bmi1 собирались на день 3 и дальше выращивались 14 дней. Выращивание ирНСК нейросфер было критической стадией. Нейросферы культивировались с использованием среды N2B27 с добавлением FGF, EGF, BDNF в специальных ультратонких неадгезивных плашках (Corning). Для получения гомогенной популяции ирНСК GFP+ нейросфер каждые 2-3 дня проводилась процедура очистки. В течение 14 дней выращивания некоторые нейросферы с низкой плотностью ирНСК GFP+ были не способны пролиферировать надлежащим образом, в основном, вероятно, вследствие контаминации неконвертированными фибробластами. Подобные контаминированные нейросферы разваливались на отдельные клетки, которые было необходимо удалять. На день 14 нейросферы проверялись на: прикрепление к плашкам, покрытым полиорнитином/ламинином и генерацию нейроно-подобных клеток. Для прикрепления, 20-40 нейросфер/см2 были посеяны на покрытые полиорнитином/ламинином плашки в среде для роста с добавлением фасудила 10 мкМ для усиления клеточной адгезии и распластания. На день 1 культивирования можно было увидеть прикрепление и распластывание нейросфер (Фигура 7). В центре распластывающейся нейросферы мы идентифицировали ирНСК GFP+ с типичной морфологией НСК. Нейросферы выращивались дополнительно три дня, и тогда только BDNF был добавлен к N2B27 (условия для дифференцировки в нервную ткань). Из-за изъятия EGF и FGF ирНСК меняли морфологию. Они становились более вытянутыми и начинали формировать аксоноподобные клеточные отростки. На день 7 в условиях дифференцировки клетки были зафиксированы и окрашены на нейрональный маркер tuj1 (Фигура 8).

Нейросферы, выращенные с фасудилом, обладают лучшей морфологией и чистыми и четкими границами (отличительный признак правильно сформированной нейросферы, Фигура 9, панель В); без фасудила нейросферы имеют неясные границы (Фигура 9, панель А). ИрНСК обладают типичной морфологией НСК и были Sox2 и нестин позитивны (Фигура 10).

Фигура 11 демонстрирует, что ингибитор Rock киназы баланолоподобное-324 соединение увеличивает выход GFP+ нейросфер.

Данные свидетельства демонстрируют, что с помощью способа по настоящему изобретению возможно конвертировать человеческие фибробласты в ирНСК, основываясь на связанных стадиях трансдукции генов (лучшие комбинации: Sox2-Bmi1, Sox2-Bmi1-Mash1, Sox2-Bmi1-Sox11, Sox2-Bmi1-Emx2, Sox2-Bmi1-Foxg1 и Sox2-Bmi1-Рах6, также см. Фигуру 13) и индукции средой определенного химического состава.

Чтобы увеличить выход ирНСК, человеческие фибробласты были предварительно обработаны с или без ингибитора HDAC вальпроевой кислоты (VPA, мононатриевая соль 2-пропил-пентановой кислоты). С этой целью человеческие фибробласты инкубировались в DMEM/F12 с добавлением FBS 10% и L-глутамина с добавлением 1 мМ VPA перед инфицированием (Фигура 12).

Фигура 14 демонстрирует генерацию ирНСК нейросфер из взрослых человеческих фибробластов кожи (HDFa).

Фигура 15 демонстрирует выращивание ирНСК нейросфер с использованием комбинации аскорбиновой кислоты, сигнального белка Sonic Hedgehog (Shh), Jagged1, DLL4 и FGF8. Фигура 16 демонстрирует иммуноцитохимическую характеристику ирНСК нейросфер в отношении экспрессии маркера НСК нестина и раннего нейрального маркера Tuj1.

Материалы и методы

Культуры клеток:

Среда для индукции: N2B27 (N2B27 является смесью 1:1 DMEM/F12 (Gibco, Paisley, Великобритания) с добавлением N2 и В27 (обе от Gibco) с добавлением человеческого EGF (Peprotech) 30 нг/мл, человеческого FGF2 30 нг/мл (Peprotech), человеческого BDNF (Roche) 20 нг/мл и фасудила (Calbiochem) 10 мкМ или баланолоподобного-324 соединения (N-{(3R,4R)-4-[4-(2-фтор-6-гидрокси-3-метокси-бензоил)-бензоиламино]-азепан-3-ил}-4-гидрокси-3,5-диметилбензамид) 2 мкМ.

