Способ сбора максимального количества зрелых (=оплодотворённых) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза trichuris (=trichocephalus) suis

Изобретение относится к области паразитологии, в частности к способу сбора максимального количества зрелых (оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (Trichocephalus) suis. Способ заключается в отборе индивидуально и только живых, активных, половозрелых самок Trichuris suis из толстой, слепой кишок спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза при исследовании гельминтологическими методами на вскрытии диких кабанов или/и домашних свиней в отдельные пробирки с раствором Rhode-Saito. Раствор по своему химическому составу приближен к составу пищеварительного тракта млекопитающих. Экспозиция пробирок с живыми, активными, половозрелыми самками Trichuris suis в условиях, приближенных к жизнедеятельности паразита в организме свиней, осуществляется при t=38°C-40°C в течение 5 часов в термостате. Заявленный способ предназначен для исследований в условиях лаборатории или/и полевых экспериментов, при решении фундаментальных и прикладных научных задач в области эпизоотологии, биологии, систематики, терапии и профилактики трихоцефалеза домашних или/и диких свиней. 2 пр.

 

Изобретение относится к области ветеринарной медицины, а более конкретно - к паразитологии (=гельминтологии) к «Способу сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis», предназначенное для использования при паразитологических лабораторных или/и полевых исследованиях сборов оплодотворенных яиц от живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) suis, от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза диких или/и домашних свиней, который необходим при решении фундаментальных и прикладных научных задач в области эпизоотологии, биологии, систематики, терапии и профилактики трихоцефалеза домашних или/и диких (в зоопарковых, цирковых, охотничьих хозяйствах) свиней.

Известно, что паразитарный зооноз Trichuris (=Trichocephalus) suis (Schrank, 1788) является возбудителем болезни диких и домашних свиней [7], лошадей (факультативно) [5] и в личиночной стадии может паразитировать у кроликов [6] и человека.

Известно, что экономический ущерб от трихоцефалеза свиней выражается: в отставании роста и развитии молодняка свиней; живой вес зараженных трихоцефалезом поросят составляет лишь 50-60% веса здоровых; сильно инвазированные поросята в месячном возрасте остаются такими же, как и при рождении [1].

Известно, что для получения сборов яиц гельминтов исследователи применяли следующие способы: методы копроовоскопии (флотации, комбинированные) от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза диких (зоопарковых, цирковых) или/и домашних животных [Котельников Г.А. - 1, Пасечник В.Е., и др. - 4].

Эти способы имеют некоторые недостатки:

а) они требуют больших затрат времени и труда, так как для сборов больших количеств яиц трихурисов (=трихоцефалов) необходимо соответственно и большое количество фекалий от зараженных возбудителем трихоцефалеза домашних или диких свиней;

б) загрязнение сборов яиц гельминтов остатками частиц непереваренных кормов и жиров от свиней, что затрудняет исследования в условиях лаборатории;

в) неизвестен вид возбудителя инвазии, так как кроме Trichuris suis может быть и другой возбудитель болезни Dioctophyme renale (Goeze, 1782), который имеет очень схожие морфологически яйца с яйцами трихурисов, кроме того может быть и микст инвазия этими двумя возбудителями болезни: Trichuris suis + D. renale, что также может зачеркнуть чистоту опытов;

г) количество яиц собранных этими известными методами при спонтанном трихоцефалезе (=трихурозе) бывает незначительным, особенно при слабой степени инвазии.

Известен способ сбора яиц путем разрушения половых органов самок гельминтов [В.Е. Пасечник, 1984, 2000 - 2, 3]. Этот способ имеет следующие недостатки:

1) сбор яиц сильно загрязнен остатками разрушенных тканей женских половых органов самок паразита, что в процессе эксперимента вызывает развитие секундарной бактериальной микрофлоры и гниение;

2) сбор яиц загрязнен большим количеством неоплодотворенных яиц;

3) при этом в способе сбора яиц получение до 100% оплодотворенных яиц невозможно, так как основная масса зрелых яиц находится в дистальной части вагины и в вульве (во влагалище) и только частично в матке.

4) довольно часто необходимы сборы до 100% зрелых яиц для экспериментального заражения лабораторных животных с тысячами инвазионных яиц в 1 г назначаемой дозы на одно экспериментальное животное.

Следовательно, исследователям по этим причинам получить с помощью этих известных способов сборов яиц: флотации, комбинированным, путем разрушения половых органов самок от трихоцефалов вида: Trichuris suis в максимально возможно большом количестве до 100% зрелые яйца, для проведения экспериментов в полевых или/и в лабораторных условиях, практически невозможно, так как отнимает много сил и рабочего времени.

Поэтому нами был впервые изобретен новый «Способ сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis», который с учетом недостатков, отмеченных выше, в известных способах сборов яиц паразитов более эффективный, чем известные науке способы.

