Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах



Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах
Способ количественного определения n-нитрозаминов в детских кашах

Владельцы патента RU 2613303:

Федеральное бюджетное учреждение науки "Федеральный научный центр медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения" (ФБУН "ФНЦ медико-профилактических технологий управления рисками здоровью населения") (RU)

Изобретение относится к медицинской токсикологии, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения N-нитрозаминов (N-нитрозодиметиламина и N-нитрозодиэтиламина) в детских кашах как молочных, так и простых. Для этого проводят пробоподготовку, согласно которой к пробе добавляют сульфат натрия и сульфат алюминия в массовом соотношении 1:1, далее подкисляют до рН 3 сульфаминовой и серной кислотой. Далее производят отгонку с водяным паром с получением дистиллята пробы. Полученный дистиллят подвергают твердофазной экстракции (ТФЭ) на угольном картридже, предварительно промытом хлористым метиленом/этилацетатом/водой. Пробу наносят на картридж, сушат в течение 20 минут, а затем элюируют пробу хлористым метиленом. Объемное соотношение хлористого метилена для промывки картриджа, этилацетата, воды, дистиллята пробы и хлористого метилена для элюирования составляет 1:1,25:1:35:2 соответственно. Полученный экстракт анализируют методом хромато-масс-спектрометрии, устанавливая количественное содержание нитрозаминов: N-нитрозодиаметиламина и N-нитрозодиэтиламина. Изобретение позволяет обеспечить селективность, точность и достоверность количественного определения N-нитрозаминов и снижение нижнего предела определения N-нитрозаминов до 0,4 мкг/кг продукта. 6 ил., 7 табл.

 

Изобретение относится к медицинским токсикологическим исследованиям, в частности к санитарной токсикологии, и может быть использовано для количественного определения N-нитрозаминов (N-нитрозодиметиламина и N-нитрозодиэтиламина) в продуктах питания, в частности в детских кашах, как молочных, так и простых.

Нитрозамины обладают широким спектром токсического действия на организм человека. В первую очередь их токсичность направлена на печень и почки, в результате чего происходит нарушение их функции и некрозы. При хранении пищевых продуктов происходит существенное повышение концентрации некоторых аминов, что может служить признаком их порчи. В связи с вышеизложенным для решения проблемы канцерогенной безопасности пищи необходимо усовершенствовать пищевые технологии, предупреждающие образование канцерогенных нитрозаминов в продуктах питания, особенно, детских, а также обеспечить их надежный контроль.

Известен способ определения N-нитрозаминов в жидкой и воздушной среде (Авт. свид-во СССР №1343316) путем обработки их химическими реагентами в среде уксусной кислоты с последующим измерением оптической плотности полученного окрашенного раствора, причем обработку проводят последовательно амальгамой цинка, содержащей 1,5-2% цинка, раствором гидроокиси натрия и спиртовым раствором альдегида бензольного или азотсодержащего гетероциклического ряда.

Недостатками указанного известного способа является следующие:

- спектрофотометрический метод является неселективным;

- другие азотсодержащие соединения будут мешать определению нитрозаминов, а следовательно невозможно достичь необходимой точности определения для реальной оценки содержания нитрозаминов в пробах.

Из уровня техники также известен способ хроматографического определения летучих аминов и нитрозаминов в пищевых продуктах (Авт. свид-во СССР №1259187), включающий экстракцию их, отгонку растворителя, растворение остатка в соляной кислоте, деление на нескольких аликвотных частей, при этом обрабатывают их, кроме одной, щелочью до рН 8-14, упаривают досуха и растворяют с последующим использованием раствора необработанной части в качестве анализируемого, а растворов щелочных частей - в качестве стандартных после добавления к ним стандартных соединений.

Однако при упаривании пробы возможны потери нитрозаминов, т.к. они являются высоколетучими соединениями, что существенно будет влиять на надежность и точность получаемого результата.

В статье (http://www.medved.kiev.ua/arh_nutr/art_2004/n04_2_12.htm) «К вопросу об определении n-нитрозаминов в пищевых продуктах», авторы: О.С. Зульфигаров, В.В. Юрченко и др., Институт экогигиены и токсикологии им. Л.И. Медведя, Киев, Украина, также указано на то, что первым этапом определения нитрозаминов является их выделение из анализируемых продуктов. Невысокие температуры кипения (меньше 200°С) и достаточная термическая стабильность нитрозаминов обусловили возможность применения для их выделения отгонки с водяным паром. Простота в исполнении, универсальность по отношению к самым разным пищевым продуктам, полнота извлечения обусловили наиболее широкое применение этого подхода. Затем из водных отгонов нитрозамины выделяют методом экстракции, наилучшим экстрагентом для этого оказался хлористый метилен, который и находит наибольшее применение. Данная схема выделения эффективна как для жидких проб, так и для твердых. Далее рекомендуется проводить дериватизацию соответствующих вторичных аминов 4-нитрофенилдиазонием. Полученные при этом производные достаточно гидрофобны и легко могут быть сконцентрированы, а затем разделены методом обращено-фазной высокоэффективной жидкостной хроматографии. Сущность данного известного метода заключается в том, что неподвижная фаза - это неполярная (гидрофобные силикагели с привитыми группами С4, С8, С18 и др.) фаза; подвижная фаза - полярная (смеси воды и полярных растворителей: ацетонитрила, метанола, тетрагидрофурана и др.) фаза. Удерживание веществ растет с увеличением их гидрофобности (неполярности). Чем больше содержание органического растворителя, тем выше элюирующая способность подвижной фазы). Поскольку нитрофенилтриазены хорошо окрашены, чувствительность их детектирования на обычных, наиболее распространенных фотометрических детекторах достаточно высока и составляет 2⋅10-7 моль/л. Это позволяет определять нитрозамины в пищевых продуктах при их содержании на порядок ниже ПДК. Важным обстоятельством является возможность применения данной методики для определения соответствующих вторичных аминов. Однако и этот способ не лишен недостатков, т.к.