Среда для роста: N2B27 с добавлением человеческого EGF (Peprotech) 30 нг/мл, человеческого FGF2 30 нг/мл (Peprotech), человеческого BDNF (Roche) 20 нг/мл, или NeuroCult® NS-A Proliferation Kit (Человеческий, StemCells Technologies) с FGF, EGF BDNF 20 нг/мл; гепарином 2 мкг/мл; баланолоподобное-324 2 мкМ; аскорбиновой кислотой 0.2 мМ, SHH (Рекомбинантный человеческий Sonic Hedgehog, Каталожный номер: 1845SH) 500 нг/мл, FGF8 (Рекомбинантный человеческий FGF8a изоформа, Каталожный номер: 4745F8) 100 нг/мл, DLL4 (Рекомбинантный человеческий DLL4, Каталожный номер: 1506D4) 500 нг/мл, Jagged1 (Рекомбинантный человеческий Jagged1 Fc химера, Каталожный номер: 1277JG) 500 нг/мл.

Среда для дифференциации: N2B27 с добавлением человеческого BDNF (Roche) 20 нг/мл, ламинина 2 мкг/мл (Invitrogen).

Человеческие фибробласты: IMR90 зародышевые фибробласты легкого (АТСС номер партии 580229699) или взрослые фибробласты кожи (GIBCO, каталожный номер: С-013-5С).

Лентивирусы: предварительно упакованные, готовые к использованию частицы вирусов были получены от Sigma (Stemgent репрограммирующий человеческий лентивирус Sox2, каталожный No. ST070012), Genecopeia (человеческий Bmi1 Lentifect лентивирусные частицы, каталожный Nr. LP-B0015-Lv105; Sox11 Lentifect лентивирусные частицы, каталожный Nr. LP-MO425-LV105; Mash1 Lentifect лентивирусные частицы, каталожный Nr. LP-Z0740-LV105; человеческий Kpna1 Lentifect лентивирусные частицы, каталожный Nr. LP-U1286-Lv105; NCam1 Lentifect лентивирусные частицы, каталожный Nr. LP-Z2645-Lv105) и SBI Systems Biosciences (нестин GFP репортер: pGreenZeo™-hNestin транскрипционный репортерный вирус, SR10035VA-1)

Титры NestinGFP 1.45*105/мкл, BMI1 4.3*105/мкл, Sox2 1.07*104/мкл, Sox11 3.2*106/мкл, Mash1 4.7*106/мкл, NCam 3.3*104/мкл, Kpna1 1.8*105/мкл.

Протоколы:

1. Генерация ирНСК:

- 200.000 человеческих фибробластов IMR90 инфицировали лентивирусами с различными комбинациями генов (мультиплексность инфицирования (М.И.), использованная для каждого отдельного лентивируса 30) и репортерного нестин GFP лентивируса (использована М.И. 10) в эппендорфе с 300 мкл среды для индукции с полибреном (гексадиметрин бромид, Sigma) 4 мкг/мл.

- Инкубировать при комнатной температуре 15 мин.

- Рассеять 300 мкл в 1,7 мл среды для индукции в лунке 6-луночной плашки для культивирования с модифицированной поверхностью

- День 1, заменить 2 мл среды для индукции/каждая лунка

- День 3, собрать нейросферы, тщательно отбирая 2 мл с плавающими сферами

- Вырастить нейросферы

2. Выращивание нейросфер:

- Собрать среду с плавающими нейросферами из 3 лунок 6-луночной плашки в 15 мл пробирки

- Дать сферам осесть в течение 10 минут

- Очень аккуратно удалить супернатант (отдельные клетки не оседают вниз и аспирируются вместе с супернатантом)

- Ресуспендировать сферы в 4 мл конечного объема среды для роста

- Посеять в ультранизкие адгезивные плашки В6 (Corning)

- Инкубировать 2-3 дня

- Повторять процедуру выращивания каждые 2-3 дня до 14 дня с момента генерации ирНСК

3. Дифференцировка нейросфер:

- На день 14 с момента генерации ирНСК и после процедуры выращивания выбрать под стерео микроскопом круглые нейросферы с чистыми границами, которые богаты ирНСК GFP+

- Поместить 40 нейросфер в лунку 24-луночной плашки, предварительно покрытой полиорнитином/ламинином, используя среду для роста с добавлением фасудила 10 мкМ или баланолоподобного-324 соединения 2 мкМ.