С учетом изложенного выше, мы воспользовались как одним из средств для реализации нашей цели, приведенной ниже, известным физиологическим солевым раствором Rhode-Saito [Rhode Н., Saito Y. - 15], которым пользовались и цитировали в своих работах ученые различных стран мира: Saito Yutaka (один из авторов раствора - Rhode-Saito: на стр: 378: "… von isotonischen gepufferten nach Rhode-Saito …"): - 16; Da Costa, S.F. Gomes - 11 (Abstract: "… in a Rhode-Saito solusion"); Da Costa, S.F. Gomes - 12 (Abstract: "… solution in Rhode-Saito …"); Ettisch G. - 13 (Experimental Part: … containing Rhode-Saito … (abbreviated Rh-S)); Rebello, Silvio; Da Costa - 14 (Abstract: "… in Rhode-Saito’s liquid …").

Предварительно, прежде чем приступить к разработке впервые изобретенного нами «Способа …», был приготовлен известный (11, 12, 13, 14, 16) физиологический солевой раствор Rhode-Saito [15], в соответствии с методикой, изложенной (=описанной) в статье авторов этого раствора (Rhode Н., Saito Y. - 15), которая состоит в следующем (см. страница 504 [Rhode H.-Saito Y. - 15]):

в начале был приготовлен солевой раствор А на 1 л, который состоит из:

NaCl - 168,0 г; KCl - 4,2 г; CaCl2 - 4,2 г; MgCl2 - 2,1 г;

в последующем был приготовлен солевой раствор В на 1 л, который состоит из: 10 см3 нормального раствора Na2CO3;

и в дальнейшем был приготовлен раствор С на 1 л, который состоит из: 8,52 см3 нормального раствора Н3РО4.

В последующем для получения собственно физиологического солевого раствора Rhode-Saito [15] мы соединили 3 приготовленных вышеуказанных солевых раствора, руководствуясь Таблицей, представленной на странице 505 [15], в которой указано соотношение солевых растворов: С = 500 см3 + В = 500 см3, которые при температуре 37°С будут соответствовать PH.=7,52 и к 1000 см3 смесей солевых растворов В и С добавили 50 см3 солевого раствора А.

При разработке нашего изобретения исходили из того, что паразит локализуется в толстом отделе кишечника хозяина (в нашем случае свиней) и следовательно предложенный авторами физиологический солевой раствор Rhode-Saito (который по своему химическому составу приближается к составу пищеварительного тракта млекопитающих) [15] подходил для реализации нашей цели, так как используя его в нашем изобретении «Способе …», создавали наиболее оптимальные условия для паразита, которые способствовали живым, половозрелым самкам возбудителя паразитарного зооноза Trichuris suis откладывать максимальное количество зрелых (=оплодотворенных) яиц.

Целью изобретения является использование впервые разработанного нами «Способа сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis», для получения естественным способом (приближенного к условиям жизнедеятельности Т. suis в организме свиней) максимального количества до 100% зрелых (=оплодотворенных) яиц от живых, активных, половозрелых самок Т. suis, предназначенного для проведения экспериментов в лабораторных и/или полевых условиях при изучении фундаментальных и/или прикладных вопросов гельминтологии.

Поставленная цель достигается тем, что при проведении сбора яиц от возбудителя паразитарного зооноза Т. suis применяют разработанный нами впервые «Способ сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis», заключающийся в отборе индивидуально только что извлеченных из слепой и толстой кишок методом гельминтологических вскрытий [по К.И. Скрябину - 6] от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза диких или/и домашних свиней, только живых, половозрелых и активных самок Т. suis, в каждую отдельную пробирку с физиологическим солевым раствором Rhode-Saito [15, 16], и экспонирования их при t=38°C-40°C в течение 5 часов в условиях термостата, отличающийся от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированного, разрушения половых органов самок гельминтов, тем, что:

половые органы самок Т. suis не разрушаются для получения зрелых яиц (в отличие от известного способа сбора путем разрушения гонад самок гельминтов),

происходит естественная откладка оплодотворенных яиц в пробирки с физиологическим солевым раствором Rhode-Saito, при t=38° - 40°С в течение 5 часов в условиях термостата живыми, половозрелыми самками Trichuris (=Trichocephalus) suis (в отличие от известного способа сбора яиц, когда разрушают гонады самок паразита, а следовательно его убивают);

не происходит загрязнения сборов яиц большим количеством неоплодотворенных яиц Trichuris (=Trichocephalus) suis (в отличие от известного способа сбора яиц путем разрушения гонад самок гельминтов);

без загрязнения сбора яиц Trichuris (=Trichocephalus) suis частицами непереваренного корма и особенно жиров от свиней (в отличие от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированного);

нет необходимости исследовать большое количество фекалий от спонтанно зараженных трихоцефалами диких или/и домашних свиней, чтобы получить максимальное количество зрелых (2000 и более) яиц Trichuris suis (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированного);