1) много операций подготовки пробы к химическому анализу - перегонка с водяным паром затем экстракция органическим растворителем и получение производных нитрозаминов (дериватизация). Возможны большие потери целевых аналитов на этапах пробоподготовки, если нитрозамины в пробе содержатся в ультрамикроконцентрациях. Как результат, достаточно сложно получить достоверные данные по количественному содержанию нитрозаминов в пробе.

2) длительность проведения в серийных исследованиях, соэкстрагирование большого количества мешающих веществ, невысокая эффективность извлечения.

Госкомсанэпиднадзором России в 1993 г. была утверждена методика МУК 4.4.1.011-93 «Определение летучих N-нитрозаминов в продовольственном сырье и пищевых продуктах. Методические указания по методам контроля. - М.: Информационно-издательский центр Госкомсанэпиднадзора России, 1993. - 16 с., которая выбрана в качестве наиболее близкого аналога к предлагаемому изобретению. Согласно этой Методике проводят пробоподготовку, согласно которой к пробе добавляют сульфат натрия и сульфат алюминия в массовом соотношении 1:1, далее подкисляют до рН 3 сульфаминовой и серной кислотой, добавляют гексановый раствор нитрозодипропиламина, далее производят дистилляцию путем перегонки с помощью водяного пара с получением дистиллята пробы. Дистиллят переносят в делительную воронку и нитрозамины экстрагируют свежеперегнанным хлористым метиленом 4-5 раз по 15 мл. Объединенные хлорметиленовые экстракты высушивают прокаленным сульфатом магния, отфильтровывают, осушитель промывают небольшим объемом хлористого метилена, объединенные фильтраты помещают в круглодонную колбу на 100-150 мл, снабжают дефлегматором (или воздушным холодильником), помещают в водяную баню и упаривают хлористый метилен до 5-7 мл выдерживанием при температуре бани 55-65°С. Выполняют определение N-нитрозаминов с помощью газохроматографического анализа.

Однако указанная Методика МУК 4.4.1.011-93. позволяет выполнять либо полуколичественный анализ (флуориметрический метод), либо количественное определение модифицированных нитрозаминов с помощью хемилюминисцентного (термоэнергетического) детектора. При выполнении процедуры дериватизации возможны потери целевых аналитов, если матрица обладает сорбционными свойствами, что существенно будет влиять на надежность и точность определения. Кроме того, эта Методика отличается многостадийностью их хроматографического разделения и при этом обеспечивается лишь полуколичественное определение нитрозаминов, нижний предел определения составляет 1 мкг/кг продукта.

Технический результат, достигаемый предлагаемым способом заключается в обеспечении точности и достоверности количественного определения N-нитрозаминов за счет высокой полноты их извлечения из пробы, при одновременном снижении нижнего предела определения N-нитрозаминов.

Поставленный технический результат достигается предлагаемым способом количественного определения N-нитрозаминов в детских кашах, включающим пробоподготовку, согласно которой к пробе добавляют сульфат натрия и сульфат алюминия в массовом соотношении 1:1, далее подкисляют до рН 3 сульфаминовой и серной кислотой, производят дистилляцию путем перегонки с помощью водяного пара с получением дистиллята пробы, определение N-нитрозаминов с помощью газохроматографического анализа, при этом новым является то, что перед проведением газохроматографического анализа полученный дистиллят подвергают твердофазной экстракции ТФЭ на приборе ТФЭ, содержащем угольный картридж, при которой вначале производят промывку хлористым метиленом картриджа прибора ТФЭ, пропускают через него этилацетат с его задержкой в течение 30 сек, далее производят промывку водой; затем загружают ранее полученный дистиллят пробы, производят сушку картриджа в течение 20 минут, осуществляют элюирование дистиллята пробы с картриджа хлористым метиленом и полученные элюенты анализируют хромато-масс-спектрометрическим методом, устанавливая по хроматограммам количественное содержание N-нитрозаминов: N-нитрозодиаметиламина и N-нитрозодиэтиламина, при этом при ТФЭ объемное соотношение хлористого метилена для промывки картриджа, этилацетата, воды, дистиллята пробы и хлористого метилена для элюирования составляет 1:1,25:1:35:2 соответственно.

Указанный технический результат достигается за счет следующего.

Известные приемы и способы пробоподготовки, такие как экстракция органическим растворителем, дистилляция с перегретым водяным паром, статический и динамический анализ равновесной паровой фазы (АРП) не позволяют достичь высокой полноты извлечения, а, следовательно, - необходимой точности определений для реальной оценки содержания нитрозаминов в пищевых продуктах на уровне гигиенического норматива, указанного в СанПиН 2.3.2. 560-96 на продукты детского питания.

Благодаря использованию в предлагаемом способе операции твердофазной экстракции (далее - ТФЭ) при заявленных режимах и используемых реагентах и была обеспечена полнота извлечения нитрозаминов из пробы детской каши.

