Спектрофотометрический способ определения белка в биологических жидкостях

Изобретение относится к биохимии и описывает спектрофотометрический способ определения общего белка в биологических жидкостях. Способ включает смешивание образца биологической жидкости с раствором реагента, содержащим следующие компоненты: бромпирогаллоловый красный, молибдат натрия оксалат натрия, янтарную кислоту и воду. Концентрации компонентов в растворе реагента (мас.%): бромпирогаллоловый красный - (1.5-4.0)×10-3; молибдат натрия - (0.5-1.5)×10-3; оксалат натрия - 0.01-0.03; янтарная кислота - 0.4-0.7; вода - остальное. Смешивают образец биологической жидкости и раствор реагента в соотношении 1:(5-200) соответственно и измеряют оптическую плотность пробы при длине волны в диапазоне 580-620 нм относительно холостой пробы, а затем определяют концентрацию белка методом градуировочного графика или методом одного эталона. Изобретение обеспечивает минимизацию погрешности в определении общего белка в биологических жидкостях и может быть использовано в лабораторной практике для определения содержания белка в моче, спинномозговой жидкости, ликворе, сыворотке, плазме крови. 2 з.п. ф-лы, 3 табл., 5 ил.

 

Изобретение относится к биохимии и может быть использовано в лабораторной практике для определения содержания белка в биологических жидкостях (моче, спинномозговой жидкости, ликворе, сыворотке, плазме крови и т.д.).

На сегодняшний день самым распространенным и широко применяемым в клинической биохимии методом определения общего белка в биологических жидкостях является спектрофотометрический метод.

Известен и широко применим в клинико-биохимических исследованиях способ определения концентрации белка в биологическом материале, в основе которого лежит реакция взаимодействия ионов меди с пептидными связями в молекуле белка в присутствии сильного основания (биуретовый метод). [Dilena В.А., Penberthy L.A., Fraser C.G. Clin. Chem. 1983. V. 29. P. 553-557], [Marshall Т., Williams K.M. Clin. Chem. 2000. V. 46. P. 392-398]. Интенсивность окраски образующегося комплекса зависит от концентрации белка и может быть оценена как с помощью анализаторов (автоматических и полуавтоматических), так и обычных фотометров. Метод характеризуется высокой аналитической надежностью, специфичностью и позволяет определять белок в широком диапазоне концентраций. Однако способ не обладает чувствительностью при определении минимальных количеств белка.

Известен метод Лоури [Альтшулер Б.Ю., Раков С.С., Ткачев Г.А. Вопросы медицинской химии. 2001. №4. С. 426-438], сочетающий биуретовую реакцию и реакцию Фолина на аминокислоты, тирозин и триптофан в составе белковой молекулы. Он обладает более высокой чувствительностью по сравнению с биуретовым методом, однако возможно неспецифическое взаимодействие реактива Фолина с небелковыми компонентами (чаще всего со свободными ароматическими аминокислотами и многими другими соединениями, содержащими фенольную группу), способными оказывать влияние на данную реакцию и искажать результаты исследования.

Известны спектрофотометрические способы определения белка в биологических жидкостях, основанные на связывании протеина с органическими красителями, обеспечивающими лучшую воспроизводимость результатов. В качестве красителей могут использоваться: кумасси бриллиантовый синий (Coumassie Brilliant Blue) [Bradford M.M. Anal. Biochem. 1976. V. 72. P. 248-254], бромфеноловый синий [патент РФ №2250465, МПК7 G01N 33/52, опубл. 20.04.2005], бромкрезоловый зеленый [Инструкция по применению набора реагентов для определения содержания альбумина в сыворотке и плазме крови человека. АЛЬБУМИН ФС. Утверждена Приказом Росздравнадзора от 15 апреля 2009 г. №3004 - Пр/09 РУ № ФСР 2009/04712 от 06.02.2009 г.], пирогаллоловый красный [Инструкция по применению набора реагентов для количественного определения общего белка в моче и СМЖ с пирогаллоловым красным. ОБЩИЙ БЕЛОК ПГК ФС. «Диакон-ДС». Утверждена приказом Росздравнадзора от 20.06.2010 г. №6830-Пр/10 РУ № ФСР 2007/01435 от 07.05.2010]. В результате реакции молекул белка с органическим красителем образуется окрашенное соединение, интенсивность окраски которого пропорциональна концентрации белка в пробе.