- Через день поменять среду на среду для роста без фасудила/баланолоподобного-324 соединения 2 мкМ.

- Инкубировать в течение трех дней

- Удалить среду для роста и добавить среду для дифференцировки

- Обновить среду для дифференцировки после 3-4 дней

- Инкубировать 3-4 дня

- Зафиксировать клетки PFA 4% и выполнить иммуноокрашивание

Протокол окрашивания ирНСК нейросфер: Нейросферы на день 15 были окрашены для характиристики следующими антителами: мышиными к нестину и кроличьими к Sox2 O/N, и затем вторичными анти-мышиными 488 и анти-кроличьими 555 в течение 1 часа.

Первичные антитела:

Мышиные к нестину, моноклональные, разведение 1/500 (МАВ5326 Millipore)

Кроличьи к Sox2, поликлональные, разведение 1/500 (AB5603MI Millipore)

Вторичные антитела:

Alexa fluor 488, IgG, разведение 1/1 000, Козьи анти-мышиные (А11029 Invitrogen)

Alexa fluor 555, IgG, разведение 1/1 000, Козьи анти-кроличьи (А21429 Invitrogen)

1. In vitro способ получения нейральных стволовых клеток (НСК), включающий:
а) получение соматических клеток, выбранных из группы фибробластов, кератиноцитов или адипоцитов, и
б) репрограммирование указанных соматических клеток в НСК с помощью введения в указанные соматические клетки по меньшей мере двух генов, Bmi1 и Sox2; и культивирования указанных соматических клеток в питательной среде, содержащей ростовые факторы, выбранные из группы FGF2, EGF и BDNF и малой молекулы ингибитора ROCK.

2. Способ по п. 1, дополнительно включающий
в) инкубацию продуктов стадии б) в условиях, подходящих для пролиферации НСК.

3. Способ по п. 1, где соматические клетки млекопитающего стадии а) являются клетками человека.

4. Способ по п. 1, где факторы роста и малая молекула стадии б) являются добавками в питательную среду с химически определенным составом.

5. Способ по п. 4, где питательная среда с химически определенным составом является бессывороточной средой с добавлением инсулина, трансферрина и прогестерона.

6. Способ по п. 5, где по меньшей мере два гена стадии б) дополнительно включают по меньшей мере один ген, выбранный из группы Mash1, Sox11, Emx2, Foxg1 и Рах6.

7. Способ по п. 6, где по меньшей мере один дополнительный ген стадии б) представляет собой Mash1.

8. Способ по п. 1, где ингибитор ROCK выбран из группы 1-(5-изокинолинсульфонил)гомопиперазина, N-бензил-2-(пиримидин-4-иламино)тиазол-4-карбоксамида, (+)-(R)-транс-4-(1-аминоэтил)-N-(4-пиридил)циклогексанкарбоксамида дигидрохлорида и N-{(3R,4R)-4-[4-(2-фтор-6-гидрокси-3-метокси-бензоил)-бензоиламино]-азепан-3-ил}-4-гидрокси-3,5-диметилбензамида.

9. Способ по п. 1, где соматические клетки предварительно обработаны ингибитором деацетилазы гистонов (HDAC).

10. Способ по п. 1, где указанные по меньшей мере два гена Bmi1 и Sox2 доставляются в соматические клетки с помощью лентивируса.

11. Рекомбинантные пациент-специфические нейральные стволовые клетки для применения в регенеративной медицине, содержащие гены Bmi1 и Sox2, полученные способом по любому из пп. 1-10.

12. Применение нейральных стволовых клеток по п. 11 в качестве in vitro модели заболеваний ЦНС.

13. Терапевтическая композиция для применения в регенеративной медицине, включающая нейральные стволовые клетки по п. 11 и физиологически приемлемый носитель.

14. Терапевтическая композиция по п. 13, где нейральные стволовые клетки дифференцируются в нейроны или клетки глии.