Традиционная процедура ТФЭ состоит из нескольких последовательных этапов и показана на примере прибора ТФЭ, приведенного на Фиг. 2:

1 - система Sepaths;

2 - (N2) емкости для органических растворителей;

3 - емкости для образцов;

4 - емкости для элюирования образцов с картриджа;

5 - рабочая платформа для картриджей;

6 - виала для сбора элюата.

С целью активации картриджа системы ТФЭ выполняется кондиционирование органическим растворителем, который поступает из емкостей 2 (показано на схеме), затем загрузка жидкого образца на картридж из емкости 3 с помощью азота. Во время этого, на сорбенте адсорбируются аналиты, а матрица идет в слив. На этой стадии сорбент удерживает целевые соединения до этапа элюирования. Мешающие компоненты пробы полностью удаляются на следующей стадии промывки картриджа органическим растворителем, который поступает из емкости 2. При этом интересующие аналиты элюируются сильным растворителем, поступающим из емкости 4 и элюат собирается в виалу 6.

Предлагаемый способ реализуется следующим образом по трем этапам:

- пробоподготовка,

- выполнение ТФЭ,

- анализ полученных элюентов хромато-масс-спектрометрическим методом.

1. Пробоподготовка.

При открытии коробки каши, берут навеску каши массой 20-50 г, разбавляют водой объемом 100 мл и полученную пробу помещают в круглодонную колбу объемом 250 см3 для отгона.

Добавляют к ней высаливающие реагенты (5 г сульфата натрия и 5 г хлорида натрия).

Подкисляют 2,5 мл 2%-ным раствором сульфаминовой кислоты и 2,5 мл 1 н. серной кислотой до рН=3.

С помощью перегретого водяного пара при температуре парообразователя, равной 100±5°С, и температуре колбы с пробой, равной 80±5 С°, отгоняют 70 см дистиллята пробы.

2. Выполнение ТФЭ.

Вначале производят стадию кондиционирования - активацию угольного картриджа, для чего его промывают хлористым метиленом объемом 2 см3.

Затем через картридж пропускают растворитель - этилацетат, объемом 2,5 см3 с задержкой растворителя в течение 30 сек.

Для удаления остаточных количеств растворителей угольный картридж промывают водой объемом 2 см3.

Далее загружают ранее полученный дистиллят пробы объемом 70 см3 и производят сушку картриджа в течение 20 минут.

Осуществляют элюирование дистиллята пробы с картриджа хлористым метиленом объемом 4 см3.

При ТФЭ объемное соотношение хлористого метилена для промывки угольного картриджа, этилацетата, воды, дистиллята пробы и хлористого метилена для элюирования составляет 1:1,25:1:35:2 соответственно.

3. Анализ полученных элюентов хромато-масс-спектрометрическим методом.

Полученные элюенты анализируют известным хромато-масс-спектрометрическим методом, устанавливая по хроматограммам количественное содержание N-нитрозаминов: N-нитрозодиаметиламина и N-нитрозодиэтиламина. Этот метод наш (мы отрабатывали все параметры хромато-масс-спектрометрического метода для анализа нитрозаминов).

Отработка оптимальных хромато-масс-спектрометрических параметров определения летучих N-нитрозаминов в образцах каш осуществлялась с использованием газовой хроматографии и масс-спектрометрии (ГХ/МС): газовый хроматограф Agilent 7890А (USA) с масс-селективным детектором 5975С и квадрупольным масс-анализатором. Режим ионизации электронным ударом при 70 эВ.

В процессе экспериментальных исследований были изучены следующие капиллярные колонки различной длины и толщины пленки неподвижной фазы: DB-624, HP-FFAP, HP-Plot/U, HP-VOC. Качественное разделение N-нитрозаминов (N-нитрозодиметиламина и N-нитрозодиэтиламина) с близкими физико-химическими свойствами было достигнуто на капиллярной колонке серии HP- FFAP 30 m ⋅ 0,250 mm ⋅ 0,250 μm длиной 30 метров, внутренним диаметром 0,250 мм и толщиной пленки неподвижной фазы 0,250 μm. Режимы хромато-масс-спектрометрических параметров представлены в таблице 1.

Хроматограмма стандартного раствора N-нитрозаминов при оптимально подобранных условиях хромато-масс-спектрометрического анализа, зарегистрированная по полному ионному току, с содержанием N-нитрозаминов (СНДМА=0,02 мкг/см3, СНДЭА=0,02 мкг/см3) представлена на фиг. 1.

В режимах 2 и 3 (табл. 1) не наблюдалось достаточно эффективного разделения летучих N-нитрозаминов. Качественное разделение было достигнуто в режиме 1, который и был выбран для дальнейшей работы.

Для выбора оптимальных режимов и используемых реагентов предлагаемого способа были проведены лабораторные исследования по установлению необходимых марок картриджей в приборе ТФЭ, отработаны условия схем элюирования ТФЭ и дистилляции на стандартных образцах нитрозаминов, полученных путем построения градуировочной зависимости. Для построения градуировочной характеристики готовили серию растворов. Для этого применяли стандартные образцы.

Приготовление растворов для анализа

Приготовление раствора серной кислоты. В термостойкий химический стакан помещали 60 см3 бидистиллированной воды, при непрерывном помешивании приливали 29 см3 концентрированной серной кислоты. Раствор охлаждали. Срок хранения неограничен.

Приготовление раствора 2%-ного сульфаминовой кислоты. Растворяют 2 г сульфаминовой кислоты в 100 см3 бидистиллированной воды. Срок хранения 1 месяц.