достаточно иметь в эксперименте от 200 живых, половозрелых самок, чтобы получить максимальное количество до 100% зрелых яиц Т. suis (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированного, когда исследователь ограничен в количестве спонтанно зараженных трихоцефалами диких или/и домашних свиней);

нет необходимости в центрифуге (в отличие от известного комбинированного способа);

нет необходимости в приготовлении различных солевых растворов, которые часто отсутствуют в широкой продаже или имеют ограничения (аммиачная селитра и др.), так как могут быть использованы в целях проведения террористических актов (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированном);

без загрязнения сбора частицами разрушенных копулятивных органов самок и без микрофлоры, что предотвращает гниение яиц (в отличие от известного способа: разрушения половых органов самок гельминтов);

известен вид возбудителя инвазии Т. suis (в отличие от известных способов: флотации, комбинированном, когда вид неизвестен);

исследователь получает чистый сбор, состоящий из до 100% (и при необходимости до нескольких тысяч) зрелых (=оплодотворенных) яиц от живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) suis.

Сопоставительный анализ заявляемого технического решения с прототипом: известными способами: флотации, комбинированным; способа сбора яиц, когда разрушают половые органы самок гельминтов, показывает, что заявляемый способ отличается от известных тем, что проводят индивидуальный отбор только что извлеченных из слепой и толстой кишок методом гельминтологических вскрытий [по К.И. Скрябину, - 6] от спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза диких или/и домашних свиней, живых, половозрелых и активных самок Trichuris suis в каждую отдельную пробирку с физиологическим солевым раствором Rhode-Saito и экспонированием их при t=38°C - 40°С в течение 5 часов в условиях термостата.

В результате экспериментаторы получают чистые сборы максимального количества зрелых яиц выделившихся естественным путем из половых органов самок, так как еще живые, половозрелые и активные самки Trichuris (=Trichocephalus) suis, откладывают произвольно в пробирки с физиологическим солевым раствором Rhode-Saito, до 100% зрелые (=оплодотворенные) яйца (при необходимости до нескольких тысяч).

Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию «новизна». Признаки, отличающие заявляемое техническое решение от прототипа (способов сборов яиц: флотации, комбинированного; разрушения женских половых органов самок гельминтов), не выявлены в других технических решениях, и поэтому они обеспечивают заявляемому техническому решению соответствие критерию «существенные отличия».

Примеры конкретного выполнения предлагаемого способа.

Пример 1. От 9 свиней (в возрасте 2-6 месяцев), спонтанно зараженных трихоцефалезом, провели сбор яиц известными методами копроовоскопии (контроль): флотации, комбинированным и одновременно от 200 живых, половозрелых самок Trichuris (= Trichocephalus) suis, предлагаемым «Способом сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis» (опыт) в течение 5 часов рабочего времени.

При проведении сборов яиц известными методами копроовоскопии (флотации по Фюллеборну, комбинированным по Дарлингу - Котельников Г.А. - 1), были получены следующие результаты:

поверхностный слой взвеси был загрязнен частицами непереваренного корма и жиров, что значительно затрудняло исследования и количество яиц в сборах;

количество экскрементов от зараженных свиней, иногда было очень мало для постановки проб известными методами: флотации, комбинированным, для сбора яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis в течение рабочего времени;

количество яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis в 1 г проб экскрементов от свиней довольно часто было незначительным; количество яиц в сборе составило 990, что несомненно мало для проведения заражения животных в условиях лаборатории.

Одновременно провели опыт по сбору яиц от 200 живых, половозрелых самок Trichuris (= Trichocephalus) suis, полученных от исследованных на вскрытии (из толстого кишечника и слепой кишки) свиней по предлагаемому «Способу сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis».

Каждую из 200 живых, половозрелых самок Trichuris (= Trichocephalus) suis помещали в отдельную пробирку с раствором Rhode-Saito (который по своему химическому составу приближается к составу пищеварительного тракта млекопитающих) и экспонировали их при t=38°-40°С в течение 5 часов в термостате, то есть в условиях, приближенных к жизнедеятельности самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis в организме свиней.

По истечении 5 часов пробирки извлекали из термостата и сравнивали результаты опыта и контроля.

