Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro



Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro
Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro
Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro
Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro

 


Владельцы патента RU 2565806:

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) (RU)

Изобретение относится к области биотехнологии растений и лесному хозяйстве. Изобретение представляет собой способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro, включающий перенос растений после стадии мультипликации на питательную среду WPM для элонгации, с добавлением сахарозы 30 г/л, агар-агара 9 г/л, инозитола 100 мг/л, пиридоксина 0,1 мг/л, тиамина 0,1 мг/л и никотиновой кислоты 0,5 мг/л, где в среду для элонгации добавляют глутамин в концентрации 0,5 или 1,0 ммоль/л, при этом культивирование растений осуществляется при повышенной освещенности - от 5 до 8 тыс. люкс. Изобретение позволяет получать физиологически и морфологически выровненные побеги осины, ясеня и ивы, что обеспечивает значительное повышение эффективности их укоренения ex vitro. 4 табл.

 

Изобретение относится к области биотехнологии растений и лесному хозяйству и может быть использовано для подготовки микропобегов трансгенных клонов ясеня, осины, ивы с целью последующего укоренения в условиях ex vitro.

В настоящее время в лесном хозяйстве уже достаточно активно применяются современные достижения в области биотехнологии растений для получения оздоровленного быстрорастущего посадочного материала. Для этого используют способ клонального микроразмножения растений.

Осина (Populus tremula) и ее гибриды активно используются в биотехнологических исследованиях в качестве модельной культуры для изучения различных аспектов генетики лесных древесных растений по ряду причин: сравнительно небольшой размер генома, относительная простота ее клонального микроразмножения и генетической трансформации, быстрый рост. В лесном хозяйстве осина начинает занимать приоритетное направление для использования в целлюлозно-бумажной промышленности и получения стройматериалов.

Ясень обыкновенный является одной из самых ценных лиственных пород европейской части России. Это главная порода в защитных лесных полосах, в лесных культурах. Данная культура заслуживает широкого внедрения в лесные культуры при реконструкции малоценных молодняков в зеленые зоны вокруг населенных пунктов. Кроме того, древесина ясеня обыкновенного находит широкое применение в сельскохозяйственном машиностроении, в вагоностроении, в мебельном и столярном производствах.

Ввиду своих биологических особенностей виды и гибриды рода Salix имеют широкие ареалы распространения. Выращивание ивы позволяет получать сырье для создания плетеных изделий, экстракции дубильных и других биологически активных веществ, производства пульпы и бумаги, а также ивовая древесная биомасса является прекрасным сырьем для биоэнергетики. Однако для успешного создания целевых ивовых плантаций необходимы как продуктивные генотипы, так и эффективные технологии производства качественного клонового посадочного материала.

Анализ литературных данных не дал информации по способам укоренения ex vitro ясеня обыкновенного, осины и ивы, несмотря на наличие информации по другим культурам.

Известен способ укоренения ясеня в условиях ex vitro «In vitro and ex vitro rooting of micropropagated shoots using three green ash (Fraxinus pennsylvanica) clones» (Kim, M.S., Klopfenstein, N.B., Cregg, B.M. // New Forests, 1998, 16: 43-57), который является наиболее близким техническим решением. В нем растения ясеня пенсильванского культивировались на искусственной питательной среде для мультипликации MS (Murashige, Т. and Skoog, F. 1962. // A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497), с добавлением сахарозы 30 г/л, 6-бензиламинопурина (БАП) 5 мкмоль, тидиазурона 5 мкмоль и индолилмасляной кислоты 1 мкмоль, в течение 4 недель на свету. В конце пассажа срезались апикальные части побегов длиной 50 мм и основание побега, длиной 10 мм, на 15 секунд окунали в раствор, содержащий высокую концентрацию различных ауксинов. Подготовленные побеги помещали в специальный грунт Политерра®, после чего растения укрывали пленкой, где поддерживался высокий уровень влажности. Его недостатками является: получаемые на этапе мультипликации экспланты очень хрупкие (ломкие), и при пересадке в специальный грунт часть побегов повреждается и гибнет; схема подготовки растений сложна для исполнения, поскольку требуется погружение каждого растения в раствор ауксина на 15 секунд, в течение которых происходит увядание растения, наблюдается сильное генотипическое влияние.