Приготовление исходного раствора. В мерную пробирку объемом 10 см3 дозатором добавляют бидистиллированную воду в объеме 10 см3, вводят микрошприцем по 2 мм3 N-нитрозаминов (N-нитрозодиметиламин, N-нитрозодиэтиламин). Весовое содержание компонентов в исходном растворе составляет (с учетом плотности и содержания основного вещества): N-нитрозодиметиламин 0,2 мг/см3, N-нитрозодиэтиламин 0,2 мг/см3. Срок хранения раствора 30 дней.

Приготовление рабочего раствора. В мерную колбу объемом 50 см3, содержащую бидистиллированную воду в объеме 50 см3, вводят дозатором 2 мм3 исходного раствора N-нитрозаминов. Массовая концентрация N-нитрозодиметиламина в рабочем растворе составляет 0,008 мг/см3 и N-нитрозодиэтиламина 0,008 мг/см3. Срок хранения раствора 5 часов.

Приготовление градуировочных растворов. Градуировочные растворы N-нитрозаминов готовят в мерных колбах объемом 100 см3. Для этого в каждую колбу вносят по 50 см3 бидистиллированной воды и добавляют рабочий раствор для градуировки в соответствии с таблицей 2, содержимое колбы доводят до метки бидистиллированной водой и тщательно перемешивают.

Следует подчеркнуть, что режимы и реагенты для этапа пробоподготовки были использованы те же, что и в прототипе, описанном в Методике МУК 4.4.1.011-93.

Для получения экстрактов необходимой чистоты для хромато-масс-спектрометрического анализа и установления достаточной степени концентрирования были апробированы сменные картриджи прибора ТФЭ, заполненные различными сорбентами, органические растворители для элюирования нитрозаминов с картриджей и изучены условия оптимальной схемы элюирования. Селективность проведения процесса ТФЭ достигнута подбором картриджа с соответствующей фазой.

Для этого апробированы следующие типы картриджей: угольный Coconut 6 мл; заполненные октадецилом Chromabond С18 на 100 и на 500 мг; картриджы на полимерной основе Strata на 200 мг.

Результаты исследования полноты извлечения нитрозаминов из стандартного образца с применением различных марок картриджей представлены в таблице 3.

Анализ полученных результатов, приведенных в таблице 3, показал, что на угольном картридже Coconut 6 мл полнота извлечения N-нитрозаминов из стандартного образца составила 97,5%.

Проведенные исследования показали недостаточную степень извлечения нитрозаминов из стандартных образцов. Поэтому были проведены дополнительные исследования по отработке оптимальных условий процесса элюирования нитрозаминов с угольного картриджа Coconut 6 мл с применением различных растворителей. Для этого варьировали:

- объемами растворителей на стадии кондиционирования - активации картриджа;

- объемами образца на стадии загрузки в картридж;

- временем сушки картриджа;

- объемом слива при элюировании образца с картриджа хлористым метиленом.

Экспериментально отработанные схемы элюирования нитрозаминов стандартного образца с угольного картриджа Coconut 6 мл методом твердофазной экстракции представлены в таблице 4.

Результаты исследования полноты извлечения нитрозаминов из стандартного образца методом введено-найдено с применением различных схем (см. таблицу 4) элюирования ТФЭ и угольного картриджа Coconut 6 мл приведены в таблице 5.

В процессе экспериментальных исследований были установлено, что наиболее оптимальной схемой элюирования нитрозаминов методом ТФЭ с использованием угольного картриджа Coconut 6 мл в предлагаемом способе является схема 7, которая включает несколько стадий:

1. Стадия кондиционирования - активация картриджа: картридж промывали хлористым метиленом объемом 2 см3, затем через картридж пропускали этилацетат объемом 2,5 см3 с задержкой растворителя в течение 30 сек. Для удаления остаточных количеств растворителей картридж промывали водой объемом 2 см3;

2. Стадия адсорбции целевых компонентов стандартного образца на картридже при загрузке пробы объемом 70 см3.

3. Сушка картриджа в течение 20 минут для удаления остаточных количеств образца.

4. Заключительная стадия ТФЭ - элюирование целевых аналитов с картриджа хлористым метиленом объемом 4 см3.

Таким образом, было установлено, что при реализации предлагаемого способа на стадии ТФЭ объемное соотношение хлористого метилена для промывки картриджа, этилацетата, воды, дистиллята пробы и хлористого метилена для элюирования должно составлять 1:1,25:1:35:2 соответственно.

При этих оптимально установленных условиях ТФЭ, далее при последующем хромато-масс-спектрометрическом анализе, при реализации предлагаемого способа была достигнута высокая эффективность разделения нитрозаминов стандартного образца, что наглядно иллюстрирует хроматограмма, приведенная на Фиг. 3. Эта хроматограмма показывает, что в стандартном растворе содержатся следующие N-нитрозамины: N-НДМА - N-нитрозодиметиламин = 0,02 мкг/см3, N-НДЭА - N-нитрозодиэтиламин = 0,02 мкг/см3.

Полнота извлечения нитрозаминов из стандартного образца для НДМА - 97,5%, для НДЭА - 100% была установлена при использовании угольного картриджа Coconut 6 мл и схемы элюирования 7 (таблица 5).

Для увеличения полноты экстракционного извлечения аналитов, особенно нитрозодиметиламина из стандартного образца, применяли дистилляцию перегретым паром (известно, что нитрозамины - летучие соединения и без разложения перегоняются с водяным паром).