В результате выяснилось, что при сборе яиц по предлагаемому нами «Способу сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis» (опыт), данный способ отличается от известных способов (флотации, комбинированного) сбора яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis (контроль) тем, что:

нет необходимости в приготовлении и использовании различных химических солей и в приготовлении из них растворов, для сбора оплодотворенных яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis (в отличие от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированного);

нет необходимости в центрифуге (в отличие от известного способа сбора яиц гельминтов: комбинированного);

нет частиц непереваренного корма и жиров от свиней (в отличии от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированных);

нет необходимости в большом количестве спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза домашних или диких свиней, так как можно собрать на вскрытии нескольких больных свиней от 200 и более живых, половозрелых самок Trichuris (= Trichocephalus) suis и следовательно получить по предлагаемому «Способу сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis», свыше 2000 оплодотворенных яиц (в отличие от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированного, когда исследователь ограничен в количестве спонтанно зараженных трихоцефалами животных: в нашем примере 9 свиней и 200 живых, половозрелых самок Trichuris suis);

исключается необходимость исследовать большое количество фекалий от спонтанно зараженных трихоцефалезом диких или/и домашних свиней с целью получения максимального количества яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis (в отличие от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированных);

в нашем опыте в сборе яиц по предлагаемому способу «Способ сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis», было 3650 оплодотворенных яиц, а в контроле по известным методам копроовоскопии (флотации, комбинированным) 990 яиц, что несомненно мало для проведения заражения экспериментальных животных.

Следовательно данный пример убедительно показывает преимущество предлагаемого «Способа сбора максимального количества зрелых (= оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis».

Пример 2. При исследовании на мясокомбинатах, убойных пунктах в России (Московской области), Республике Молдова - толстого кишечника и слепой кишки от спонтанно зараженных трихоцефалами домашних свиней, 2-х кабанов (= вепрей) в Республике Молдова, были собраны живые, половозрелые 500 самок Trichuris (= Trichocephalus) suis.

Собранные только живые, половозрелые самки трихоцефалов вида: Trichuris (= Trichocephalus) suis, были использованы для получения сборов яиц по двум способам:

1-й (опыт) по заявляемому способу, т.е. индивидуального (в отдельную пробирку) сбора яиц только от каждой живой, половозрелой самки Trichuris (= Trichocephalus) suis (активные и еще живые, половозрелые 250 самок трихурисов (= трихоцефалов) естественно, произвольно откладывают яйца в пробирки с раствором Rhode-Saito (который по своему химическому составу приближается к составу пищеварительного тракта млекопитающих) в период экспозиции пробирок с самками Trichuris (= Trichocephalus) suis при t=38°С-40°С в течение 5 часов в термостате, т.е. в условиях приближенных к жизнедеятельности самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (= Trichocephalus) suis в организме свиней;

и 2-м (контроль) известным способом сбора яиц: разрушения вульвы, вагины, матки 250 самок Trichuris (= Trichocephalus) suis.

В последующем отбирали подряд по 2500 яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis, культивировали в термостате при t=28-30°С и просматривали под микроскопом, чтобы сравнить наш способ сбора яиц (1-й - опыт) и известный способ сбора яиц, когда экспериментаторы разрушают половые органы самок трихоцефалов: матки, вагины, вульвы (2-й - контроль).

В результате выяснилось, что в сборах 2500 яиц Trichuris (= Trichocephalus) suis по известному способу (2-й - контроль):

сбор состоял из большого количества более 1700 (до 68%) неоплодотворенных яиц; в сборе было очень много частиц разрушенных тканей половых органов самок Trichuris (= Trichocephalus) suis;

в процессе проведения эксперимента приходилось тратить большое количество времени на выборку незрелых (= неоплодотворенных) от зрелых (= оплодотворенных) яиц, которое в очень сильной степени тормозило исследования;

развилось 32% (800) яиц, а остальные начали загнивать, а при предлагаемом нами способе (1-й опыт) сбора:

2500 яйца Trichuris (= Trichocephalus) suis до 100% случаев были зрелыми и развивались без наличия секундарной микрофлоры;

в сборе из 2500 яиц не было частиц разрушенных тканей половых органов самок Trichuris (= Trichocephalus) suis.

Таким образом, результаты культивирования яиц, собранные по разработанному нами «Способу сбора яиц (1-й - опыт)», подтвердили данные (до 68%) неоплодотворенных яиц; в сборе было очень много частиц разрушенных тканей половых органов самок Trichuris (=Trichocephalus) suis;

в процессе проведения эксперимента приходилось тратить большое количество времени на выборку незрелых (=неоплодотворенных) от зрелых (=оплодотворенных) яиц, которое в очень сильной степени тормозило исследования; развилось 32% (800) яиц, а остальные начали загнивать.

А при предлагаемом нами способе (1-й опыт) сбора: 2500 яйца Т. suis до 100% случаев были зрелыми и развивались без наличия секундарной микрофлоры; в сборе из 2500 яиц не было частиц разрушенных тканей половых органов самок Т. suis.

Таким образом, результаты культивирования яиц, собранные по разработанному нами «Способу (1-й - опыт)», подтвердили данные, полученные при использовании предлагаемого «Способа сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis» от диких или/и домашних свиней, которые были выявлены нами впервые.