Целью предлагаемого изобретения является упрощение схемы производства, повышение качества побегов, устранение сильного влияния генотипа для получения выровненного посадочного материала.

Поставленная цель достигается за счет того, что после завершения этапа мультипликации растения ясеня, осины и ивы переносятся на искусственную питательную среду для элонгации, включающую минеральные соли среды WPM (Lloyd, G. and В.Н. McCown. 1980. // Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, (Kalmia latifolia) by use of shoot tip culture. Int. Plant Prop. Soc, Comb. Proc, 30: 421-427), 30 г/л сахарозы, 9 г/л агар-агара, 100 мг/л инозитола, 0,1 мг/л пиридоксина, 0,1 мг/л тиамина, 0,5 мг/л никотиновой кислоты и 0,5 ммоль/л глутамина. Культивирование на этапе элонгации осуществляется при повышенном уровне освещенности - 5 тыс. люкс.

Суть изобретения состоит в том, что предлагаемый способ, заключающийся в переносе растений на питательную среду для элонгации, включающую минеральные соли среды WPM, 30 г/л сахарозы, 9 г/л агар-агара, 100 мг/л инозитола, 0,1 мг/л пиридоксина, 0,1 мг/л тиамина, 0,5 мг/л никотиновой кислоты и 0,5 ммоль/л глутамина, и культивировании при повышенном уровне освещенности (5 тыс. люкс), обеспечивает получение физиологически и морфологически выровненных побегов ясеня, осины и ивы, что, в свою очередь, обеспечивает значительное повышение эффективности их укоренения в условиях ex vitro.

Анализ известных способов подготовки растений для укоренения в условиях ex vitro, проведенный по научно-технической и патентной документации, показал, что совокупность существенных признаков заявляемого способа не известна из уровня техники, следовательно, он соответствует условию патентоспособности изобретения - «новизна».

Предлагаемый способ реализуется следующим образом.

1. В нестерильных условиях готовится питательная среда, включающая минеральные соли среды WPM, 30 г/л сахарозы и 9 г/л агар-агара. Среда разливается по колбам, укупоривается фольгой и бумагой, завязывается банковской резинкой. Автоклавирование проводится при 1 атм. (=1 изб. атм.) в течение 20 минут. В остывшую до 55°C среду в ламинар-боксе добавляются 100 мг/л инозитола, 0,1 мг/л пиридоксина, 0,1 мг/л тиамина, 0,5 мг/л никотиновой кислоты и 0,5 ммоль/л глутамина. Питательную среду разливают по стерильным культуральным сосудам. Все манипуляции с растительным материалом производится в стерильных условиях ламинар-бокса. На всех этапах культивирования число эксплантов в сосудах составляет 15-25 штук.

2. Этап элонгации проводят на питательной среде, включающей минеральные соли среды WPM, 30 г/л сахарозы, 9 г/л агар-агара, 100 мг/л инозитола, 0,1 мг/л пиридоксина, 0,1 мг/л тиамина, 0,5 мг/л никотиновой кислоты и 0,5 ммоль/л глутамина. Контейнеры с растениями помещают на светокультуральные стеллажи с уровнем освещенности 5 тыс. люкс.

В таблицах 1-4 представлены результаты исследований по влиянию способа подготовки растений ясеня, осины и ивы в условиях in vitro для последующего укоренения в условиях ex vitro.

Укоренение в условиях ex vitro позволяет ускорить и упростить процесс клонального микроразмножения. Однако укоренение микропобегов некоторых культур, полученных в условиях in vitro, часто сопряжено с такими проблемами, как низкая эффективность адаптации, хрупкость микропобегов, физиологическая разнородность адаптировавшихся растений и др. Для повышения физиологической зрелости растений применяют повышенный уровень освещенности культивируемых растений. В случае ясеня результаты исследования показали, что повышение уровня освещенности до 5 тыс. люкс способствовало значительному повышению частоты приживаемости и некоторому увеличению высоты растений обоих генотипов ясеня. Дальнейшее повышение освещенности (до 8 тыс. люкс) не увеличивало частоту приживаемости, а высота растений незначительно снижалась по сравнению с освещенностью 5 тыс. люкс. На число корней уровень освещенности никак не влиял (таблица 1). Уровень освещенности схожим образом влиял на степень приживаемости и морфологические характеристики осины и ивы.

