Способ снижения численности бактерий-оппортунистов в средах выращивания личинок морских рыб и их кормов

Перед помещением икры в инкубатор предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris. В выростные емкости с личинками на стадии эндогенного питания также добавляют культуру хлореллы. На стадии экзогенного питания личинок рыб коловратками в среду добавляют фильтрат хлореллы. Перед закладкой цист артемий на выклев культуру хлореллы добавляют в среду культивирования. Изобретение обеспечивает оптимальные микробиологические условия в системе искусственного выращивания рыб и их кормовых организмов без применения антибиотиков. 2 з.п. ф-лы, 1 табл., 1 пр.

 

Изобретение относится к марикультуре, может быть использовано на рыбоводных предприятиях и предназначено для повышения качества среды выращивания кормовых организмов и рыб.

Одна из самых актуальных проблем в технологии выращивания морских рыб - непредсказуемая массовая смертность личинок на ранних стадиях развития, обусловленная вспышками бактериальных инфекций. Особенно чувствительны к инфекциям личинки камбалообразных, так как на ранних стадиях развития их иммунная и пищеварительная система развиты слабо. Выживаемость, рост и развитие искусственно выращиваемых личинок камбалообразных в значительной степени зависят от микробиологических условий в течение эмбрионального развития и на стадии кормления личинок живыми кормами. В связи с этим данное изобретение тестировалось именно в рамках технологической схемы выращивания черноморского калкана.

Известен способ культивирования морских гидробионтов в выростных емкостях, замкнутых в общую автоматизированную систему. Перед подачей воды в бассейны с животными вода проходит фильтрацию и обработку озоном (Automated closed recirculating aquaculture filtration system and method US 5961831 A). Данный способ эффективно элиминирует бактерии и позволяет отказаться от антибиотиков. Однако этот метод имеет ряд недостатков. Во-первых, в некоторых случаях автоматическая очистка воды может быть причиной травматизации организмов, в частности икры. Во-вторых, бактерицидное действие озона обусловлено тем, что он образует с компонентами морской воды окисляющие соединения, которые разрушают оболочку бактерий. Образующиеся соединения могут также вступать в реакцию с оболочкой икры - хорионом, нарушая его биохимическую структуру и изменяя функциональные свойства. Поэтому, несмотря на высокую бактерицидную эффективность озона, его применение должно быть строго регламентировано. Кроме того, как показали наши исследования, разовая обработка среды инкубации икры озоном приводит к массовому неселективному снижению численности бактерий, и в отсутствие постоянного озонирования после непродолжительной лаг-фазы в среде наблюдается вспышка численности быстро растущей оппортунистической микрофлоры. Кроме того, наши исследования также показали, что озонированная вода (при уровне концентрации озона в пределах биологической толерантности дезинфицируемых организмов) недостаточно эффективно элиминирует бактерии, прикрепленные к поверхности организмов.

Известен способ искусственного разведения черноморского калкана, включающий в себя инкубацию икры в инкубаторах, перенос личинок после выклева в выростные бассейны, их обеспечение специально подготовленными живыми кормами. В данном способе очистку воды и водообмен в инкубаторах осуществляют путем использования биофильтра и замкнутой системы циркуляции воды, а обеззараживание производят за счет внесения антибиотиков (Пат. 847961, МПК A01K 61/00, СССР). Этот способ, с технической точки зрения, целесообразен. Однако обеззараживание воды с помощью внесения антибактериальных препаратов не решает проблемы бактериальных контаминаций, поскольку бактерии могут приобретать резистентность к используемым антибиотикам, нарушается сбалансированное микробиологическое сообщество среды, антибиотики накапливаются в культивируемых организмах и могут загрязнять окружающую среду. Негативные аспекты применения антибиотиков обусловливают альтернативные решения проблемы бактериальных контаминаций сред выращивания аквакультурных организмов.

Задачей способа снижения численности бактерий-оппортунистов в средах выращивания личинок морских рыб и их кормов является формирование оптимальных микробиологических условий в системе искусственного выращивания рыб и их кормовых организмов путем снижения численности бактерий как в искусственных средах инкубации икры и выращивания личинок морских рыб на ранних стадиях развития, так и в средах культивирования их живых кормовых организмов (микроводорослей, коловраток, артемий).

Поставленная задача решается тем, что для обеззараживания среды перед помещением икры, в инкубатор предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris (концентрация клеток в среде инкубирования ≈2⋅105 кл⋅мл-1), а в выростные емкости с личинками на стадии эндогенного питания добавляют культуру Ch. vulgaris из расчета ≈4⋅104 кл⋅мл-1, затем на стадии экзогенного питания личинок рыб коловратками в среду добавляют фильтрат хлореллы из расчета 50 мл⋅л-1, концентрация исходной культуры микроводорослей ≈107 кл⋅мл-1; перед закладкой цист артемий на выклев культуру Ch. vulgaris добавляют в среду культивирования артемий из расчета ≈0,4⋅106 кл⋅мл-1. В способе используют культуру Ch. vulgaris, находящуюся в конце фазы экспоненциального роста. В инкубаторах икру после добавления культуры Ch. vulgaris выдерживают 1 час без протока, повторяя процедуру ежедневно после чистки дна инкубаторов вплоть до выклева.