Использование предлагаемого «Способа сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от половозрелых самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis» от диких или/и домашних свиней, обеспечивает по сравнению с известными способами: [3, 4] флотации, комбинированного; способа сбора яиц путем разрушения половых органов самок гельминтов (вульвы, вагины, матки), следующие преимущества:

сокращает время и снижает трудоемкость исследований за счет исключения:

необходимости иметь в эксперименте большое количество зараженных трихоцефалами диких или/и домашних свиней, так как достаточно иметь в опыте от 200 живых, половозрелых самок Trichuris (=Trichocephalus) suis (в отличие от способов сбора яиц: флотации, комбинированного, при которых исследовать большое количество больных трихоцефалезом свиней бывает проблематично, особенно в зоопарках, цирках и племенных фермах, где количество дрессированных, диких или домашних (=племенных) свиней может исчисляться единичными особями);

необходимости проведения исследований большого количества фекалий от спонтанно больных трихоцефалезом свиней, с целью сбора максимального количества (2000 и более) оплодотворенных яиц Т. suis (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированного);

необходимости проведения вскрытия половых органов самок Trichuris (=Trichocephalus) suis (в отличие от известного способа сбора яиц: разрушения половых органов самок гельминтов);

исключает загрязненность полученного сбора яиц обрывками частиц тканей половых органов от самок: Trichuris. (=Trichocephalus)suis (в отличие от известного способа разрушения половых органов самок гельминтов);

исключает загрязненность сборов яиц частицами непереваренного корма и особенно жиров от свиней (в отличие от известных способов сбора яиц гельминтов: флотации, комбинированных);

исключает загнивание и развитие секундарной бактериальной инфекции в культуре яиц, полученной предлагаемым нами способом (в отличие от известного способа сбора яиц: при разрушении половых органов самки);

нет необходимости в центрифуге (в отличие известного комбинированного способа);

нет необходимости в приготовлении различных солевых растворов, которые часто отсутствуют в широкой продаже или имеют ограничения (аммиачная селитра и др.), так как могут быть использованы в целях проведения террористических актов (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированном, при которых часто рекомендуется использовать аммиачную селитру, или токсичные для человека реактивы);

известен вид возбудителя инвазии Trichuris (=Trichocephalus) suis (в отличие от известных способов сбора яиц: флотации, комбинированном, когда вид возбудителя инвазии неизвестен, так как домашние или дикие свиньи могу быть заражены Trichuris suis или Dioctophyme renale (Goeze, 1782), или 2-мя видами гельминтов: Trichuris suis + Dioctophyme renale);

заявленный способ сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis легко осуществим в лабораторных условиях;

предлагаемый способ обеспечивает получение до 100% зрелых (=оплодотворенных) яиц трихоцефалов (при необходимости до нескольких тысяч) от только живых, активных самок Trichuris (=Trichocephalus) suis, отобранных при гельминтологических вскрытиях из толстых и слепых кишок зараженных спонтанно возбудителем трихоцефалеза диких или/и домашних свиней и помещенных в отдельные пробирки с физиологическим солевым раствором Rhode-Saito, при t=38°C-40°C, с экспонированием их в течение 5 часов в условиях термостата (в отличие от известных способов: флотации, комбинированных, при которых количество яиц в сборах бывает иногда незначительным, особенно при слабой интенсивности инвазии).

Заявленный способ предназначен для исследований в условиях лаборатории или/и полевых экспериментов, при решении фундаментальных и прикладных задач в области эпизоотологии, систематики, биологии, терапии и профилактики трихоцефалеза диких (в зоопарковых, цирковых, охотничьих хозяйствах) или/и домашних свиней.

Источники информации

1. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных и окружающей среды. //Справочник. - М.- Колос - 1983 - 208 с.

2. Мозговой А.А. Экспериментальное изучение клиники трихоцефалеза свиней. //Ветеринария. - 1952 - №10. - С. 24-27.

3. Пасечник В.Е. Перекрестное заражение трихоцефалами приотарных собак и овец в Молдавии. // Бюллетень Всесоюзного института гельминтологии имени К.И. Скрябина (ВИГИС). М. - 1984. - Вып. - 37. - С. 57.

4. Пасечник В.Е. Дисс. … кандидата ветеринарных наук. - М. - ВИГИС. - 2000. - С. 124-125.

5. Пасечник В.Е., Успенский А.В., Микулец Ю.И., Жданова В.Ю. //Методические рекомендации по диагностике, профилактике и мерам борьбы с гельминтозами цирковых животных. - М. - Изд. Россельхозакадемии (=РАСХН). - 2008. - 50 с.

6. Пасечник В.Е. Значимость изучения трихоцефалеза домашних и диких животных отряда Парнокопытных.//Сб. Материалов докладов научной конференции «Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями». - М. - 2014. - Вып. 15. С. 216-218.

7. Полищук М.Г., Звержановский М.И. Лошадь - новый хозяин нематоды Trichocephalus suis. //Труды Кубанского сельскохозяйственного института. Краснодар. - 1980. - Выпуск 184 (212). - С. 71.