В различных исследованиях показано, что глутамин, являющийся одной из ключевых аминокислот, при добавлении в питательную среду оказывает благоприятное действие на многие культуры. По нашим данным добавление глутамина в питательную среду для элонгации в концентрации более 0,5 ммоль способствовало значительному повышению высоты растений и увеличению числа корней. Приживаемость растений во всех вариантах была очень высокой (таблица 2).

В эксперименте по влиянию глутамина на эффективность последующей адаптации ивы показал, что при содержании глутамина 0,5-1,0 ммоль частота приживаемости увеличивалась до 100%, при этом значительно увеличивалась высота растений (таблица 3).

Преимуществом предложенного способа подготовки микропобегов является повышение их качества на этапе элонгации, что проявляется в более высокой частоте приживаемости растений и улучшении ростовых характеристик. Помимо этого способ позволяет получать более выровненные побеги и, как следствие, большее число растений товарного вида (таблица 4).

Способ применен в опытно-производственных условиях. Он позволяет повысить эффективность эксплуатации тепличных площадей на 15-20%. Получено и высажено более 10 тысяч микрорастений.

Перечень таблиц

1. Таблица 1. Влияние уровня освещенности на этапе элонгации в условиях in vitro на эффективность адаптации ясеня в условиях ex vitro.

2. Таблица 2. Влияние глутамина в среде для элонгации на последующую приживаемость осины в условиях ex vitro.

3. Таблица 3. Влияние глутамина в среде для элонгации на последующую приживаемость ивы в условиях ex vitro.

4. Таблица 4. Усредненные результаты, демонстрирующие эффективность введения этапа элонгации в сочетании с повышенной освещенностью, в сравнении с контролем (без этапа элонгации).

Способ подготовки микропобегов in vitro ясеня, осины, ивы для последующего укоренения в условиях ex vitro, включающий перенос растений после стадии мультипликации на питательную среду WPM для элонгации, с добавлением сахарозы 30 г/л, агар-агара 9 г/л, инозитола 100 мг/л, пиридоксина 0,1 мг/л, тиамина 0,1 мг/л и никотиновой кислоты 0,5 мг/л, отличающийся тем, что в среду для элонгации добавляют глутамин в концентрации 0,5 или 1,0 ммоль/л, при этом культивирование растений осуществляется при повышенной освещенности - от 5 до 8 тыс. люкс.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области биотехнологии растений и лесному хозяйству. Изобретение представляет собой способ криоконсервации пазушных почек in vitro растений осины, заключающийся в изоляции пазушных почек, предварительном их обезвоживании в средах, содержащих осмолитики, переносе почек в криопробирки, криоконсервации криопробирок с почками в жидком азоте, оттаивании почек и посткриогенной регенерации из них растений, отличающийся тем, что на этапе обезвоживания перед быстрым замораживанием сначала почки помещают в раствор I, содержащий питательную среду и осмолитики (WPM с добавлением к сахарозе (0,2-0,5М) глицерола (1,7-2,5М)), затем почки переносят в раствор II, содержащий питательную среду и осмолитики (WPM, сахароза (0,2-0,5М), глицерол (2,5-3,5М), этиленгликоль (1-1,5М), диметилсульфоксид (1,5-2М)), с последующим переносом в жидкость для замораживания (WPM, содержащая сахарозу (0,2-0,5М), глицерол (3,5-4М), этиленгликоль (1,5-2,5М), диметилсульфоксид (1,5-2М)).