Поэтому следующий этап исследований заключался в отработке условий дистилляции нитрозаминов стандартного образца с последующей сорбцией на угольный картридж Coconut 6 мл. Для этого исследуемый стандартный образец в объеме 25 см помещали в круглодонную колбу объемом 250 см3 для отгона, добавляли высаливающие реагенты (5 г сульфата натрия и 5 г хлорида натрия). Стандартный образец нитрозаминов подкисляли 2,5 мл 2%-ной сульфаминовой и 2,5 мл 1 н. серной кислотой до рН=3. С помощью перегретого водяного пара при t° парообразователя = 100±5°С и t° колбы со стандартным образцом = 80±5 С° отгоняли 25 см3 и 70 см3 дистиллята. Полученный дистиллят (объемом 25 см3 и 70 см3) пропускали через картридж Coconut 6 мл в системе твердофазной экстракции по схеме элюирования 7.

Затем полученные элюенты были проанализированы хромато-масс-спектрометрическим методом.

Результаты исследований полноты извлечения нитрозаминов из стандартных образцов методом введено-найдено с применением различных схем дистилляции и ТФЭ по схеме 7 представлены в таблице 6. Данные, приведенные в таблице 6, показывают, что комплексное использование дистилляции в сочетании с оптимальной схемой элюирования 7 и концентрированием дистиллята в объеме 70 см3 на угольный картридж Coconut 6 мл позволило достичь высокой полноты извлечения N-нитрозаминов из стандартного образца, которая составила для НДМА - 98,5%, для НДЭА - 100%.

Следует пояснить, что абсолютно такие же данные (таблицы 3-6), что и по стандартным образцам, были получены и для проб исследуемых каш, что подтверждает достоверность представленных данных.

Заключительным этапом исследований была апробация разработанного способа с использованием автоматической системы твердофазной экстракции Sepaths (ТФЭ) для хромато-масс-спектрометрического анализа N-нитрозаминов для различных видов детского питания.

Исследования стандартных образцов и проб каш различных производителей на содержание нитрозаминов выполняли методом хромато-масс-спектрометрии: газовый хроматограф Agilent 7890А (USA) с масс-селективным детектором 5975С и квадрупольным масс-анализатором. Режим ионизации электронным ударом при 70 эВ. Для исследований использовали капиллярную колонку серии HP-VOC 60 m ⋅ 0,2 mm ⋅ 1,12 μm длиной 60 метров, внутренним диаметром 0,2 мм и толщиной пленки неподвижной фазы 1,8 μm.

Данные приведены в таблице 7, а также на хроматограммах нитрозаминов, обнаруженных в пробах каш. На фиг. 4 - для овсяной молочной каши «Винни» (N-НДМА = 0,0038 мг/кг, N-НДЭА = 0,0035 мг/кг); на фиг. 5 - для овсяной молочной с бананом Heinz (N-НДМА = 0,0043 мг/кг, N-НДЭА = 0,0012 мг/кг); на фиг. 6 - для мультизлаковой молочной «ФрутоНяня» (N-НДМА = 0 мг/кг, N-НДЭА = 0,00066 мг/кг).

Данные, приведенные в таблице 7, показывают, что предлагаемым способом было обнаружено повышенное содержание определяемых компонентов по сумме N-нитрозаминов в кашах относительно гигиенического норматива в диапазоне от 5,3 до 10,8 раз.

В молочных кашах мультизлаковой и гречневой с персиками и абрикосами «ФрутоНяня» содержание нитрозаминов установлено ниже ПДК.

Таким образом, предлагаемый способ имеет следующие преимущества перед известными:

- обеспечивает практически полное извлечение нитрозаминов из исследуемой пробы (для НДМА - 98,5%, для НДЭА - 100%), что свидетельствует о точности и достоверности предлагаемого способа;

- позволяет значительно снизить нижний предел определения нитрозаминов (до 0,4 мкг/кг продукта), в то время как в прототипе этот показатель составляет 1 мкг/кг продукта;

- обеспечить селективность и специфичность; более эффективное разделение нитрозаминов; высокое количественное извлечение исследуемого образца(>75%); отличную воспроизводимость, надежность и точность определения; легкость в реализации; возможность оптимизации процесса ТФЭ; экономию дорогих растворителей.

Способ количественного определения N-нитрозаминов в детских кашах, включающий пpобоподготовку, согласно которой к пробе добавляют сульфат натрия и сульфат алюминия в массовом соотношении 1:1, далее подкисляют до рН 3 сульфаминовой и серной кислотой, производят дистилляцию путем перегонки с помощью водяного пара с получением дистиллята пробы, определение N-нитрозаминов с помощью газохроматографического анализа, отличающийся тем, что перед проведением газохроматографического анализа полученный дистиллят подвергают твердофазной экстракции ТФЭ на приборе ТФЭ, содержащем угольный картридж, при которой вначале производят промывку хлористым метиленом картриджа прибора ТФЭ, пропускают через него этилацетат с его задержкой в течение 30 с, далее производят промывку водой; затем загружают ранее полученный дистиллят пробы, производят сушку картриджа в течение 20 мин, осуществляют элюирование дистиллята пробы с картриджа хлористым метиленом и полученные элюенты анализируют хромато-масс-спектрометрическим методом, устанавливая по хроматограммам количественное содержание N-нитрозаминов: N-нитрозодиаметиламина и N-нитрозодиэтиламина, при этом при ТФЭ объемное соотношение хлористого метилена для промывки картриджа, этилацетата, воды, дистиллята пробы и хлористого метилена для элюирования составляет 1:1,25:1:35:2 соответственно.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области контроля в пищевой промышленности и может быть использовано при отбраковке сельскохозяйственной продукции. Для этого определяют электрофизические параметры (например, электропроводность) или содержание ионов (например, ионов водорода, нитрат-ионов) с использованием универсального электролитического ключа, сотоящего из двух разовых стерильных шприцов со стандартными электродами, заполненных насыщенным раствором хлорида калия и соединенных с иглами, втыкаемыми в исследуемые объекты.

