Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей



Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей
Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей

 


Владельцы патента RU 2567365:

Государственное научное учреждение Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ИЭВСиДВ Россельхозакадемии) (RU)

Изобретение относится к экспериментальной медицине и ветеринарии, в частности к морфологии и иммунологии, и может быть использовано для оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника. Для этого осуществляют контрастирование тонкого кишечника. В качестве контрастного вещества используют тушь. При этом лабораторным мышам внутрижелудочно вводят тушь в количестве 0,04-0,06 мл на 1 г массы тела с атропина сульфатом в количестве 0,005-0,01 мг. Оценку количества и размеров пейеровых бляшек проводят через 65-75 минут в ходе вскрытия. Способ обеспечивает высокую точность выявления групповых лимфоидных фолликулов при отсутствии грубого изменения структуры органа и возможности его использования для дальнейшего гистологического исследования. 11 ил., 8 табл.

 

Изобретение относится к области ветеринарии и медицины, в частности к морфологии и иммунологии, и может быть использовано для оценки функционального состояния групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у лабораторных мышей.

Одними из самых распространенных экспериментальных животных являются лабораторные мыши. Их используют в микробиологии, генетике, общей физиологии, иммунологии, эндокринологии и фармакологии (Лопухин Ю.М. Экспериментальная хирургия / Ю.М. Лопухин. - М.: Медицина, 1971. - 360 с., Шуркалин Б.К. Руководство по экспериментальной хирургии / Б.К. Шуркалин, В.А. Горский, А.П. Фаллер. - М.: Медицина, 2010. - 174 с.).

В связи с широким использованием мышей в экспериментальных исследованиях существует потребность в детальном изучении иммунной системы этих животных. В частности, особый интерес представляет лимфоидная ткань, ассоциированная со слизистыми оболочками (mucosa-associated lymphoid tissue - MALT), в которой особенно велика антигенная нагрузка. Групповым лимфоидным фолликулам (пейеровым бляшкам), входящим в состав MALT, отводится важнейшая функция, которая заключается в транспорте антигенов из просвета кишечника посредством уникальных морфологических структур - М-клеточных карманов. Оценка количества и размеров этих образований позволяет изучать состояние лимфатического аппарата кишечника как в норме, так и при патологических состояниях, а также позволяет понять функциональную значимость морфологических изменений в этих структурах.

Однако в силу миниатюрных размеров мышей выявление групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника затруднено. При определенных условиях, например при гиперемии кишечника, наличии химуса определенного цвета, желчи или пузырьков газа в кишечнике, сложно определить границы пейеровых бляшек. Можно ошибочно принять изменения цвета участка кишки за лимфоидные образования либо не заметить некоторые из них вовсе. Количество ошибок также увеличивается при плохом зрении исследователя и при его утомлении во время обработки больших объемов материала, поскольку работа с миниатюрными плохо различимыми объектами требует значительного зрительного напряжения. Добиться улучшения визуализации пейеровых бляшек и снижения числа ошибок при их подсчете и измерении можно при помощи окрашивания.

Известен способ выявления морфологических особенностей лимфоидных образований тонкой кишки при окраске нативного препарата (Кащенко С.А. Выявление морфологических особенностей лимфоидных образований тонкой кишки при окраске нативного препарата / С.А. Кащенко, Е.Н. Морозова// Мир медицины и биологии, 2011 - Т. VII - №1 - С. 27-29), при котором на слизистую оболочку тонкой кишки наносят натуральные соки вишни и черной смородины. Затем промывают поверхность слизистой оболочки и погружают кишку в дистиллированную воду. Учет пейеровых бляшек проводят в погруженном в воду органе.

К недостаткам данного способа можно отнести сложности его применения у мышей. Прежде всего это обусловлено миниатюрными размерами органов этих животных. Вскрытие, расправление, промывание, погружение в воду кишки мыши неизбежно приведет к повреждению и изменению структуры органа, сделает его непригодным для гистологических исследований.

Наиболее близким решением, принятым за прототип, является известный способ исследования прямой кишки, включающий использование в качестве контрастного вещества туши (патент РФ №2004195, кл. А61В 17/00, А61В 6/00, от 14.02.1987).

Недостатком данного способа является отсутствие сведений о возможности контрастирования тушью групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мелких лабораторных животных.

Задачей является создание способа, позволяющего с высокой точностью выявлять групповые лимфоидные фолликулы у таких миниатюрных объектов исследования как мыши, при этом не изменяя грубо структуру органа и обеспечивая его пригодность для дальнейшего гистологического исследования.