Недостатками этих методов является неодинаковая чувствительность каждого из красителей к различным белкам, что приводит к заметному искажению результатов при использовании калибраторов различного состава и появлению дополнительных ошибок при определении общего белка в биологических жидкостях. Наличие лекарственных препаратов в исследуемых биологических жидкостях оказывает влияние на оптическую плотность растворов, кроме того, сорбция красителей на стенках кювет ограничивает применение методов в лабораторной практике для рутинных анализов.

Наиболее близким к заявляемому техническому решению является способ количественного определения белка в биологических жидкостях [патент РФ №2268476, МПК7 G01N 33/68, опубл. 20.01.2006]. Для определения концентрации белка в биологической жидкости указанным способом осуществляют:

- смешивание образца биологической жидкости с реактивом-комплексообразователем,

- инкубацию пробы в течение 10 мин при комнатной температуре,

- измерение оптической плотности пробы фотометрически при длинах волн в диапазоне 600-700 нм,

- определение концентрации белка стандартным образом.

При этом используют реактив-комплексообразователь, содержащий в качестве органического красителя пирогаллоловый красный, молибдат натрия, янтарную кислоту, ацетат натрия, низкоатомный спирт и стабилизатор, воду при следующих соотношениях компонентов (в масс. %): молибдат натрия - (0.6-1.6)×10-3; пирогаллоловый красный - (1.0-2.0)×10-3; янтарная кислота - 0.4-0.7; ацетат натрия - 0.04-0.10; низкоатомный спирт - 8.0-16.0; стабилизатор - 0.03-1.0; вода - остальное.

Реактив-комплексообразователь в качестве низкоатомного спирта может содержать этанол, метанол или другой, а в качестве стабилизатора - любой неионогенный ПАВ.

Смешивание биологической жидкости с реактивом-комплексообразователем ведут в соотношении 1:(10-50).

Недостатком прототипа является различие в чувствительности пирогаллолового красного к альбумину и белкам глобулинового ряда, что приводит к ошибкам в случае определения общего белка в биологических жидкостях при использовании калибраторов разного состава, а также возможность использования указанного способа для определения содержания общего белка только в моче и спинномозговой жидкости.

Техническим результатом заявляемого технического решения является минимизация погрешности в определении общего белка в биологических жидкостях разного вида.

Для достижения технического результата предлагается смешивать образец биологической жидкости с раствором реагента, содержащим следующие компоненты: бромпирогаллоловый красный, молибдат натрия оксалат натрия, янтарную кислоту и воду. Концентрации компонентов в растворе реагента (масс. %):

бромпирогаллоловый красный - (1.5-4.0)×10-3;

молибдат натрия - (0.5-1.5)×10-3;

оксалат натрия - 0.01-0.03;

янтарная кислота - 0.4-0.7;

вода - остальное.

Смешивают образец биологической жидкости и раствор реагента в соотношении 1:(5-200) соответственно и измеряют оптическую плотность пробы при длине волны в диапазоне 580-620 нм относительно холостой пробы, а затем определяют концентрацию белка методом градуировочного графика или методом одного эталона.

Если проводят анализ биологических жидкостей с высоким содержанием белка, например плазма или сыворотка крови, ее следует разбавлять физиологическим раствором.