15. Биобанк для применения в регенеративной медицине, содержащий пациент-специфические рекомбинантные нейральные стволовые клетки, содержащие гены Bmi1 и Sox2, полученные от пациентов или здоровых лиц с несколькими типами HLA с помощью способа по любому из пп. 1-10.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биохимии. Предложен способ введения целевых молекул в клетки.

Настоящее изобретение относится к области иммунологии. Предложен выделенный пептид, обладающий способностью индуцировать цитотоксические Т-лимфоциты (ЦТЛ) в присутствии антигенпредставляющих клеток (АПК), несущих HLA-A*2402, и представляющий собой фрагмент белка FOXM1.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложено трансгенное животное, представляющее собой мышь или крысу, в геном которого встроена нуклеиновая кислота, кодирующая перестроенную вариабельную область легкой цепи иммуноглобулина человека, функционально связанную с константной областью иммуноглобулина указанного животного и функционально связанную с промотором, обеспечивающим экспрессию трансгенной легкой цепи в В-клетках млекопитающего, таким образом, что она образует пары с различными эндогенными тяжелыми цепями, обеспечивая получение антител.

Изобретение относится к медицине, а именно к травматологии и ортопедии, и может быть использовано при лечении полнослойных локальных остеохондральных дефектов суставов.

Изобретение относится к медицине, а именно к способу лечения нарушения кровотока в мозге. Для этого указанному индивидууму вводят эффективное количество изолированной популяции клеток, включающей человеческие адгезивные плацентарные клетки, которые представляют собой CD10+, CD34-, CD105+ и CD200+, где по меньшей мере 70% указанных плацентарных клеток в указанной популяции клеток являются нематеринскими по происхождению.

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при производстве питательных сред для суспензионного культивирования клеток, в частности суспензионного культивирования клеток почки сирийского хомячка.

Изобретение относится к области биотехнологии. Описано применение специфических молекул-конъюгатов, которые являются транспортерами карго-молекул, для транспортировки представляющей интерес субстанции в лейкоциты.

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу получения экзосом из крови. Кровь разделяют на плазму и клеточную фракцию.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к рекомбинантной продукции белков человека, и может быть использовано в производстве химерных антител к фактору некроза опухоли человека.

Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ культивирования эпителиальных стволовых клеток или выделенных фрагментов ткани, содержащих указанные эпителиальные стволовые клетки, включающий обеспечение внеклеточного матрикса, инкубирование эпителиальной стволовой клетки или выделенного фрагмента ткани, содержащего указанные эпителиальные стволовые клетки, с внеклеточным матриксом, культивирование эпителиальной стволовой клетки или выделенного фрагмента ткани в присутствии клеточной культуральной среды, содержащей базальную среду для клеток животного или человека, в которую добавлены ингибитор морфогенетического белка кости (BMP) и 5- 500 нг/мл митогенного фактора роста, а также клеточная культуральная среда, ее применение, способ культивирования трехмерного органоида, способ его получения, трехмерный органоид и его применение.

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к изолированной амниотической адгезивной клетке человека, к популяции и композиции, которые содержат такие клетки, а также к способам получения таких клеток и способам использования этих клеток в лечении индивидуумов. Указанная клетка адгезивна к пластику для тканевых культур. Указанная клетка является ОСТ-4- (октамерсвязывающий белок 4) по данным ОТ-ПЦР. Указанная клетка представляет собой CD49f+, CD90+ и HLA-G- по данным проточной цитометрии. Указанная клетка является ангиогенной. Предложенное изобретение позволяет получить новую ангиогенную изолированную амниотическую адгезивную клетку человека. 11 н. и 20 з.п. ф-лы, 18 ил., 8 табл., 6 пр.