Сущность изобретения заключается в том, что в способе оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей, включающем контрастирование тонкого кишечника, использование в качестве контрастного вещества туши, согласно изобретению, лабораторным мышам внутрижелудочно вводят контрастное вещество в количестве 0,04-0,06 мл на 1 г массы тела животного с М-холиноблокатором атропина сульфатом в количестве 0,005-0,01 мг, оценку количества и размеров пейеровых бляшек проводят через 65-75 минут в ходе вскрытия.

Изобретение поясняется чертежами. На всех фигурах расстояние между линиями квадратных ячеек фона соответствует 1 см.

На фиг. 1 изображены желудок и кишечник. Тонкий отдел кишечника и желудок заполнены черной тушью.

На фиг. 2 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой) без контрастирования (интактное животное).

На фиг. 3 изображены групповые лимфоидные фолликулы (указаны стрелками) без контрастирования при перитоните.

На фиг. 4 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой) без контрастирования при эрозивно-язвенном поражении кишечника.

На фиг. 5 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой), не выступающая над поверхностью серозной оболочки кишечника (без контрастирования).

На фиг. 6 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой), в месте расположения которой образовалось углубление в кишечной стенке (без контрастирования).

На фиг. 7 изображены групповые лимфоидные фолликулы (указаны стрелкой) без контрастирования при гиперемии кишечника.

На фиг. 8 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой) на фоне желчи, заполняющей просвет кишечника, при эрозивно-язвенном поражении кишечника.

На фиг. 9 изображен групповой лимфоидный фолликул (указан стрелкой) на фоне черной туши, заполняющей просвет тонкого кишечника, интактной мыши.

На фиг. 10 изображены групповые лимфоидные фолликулы (указаны стрелками) на фоне черной туши, заполняющей просвет кишечника, при перитоните.

На фиг. 11 изображена пейерова бляшка (указана стрелкой) на фоне черной туши, заполняющей просвет кишечника, при эрозивно-язвенном поражении кишечника.

Способ осуществляют следующим образом.

Подбирают лабораторных мышей массой 18-24 г. Животных выдерживают на голодной диете в течение суток со свободным доступом к воде на решетчатом полу (с целью уменьшения копрофагии). После этого внутрижелудочно вводят контрастное вещество (черную тушь на водной основе) в количестве 0,04-0,06 мл на 1 г массы тела животного с М-холиноблокатором атропина сульфатом (0,1% раствором) в количестве 0,005-0,01 мг. Затем через 65-75 минут в ходе вскрытия проводят оценку количества и размеров пейеровых бляшек на фоне контраста, заполняющего просвет кишечника.

При определении параметров способа использовали самцов лабораторных нелинейных мышей. В эксперименты включали только молодых животных, масса которых составляла 18-24 г согласно рекомендациям Н.Н. Каркищенко и С.В. Грачевой (Каркищенко Н.Н. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских технологиях / Н.Н. Каркищенко, С.В. Грачева. - М.: Профиль, 2010. - 358 с.).

В качестве контрастного вещества выбрали черную тушь на водной основе производства ОАО "ГАММА", г. Москва. Преимуществами ее применения являются низкая стоимость и доступность.

Мышей выдерживали на голодной диете в течение суток со свободным доступом к воде на решетчатом полу (с целью уменьшения копрофагии). После этого внутрижелудочно вводили контраст.

Определение переносимости черной туши провели на группе клинически здоровых мышей. Через гибкий желудочный зонд животным вводили от 0,1 до 1,4 мл туши. В течение трех дней путем осмотра изучали общее состояние животных. Результаты представлены в таблице 1.

Из данных, приведенных в таблице 1, видно, что введение мышам туши в количестве 0,1-0,3 мл не влияет на их состояние. Количество туши 0,4-1,4 мл вызывает снижение активности мышей в течение 5-15 минут сразу после введения, что, видимо, связанно с кратковременным растяжением стенок желудка контрастным веществом.

При введении животным более 1 мл туши разрыва стенок желудка не происходит. Это экспериментально подтвердили путем вскрытия нескольких животных сразу после введения контраста. При этом установлено, что тушь после заполнения желудка сразу начинает поступать в двенадцатиперстную кишку. В результате этого давление жидкости на стенки желудка снижается. Данный эксперимент был проделан при возникновении необходимости вводить мышам более 1 мл туши с целью выяснить, можно ли это делать без вреда для животных, поскольку в руководствах по работе с лабораторными животными превышать данный объем не рекомендуют (Каркищенко Н.Н. Руководство по лабораторным животным и альтернативным моделям в биомедицинских технологиях/ Н.Н. Каркищенко, С.В. Грачева. - М.: Профиль, 2010. - 358 с.).