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к области гигиенической безопасности объектов пищевого назначения. Предложен способ определения безопасности пищевых ингредиентов, в котором в качестве тест-систем используются культуры клеток млекопитающих и человека.
Изобретение относится к технологии контроля качества консервированных продуктов. Способ предусматривает осмотр, санитарную обработку, проверку герметичности и деление консервов на две части, одну из которых термостатируют при температуре -18±2°С в течение 1-2 часов, а оставшуюся часть термостатируют при температуре 70±5°С в течение 5 минут.

Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано для изучения физико-механических свойств корнеклубнеплодов и определения уровня повреждаемости клубней картофеля при оптимизации работы картофелеуборочных машин, а также для оценки механических повреждений при селекции сортов картофеля, предназначенных для механизированного возделывания.

Изобретение относится к пищевой промышленности и может быть использовано для определения синтетического пищевого красителя кармуазина (азорубина, Ε 122) в соках. Для этого определяют количество кармуазина в соках методом микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии с многоканальным УФ-спектрофотометрическим детектированием.

Изобретение относится к области фармации, а именно к определению аскорбиновой кислоты в растительном сырье методом фотохимического титрования. Для этого вводят аликвоту солянокислого извлечения растительного сырья в реакционный сосуд, содержащий фотогенерированный йод.

Изобретение относится к сельскому хозяйству, а именно к хранению плодов для определения предрасположенности яблок к возникновению горькой ямчатости. Для этого определяют содержание калия и кальция и их соотношение в кожице яблок в период роста плодов и перед закладкой их на хранение.

Изобретение относится к сельскому хозяйству и может быть использовано для объективной оценки степени зрелости различных ботанических сортов томатов при высокоточном отборе плодов необходимой стадии зрелости.
Изобретение относится к области определения качества кормов. Техническим результатом является сокращение времени пробоподготовки и проведения анализа в наиболее адекватной «in-vivo» тест-системе с получением полной информации по интегральному показателю качества - биологической полноценности корма.
Изобретение относится к области биохимии и микробиологии, а именно к выявлению бактерий рода Salmonella. Для этого проводят обогащение сальмонелл в неселективной питательной среде, содержащей забуференную пептонную воду и компонент для продуцирования кислоты сальмонеллами.

Группа изобретений относится к области контроля качества, а именно к применению анализа изображений для контроля общего качества при динамическом производстве. Способ мониторинга качества множества перемещающихся пищевых продуктов в системе динамического производства, основан на оценке окраски пищевого продукта. При этом способ включает стадии: захвата изображения множества перемещающихся пищевых продуктов; анализа данного изображения для определения переменной интенсивности по меньшей мере одного цвета, отвечающего за дефект; оценки множества перемещающихся пищевых продуктов как группы на основании процента окраски по меньшей мере одного цвета, отвечающего за дефект, и тем самым определение оценки общего внешнего вида группы; оценки каждого пищевого продукта на основании анализа изображения, и тем самым получение множества индивидуальных оценок продукта; сравнения множества индивидуальных оценок продукта с желаемой характеристикой окраски продукта. Кроме того, раскрывается устройство мониторинга качества множества перемещающихся пищевых продуктов. Группа изобретений позволяет проводить мониторинг качества общей группы и каждого продукта в отдельности более быстро и точно, согласно критерию привлекательности для потребителей. 2 н. и 18 з.п. ф-лы, 5 ил., 3 табл.

Изобретение относится к пищевой промышленности хлебобулочных и кондитерских изделий. Способ предусматривает использование детектирующего устройства «электронный нос» на основе массива из 8 пьезосенсоров с базовой частотой колебаний 10-15 МГц, электроды которых модифицируют покрытиями, чувствительными к спиртам, углекислому газу, для чего на электроды наносят пленки из ацетоновых и толуольных растворов, а также из хлороформной суспензии углеродных нанотрубок с общей массой каждого покрытия после удаления растворителя 4–10 мкг; регистрируют в режиме реального времени сигналы массива пьезосенсоров в виде площади «визуального отпечатка» (S(τ)); для этого взвешивают 2 пробы сухих пекарных дрожжей, переносят анализируемые пробы в пробоотборники, добавляют предварительно нагретую до 37 °С дистиллированную воду и перемешивают получившиеся растворы, далее измерения проводят следующим образом: через 5 мин газовым шприцем отбирают равновесную газовую фазу над одной пробой водной суспензии дрожжей, вкалывают в ячейку детектирования и фиксируют в течение 1 мин сигналы пьезосенсоров и S1(5), после очистки ячейки детектирования и пьезосенсоров в течение 1-2 мин повторно через 5, 10 и 15 мин отбирают по 1 см3 РГФ и фиксируют S1(10), S1(15), S1(20), через 10 минут от момента перемешивания проб во второй пробоотборник с водной суспензией дрожжей вводят раствор сахарозы, через 5 и 10 мин отбирают 1 см3 РГФ над пробой, фиксируют сигналы массива сенсоров и S2(15), S2(20) и рассчитывают изменения площадей «визуальных отпечатков» сигналов массива сенсоров для 15-й и 20-й минуты измерения (∆S(15) = S2(15) – S1(15), ∆S(20) = S2(20) – S1(20)), отражающие различия в общем содержании летучих веществ в РГФ над пробами при активации сухих дрожжей водой и сахарозой; для оценки качества сухих дрожжей рассчитывают показатель качества дрожжей (ПКД) как разность площадей «визуальных отпечатков» на 20-й и 15-й минуте измерения (ПКД = ∆S(20) - ∆S(15)), отражающий изменение содержания легколетучих веществ в РГФ над пробой дрожжей в процессе активации их сахарозой, если ПКД меньше 0 ± 50, делают вывод о низком качестве дрожжей. Достигается упрощение определения качества сухих дрожжей по сравнению с известными методиками при значительном снижении временных и материальных затрат. 1 пр., 2 табл., 1 ил.