8. Скрябин К.И. Метод полных гельминтологических вскрытий позвоночных, включая человека. //Изд. 1-го Московского государственного университета - М. - 1928. - 36 с.

9. Скрябин К.И., Петров A.M. Основы ветеринарной нематодологии. // Изд. «Колос». - М. - 1964. - С. 470-474.

10. Тукалевский И.М. Развитие власоглава в организме хозяина. //Труды Полтавского сельскохозяйственного ин-та. - 1949. - В. IV. - С. 111-118.

11. Da Costa, S.F. Gomes. Comte rendu des seanses de la Sotiete de biologic - 1930. - V. - 103. - №5. - PP. 339-342.

12. Da Costa, S.F. Gomes. J. Comte rendu des seanses de la Sotiete de biologie. Paris. - May 1.- 1930 - Vol. 103. - №14. - PP. 1257-1259.

13. Ettisch G. //The Journal of General Phisiology. Sept. 20, 1950 - 34 (1). - PP. 43-57.

14. Rebello, Silvio; Da Costa, S.F.Gomes; Rico, J.Toscano. //Comte rendu des seanses de la Societe de biologie. - 1928. - Vol.- 98. - №6. - PP. 475-477.

15. Rhode H, Saito Y. die Herstelling einer physiologichen von verschiedener CH Warm- und . Mit 1 Kurve. //Zeitschrift die gesamte Experimentelle Medicine. Berlin, 1923. - Vol. 38. - Issue 1. S. 503-505.

16. Saito Yutaka. Die Resorption Mittel von der Schleimhaut der Harnblase. //Archiv fur experimentelle Pathologie und Pharmakologie. September 1924. Volume 102. Issue 5. - S. 367-381.

Способ сбора максимального количества зрелых (=оплодотворенных) яиц (in vitro) от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris (=Trichocephalus) suis, заключающийся в отборе индивидуально и только живых, активных, половозрелых самок Trichuris suis из толстой, слепой кишок спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза, при исследовании гельминтологическими методами на вскрытии диких кабанов или/и домашних свиней, в отдельные пробирки с раствором Rhode-Saito, который по своему химическому составу приближается к составу пищеварительного тракта млекопитающих, и экспозицией пробирок с живыми, активными, половозрелыми самками Trichuris suis в условиях, приближенных к жизнедеятельности паразита в организме свиней: при t=38°C-40°C в течение 5 часов в термостате.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к ветеринарии, в частности к способу определения состояния структурно-функциональной незавершенности печени у новорожденных ягнят. Способ характеризуется тем, что определяют топографию печени, гистологически устанавливают структуру паренхимы и стромы печени, биохимически определяют прижизненные показатели крови и при увеличении морфометрических параметров органа при топографическом исследовании, отсутствии структурно-функциональных единиц на тканевом уровне, вакуолизации с оптическим просветлением цитоплазмы гепатоцитов, наличии единичных островков гемопоэза в паренхиме и при недостаточной глобулинсинтезирующей функции при биохимическом исследовании крови судят о структурно-функциональной незавершенности печени.

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу лечения геморрагического цистита у кошек. Способ включает введение антибактериального препарата в мочевой пузырь.

Изобретение относиться к ветеринарной хирургии. Накладывают однорядный серозно-мышечно-подслизистый шов желудка и толстого отдела кишечника одной длинной нитью у кошек и мелких пород собак.

Изобретение относится к области ветеринарии и касается способа профилактики желудочно-кишечных болезней телят. Способ включает введение животному пребиотика и пробиотика.

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к средствам купирования теплового стресса кур в условиях промышленного птицеводства. Способ характеризуется введением в рацион антиоксиданта 3-оксипиридиновой структуры, а именно комплекса 3-(2,2,2-триметилгидразиний)пропионат-2-этил-6-метил-3-гидроксипиридина дисукцината в терапевтических дозах.

Изобретение относится к области ветеринарии и касается способа профилактики респираторных болезней телят. Способ включает введение сыворотки против пастереллеза, сальмонеллеза, эшерихиоза, парагриппа-3 и инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в течение 1-2 часов после рождения и на 7 сутки жизни.

Изобретение относится к птицеводству, в частности к способу обработки инкубационных яиц. Способ включает сортировку яиц и обработку отобранных на инкубацию яиц дезинфицирующим средством.

Изобретение относится к области ветеринарии, в частности к способу прогнозирования послеродовых болезней у свиноматок. В сыворотке периферической крови свиноматок на 85-95 день беременности определяют концентрацию дегидроэпиандростерон-сульфата и при выявлении его содержания менее 25 нг/мл прогнозируют возникновение послеродовых болезней.

Изобретение относится к ветеринарии и может быть использовано для ранней диагностики бронхита у телят. Проводят пальпацию последнего трахеального кольца.

Изобретение относится к области ветеринарии и предназначено для повышения стрессоустойчивости животных. Способ включает выращивание животных в традиционных условиях кормления и содержания.