Предлагаемое техническое решение имеет с прототипом следующие общие признаки:

- смешивание биологической жидкости с реактивом - комплексообразователем ведут в соотношении 1:(10-50) соответственно;

- выдерживание при комнатной температуре;

- измерение оптической плотности пробы проводят фотометрически при длинах волн в более узком диапазоне;

- раствор реагента содержит органический краситель, молибдат натрия, янтарную кислоту, ацетат натрия, взятых в концентрациях (масс. %):

органический краситель - (1.0-2.0)×10-3;

молибдат натрия - (0.6-1.6)×10-3;

ацетат натрия 0.04-0.10;

янтарная кислота 0.4-0.7;

вода - остальное.

Оксалат натрия и ацетат натрия предназначены для создания постоянного значения рН раствора реагента и поддержания буферной емкости, т.е. являются эквивалентами.

Отличительными признаками являются:

- в состав раствора реагента входит в качестве органического красителя бромпирогаллоловый красный с содержанием (1.5-4.0)×10-3 масс. %;

- в состав раствора реагента входит оксалат натрия с содержанием 0.01-0.03 масс. %, взятый в меньшем количестве;

- инкубирование можно не проводить;

- смешивание образца биологической жидкости и раствора реагента проводят в соотношении 1:(5-200), т.е. в более широком диапазоне.

На фиг. 1 изображены спектры поглощения растворов комплекса бромпирогаллолового красного с молибденом (VI) (БПГК - Mo(VI)) - I и комплекса бромпирогаллолового красного с молибденом (VI) в присутствии белка - II с максимумом поглощения при длине волны 600 нм; на фиг. 2 - спектры поглощения растворов реагента с разной концентрацией общего белка: при 0.003 г/л - график 1; при 0.006 г/л - график 2; при 0.012 г/л - график 3; при 0.015 г/л - график 4; при 0.018 г/л - график 5; при 0.021 г/л - график 6; при 0.024 г/л - график 7; при 0.030 г/л - график 8; при 0.036 г/л - график 9; на фиг. 3 - графики зависимости оптической плотности раствора, содержащего БПГК - Mo(VI) и альбумин с концентрацией 0.002 г/л, при фиксированном значении рН и температуре 25°C от времени инкубации; на фиг. 4 - зависимость оптической плотности растворов с постоянной концентрацией альбумина 0.002 г/л от кислотности среды; на фиг. 5 - представлены градуировочные зависимости оптической плотности растворов от концентрации белка: общий белок - график а; альбумин - график б.

При осуществлении способа в результате смешения раствора реагента с раствором белка образуется трехкомпонентный комплекс БПГК - Mo(VI) - белок (фигура 1). Спектр поглощения раствора реагента имеет характерный вид с двумя максимумами поглощения - I (фиг. 1). При введении в систему молекул белка происходит образование трехкомпонентного соединения, и спектр поглощения сдвигается в область 580-620 нм - II (фиг. 1), максимум поглощения трехкомпонентного комплекса БПГК - Mo(VI) - белок наблюдается при длине волны 600 нм. При увеличении концентрации молекул белка в растворе происходит пропорциональное увеличение оптической плотности при длине волны 600 нм (фигура 2). Поскольку раствор реагента также поглощает при длине волны 600 нм, то в качестве холостой пробы следует использовать раствор, приготовленный смешиванием соответствующего объема раствора реагента и объема физиологического раствора, равного объему пробы (см. графики 1-9).

Концентрация БПГК и молибдата натрия в растворе реагента не должна быть меньше 1.5×10-3 и 0.6×10-3 масс. % соответственно, т.к. при меньших концентрациях этих компонентов сокращается диапазон линейности градуировочного графика. Использование концентраций, больших 4.0×10-3 и 1.6×10-3 масс. % соответственно, приводит к излишнему расходу реактивов.

Исследование времени формирования аналитического сигнала проводили путем измерения оптической плотности раствора, содержащего комплекс БПГК - Mo(VI) и альбумин с концентрацией 0.002 г/л, при фиксированном значении рН 2.5 и температуре 25°C через равные промежутки времени на спектрофотометре (UV-1800 «Shimadzu», Япония) в режиме «Кинетика». Полученные результаты, представленные на фигуре 3, показывают, что оптическая плотность растворов в пределах погрешности ее измерения остается постоянной в течение не менее 60 минут, что позволяет исключить обязательное инкубирование проб.