Определение дозы фармакологического препарата для снижения тонуса гладкой мускулатуры желудочно-кишечного тракта у мышей.

В нормальных условиях тонус гладкой мускулатуры желудочно-кишечного тракта препятствует равномерному распределению контрастного вещества в кишечнике. При этом в органе остаются не заполненные тушью промежутки длиной более 1 см, в которых затруднено выявление пейеровых бляшек. Применение препарата, снижающего тонус гладкой мускулатуры желудочно-кишечного тракта, позволяет устранить данную проблему.

В качестве спазмолитика выбран М-холиноблокатор атропина сульфат 0,1% раствор. Известно, что атропин широко применяют для снижения тонуса гладких мышц внутренних органов и уменьшения моторики желудочно-кишечного тракта. Преимуществами применения данного препарата являются низкая стоимость и выраженное расслабляющее действие на гладкую мускулатуру кишечника. Помимо этого, атропин в форме раствора гораздо проще дозировать, чем таблетированные формы.

Выбор дозы атропина проводили на 7 группах животных (в каждой по 3 мыши). Были опробованы следующие дозы атропина: 0,0005, 0,001, 0,0025, 0,005, 0,01, 0,02, 0,05 мг. Дозирование препарата осуществляли с помощью инсулинового шприца методом последовательных разведений в физиологическом растворе. Перед внутрижелудочным введением к каждой дозе атропина добавляли тушь до объема 1 мл.

Предварительно в серии опытов определили, что через 40 мин после введения контрастного вещества степень заполнения тонкого кишечника составляет около 70%. Такого заполнения достаточно для подбора дозы атропина.

Через 40 мин после введения туши животных вскрывали, выделяли тонкий кишечник и расправляли его на ровной поверхности, рассекая брыжейку. Затем отмечали характер распределения туши в кишечнике: неравномерное (с чередованием заполненных и не заполненных участков, длина которых обычно составляла от 0,5 до 5 см) или равномерное (без такого чередования).

В ходе изучения влияния различных доз атропина на характер распределения туши в кишечнике было установлено, что при дозах 0,0005-0,0025 мг тушь распределяется не равномерно (таблица 2).

Равномерное распределение туши происходило при введении атропина в дозах 0,005-0,05 мг. При этом побочных эффектов атропина не наблюдалось. Дозы атропина 0,005-0,01 мг оказывали достаточное действие при минимальном риске побочных эффектов и экономном расходовании препарата.

Определение количества контрастного вещества.

Количество туши подбирали таким образом, чтобы оно было минимальным (для улучшения переносимости процедуры), но в то же время обеспечивало полное заполнение тонкого кишечника без не заполненных промежутков.

В эксперимент включили 5 групп мышей (в каждой по 5 животных). В группах №1, 2, 3, 4 и 5 внутрижелудочно вводили тушь с атропином (0,01 мг) в объеме 0,3, 0,6, 0,8, 1,0 и 1,2 мл соответственно.

Предварительно установили, что через 70 мин после введения 1 мл контрастного вещества степень заполнения тонкого кишечника составляет 100% (т.е. за это время тушь заполняет весь тонкий кишечник). Поэтому именно через данный интервал времени решили подбирать оптимальное количество туши.

Через 70 мин после введения контраста проводили вскрытие животных. Выделяли из брюшной полости желудок и тонкий кишечник. Измеряли длину кишечника. Для этого расправляли его, рассекая брыжейку, и, не вытягивая, раскладывали на ровной поверхности. Определяли степень заполнения кишечника (%). Для этого дополнительно измеряли длину участков, заполненных тушью.

О возможности дальнейшего пассажа контраста в тонком кишечнике судили по наличию остаточных количеств туши в желудке. Для этого рассекали по большой кривизне желудок и определяли наличие или отсутствие туши.

Результаты определения количества контрастного вещества, необходимого для заполнения тонкого кишечника по всей длине, отображены в таблице 3. Количественные признаки представлены в виде М±m, где Μ - среднее, a m - стандартная ошибка среднего.

Из данных, приведенных в таблице 3, видно, что в группах №1, 2 и 3 контрастного вещества в количестве 0,3, 0,6 и 0,8 мл не достаточно для заполнения тонкого кишечника по всей длине, о чем свидетельствует и отсутствие туши в желудках у 100% животных. Степень заполнения контрастным веществом кишечника в группах №1, 2 и 3 составляет 45,0±1,6, 70,4±4,2 и 85,1±2,4% соответственно.