Изобретение относится к области исследования и анализа технологических сыпучих материалов, в т.ч. пищевых, характеризующихся насыпной плотностью. Способ предусматривает определение параметров теплофизических характеристик слоя сыпучего материала и основан на принципах импульсного теплового неразрушающего контроля материала. Для регистрации температурного поля поверхности слоя сыпучего материала после воздействия теплового импульса используют тепловизор. Для формирования образца слоя сыпучего технологического материала используют контейнер с несъемными боковыми стенками и съемными передней и задней стенками. В передней и задней стенках выполнены соосные отверстия для формирования фокального пятна. Отверстия затянуты полипропиленом. Для расчета коэффициента объемной теплоемкости используют избыточную температуру задней необлучаемой поверхности образца по отношению к ее начальной температуре. Технический результат - повышение точности и достоверности определения параметров теплофизических характеристик слоя сыпучего технологического материала. 5 з.п. ф-лы, 6 ил., 2 табл.

Изобретение относится к пищевой промышленности, а именно, к определению анатомо-морфологических дефектов зерна или семян зерновых культур с помощью рентгенографии. Исследуемые образцы зерен или семян помещают в потоке рентгеновского излучения. Проводят экспозицию рентгеновским излучением. Регистрируют визуализацию рентгенообраза на носителе с последующим считыванием информации и ее компьютерной обработкой. При этом из партии предварительно отбирают пробы образцов зерен и/или семян и фиксируют в один слой на 10 прободержателях не менее чем по 100 штук на каждом прободержателе с расстоянием не менее 1 мм между зернами или семенами. Поочередно помещают прободержатели между источником рентгеновского излучения и приемником рентгеновского излучения. Выполняют обработку каждого рентгенообраза на сканере с одновременным переносом на компьютер. Получают десять электронных изображений, которые одновременно обрабатывают с использованием программного продукта. Проводят пространственное дифференцирование функции яркости рентгенообразов зерен, устраняют оптическое искажение ренгенообраза. Вычисляют среднюю ширину, среднюю длину, среднюю площадь, среднюю оптическую площадь зерен, среднюю площадь и среднюю оптическую плотность дефекта. Распознают геометрический образ дефекта путем сравнения с имеющимся математическим описанием дефекта. Выявляют дефект и определяют количество и процентное содержание зерна с анатомо-морфологическим дефектом. Окончательную количественную характеристику дефекта вычисляют как где S(A) - площадь всей зерновки (зерна или семени); D(A) - площадь области дефекта. Обеспечивается повышение точности и надежности определения анатомо-морфологических дефектов зерна и семян в партиях зерновых культур. 1 з.п. ф-лы, 6 ил.

Изобретение относится к области пищевой промышленности и предназначено для определения N-дифенилнитрозамина в мясной продукции. Способ количественного определения N-дифенилнитрозамина в мясных пробах пищевой продукции методом хромато-масс-спектрометрии характеризуюется тем, что осуществляют пробоподготовку. К 5 г мясной пробы добавляют 10 мл метилата калия. Метилат калия получают предварительно путем смешивания гидроокиси калия с метанолом в массовом соотношении 1:4,9 соответственно. Производят последующий нагрев смеси пробы с метилатом калия при температуре 60-70°С в течение 2 ч. Затем смешивают ее с 10 мл гексана и подвергают центрифугированию в течение 20 мин при 4500 об/мин. Далее отделяют нижний слой и добавляют в него при интенсивном перемешивании воду до объема 45 мл. Смесь оставляют на выдержку при температуре 5-7°С в течение 12 ч и затем вновь центрифугируют в течение 20 мин при 4500 об/мин. Отделившийся при центрифугировании водный слой подвергают твердофазной экстракции (ТФЭ) на приборе ТФЭ, содержащем угольный картридж, при которой вначале производят промывку хлористым метиленом картриджа прибора ТФЭ, пропускают через него этилацетат с его задержкой в течение 30 с. Далее производят промывку водой. Затем загружают ранее полученный водный слой. Производят сушку картриджа в течение 20 мин. Осуществляют элюирование водного слоя с картриджа хлористым метиленом. Затем полученные элюенты анализируют методом хромато-масс-спектрометрии и с помощью градуировочного графика в режиме селективного ионного мониторинга определяют количество N-дифенилнитрозамина в мясной пробе. Заявленный способ позволяет быстро и точно определить N-дифенилнитрозамин в мясной продукции. 1 з.п. ф-лы, 1 ил., 4 табл., 1 пр.