Изобретение относится к ветеринарии и может быть применено для хирургического лечения грыжи межпозвоночного диска грудопоясничного отдела у собак. В область дорсо-латеральной поверхности сосцевидного отростка позвонка, расположенного каудальнее пораженного диска, с помощью направляющей спицы последовательно, коаксиально, вводят дилататоры, устанавливают на них тубус и поворотную насадку эндоскопа. Резецируют сосцевидный и суставной отростки с формированием в дужке позвонка отверстия, сообщающегося с позвоночным каналом. Удаляют фрагменты пультозного ядра поражённого диска. Способ позволяет уменьшить травматичность, обеспечить достаточную визуализацию структур спинного мозга. 1 з.п. ф-лы, 2 ил.
Изобретение относится к области птицеводства, а именно к кастрации петухов. Способ каплунизации петухов включает подготовку операционного поля, местное обезболивание, лапаротомию в последнем межреберье справа и наложение кастрационной петли на семенной канатик. Использование изобретения позволит уменьшить количество осложнений и летальных исходов.

Изобретение относится к области ветеринарии и касается способа определения концентрации пероксида водорода в выдыхаемом воздухе у животных. Способ включает конденсирование и охлаждение выдыхаемого воздуха с помощью устройства для сбора конденсата выдыхаемого воздуха (КВВ) с последующей оценкой концентрации пероксида водорода. Для определения концентрации пероксида водорода используют флуорометрическое измерение концентрации H2O2 с волной облучения 568 нм и волной эмиссии 581 нм в растворе на основе флуоресцентного красителя Amplex Red Ultra, где 1 мл раствора содержит следующие реагенты: 20 мМ HEPES (pH 7,4); 1 мМ ЭДТА; 10 мкм Amplex Red Ultra; 4 ед. пероксидазы хрена. Заявленный способ является чувствительным методом определения низких концентраций пероксида водорода. 1 табл.
Изобретение относится к ветеринарной медицине, а именно к способам, направленным на повышение потенции и качества спермы самцов-производителей. Способ предусматривает применение сапропеля интраректально в дозе 200-300 г на одно животное хрякам и 400-500 г на одно животное быкам, при экспозиции 10-15 минут 1 раз в день в течение 5 дней. Использование изобретения позволит повысить потенцию у самцов-производителей и оплодотворяющую способность спермы.

Изобретение относится к медицине и ветеринарии, а именно к трансплантологии, травматологии, хирургии, онкологии, и касается протезов, предназначенных для замещения сегментарных дефектов трахеи человека и животных. Протез трахеи для замещения сегментарных дефектов представляет собой многослойный матрикс тубулярной формы, выполненный из полимерного биосовместимого материала. Протез армирован полукольцами из полиуретана, полученными по технологии термопрессования. Матрикс тубулярной формы сформирован из 5-6 разнонаправленно ориентированных слоев нетканого ультраволокнистого материала, полученного с использованием технологии 3D принтинга, а именно электроформования в соответствии с размерами и формой дефектного участка трахеи пациента. Внутренняя и внешняя поверхности протеза модифицированы фибрином сыворотки крови. Изобретение обеспечивает замещение сегментарных дефектов с сохранением воздухопроводящей функции, предотвращает возможность инфицирования области средостения, улучшает цитокондуктивные свойства, улучшает фиксацию и репарацию в области анастомозов. 1 пр., 4 ил.

Изобретение относится к животноводству, а именно к способу оценки состояния здоровья молодняка крупного рогатого скота. Способ предусматривает использование в качестве диагностической биосреды шерсти животного, исследование образцов шерсти по 25 химическим элементам и оценку результатов исследования элементного статуса шерсти по центильной шкале. При значениях в интервалах от 10 до 24,9 центиля и от 75,01 до 90 центиля в центильной шкале состояние животного оценивают как нормальное. Использование изобретения позволит выявить ранние и скрытые формы нарушения здоровья животных. 3 табл.