Для выбора оптимальной кислотности среды для проведения реакции между молекулами белка и реагентом готовили серию растворов с постоянной концентрацией альбумина и различной кислотностью среды и измеряли оптические плотности полученных растворов. Значение кислотности среды определяли с помощью рН-метра-иономера «Эксперт - 001». Кислотность варьировали в диапазоне значений 1.5-4.5 ед. рН добавлением разных количеств едкого натра или хлороводородной кислоты к исходному раствору в присутствии сукцинатного буфера. Эксперимент проводили для растворов с постоянной концентрацией альбумина 0.002 г/л при длине волны 600 нм. В соответствии с полученными данными был построен график зависимости оптической плотности растворов от кислотности (фигура 4) для раствора реагента с составом (масс. %): бромпирогаллоловый красный 3.5×10-3, молибдат натрия 1.0×10-3; янтарная кислота 0.6; оксалат натрия 0.01. Оптимальное значение кислотности среды для проведения реакции между комплексом БПГК-Mo(VI) и раствором белка предлагаем создавать введением янтарной кислоты с концентрацией 0.4-0.7 масс. %; и оксалатом натрия 0.01-0.03 масс. %. Введение оксалат ионов в состав раствора реагента способствует устранению их влияния при анализе белка в биологических жидкостях. Совместное присутствие оксалата натрия и янтарной кислоты способствует созданию требуемой буферной емкости раствора реагента, позволяющей сохранять оптимальное значение кислотности среды в пределах от 2.2 до 3.5 ед. рН даже при добавлении большого объема пробы. Меньшее содержание компонентов не обеспечивает достаточную буферную емкость реагента, а большее содержание приводит к неоправданно завышенному расходу реактивов.

С целью оптимизации состава раствора реагента к буферному раствору, содержащему БПГК - Mo(VI), янтарную кислоту и оксалат натрия, добавляли этиловый спирт 8.0-16.0 масс. % и поверхностно-активные вещества 0.03-1.00 масс. %. Как указано в прототипе, добавление этилового спирта в указанных количествах позволяет стабилизировать раствор реактива во времени, а добавление детергентов позволяет предотвратить выпадение осадка. Экспериментально установлено, что добавление детергентов в раствор реагента приводит к уменьшению срока хранения раствора, а добавление этилового спирта не влияет на устойчивость раствора реагента.

Исследовали диапазон линейности зависимости оптической плотности растворов от концентрации и предел обнаружения белка при использовании растворов реагента различного состава. Результаты эксперимента представлены в таблице 1.

Полученные данные свидетельствуют о том, что введение в состав раствора реагента этанола и (или) детергентов не приводит к увеличению чувствительности и расширению диапазона определяемых содержаний белка. Применение более простого по составу раствора реагента, включающего только БПГК - Mo(VI), янтарную кислоту, оксалат натрия и воду, позволяет расширить диапазон линейности градуировочного графика, диапазон определяемых содержаний общего белка, а также уменьшить предел его обнаружения и экономить реактивы.

Для построения градуировочного графика в пробирки вносят раствор реагента и соответствующий объем стандартного раствора белка. Растворы перемешивают и измеряют оптическую плотность в кювете с толщиной слоя 1 см относительно холостой пробы на спектрофотометре при длине волны 600 нм. Холостая проба готовится добавлением к реагенту соответствующего объема физиологического раствора.

Градуировочные зависимости оптической плотности от концентрации альбумина и общего белка при их содержании в растворе до 2 г/л представлены на фигуре 5.

Предел обнаружения рассчитывали по общепринятой формуле:

где S - стандартное отклонение фонового значения,

tgα - тангенс угла наклона градуировочной кривой.