Основными векторами передачи патогенных бактерий личинкам рыб при искусственном выращивании являются поверхность икры, среда выращивания и кормовые организмы (коловратки, артемий). В отсутствии правильной дезинфекции икры, через нее могут передаваться бактериальные инфекции от производителей к личинкам.

Колонизация поверхности икры бактериями (формирование эпифлоры икры) происходит в течение нескольких часов после оплодотворения. Бактерии, входящие в состав эпифлоры, вырабатывают протеолитические ферменты, которые могут негативно влиять на развитие эмбриона; обрастание икры препятствует его дыханию, замедляя развитие и выклев. Одним из альтернативных методов снижения уровня бактериальной контаминации (и особенно снижения титра быстро растущих потенциальных патогенов - бактерий-оппортунистов) среды выращивания является использование антибактериальных свойств одноклеточных микроводорослей. Известна антибактериальная активность микроводорослей рода Chlorella, которая была обнаружена в 1940-х годах (Pratt et al., 1944), однако до настоящего времени функциональные механизмы этой активности неясны. Для ассоциированной микрофлоры неаксеничных культур микроводорослей рода Chlorella характерно присутствие преимущественно грампозитивных бактериальных изолятов, около 30% которых ингибируют in vitro рост известных патогенов (Makridis et al., 2006). Но и аксеничные культуры видов рода Chlorella, в отсутствие культивируемых ассоциируемых бактерий, оказывают достоверное ингибирование in vitro известных патогенов рыб рода Vibrio (Kokou et al., 2012). Бактерицидная активность хлореллы, по-видимому, связана также с ее экзометаболитами, в составе которых обнаружено до 25-40% полисахаридов (Lewin, 1962), значительное количество гликолевой кислоты (Watt, Fogg, 1966; Максимова, Даль, 1975), а также муравьиной и уксусной кислот (Максимова, Пименова, 1969).

Переход личинок на экзогенное питание живыми кормами - наиболее проблемный в отношении возможных вспышек бактериальных инфекций этап культивирования рыб. Начало питания (открытие пищеварительного канала) инициирует колонизацию кишечника личинок микрофлорой, ассоциированной со средой выращивания и живыми кормами, в составе которой могут быть и условно патогенные бактерии (в том числе и переданные через икру от производителей). В интенсивных условиях выращивания, при высоких плотностях культивируемых организмов (например, коловраток), складывается благоприятная для быстрого роста оппортунистических бактерий среда и их патогенность повышается, что приводит к вспышкам инфекционных заболеваний и смертности личинок. В поверхностных слоях внешней оболочки артемий - живого кормового организма, которым кормят выращиваемых личинок калкана, также локализуется значительное число бактерий, которые не всегда элиминируются дезинфицирующими средствами.

Технический результат, проявляющийся при осуществлении способа, заключается в том, что:

- применение Ch. vulgaris позволяет создать оптимальные условия культивирования личинок за счет внесения в среды выращивания вместе с культурой хлореллы ее метаболитов, обладающих антибактериальным действием, а также заселения сред выращивания ассоциированными с хлореллой бактериями, благоприятными для жизнедеятельности личинок (эубиотиками), сдерживающими рост оппортунистической микрофлоры;

- формирование здорового сбалансированного микробиологического сообщества путем внесения неаксеничной культуры Ch. vulgaris с ассоциированной микрофлорой при открытии личинками рта и пассивном заглатывании воды обеспечивает первичную колонизацию кишечника личинок здоровой микрофлорой и сдерживает рост численности бактерий-оппортунистов в среде выращивания при переходе личинок на экзогенное питание;

- использование Ch. vulgaris при инкубации артемий позволяет увеличить синхронность выклева артемий из цист, снизить уровень бактерий в среде инкубации цист и интенсивность бактериальной колонизации поверхности науплиев и метанауплиев Artemia salina - потенциального вектора передачи патогенных бактерий личинкам рыб;

- вид Ch. vulgaris является технологичным, а получение необходимой биомассы этого вида микроводорослей возможно в короткие сроки;

- условия инкубации икры, культивирования личинок и их кормовых организмов приближаются к естественным, что позволяет избежать рисков, связанных с применением антибиотиков или других дезинфицирующих средств, и повысить качество аквакультурной продукции;

- снижается интенсивность бактериальной колонизации поверхности икры и среды ее инкубации, и, тем самым, снижается вероятность вспышки инфекционных заболеваний личинок рыб.