Изобретение относится к области биотехнологии и растениеводства. Изобретение представляет собой способ сохранения in vitro растений земляники (Fragaria L.), заключающийся в том, что растения помещают в пробирки на питательную среду Мурасиге-Скуга, модифицированную 6% сахарозы, 10-12 г/л агар-агара, 0,2 мг/л 6-бензиламинопурина, 0,1-0,5 мг/л паклобутразола, 6 мМ глюконата кальция, а на ее поверхность выкладывают гранулы альгината кальция с тиосульфатом серебра, закрывают пробирки и переносят их в условия при температуре от 1 до 10°С, 6-часовом световом дне и освещенности 0,5-0,8 клк.

Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение представляет собой способ размножения пеперомии in vitro, включающий отделение эксплантов, стерилизацию, посадку на питательную среду Мурасиге-Скуга, микроразмножение путем отделения побегов от эксплантов, их укоренение на питательной среде Мурасиге-Скуга и дальнейшее укоренение в грунте, где при микроразмножении экспланты высаживают на агаризованную питательную среду Мурасиге-Скуга, дополненную 10 г/л глюкозы и 0,1 мг/л Рибав-Экстра и культивируют в течение 4 недель, затем сформировавшиеся растения-регенераты с корнями замачивают в растворе 3 мг/л индолилуксусной кислоты в течение 15 минут и укореняют в условиях ex vitro в грунте, состоящем из смеси торфа и песка 1:1.
Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ клонального микроразмножения хризантемы, включающий микрочеренкование растительных побегов, стерилизацию растительных эксплантов с последующей их высадкой на безгормональную питательную среду Мурасига и Скуга, размножение микроклонов, укоренение вновь образованных in vitro побегов и адаптацию растений-регенерантов к почвенным условиям, где на этапе стерилизации растительных эксплантов используют обработку микрочеренков водным раствором анолита нейтрального катодно-обработанного в концентрации 0,03% в течение 10 мин, без последующего промывания стерильной дистиллированной водой, на этапе микроразмножения проводят обработку микрочеренков раствором католита в течение 3 мин, на этапе адаптации почвенный субстрат обрабатывают водным раствором анолита нейтрального катодно-обработанного в концентрации 0,03%, а микрорастения обрабатывают раствором католита в течение 10 мин.

Изобретение относится к области сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения дигаплоидных растений ячменя из культивируемых микроспор in vitro, включающий: - выращивание растений-доноров при пониженной температуре воздуха 15-20°C, световом режиме: 16 ч день/8 ч ночь, влажности воздуха 60-70%, интенсивности освещения 10000-15000 люкс, с проведением фитосанитарной обработки, при этом выращивание растений-доноров осуществляют до стадии от открытия влагалища флагового листа, когда соцветие находится внутри флагового листа, - стрессовую обработку колосьев при 4°C, в пробирках с бедной средой, содержащей KCl - 1,5 г/л, MgSO4×7H2O - 0,25 г/л, CaCl2×2Н2О - 0,1 г/л, маннитол - 60 г/л, калий-фосфатный буфер - 1 мл/л, pH 7,0, в течение 7 дней для переключения из гаметофитного пути развития микроспоры на спорофитный путь, - выделение микроспор из колосков в стерильных условиях, - культивирование выделенных микроспор на модифицированной среде для индукции эмбриогенеза, включающей 6% мальтозу, 10 завязей на 1,5 мл культуры и регуляторы роста растений в количестве 1 мг/л 2,4-Д, 0,2 мг/л зеатина, причем добавление вышеуказанных компонентов осуществляется перед добавлением микроспор, - регенерацию растений из эмбриоидов путем культивирования на твердой питательной среде Мурашига и Скуга без добавления регуляторов роста растений, - обработку гаплоидных растений ячменя антимитотическим препаратом N-диацетил-N-(β,γ-эпоксипропил) аминоколхицином для удвоения хромосом и получения дигаплоидых растений.

Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ клонального микроразмножения подвоев яблони ММ 106, СК 2, СК 3, СК 4, СК 7, где на этапах введения в культуру в среду Мурасиге-Скуга добавляется в качестве санирующего агента антибиотик гризеофульвин 500 мг/л.