Как видно из фигуры 5, градуировочные зависимости оптической плотности растворов от концентрации белка, построенные при использовании разных калибраторов - стандартного раствора альбумина и стандартного раствора общего белка - имеют одинаковый тангенс угла наклона. Значение предела обнаружения в обоих случаях составило 0.01 г/л, что говорит о практически одинаковой чувствительности реагента к белкам различной природы.

Таким образом, введение в состав раствора реагента бромпирогаллолового красного позволяет минимизировать или исключить ошибку, которая возникает в обычной практике при определении общего белка в случае использования в качестве калибратора стандартного раствора альбумина.

Проверку правильности определения общего белка в реальных объектах - образцах сыворотки крови и мочи. В первом случае результаты анализа сравнивали с данными, полученными независимым биуретовым методом. Для проб мочи использовали метод стандартных добавок. Содержание общего белка определяли по градуировочному графику и методом одного эталона. Данные эксперимента представлены в таблицах 2-3.

Таким образом, по сравнению с используемыми на практике способами определения общего белка в биологических жидкостях, предлагаемый способ характеризуется более широким диапазоном определяемых концентраций и большей чувствительностью.

Возможность варьирования кратности разведения анализируемых проб, а также высокая чувствительность предлагаемого способа и больший диапазон линейности позволяет проводить анализ как объектов с заведомо низким содержанием белка (моча, спинномозговая жидкость, ликвор), так и объектов, где содержание общего белка высоко (сыворотка и плазма крови). Отсутствие необходимости инкубирования проб позволяет сократить время анализа.

Одинаковая чувствительность бромпирогаллолового красного в составе предлагаемого реагента к белкам различной природы позволяет минимизировать погрешности в определении общего белка в биологических жидкостях, так как природа и состав калибратора при использовании указанного красителя не оказывает влияние на результаты определения общего белка.

Получаемый технический результат обеспечивается отличительными признаками заявляемого способа, т.е. он обладает изобретательским уровнем, новизной и может найти широкое практическое применение для количественного определения общего белка в биологических жидкостях при массовых клинико-диагностических исследованиях.

1. Спектрофотометрический способ определения общего белка в биологических жидкостях, включающий смешивание образца биологической жидкости с раствором реагента, взятых в определенном соотношении, выдерживание при комнатной температуре, измерение оптической плотности пробы при длинах волн в определенном диапазоне, определение концентрации общего белка, при этом раствор реагента содержит органический краситель, молибдат натрия, соль натрия, янтарную кислоту и воду, отличающийся тем, что в растворе реагента в качестве органического красителя взят бромпирогаллоловый красный, а в качестве соли натрия оксалат натрия, при этом компоненты взяты в концентрациях (мас.%):
бромпирогаллоловый красный - (1.5-4.0)×10-3,
молибдат натрия - (0.5-1.5)×10-3,
оксалат натрия - 0.01-0.03,
янтарная кислота - 0.4-0.7,
вода - остальное,
соотношение образца биологической жидкости с раствором реагента берут 1:(5-200) соответственно, измеряют оптическую плотность пробы при длине волны в диапазоне 580-620 нм относительно холостой пробы, приготовленной путем добавления к реагенту соответствующего объема физиологического раствора, определение концентрации общего белка осуществляют методом градуировочного графика или методом одного эталона.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что для построения градуировочного графика используют стандартные растворы альбумина или общего белка.

3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что оптическую плотность растворов измеряют при длине волны 600 нм.



 

Похожие патенты:

Группа изобретений относится к молекулярной биологии, биофизике, биохимии и биотехнологии и касается способа анализа взаимодействий между молекулами, флуоресцирующими в ультрафиолетовой (УФ) области спектра, включая белки, пептиды, гликопротеины, протеогликаны и другие соединения, последовательность которых содержит один или более аминокислотных остатков триптофана (Trp), и биологическими молекулами, иммобилизованными в ячейках биологического микрочипа (биочипа), при котором анализ взаимодействий производится на основе измерения интенсивности УФ-флуоресценции аминокислотных остатков триптофана.

Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной фармакологии, и может быть использовано для количественного определения карнозина в тканях и физиологических жидкостях.
Изобретение относится к области медицины, а именно к способу диагностики аномалий дифференцировки сперматозоидов при мужском бесплодии. Сущность способа состоит в том, что проводят количественное определение в ядрах сперматозоидов тиоловых групп.
Изобретение относится к области медицины и ветеринарии, а именно к области вспомогательных репродуктивных технологий, в частности для увеличения частоты наступления беременности, и может быть использовано при лечении бесплодия в программах экстракорпорального оплодотворения и гомологичной инсеминации.

Изобретение относится к области нанотехнологий и молекулярной биологии. Предложен способ детекции проникновения углеродных нанотрубок (УНТ) в биологическую ткань, геном клеток которой содержит промотор гена теплового шока, сшитый с кодирующей областью дрожжевого транскрипционного фактора Gal4, и генетическую репортерную конструкцию UAS-GFP.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для прогнозирования течения энтеральной недостаточности при остром перитоните в эксперименте.

Изобретение относится к клинической биохимии и представляет собой способ экспресс-определения резистентности к окислению липопротеинов низкой плотности сыворотки крови путем обработки буфером, содержащим поливинилпирролидон (ПВП) с последующей турбидиметрической регистрацией смеси, отличающийся тем, что обработку сыворотки или плазмы крови человека ведут 15% раствором ПВП-12600 в 0,01М Трис-HCl-буфере, pH 7,4, содержащем 0,15М NaCl, при объемном соотношении сыворотка : ПВП (1 : 6), инкубируют 10 и 20 мин при комнатной температуре, измеряют светопоглощение спектрофотометрически при длине волны 450 нм в опытной и контрольной пробах, вычисляют разность между ними и при отсутствии разницы констатируют нормальную резистентность к окислению ЛНП в сыворотке крови человека.

Изобретение относится к клинической биохимии и представляет собой способ определения литической активности множественно модифицированных липопротеинов низкой плотности (ммЛНП) путем обработки сыворотки крови 20% раствором поливинилпирролидона с молекулярной массой 35000 (ПВП-35000) при объемном соотношении сыворотка: ПВП (1:0,84), инкубируют 10 мин при комнатной температуре, агрегаты ммЛНП осаждают центрифугированием, декантируют, осадок ммЛНП растворяют в буфере без ПВП, добавляют аутологичные отмытые стандартизованные эритроциты человека, инкубируют в течение 48 часов при комнатной температуре, измеряют оптическую плотность на фотометре при длине волны 620 нм, по калибровочному графику определяют степень лизиса и при лизисе более 10% констатируют повышенную литическую активность ммЛНП.

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для неинвазивного определения сахара в крови. Для этого осуществляют подготовку рабочего прибора для определения сахара в крови, в котором используют пробу и реагент, при этом в качестве пробы применяют дозу слюны пациента, а в качестве реагента используют первичный конгломерат монореактива Глюкоза-Ново, где глюкозооксидаза дополнительно содержит мутаротазу.

Изобретение относится к поглощающему изделию, выполненному с возможностью определения ионной силы мочи. Изделие включает непроницаемый для жидкости слой; проницаемый для жидкости слой; поглощающий внутренний слой, расположенный между непроницаемым для жидкости слоем и проницаемым для жидкости слоем; устройство с латеральным потоком, интегрированное в изделие и расположенное таким образом, что оно находится в жидкостном соединении с потоком мочи, выделяемой пользователем изделия.

Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике, и может быть использовано для неинвазивного определения сахара в крови. Для этого осуществляют подготовку рабочего прибора для определения сахара в крови, в котором используют пробу и реагент, при этом в качестве пробы применяют дозу слюны пациента, а в качестве реагента используют первичный конгломерат монореактива Глюкоза-Ново, где глюкозооксидаза дополнительно содержит мутаротазу.