Через 70 мин после введения туши в количестве 1,0-1,2 мл (группы №4 и 5) степень заполнения кишечника составляет 100%. При этом в желудках 80% животных имеется контраст. Следовательно, туши в количестве 1,0-1,2 мл достаточно для заполнения тонкого кишечника по всей его длине.

В группах №4 и 5 в ходе вскрытия у мелких животных (массой менее 21 г) отмечали более тугое наполнение желудка тушью по сравнению с более крупными мышами. В группе №4 у двух животных массой 22,7 и 24,0 г в желудке не оказалось остаточных количеств туши. Это свидетельствует о том, что при введении контрастного вещества необходимо учитывать массу тела мышей. Для удобства работы с животными разной массы было вычислено необходимое количество контраста на 1 г массы тела. За основу взяли количество туши 1,0-1,2 г и массу животных 4-й и 5-й групп, в которых удалось получить наилучшее контрастирование. Результаты представлены в таблице 4.

Из данных, приведенных в таблице 4, видно, что для заполнения тонкого кишечника по всей его длине контрастным веществом необходимо 0,04-0,06 мл туши на 1 г массы тела.

Определение оптимального интервала времени между введением контрастного вещества и временем измерения групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника.

Определение оптимального времени, необходимого для равномерного заполнения тонкого кишечника по всей его длине контрастом, осуществлялось на группе из 11 лабораторных мышей. Животным внутрижелудочно вводили по 0,05 мл туши на 1 г массы тела с атропином в количестве 0,01 мг. Степень заполнения тонкого кишечника оценивали через 20, 30, 40, 50, 60, 70, 80, 90, 100, 110 и 120 минут после введения контраста.

В ходе вскрытия выделяли из брюшной полости тонкий кишечник и измеряли его длину. Для этого расправляли кишечник, рассекая брыжейку, и, не вытягивая, раскладывали на ровной поверхности. Определяли степень заполнения кишечника (%). Для этого дополнительно измеряли длину участков, заполненных тушью. Результаты представлены в таблице 5.

Из данных таблицы видно, что 60 минут не достаточно для заполнения тонкого кишечника тушью по всей длине. При этом степень заполнения составляет не более 97,4%.

Через 70 минут после введения контрастного вещества степень заполнения тонкого кишечника составляет 100%, а через 80 минут начинает снижаться и составляет 86,8%.

Следовательно, оптимальный интервал времени между введением контрастного вещества и измерением пейеровых бляшек у мышей массой 18-24 г находится в промежутке между 65 и 75 минутами.

Апробацию способа провели с целью выявить его преимущества по сравнению с подсчетом пейеровых бляшек без контрастирования. При этом обращали внимание на скорость, легкость, точность измерений и выявляемость пейеровых бляшек. Подсчет проводил человек с нормальным зрением без использования увеличительной техники в условиях хорошего освещения.

Использовали лабораторных нелинейных мышей массой 20-22 г. Все животные были разбиты на 6 групп по 10 животных (таблица 6).

В группы №1 и 2 входили здоровые животные. В группах №3 и 4 на мышах воспроизводили перитонит путем однократного внутрибрюшинного введения 0,3 мл 10%-ной каловой взвеси из свежих крысиных фекалий (заявка на патент №2014135314 от 28.08.2014). Оценку количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов проводили на 3 день после инфицирования животных.

В группах №5 и 6 воспроизводили эрозивно-язвенное поражение кишечника путем внутримышечного введения препарата "Диклофенак" (раствор для внутримышечных инъекций, в 1 мл содержится 25 мг действующего вещества натрия диклофенака). Известно, что нестероидные противовоспалительные препараты обладают выраженным побочным действием, заключающимся в изъязвлении слизистой оболочки кишечника. "Диклофенак" является одним из самых распространенных и доступных препаратов из этой фармакологической группы.

Животным групп №5 и 6 ежедневно выполняли внутримышечные инъекции препарата "Диклофенак" в дозе 0,5 мг в течение 12 дней. Образование язв и эрозий на слизистой оболочке кишечника подтверждалось патоморфологическим исследованием. Оценку количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов проводили на следующий день после последней внутримышечной инъекции.

Перед измерением пейеровых бляшек в течение суток животных всех групп выдерживали на голодной диете со свободным доступом к воде на решетчатом полу. После этого мышам групп №2, 4 и 6 внутрижелудочно с помощью гибкого зонда вводили тушь в количестве 0,05 мл на 1 г массы тела с 0,01 мг атропина сульфата. Через 70 минут в ходе вскрытия проводили оценку количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов на фоне контрастного вещества, заполняющего просвет тонкого кишечника (фиг. 1).