Изобретение относится к области садоводства и может быть использовано для микроразмножения растений гвоздики in vitro. Изобретение представляет собой способ размножения гвоздики in vitro, включающий отделение эксплантов, стерилизацию, посадку на питательную среду Мурасиге-Скуга, дополненную сахарозой 30 г/л и регуляторами роста 1 мг/л 6-бензиламинопурина и 0,2 мг/л нафтилуксусной кислоты, микроразмножение путем отделения побегов от эксплантов, их укоренение на питательной среде Мурасиге-Скуга и дальнейшее укоренение в грунте, отличающийся тем, что при микроразмножении экспланты укореняют на агаризованную питательную среду Мурасиге-Скуга, дополненную Рибав-Экстра 0,01-0,1 мг/л, и укореняют в условиях ex vitro в грунте, состоящем из смеси дерновой земли - 50%, торфа низинного с перегноем - 30% и песка 20%.

Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ размножения копеечника чайного, где вызревшие простерилизованные семена копеечника чайного (Hedysarum theinum Krasnob.) высаживают на питательные среды Мурасиге-Скуга для введения в культуру ткани, через 20-30 суток развившиеся побеги пересаживают на среды размножения MS, затем образовавшиеся конгломераты микропобегов делят и пересаживают на среды, содержащие 1,0 БАП+L-глютамин и аденин сульфат 100 мг/л.
Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ клонального микроразмножения винограда in vitro с деконтаминацией от микоплазменной инфекции, включающий микрочеренкование пробирочных растений, высадку их на твердую питательную среду Мурасиге и Скуга без ростовых веществ и с уменьшенным количеством макроэлементов.

Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение представляет собой способ клонального микроразмножения винограда in vitro, включающий микрочеренкование пробирочных растений, высадку их на питательную среду в присутствии ростовых веществ и культивирование, где высадку и культивирование осуществляют на твердой питательной среде Мурасиге и Скуга, содержащей в качестве росторегулирующего вещества препарат Мелафен в концентрации 10-7-10-11%.

Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности картофелеводства. В способе выращивают мини-клубни оздоровленного картофеля в защищенном грунте, полученные от пробирочных растений. При этом после проверки исходных растений на вирусную инфекцию проводят черенкование здоровых растений, в конце мая - начале июня подготовленные растения высаживают в марлево-пленочный изолятор с повышенной густотой посадки. Растения высаживают непосредственно в пластиковые ящики с торфогрунтом, выстланные изнутри агриловой пленкой. Перед посадкой растения в торфогрунт вносят удобрения. Способ позволяет получать безвирусные мини-клубни картофеля. 1 ил., 1 табл.

Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение представляет собой способ получения растений-регенерантов лапчатки белой (Potentilla alba L.) в условиях гидропоники, включающий использование черенков материнских растений, размножение и выращивание, где в качестве эксплантов используются черенки материнских растений, которые высаживают на питательную среду по прописи Мурасиге-Скуга (MS), содержащую 0,5 мкМ БАП для введения в культуру ткани, через 20-30 суток развившиеся побеги пересаживают для микроразмножения на питательную среду Мурасиге-Скуга (MS), содержащую 0,5 мкМ БАП+0,25 мкМ ИМК+0,05 мкМ ГК, укореняют побеги на агаризированной среде Мурасиге-Скуга, дополненной 1 мкМ НУК, затем растения-регенеранты вынимают из культуральных сосудов, отмывают корни в дистиллированной воде от агара, закрепляют в кассетах и помещают в гидропонную установку на 90 суток для адаптации и выращивания растительного лекарственного сырья на питательной среде Мурасиге-Скуга, содержащей 1/4 состава макросолей, 1/4 состава микросолей, полный набор витаминов, хелата железа и кальция хлористого, при температуре 24-26°C, режим освещения: 16 часов день, 8 часов ночь. Изобретение позволяет увеличить выход лекарственного растительного сырья лапчатки белой по сырой массе за 1 год в условиях круглогодичных теплиц с содержанием экстрактивных веществ, идентичных в растительном сырье лапчатки белой, выращенной в полевых условиях. 3 ил., 1 табл.