Заявляемый способ соответствует критериям новизны и технического уровня, т.к. впервые предложена альтернативная химическим способам дезинфекции методика снижения численности оппортунистических бактерий на проблемных в отношении возможной вспышки патогенных инфекций этапах культивирования морских рыб и их кормовых организмов; впервые предложен способ использования фильтрата микроводоросли Ch. vulgaris в качестве антибактериального агента в среде выращивания при питании личинок живыми кормовыми организмами. Применение свежего фильтрата позволяет снизить уровень бактерий в среде, сохраняя необходимый, соответствующий технологии выращивания, баланс численности организмов (личинки/кормовые объекты), избежать нежелательного изменения биохимического состава коловраток, который может произойти в результате их питания хлореллой.

Изобретение реализуется следующим образом:

1. Инкубацию икры проводят при стандартных условиях. Перед помещением в инкубаторы икру промывают озонированной водой с целью обеззараживания, затем помещают в инкубаторы, в которые предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris, до достижения их концентрации в среде инкубации ≈2⋅105 кл⋅мл-1, и выдерживают около 1 часа без протока. Процедуру повторяют ежедневно, после чистки дна инкубаторов вплоть до выклева. Присутствие хлореллы позволяет снизить более чем вдвое интенсивность бактериальной колонизации поверхности икры и сбалансировать бактериальное сообщество в среде инкубации, так как в присутствии хлореллы в бактериальном сообществе доминируют медленно растущие, преимущественно К-стратеги.

2. После переноса выклюнувшихся личинок в выростные бассейны, накануне перехода личинок от стадии эндогенного питания к экзогенному питанию, для предупреждения вспышки численности оппортунистических бактерий и для создания сбалансированного микробиального сообщества в воде, которую пассивно заглатывают личинки и которая может формировать первичную микрофлору кишечника личинок, в выростные емкости добавляют культуру Ch. vulgaris в из расчета ≈4⋅104 кл⋅мл-1.

3. На стадии экзогенного питания для предупреждения роста численности бактерий в среде с личинками, активно питающимися коловратками, в выростные емкости добавляют только фильтрат культуры хлореллы (без клеток) (50 мл⋅л-1, концентрация исходной культуры ≈107 кл⋅мл-1), т.к. коловратки могут дать дополнительную нежелательную вспышку численности и изменить в неблагоприятную для личинок рыб сторону свой биохимический состав в результате питания клетками хлореллы.

4. При инкубации цист артемий с целью получения науплиев, второго кормового организма личинок рыб, культуру Ch. vulgaris добавляют в среду перед закладкой цист на выклев из расчета ≈0,4⋅106 кл⋅мл-1. Присутствие Ch. vulgaris в среде инкубации артемий снижает колонизацию покровов науплиев бактериями, сокращает время выклева науплиев из цист и обеспечивает более синхронный метаморфоз артемий при переходе от науплиальной к метанауплиальной стадии.

Во всех случаях (1-4) используют культуру Ch. vulgaris, находящуюся в конце фазы экспоненциального роста (при концентрации 4-107 кл⋅мл-1), которую предварительно адаптируют в течение нескольких часов к условиям дальнейшего использования (температура, освещенность).

Предложенные цифровые значения есть результат многочисленных экспериментов, проведенных авторами, позволяющих выполнить поставленную задачу максимально эффективно.

Дополнительно к операциям известной технологии культивирования камбалы/калкан проводят:

1) Культивирование микроводоросли Ch. vulgaris в соответствии со стандартными методиками;

2) Подготовку фильтрата культуры Ch. Vulgaris;

3) Инкубацию икры с добавлением Ch. Vulgaris;

4) Культивирование коловраток Brachionus plicatilis в соответствии со стандартными методиками;

5) Добавление фильтрата Ch. vulgaris одновременно с коловратками в среду культивирования личинок;

6) Инкубацию цист артемий с целью получения науплиев с добавлением Ch. vulgaris.

Пример реализации способа

Предлагаемый способ снижения численности бактерий-оппортунистов в средах выращивания личинок морских рыб и их кормов был успешно апробирован при инкубации икры и выращивании личинок черноморского калкана и его основных кормовых организмов (коловраток, артемий) в пилотных установках. Методом проточной цитометрии с предварительной окраской бактерий флуоресцентным ДНК маркером было подтверждено, что в средах инкубации икры, выращивания личинок на стадиях эндо- и экзогенного питания, инкубации артемий A. salina с добавлением клеток и фильтрата Ch. vulgaris численность бактерий была достоверно ниже, чем в контроле. Интенсивность бактериальной колонизации поверхности икры и науплиев артемий также была достоверно ниже таковой в контроле.