У мышей всех групп измеряли длину и ширину пейеровых бляшек со стороны серозной оболочки тонкого кишечника с помощью миллиметровой линейки. Исходя из этих величин, определяли площадь поверхности пейеровых бляшек по формуле площади эллипса (S=π×a×b, где S - площадь эллипса, а - длина большой полуоси, b - длина малой полуоси). Нормальность распределения количественных признаков проверяли путем построения гистограмм. Достоверность различий определяли по t-критерию Стьюдента с поправкой Бонферрони для множественных сравнений (Медик В.А. Статистика в медицине и биологии. Т. 1 Теоретическая статистика/ В.А. Медик, М.С. Токмачев, Б.Б. Фишман - М.: Медицина, 2000 - 412 с.). Различия считали достоверными при p<0,05.

Количество выявленных групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника при контрастировании и без контрастирования представлено в таблице 7.

Из данных таблицы следует, что контрастирование позволяет выявлять больше пейеровых бляшек (на 44,6, 35,8 и 57,9%) при разных состояниях. Во всех трех сравнениях различия значимы для p<0,05.

Площадь пейеровых бляшек, выявленных при контрастировании и без контрастирования, представлена в таблице 8.

Из данных таблицы видно, что контрастирование позволило выявить большую площадь пейеровых бляшек (на 21,4, 18,2 и 25,0%) при разных состояниях. Все различия значимы для p<0,05.

Меньшая выявляемость пейеровых бляшек в проведенном эксперименте при подсчете без контрастирования обусловлена сложностью их выявления. Однако вероятна и обратная ситуация. На грани возможностей зрения исследователя простые очаговые изменения цвета и рельефа кишки могут быть приняты за пейеровы бляшки. В этом случае результаты подсчета будут завышенными. Некоторые из сложностей выявления бляшек и преимущества метода контрастирования проиллюстрированы ниже.

Фигуры 2, 3, 4 иллюстрируют сходство окраски некоторых бляшек с окружающими участками кишки. Встречаются бляшки, совершенно не выступающие над поверхностью кишки (фиг. 5). В некоторых случаях в местах расположения групповых лимфоидных фолликулов могут образовываться даже углубления в стенке органа (фиг. 6). Выявить пейеровы бляшки и определить их линейные размеры очень сложно при гиперемии кишечника (фиг. 7), наличии в просвете кишечника желчи (фиг. 8), пузырьков газа, химуса.

Значительно легче изучать групповые лимфоидные фолликулы на фоне контраста, заполняющего просвет кишечника. При этом пейеровы бляшки хорошо видны на фоне туши. Они имеют четкие контуры, в них хорошо просматриваются фолликулы (фиг. 9, 10, 11). Очевидно, что при менее благоприятных условиях подсчета (плохое освещение, утомление зрения, нарушения зрения) различия между сравниваемыми группами были бы более существенными.

Таким образом, можно назвать следующие преимущества предложенного способа количественной оценки пейеровых бляшек у мышей (по сравнению с подсчетом без контрастирования): большая точность и скорость измерений, меньшее утомление зрения. При этом метод введения контраста относительно не сложный и в ходе исследования не происходит грубого нарушения структуры органа.

Способ оценки количества и размеров групповых лимфоидных фолликулов тонкого кишечника у мышей, включающий контрастирование тонкого кишечника, использование в качестве контрастного вещества туши, отличающийся тем, что лабораторным мышам внутрижелудочно вводят контрастное вещество в количестве 0,04-0,06 мл на 1 г массы тела с M-холиноблокатором атропина сульфатом в количестве 0,005-0,01 мг, оценку количества и размеров пейеровых бляшек проводят через 65-75 мин в ходе вскрытия.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно неврологии, анестезиологии и реаниматологии, и может быть использовано для прогнозирования исхода нетравматического внутричерепного кровоизлияния.

Изобретение относится к медицине, а именно к онкоурологии и лабораторной диагностике, и может быть использовано при проведении пункционной биопсии предстательной железы.

Изобретение относится к медицине, а именно к абдоминальной хирургии, и касается. оценки величины внутрибрюшной кровопотери.
Изобретение относится к медицине, радионуклидным и биопсийным методам диагностики у больных раком предстательной железы (ПЖ) и может быть использовано для диагностики поражения регионарных лимфоузлов путем радионуклидной визуализации и биопсии сигнальных лимфоузлов.
Изобретение относится к медицине, в частности к гастроэнтерологии, и касается лечения хронического эрозивного гастрита, ассоциированного с Helicobacter pylori (НР). Предварительно проводят оценку обсемененности HP слизистой оболочки ротовой полости с помощью уреазного теста с зубным налетом.