Изобретение относится к области биохимии. Предложена система контроля фотосинтетического и дыхательного СО2-газообмена в культуре in vitro. Система герметичным образом через типовой уплотнитель сопрягается с прозрачным технологическим объемом in vitro с культивируемыми полноценными растениями на различных этапах онтогенеза, регенерантами, изолированными органами и тканями. Система образует вместе с подключенным технологическим объемом общий замкнутый герметичный воздушный контур. Контур состоит из последовательно соединенных между собой указанного технологического объема и воздушного насоса, ротаметра, воздушного осушителя и CO2-газоанализатора. Контур между CO2-газоанализатором и технологическим объемом in vitro дополнительно оборудован двухпозиционным газовым переключателем. Изобретение обеспечивает многократную воспроизводимость процедуры измерения. 1 з.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл.

Изобретение относится к биотехнологии. Представлен способ получения моноклональной линии растительных клеток от гетерологичной популяции растительных клеток, включающий следующие стадии. Способ включает получение гетерологичной популяции растительных клеток и получение протопластов от указанной гетерологичной популяции растительных клеток. Затем осуществляют разделение единичных протопластов путем подвергания получения протопластов проточно-цитометрическому сортингу. После этого осуществляют регенерацию отделенного единичного протопласта до образования микроколонии посредством совместного культивирования в присутствии материала фидерных клеток. Полученные микроколонии выделяют из материала фидерных клеток и культивируют до образования моноклональной линии растительных клеток. 4 з.п. ф-лы, 1 ил., 2 пр.

Изобретение относится к сельскохозяйственной биотехнологии. Изобретение представляет собой способ культивирования лимона in vitro, заключающийся в том, что стерильные пазушные почки предварительно культивируют до появления микропобегов на питательной среде МС с добавлением БАП 0,1 мг/л, НУК 0,5 мг/л, агар 0,7%, затем вычленяют из них меристемы размером 0,4-0,6 мм с 2-3 примордиями и прививают их на подвой, выращенный in vitro на среде WPM, дополненной БАП 1 мг/л, ГК 2 мг/л, агар 0,7%, микропривитые растения культивируют на среде WPM с добавлением БАП 1 мг/л, ГК 2 мг/л, агар 7 г/л, сахарозы 20 г/л. Изобретение позволяет сохранять в коллекции in vitro ценные генотипы цитрусовых культур с высокой степенью генетической стабильности и однородности растительного материала. 3 табл.
Изобретение относится к области декоративного садоводства. Изобретение представляет собой способ размножения растений фритиллярий методом in vitro, включающий стерилизацию эксплантов, разделение их на части, посадку на питательную среду Данстена и Шорта, отделение микролуковиц от эксплантов, их укоренение и адаптацию, отличающийся тем, что после разделения эксплантов их помещают на питательную среду Данстена и Шорта, содержащую 6 г/л агара с добавлением - 5 мкМ 6-бензиламинопурина и 2 мкМ α-нафтилуксусной кислоты, после культивирования на данной среде микролуковицы размножают на безгормональной среде Данстена и Шорта в течение 4 недель при освещении 3 клк 16 ч свет/ 8 ч темнота при температуре 24°C, укореняют и адаптируют в контейнерах со сфагновым мхом, в темноте, при температуре 7°C, в течение 2 месяцев. Изобретение позволяет получить высокий выход посадочного материала представителей рода фритиллярия при минимальных затратах регуляторов роста. 2 табл.

Изобретение относится к области биотехнологии растений. Изобретение представляет собой способ сохранения качественных характеристик культуры in vitro некоторых древесных видов растений (лимонник китайский, рододендрон, сирень, береза повислая), включающий размножение микропобегов на искусственных питательных средах, где через 7-10 дней после культивирования в стандартных условиях побеги помещают в условия с температурой 4-8°С и уровнем освещенности 500-1000 люкс на срок до 8 (лимонник китайский, береза повислая) или до 12 месяцев (рододендрон, сирень). Изобретение позволяет повысить сохранность качественных характеристик культуры in vitro Лимонника китайского и Березы повислой. 3 табл.
Наверх