Изобретение относится к оперативному контролю скрытой и явной зараженности насекомыми зерновой насыпи и может быть использовано при исследовании качества партий продовольственного зерна, предназначенных для хранения в зерноперерабатывающей промышленности и семеноводстве. Над поверхностью зерновой массы на расстоянии от 5 до 50 см от поверхности под углом не более 20 градусов устанавливают тепловизионное устройство с чувствительностью ±0,1°С и длиной волны 2-12 мкм с возможностью осуществления макросъемки. Затем измеряют температуру поверхности зерновой массы, которая далее облучается волнами высокой частоты с частотой излучения 2450±50 МГц. После чего осуществляют повторную тепловизионную съемку поверхности зерновой массы. Полученные термографические данные передают на компьютер, обрабатывают и анализируют при помощи программного обеспечения, позволяющего установить расположение минимальной и максимальной температуры на поверхности зерновой массы. При разности температур поверхности зерновой массы и тел насекомых-вредителей не менее 0,5°С и по величине разности указанных температур определяют место и степень зараженности насекомыми-вредителями. Обеспечивается повышение точности, надежности и достоверности оперативного контроля зараженности насекомыми-вредителями партий зерновой массы. 2 ил.

Изобретение относится к аналитической химии и может быть использовано для определения содержания красного синтетического пищевого красителя кармуазина вольтамперометрическим способом. Для этого после предварительной пробоподготовки исследуемые образцы помещают в электрохимическую ячейку для определения кармуазина методом постоянно токовой вольтамперометрии с дифференцированием с предварительным накоплением вещества на электроде в течение 150 с при потенциале 0,1 В. Определение проводят в гидрофталатном буферном растворе с рН 4,01 при скорости развертки потенциала 0,08 В/с с использованием индикаторного ртутно-пленочного электрода и хлоридсеребряного электрода сравнения в диапазоне потенциалов от 0,1 до -0,4 В. Для расчета концентрации кармуазина используют градуировочный график по стандартному раствору красителя при потенциале электровосстановления -0,1 В. Изобретение обеспечивает точное определение кармуазина в пищевых объектах и твердых лекарственных препаратах в диапазоне концентраций 0,05-0,4 мг/л. 1 табл., 2 ил., 1 пр.

Изобретение относится к теплофизическому приборостроению, а именно к приборам для измерения коэффициента теплопроводности волокнистых пищевых продуктов животного происхождения. Устройство для определения коэффициента теплопроводности волокнистых пищевых продуктов животного происхождения состоит из разъемного корпуса, выполненного из теплоизолирующего материала, в нижней части которого установлен теплонагреватель, а на его верхней части установлен холодильник, между которыми в контакте расположены три тепломеры, выполненные в виде плоских медных пластин, между которыми зафиксированы две ампулы. При этом ампула, расположенная между верхней и средней пластинами, предназначена для исследуемого продукта, а ампула, расположенная между средней и нижней пластинами, - для эталонного продукта. На медных пластинах установлены термодатчики, а в ампуле с исследуемым продуктом установлен виброинициатор кристаллизации. В качестве холодильника используют холодильник Пельтье. Технический результат - повышение быстроты и точности определения коэффициента теплопроводности волокнистых пищевых продуктов животного происхождения. 1 з.п. ф-лы, 1 ил.

Группа изобретений относится к медицине, а именно диагностическому способу определения концентрации сахаров и гидроксикислот по увеличению проводимости полимерного слоя на поверхности электрода при взаимодействии с указанными структурами, и может быть использовано для анализа биомолекул, а также клеток, имеющих в своем составе структурные фрагменты сахаров или гидроксикислот. Для этого синтезируют полимерный сенсорный слой методом электрохимической полимеризации аминофенилборных кислот на поверхности электрода. Полученное покрытие представляет собой проводящий замещенный полианилин, характеризующийся способностью к увеличению проводимости в результате взаимодействия функциональных заместителей (борнокислых групп) в полимере с гидроксикислотами и сахарами. Определение проводят в электрохимической ячейке с использованием химического сенсора, то есть электрода, модифицированного проводящей полиаминофенилборной кислотой. Увеличение проводимости полимерного покрытия на поверхности электрода в присутствии анализируемого образца является сигналом, который регистрируют методом спектроскопии электрохимического импеданса. Количественное содержание искомого компонента определяют по калибровочной кривой. Группа изобретений обеспечивает точное определение концентрации диолов, полиолов, моно- и полисахаридов, гидроксикислот и гликозилированных биомолекул в модельных растворах, физиологических жидкостях, медицинских препаратах и пищевых объектах. 2 н. и 3 з.п. ф-лы, 3 табл., 3 ил., 4 пр.

Изобретение относится к мукомольной и хлебопекарной промышленности. Способ включает приготовление водного смыва бактерий с пробы, фильтрацию и пастеризацию смыва для уничтожения вегетативных форм микроорганизмов, инокуляцию хлебного субстрата пастеризованными смывами с продукта и подготовка контрольного хлебного субстрата с помощью стерильной воды, инкубирование их при 40°С в течение 16 ч, приготовление водных экстрактов бактериальной α-амилазы из хлебного субстрата и определение разжижающей активности (РА) расчетным путем. Изобретение обеспечивает возможность определения «картофельной болезни» не только в муке, но и в других продуктах переработки зерна, таких как отруби, солод молотый, зародыш и пр. путем разработки способа выявления зараженности возбудителями и возможности развития «картофельной болезни хлеба», способствует уменьшению времени и исключению этапа пробной лабораторной выпечки, тем самым повышая эффективность анализа в продуктах переработки зерна. 1 ил.
© Патентный поиск, поиск патентов на изобретения - FindPatent.RU 2012-2024
Политика конфиденциальности 2015-10-27 2017-03-28T22:47:21
Наверх