Использование: для автоматического контроля водного теплоносителя на ТЭС и АЭС. Сущность изобретения заключается в том, что способ включает последовательные операции подготовки проточной пробы путем охлаждения пробы до 10-50°C и понижения давления до атмосферного, кондуктометрического измерения электропроводности (χt) и температуры (t) прямой пробы, пропуск пробы через H-катионитовую колонку, кондуктометрического измерения электропроводности (χt H) и температуры (tH) H-катионированной пробы, приведения измеренных величин электропроводности к температуре 25°C (χ, χH), проверки на достоверность, определения разности значений электропроводностей прямой и H-катионированной пробы (χ- χH) и расчет значения pH решением системы уравнений ионных равновесий водного раствора.

Изобретение относится к определению физико-химических свойств веществ и материалов: относительной плотности, средней числовой молекулярной массы, коксуемости по Конрадсону, энергии активации вязкого течения многокомпонентных углеводородных систем.

Изобретение относится к способам обработки изображений, отображаемых на электронных устройствах. Техническим результатом является обеспечение поддержания заданных цветовых свойств отображаемых изображений вне зависимости от значений их текстурных свойств.

Изобретение относится к способу идентификации живых и мертвых организмов мезозоопланктона в морских пробах, который включает отбор пробы, крашение организмов соответствующими красителями, визуальную оценку интенсивности окраски особей под микроскопом, которую выполняют одновременно с микрофотосъемкой организмов, используя настройки фотокамеры в ручном режиме, сохраняя эти настройки неизменными на протяжении фотосъемки по крайней мере одной пробы, после чего в полученных изображениях, применяя редактор растровой графики, например программный пакет Adobe Photoshop, измеряют средние для каждой особи цветовые и яркостные характеристики и относят особи к классу живых или мертвых, осуществляя дискриминантный анализ измеренных цифровых величин. .

Изобретение относится к способу и системе для анализа свойств флюидов в микрофлюидном устройстве. Флюид вводится под давлением в микроканал, и в ряде мест, расположенных вдоль микроканала, оптически детектируются фазовые состояния флюида.

Изобретение относится к способам определения содержания лигнина Класона. Способ определения лигнина заключается в том, что к лигноцеллюлозному материалу добавляют водно-диоксановый раствор, полученный смешением концентрированной азотной кислоты и 1,4-диоксана в соотношении 1:4 (по объему), реакционную смесь нагревают на кипящей водяной бане в течение 15 минут, затем добавляют 2 М раствор гидроксида натрия, объем реакционной смеси доводят дистиллированной водой и фильтруют, измеряют оптическую плотность фильтрата при 440 нм, и по величине оптической плотности судят о содержании лигнина в целлюлозном полуфабрикате.
Изобретение относится к медицине, в частности к клинической биохимии, и предназначено для определения окислительной модификации белков в пуле веществ средней молекулярной массы в биологической среде при любых патологических состояниях путем биохимического исследования.

Группа изобретений относится к горному делу, в частности к геофизическим исследованиям скважин, и может быть использовано для осмотра скважин при проведении ремонтных работ.

Изобретение относится к контролю формы, которая имеет пористый слой оксида алюминия на своей поверхности с множеством мельчайших углублений. Способ включает этап обеспечения на основании зависимости между первым параметром, который является показателем толщины пористого слоя оксида алюминия, и цветовым параметром, который является показателем цвета света, отраженного от пористого слоя оксида алюминия, первой цветовой информации, которая представляет допуск на первый параметр пористого слоя оксида алюминия, который имеет неровную структуру, которая находится в пределах допуска, этап обеспечения формы, которая является объектом контроля, при этом форма имеет пористый слой оксида алюминия на своей поверхности; этап получения цветового параметра, который является показателем цвета света, отраженного от пористого слоя оксида алюминия формы-объекта контроля, и этап определения пригодности первого параметра формы-объекта контроля на основании полученного цветового параметра и первой цветовой информации.
Наверх