Настоящее изобретение относится к области иммунологии. Предложен выделенный пептид, представляющий собой фрагмент белка CDC45L и обладающий способностью индуцировать цитотоксические Т-лимфоциты в форме комплекса с молекулой HLA-A*2402 или HLA-A*0201. Также рассмотрены полинуклеотид, кодирующий пептид по изобретению; композиция для индуцирования цитотоксического лимфоцита (CD8-положительной Т-клетки, ЦТЛ) в присутствии антигенпредставляющей клетки (АПК); фармацевтическая композиция для лечения и/или профилактики CDC45L-экспрессирующих раков и/или предупреждения их послеоперационных рецидивов; способы индуцирования АПК и ЦТЛ; выделенная АПК, которая представляет на своей поверхности комплекс HLA-антигена и пептида по изобретению; способ индуцирования иммунного ответа против CDC45L-экспрессирующего рака у субъекта; вектор для экспрессирования пептида по изобретению и трансформированная или трансфицированная им клетка-хозяин; а также применение пептида по изобретению и АПК в изготовлении фармацевтической композиции для лечения или предупреждения CDC45L-экспрессирующего рака. Данное изобретение может найти дальнейшее применение в терапии онкологических заболеваний. 14 н. и 2 з.п. ф-лы, 8 ил., 2 табл.

Изобретения относятся к области клеточной биологии, фармакологии и медицины. Описан способ культивирования стволовых клеток, исключающий их спонтанную дифференцировку. Способ включает приготовление раствора пектина с концентрацией до 5% и степенью этерификации не более 50%; нанесение его на основу, формирование пектинового матрикса ведут в присутствии раствора поперечно-сшивающего агента ионного типа. В качестве раствора поперечно-сшивающего агента ионного типа используют композицию, содержащую растворимую соль кальция, натрия хлорид, и буферную систему на основе нетоксичных для клеток компонентов. Введение после нанесения раствора пектина на основу дополнительных операций удаления избытка пектина, промывки основы и ее высушивания позволяет сформировать матрикс различной толщины от слоя гидрогеля до тонкой пленки. В способе в качестве подложки могут использоваться различные основы. В другом варианте выполнения способа берут раствор пектина с концентрацией до 5% и степенью этерификации не более 50%, приготовленный на изотоническом растворе. А внесение культуры клеток выполняют перед формированием матрикса с последующим перемешиванием, затем к полученной смеси добавляют поперечно-сшивающий агент ионного типа (ПСА), приготовленный на изотоническом растворе, и перемешивают. Этот вариант исполнения способа позволяет в большей степени приблизить процесс культивирования клеток к естественным условиям, при которых клетки находятся в трехмерном окружении молекул внеклеточного матрикса. Таким образом, заявляемые способы значительно расширяют варианты их применения в клеточных технологиях, поскольку позволяют получать покрытия различной толщины и структуры на поверхностях разного вида. 2 н. и 8 з.п. ф-лы, 7 ил., 10 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к культивированию клеток и их применению для получения полипептидов. Способ получения рекомбинантного посттрансляционно модифицированного полипептида предусматривает стадию продукции. Рекомбинантные клетки CHO культивируют в среде для культивирования клеток, причем среда для культивирования клеток представляет собой среду, не содержащую сыворотку и не содержащую белки, но содержащую от 220 до 2500 мг/л хлорида холина или эквивалентное количество другой соли холина. Среды для культивирования клеток с высоким содержанием хлорида холина особенно пригодны для периодического культивирования клеток с подпиткой, при котором жизнеспособность клеток остается на более высоком уровне в течение более длительного периода времени и с высокими титрами полипептида, хотя и используют ограниченные количества аминокислот. 2 н. и 7 з.п. ф-лы, 24 ил.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению популяции Tr1-клеток, направленных против коллагена типа II, и может быть использовано в медицине. Выделяют популяцию Tr1-клеток, направленных против коллагена типа II и имеющих в покое фенотип CD4+CD25-FoxP3-. Полученную популяцию Tr1-клеток в комбинации с одним или несколькими фармацевтически приемлемыми носителями используют в составе фармацевтической композиции для лечения артрита. Изобретение позволяет получить эффективное средство для лечения артрита. 3 н. и 9 з. п. ф-лы, 6 ил.