Изобретение относится к медицине, а именно к гинекологии и неврологии, и может быть использовано для лечения климактерического синдрома у женщин перименопаузального периода.

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургии, и может быть использовано для ранней диагностики аденомы большого сосочка двенадцатиперстной кишки. Проводят регистрацию показателей микроциркуляции с помощью лазерной допплеровской флоуметрии в большом сосочке двенадцатиперстной кишки при гастродуоденоскопии.
Изобретение относится к медицине, а именно к акушерству и гинекологии. Производят пункцию передней брюшной стенки, стенки матки и туловища плода с акардией в месте впадения пуповины и разветвления ее сосудов под контролем эхографии иглой 18G диаметром 1,2 мм и длиной 150 мм.
Изобретение относится к любой области, где требуется от человека воспринимать и оценивать расстояние, и может найти применение в физиологической, медицинской, психологической, транспортной, авиационно-космической, спортивной и других областях науки и практики. На горизонтальной поверхности световым излучателем, управляемым компьютером, создают световое пятно.

Изобретение относится к профилактической медицине, а именно к способам изучения условий труда для разработки меры профилактики возможного вредного их влияния на здоровье работника.

Изобретение относится к медицинской диагностике, в частности к способам получения образцов физиологической жидкости. Проводят формирование на участке кожи посредством микроигольного аппликатора, содержащего ряд игл, множества микропор, путем прикладывания положительного давления на указанный аппликатор, и извлечение подкожной интерстициальной жидкости через указанные микропоры посредством игл. При этом положительное давление на микроигольный аппликатор оказывают не менее 1 минуты. Производят экспозицию аппликатора на коже в течение 20 минут и после съема аппликатора с кожи подвергают его центрифугированию в режиме 210 об/мин в течение 2 минут. Причем в качестве микроигольного аппликатора используют аппликатор площадью поверхности 1 см2 и содержащий 100 полимерных игл высотой 300 мкм, выполненный с возможностью отбора 0,6-1,1 мкл подкожной интерстициальной жидкости. При этом участок кожи, на который накладывают микроигольный аппликатор, предварительно обрабатывают антисептиком. Способ позволяет унифицировать метод получения подкожной интерстициальной жидкости для различных диагностических направлений, при одновременном обеспечении практически полного заполнения объема игл указанной жидкостью и достаточно полного извлечения отобранной жидкости из них. 6 з.п. ф-лы, 2 ил.

Изобретение относится к области медицины, а именно к педиатрии и аллергологии. У детей определяют следующие прогностические предикторы: наличие затянувшейся неонатальной желтухи, пневмонии на 1-м году жизни ребенка, острой респираторной вирусной инфекции на 1-м году жизни ребенка, паратрофии, синдрома избыточного бактериального роста кишечника на 1-м году жизни ребенка, лямблиоза кишечника на 1-м году жизни, острого простого бронхита на 2-м году жизни, хронического тонзилофарингита на 2-м году жизни ребенка, острого простого бронхита в возрасте после 2-х лет жизни ребенка, бронхообструктивного синдрома в возрасте после 2-х лет жизни ребенка, хронического тонзилофарингита в возрасте после 2-х лет жизни ребенка, хронического аденоидита в возрасте после 2-х лет жизни ребенка, внутричерепной гипертензии, хронического гастродуоденита, аллергического ринита у отца ребенка, бронхиальной астмы у родственников матери пациента. Затем рассчитывают зависимую переменную по математической формуле. После этого определяют вероятность развития заболевания у детей. В зависимости от полученного значения зависимой переменной прогнозируют развитие атопического дерматита. Способ позволяет повысить точность прогнозирования атопического дерматита у детей за счет определения прогностических предикторов, способствующих формированию атопического дерматита, на первичном приеме у врача. 2 пр.
Изобретение относится к офтальмологии и может быть использовано при прогнозировании синдрома сухого глаза после лазерной рефракционной операции при коррекции миопии. До операции проводят балльную оценку пола, возраста, степени миопии, приема контрацептивных гормональных препаратов, продолжительности ношения мягких контактных линз, теста Ширмера, пробы Норна, состояния век, признаков эпителиопатии роговицы. Проводят суммирование полученных баллов. При сумме баллов 10 и более прогнозируют синдром сухого глаза. Способ обеспечивает снижение проявлений синдрома сухого глаза средней и тяжелой степени после рефракционной лазерной операции при миопии, предупреждение осложнений в виде развития кератопатии, возможность своевременно провести адекватную терапию за счет оценки наиболее значимых показателей в предоперационный период. 3 пр.