Изобретение относится к техническим средствам оценки качества воздушной среды обитания человека при воздействии на нее аэрозолей различных загрязнителей, в частности к устройству для подсадки лабораторного животного и фиксации положения его тела. Устройство состоит из пенала, узла фиксации и узла крепления и защитной герметизации конструкции. При этом пенал содержит цилиндрический корпус, соединенный, с одной стороны, с головным обтекателем и далее с головной маской, а с другой стороны - с хвостовиком и крышкой пенала, соединенными между собой при помощи байонетного соединения, шток толкателя, расположенный вдоль общей центральной оси корпуса и крышки пенала, и соединенного одним концом с толкателем, а вторым концом - с ручкой толкателя. Узел фиксации положения тела животного содержит скобу фиксатора, приваренную на внешнюю сторону крышки пенала на расстоянии от ее центра, а также надетых на шток толкателя пружины и планки фиксатора. Причем пружина одним концом упирается соосно в центр внешней стороны крышки пенала, а другой - в планку фиксатора. Узел крепления и защитной герметизации состоит из соосных внутреннего патрон-держателя с вырезанными на торцевой поверхности диаметрально противоположными байонетными пазами для подвижного соединения с подсадочным пеналом и внешнего фланца корпуса защиты с вырезанными на торцевой поверхности тремя круговыми канавками, в крайние из которых уложены резиновые уплотнительные кольца, а в среднюю установлен крепежный винт, фиксирующий корпус защиты на внешнем фланце. На внешний фланец надета уплотнительная резиновая прокладка. Внутренний патрон-держатель и внешний фланец корпуса защиты приварены к внешней стороне корпуса ингаляционной камеры соосно с имеющимися в ней затравочными окнами. Использование изобретения позволит надежно фиксировать животное при длительных экспериментах. 11 з.п. ф-лы, 9 ил.
Изобретение относится к ветеринарии и может быть применимо для хирургического лечения разрыва передней крестовой связки коленного сустава у собак. Удаляют остатки разорванной передней крестовой связки. Образуют каналы в большеберцовой и бедренной костях. Создают аутотрансплантат. На концы аутотрансплантата пришивают нитки. Под контролем видеоартроскопической техники проводят аутотрансплантат через каналы, пропуская концы ниток в каналы. Аутотрансплантат фиксируют канюлированными винтами к бедренной и большеберцовой костям. Аутотрансплантат создают из сухожилия поверхностного сгибателя пальцев, отсекая его в месте прикрепления к пяточной кости и в месте перехода в мышечное брюшко, мышечное брюшко подшивают к икроножной мышце. Способ позволяет уменьшить травматичность, учитывать анатомические особенности строения опорно-двигательной системы.

Изобретение относится к медицине, а именно к способу интубации трахеи кролика. Способ включает проведение направляющего устройства в трахею на 4-5 см ниже гортани и последующее проведение в трахею по направляющему устройству интубационной трубки. Направляющее устройство в виде бужа с закругленным концом из гибкого металла диаметром до 2 мм вводят с помощью интрадьюсера с внутренним диаметром просвета 2,0 мм, введенного в трахею через проводник, установленный в пункционной мышечной игле, которой предварительно прокалывают трахею и извлекают из трахеи, оставив проводник, который также извлекают вместе с интрадьюсером после установления дистального конца бужа в трахее при ретроградном движении его в трахее до выведения противоположного дистальному конца бужа в ротовую полость. После чего по металлическому бужу проводят интубационную трубку и удаляют из ее просвета буж. Использование изобретения позволит уменьшить травматизацию трахеи и исключить зашивания отверстия в трахее. 4 ил.

Изобретение относится к медицине. Способ терапевтической обработки ран на теле человека или животных включает первую стадию лечения, на которой проводят лечение ран пониженным давлением с помощью приспособления для лечения пониженным давлением, и вторую стадию лечения, которую проводят с применением раневой повязки без создания пониженного давления во влажной среде. Раневая повязка имеет абсорбирующие элементы, содержащие разбухающий полимер. Приспособление для лечения пониженным давлением содержит воздухонепроницаемый покрывающий материал для герметичного укрывания раны и области вокруг раны, где будет образовано раневое пространство, средство для обеспечения жидкостного сообщения между раневым пространством и находящимся снаружи источником пониженного давления, обтянутым покрывающим материалом, таким образом, что в раневом пространстве устанавливается пониженное давление, и жидкость выходит из раневого пространства, раневую повязку, которая способствует, в сущности, равномерному распределению пониженного давления в раневом пространстве. Изобретение обеспечивает улучшение лечения ран с точки зрения его стоимости без влияния на клиническую эффективность и также повышение его клинической эффективности. 10 з.п. ф-лы; 4 ил.

Изобретение относится к области паразитологии, в частности к способу сбора максимального количества зрелых яиц от самок возбудителя паразитарного зооноза Trichuris suis. Способ заключается в отборе индивидуально и только живых, активных, половозрелых самок Trichuris suis из толстой, слепой кишок спонтанно зараженных возбудителем трихоцефалеза при исследовании гельминтологическими методами на вскрытии диких кабанов илии домашних свиней в отдельные пробирки с раствором Rhode-Saito. Раствор по своему химическому составу приближен к составу пищеварительного тракта млекопитающих. Экспозиция пробирок с живыми, активными, половозрелыми самками Trichuris suis в условиях, приближенных к жизнедеятельности паразита в организме свиней, осуществляется при t38°C-40°C в течение 5 часов в термостате. Заявленный способ предназначен для исследований в условиях лаборатории илии полевых экспериментов, при решении фундаментальных и прикладных научных задач в области эпизоотологии, биологии, систематики, терапии и профилактики трихоцефалеза домашних илии диких свиней. 2 пр.

Наверх