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для получения композиций, содержащих стволовые плацентарные клетки. Способ включает: (a) получение адгезивных плацентарных клеток в растворе, включающем от 2% до 10% декстрана, от 2,5% до 10% ДМСО и от 4% до 10% HSA, (b) фильтрацию полученного раствора через 70 мкм - 100 мкм фильтр; (c) разбавление указанных клеток до содержания не более 10±3·106 клеток на миллилитр раствором, включающим от 2% до 5% декстрана, от 2,5% до 10% ДМСО и от 4% до 10% HSA, и (d) криоконсервацию раствора, содержащего клетки. После оттаивания раствор с клетками может быть разбавлен в соотношении от 1:1 до 1:11 вторым раствором, содержащим от 2% до 10% декстрана 40 и от 4% до 10% HSA. Изобретение позволяет повысить жизнеспособность адгезивных плацентарных клеток при криоконсервации. 3 н. и 17 з.п. ф-лы, 29 ил., 11 табл., 3 пр.
Изобретение относится к биотехнологии. Предложен способ получения дезинфицированного препарата клеток из ткани млекопитающего. Осуществляют перфузию ткани млекопитающего не содержащим фермент жидким составом антибиотика, содержащим по меньшей мере один антибиотик и буферный раствор для перфузии. По окончании предыдущей стадии обрабатывают ткань ферментами без антибиотиков для получения суспензии отдельных клеток. Получают дезинфицированный препарат клеток. Изобретение позволяет за короткое время достичь высокого выхода клеток, а также высокой жизнеспособности изолированных дезинфицированных клеток с содержанием микроорганизмов менее 10-6 КОЕ в единице дезинфицированного препарата. 6 з.п. ф-лы, 2 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению стимулированных дендритных клеток (ДК), и может быть использовано в медицине для иммунотерапии рака. Зрелую провоспалительную ДК получают путем ex vivo индуцирования ее созревания посредством обработки незрелой ДК такими веществами как натриевая соль полиинозиновой-полицитидиновой кислоты (поли-И:Ц), резиквимод (R848) и интерферон-гамма (ИФН-g), но не простагландином Е2 (ПГЕ2). Полученную ДК применяют при лечении рака у индивида посредством инъекции в опухоль. При этом указанная провоспалительная зрелая ДК является аллогенной по отношению к указанному индивиду. Изобретение позволяет эффективно ингибировать пролиферацию опухолевых клеток. 5 н. и 9 з.п. ф-лы, 14 ил., 6 табл.
Изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ получения плюрипотентных стволовых клеток, включающий процесс дедифференцировки соматических клеток, культивирование индуцированных плюрипотентных стволовых клеток в присутствии агента, изменяющего эпигенетический статус клетки, и культивирование стволовых клеток в отсутствие указанного агента. При этом процесс дедифференцировки соматических клеток проводят посредством их модификации с помощью факторов перепрограммирования в среде, содержащей ингибитор метилтрансферазы GSK126, а культивирование индуцированных плюрипотентных стволовых клеток в присутствии агента, изменяющего эпигенетический статус клетки, проводят в среде, содержащей белки Вах и Bak. Изобретение позволяет получать индуцированные плюрипотентные стволовые клетки, способные к полному дозреванию и способные дифференцироваться в клетки с низкой вероятностью развития их канцерогенеза, а также увеличение скорости получения плюрипотентных стволовых клеток и дифференцированных клеток, впоследствии полученных из них. 7 з.п. ф-лы, 4 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть применено для регенерации тканей мезодермального происхождения с использованием фибробластов взрослого организма. Производят забор тканей кожи, полученный биоптат промывают в физрастворе с альбумином человека, далее обрабатывают раствором диспазы в культуральной среде ДМЕМ-LG с содержанием глюкозы 1 г/л до отделения эпидермиса от дермы. Полученную дерму промывают ДМЕМ-LG и механически измельчают, фрагменты дермы распределяют по чашке Петри и заливают ДМЕМ-LG с эмбриональной телячьей сывороткой (ЭТС), раствором заменимых аминокислот (MEM NEAA) и антибиотиками. Далее культивируют клетки до заполнения фибробластами всей поверхности дна чашки, после снимают их ферментом, отмывают, фильтруют и осаждают центрифугированием. Клеточный осадок суспендируют в ростовой среде и культивируют во флаконах в CO2-инкубаторе до достижения конфлуэнтного монослоя, после клетки снимают ферментом, осаждают и пассируют до необходимого терапевтического количества. Полученные фибробласты используют для изготовления трансплантатов для регенерации тканей человека. Изобретение позволяет уменьшить объем биоптата и получить гомогенную культуру фибробластов с высокой степенью адаптации и активности. 5 н. и 24 з.п. ф-лы, 8 ил., 1 табл., 7 пр.
Наверх