Изобретение относится к медицине и биологии, а именно к способу бесконтактного магнитометрического исследования физического состояния внутренних структур человека или животного. Исследуемый объект помещают в отдалении от искусственных источников магнитного поля. Ориентируют объект в вертикальном положении сначала лицом на север, а затем на юг. Измеряют величины индукций магнитных полей объекта. Используют точки, расположенные на следующих горизонтальных уровнях: общий уровень, расположенный прямо над головой; уровень головного мозга; уровень щитовидной железы; уровень сердца; уровень эпигастрия; уровень органов малого таза. Причем показания снимают со стороны груди и со стороны спины в каждом ориентированном положении объекта. После чего для каждого уровня полученные результаты суммируют по формуле H A = H A S N + H A N S = H S S N + H S N S , где HA - суммарная напряженность магнитного поля, H A S N , H A N S - напряженность магнитного поля объекта со стороны груди и со стороны спины, H S S N , H S N S - напряженность магнитного поля объекта в вертикальном положении сначала лицом на север, а затем на юг. Затем графически отображают полученные показатели в виде обобщенной магнитограммы исследуемого объекта. При этом магнитограмма представляет собой зависимость величин магнитных полей внутренних структур объекта по их измерению на выбранных уровнях. Способ позволяет повысить эффективность за счет неинвазивной диагностики и контроля физического состояния внутренних структур человека или животного. 5 ил.

Изобретение относится к экспериментальной биологии, а именно к экспериментальной нейробиологии, и может быть использовано для предикции предела устойчивости к тяжелой гипоксии животных после гипоксического/ишемического прекондиционирования. Для этого интактных животных исследуют в модели поведенческого теста предстимульного торможения акустической стартл-реакции, определяя относительную величину снижения амплитуды индивидуальной реакции на интенсивный звуковой сигнал (ПСТ). Затем их подвергают умеренному гипоксическому прекондиционированию. После чего по значению ПСТ определяют величину предела устойчивости их организма к тяжелой гипоксии (Тсек), используя ранее выявленную эталонную корреляционную зависимость с помощью корреляционного анализа Пирсона Тсек = f(ПСТ). Для получения последней предварительно у других интактных животных того же вида определяют аналогичным образом ПСТ. Затем их подвергают аналогичному умеренному гипоксическому прекондиционированию. После этого животных помещают в условия тяжелой гипоксии и определяют величину предела устойчивости к ней по времени наступления признаков агонии животного. Способ позволяет исследовать животных по вероятной устойчивости к тяжелой гипоксии после прекондиционирующего воздействия и с высокой степенью достоверности прогнозировать его эффективность. 2 пр., 2 табл., 1 ил.
Изобретение относится к медицине, а именно к пульмонологии, и может быть использовано для дифференцированного, индивидуального достижения контроля бронхиальной астмы (БА). Способ включает стандартную терапию на основе введения беклометазона дипропионата. Дополнительно оценивают анамнестические данные: возраст, пол пациента, частоту плановых и экстренных госпитализаций, вызовов скорой медицинской помощи (СМП), частоту визитов к врачу. Достижение контроля (КБА) рассчитывают по формуле: КБА=24,434-0,0672748*возраст-1,72615*пол-0,87602*плановые госпитализации-0,414709*экстренные госпитализации-0,340425*визиты к врачу-0,61832*вызовы СМП. При этом возраст выражают в количестве полных лет на момент обследования, пол обозначают, как 0 - женский, 1 - мужской, плановые госпитализации - число плановых госпитализаций за предшествующий год, экстренные госпитализации - число экстренных госпитализаций за предшествующий год, визиты к врачу - число амбулаторных визитов к врачу за предшествующий год, вызовы СМП - число вызовов бригад СМП за предшествующий год. Если КБА равен или более 20, то коррекцию терапии не проводят. В случае, если КБА 19 и менее, то дополнительно к стандартной терапии добавляют еще 500 мкг в сутки беклометазона дипропионата. Способ позволяет своевременно, на основе индивидуальных анамнестических данных, корректировать курс лечения пациентов и приводить к достижению контроля БА. 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к педиатрии и гастроэнтерологии. Оценивают суточный уровень потребления животного белка (ЖБ) методом 24-часового воспроизведения питания. При этом определяют эрозивно-язвенные поражения при суточном уровне потребления ЖБ, равном или менее 0,4 г/кг массы тела. Если же суточный уровень потребления ЖБ составляет более 0,4 г/кг массы тела, то тогда в сыворотке крови дополнительно устанавливают содержание свободного оксипролина (СО) - метаболита коллагена. При уровне СО выше 29,9 ммоль/л также определяют эрозивно-язвенные поражения слизистой оболочки гастродуоденальной зоны. Способ позволяет повысить эффективность определения эрозивных поражений слизистой оболочки гастродуоденальной зоны у детей с синдромом диспепсии за счет высокой информативности, возможности сузить круг детей с диспептическими жалобами, нуждающихся в проведении инвазивного, психотравмирующего эндоскопического исследования. 2 пр., 3 табл.

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургической онкологии, и может быть использовано для планирования высокодозной внутритканевой лучевой терапии рака предстательной железы (ПЖ). Выполняют сатурационную биопсию ПЖ промежностным доступом при помощи комплекса, предназначенного для навигированного ультразвуком введения игл в участки ПЖ. Дополнительно осуществляют прицельный забор биоптатов из парауретральной зоны с обеих сторон и снизу от уретры. При наличии опухолевых изменений в парауретральной зоне выбирают дозы облучения до 100-120 Гр на весь объем ПЖ, включая парауретральную зону. При отсутствии изменений выбирают дозы облучения на парауретральную зону ПЖ до 70-80 Гр и проводят латеральное введение игл-интрастатов по отношению к уретре. Способ позволяет оптимизировать распределение лучевой нагрузки в пределах ПЖ при проведении высокодозной брахитерапии ПЖ, получить достоверную информацию о распространенности опухолевого процесса в парауретральной зоне за счет забора биоптатов из ПЖ и парауретральной зоны, выбора оптимальных доз облучения, введения игл-интрастатов с учетом наличия или отсутствия опухолевых клеток. 3 ил., 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к медицинской технике, и предназначено для получения проб биологических жидкостей из полых внутренних органов через эндоскоп. Эндоскопический диагностический зонд включает в себя эндоскопический катетер и размещенный внутри катетера металлический проводник. Проводник содержит дистальный конец с зафиксированным на нем абсорбирующим материалом и проксимальный конец, снабженный рукояткой управления проводником. Дистальный конец проводника выполнен из двух равных отрезков металлической проволоки, спиралевидно скрученных между собой с возможностью фиксации абсорбирующего материала между отрезками, и металлической оливы, диаметр которой соответствует внутреннему диаметру катетера. Изобретение позволяет безопасно и быстро получить качественную, информативную пробу биологической жидкости из исследуемого полого органа без примеси попутной флоры. 1 з.п. ф-лы, 4 ил.

Изобретение относится к области медицины, а именно к гигиене, в частности к способам прогноза прироста заболеваемости по обращаемости за скорой медицинской помощью при воздействии на население комплекса токсических веществ, образующихся при горении сосновых лесов и может быть использовано в гигиенической диагностике потерь популяционного здоровья при чрезвычайных ситуациях для своевременной оптимизации деятельности практического здравоохранения. Определяют площадь лесного пожара; разницу между направлением ветра и осью «очаг лесного пожара - селитебная зона», расстояние от очага лесного пожара до селитебной зоны, скорость ветра; рассчитывают коэффициент, учитывающий отклонение направления ветра от оси «очаг лесного пожара - селитебная зона»; далее рассчитывают прогностический индекс. При прогностическом индексе в интервале 1-50 прирост обращаемости за скорой медицинской помощью (СМП) населения по поводу болезней органов дыхания (БОД) относительного фонового уровня обращаемости прогнозируют в пределах 15-30%; при интервале 51-100 прирост обращаемости за СМП населения по поводу БОД относительного фонового уровня обращаемости прогнозируют в пределах 31-70%; при интервале 101-180 прирост обращаемости за СМП населения по поводу БОД относительного фонового уровня обращаемости прогнозируют в пределах 71-110%; при интервале 181-300 прирост обращаемости за СМП населения по поводу БОД относительного фонового уровня обращаемости прогнозируют в пределах 111-200%; при прогностическом индексе более 300 прирост обращаемости за СМП населения по поводу БОД относительного фонового уровня обращаемости прогнозируют более 200%. Способ позволяет за счет расчета прогностического индекса оценивать возможный медико-социальный ущерб и оптимизировать работу скорой медицинской помощи, других учреждений здравоохранения в период массовых пожаров сосновых лесов вблизи жилой зоны, а также повысить эффективность гигиенической диагностики заболеваемости по обращаемости за СМП и предотвратить возможные медико-социальные потери в при массовом горении лесов. 1 табл., 5 пр.
Наверх