Культивирование микроводоросли Ch. vulgaris в соответствии со стандартными методиками.

Микроводоросли Ch. vulgaris были получены из коллекции живых культур морских микроводорослей отдела экологической физиологии водорослей ФГБУН ИМБИ (г. Севастополь). Культуры выращивали в накопительном режиме на среде Уолна при температуре 24±1°C. Освещение осуществляли круглосуточно с помощью люминесцентных ламп LD-40 при интенсивности 5000 люкс. Культуру Ch. vulgaris адаптировали к условиям дальнейшего использования в течение суток. Численность клеток в исходной культуре хлореллы, использованной на разных этапах культивирования, составляла 2⋅107-107 кл⋅мл-1.

Подготовка фильтрата культуры Ch. vulgaris

Фильтрат готовили из культуры микроводоросли Ch. Vulgaris, находящейся в экспоненциальной фазе роста, с помощью 47-мм нитроцеллюлозных мембран (диаметр пор 0,2 мкм) и фильтровального оборудования Sartorius (Германия). Численность клеток в исходной культуре хлореллы, из которой готовили фильтрат, составляла ≈107 кл⋅мл-1. Клетки Ch. vulgaris, отделенные от фильтрата, в дальнейшем использовали при выращивании культур коловраток.

Процедура инкубации икры с добавлением Ch. vulgaris.

Оплодотворенную икру на стадии бластулы промывали подготовленной морской водой и помещали в инкубаторы, куда предварительно добавляли культуру Ch. vulgaris. Плотность икры в инкубаторах составляла ≈1000 экз.⋅л-1, клеток Ch. vulgaris 0,2⋅106 кл⋅мл-1.

Культивирование коловраток В. plicatilis в соответствии со стандартными методиками

Партеногенетический клон коловраток В. plicatilis культивировали в накопительном режиме при постоянном освещении и температуре 24±1°C, используя подготовленную морскую воду (фильтрация через картриджные фильтры 10, 5, 1 мкм, обработка ультрафиолетом, пастеризация).

Процедура добавления коловраток и фильтрата Ch. vulgaris в среду культивирования личинок.

Для оптимизации биохимического состава коловраток как кормового организма для личинок рыб их предварительно концентрировали и насыщали соответствующими видами микроводорослей, затем промывали проточной морской водой и помещали в емкости с начинающими экзогенно питаться личинками, в выростную среду которых предварительно был добавлен фильтрат хлореллы. Плотность посадки личинок составляла 40 экз.⋅л-1. Средняя плотность коловраток в выростных емкостях личинок составляла примерно - 5 экз.⋅мл-1. Фильтрат хлореллы добавляли в среду с личинками из расчета 50 мл, концентрация исходной культуры ≈107 кл⋅мл-1.

Процедура получения науплиев из цист артемий с добавлением Ch. vulgaris.

Предварительно декапсулированные цисты артемий помещали в конические сосуды, содержащие стерильную морскую воду, и содержали при температуре 28°C, постоянном освещении 5 тыс. люкс и интенсивном барботаже. Исходная концентрация цист артемий составляла 1 г⋅л-1, концентрация добавленных в инкубационную среду клеток хлореллы 0,4⋅106 кл⋅мл-1. Выклюнувшихся науплиев отделяли от оболочек, после чего концентрировали и промывали стерильной морской водой.

Таким образом, применение микроводоросли Ch. vulgaris по разработанной схеме позволяет сформировать оптимальные микробиологические условия в системе искусственного выращивания рыб и их кормовых организмов. Данный способ обеспечивает снижение численности бактерий-оппортунистов, обеспечивая сбалансированное бактериальное сообщество в средах выращивания организмов, снижение интенсивности бактериальной колонизации их поверхности без применения антибиотиков и, как следствие, повышение качества и выживаемости личинок на ранних стадиях развития.

1. Способ снижения численности бактерий-оппортунистов в средах выращивания личинок морских рыб и их кормов, включающий инкубацию икры в инкубаторах, перенос личинок в выростные бассейны, обеспечение специально подготовленными живыми кормами и обеззараживание среды выращивания, отличающийся тем, что для обеззараживания среды перед помещением икры в инкубатор предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris (концентрация клеток в среде инкубирования ≈ 2⋅105 кл⋅мл-1), а в выростные емкости с личинками на стадии эндогенного питания добавляют культуру Ch. vulgaris из расчета ≈ 4⋅104 кл⋅мл-1, затем на стадии экзогенного питания личинок рыб коловратками в среду добавляют фильтрат хлореллы из расчета 50 мл⋅л-1, концентрация исходной культуры ≈ 107 кл⋅мл-1 среды с личинками, и перед закладкой цист артемии на выклев культуру Ch. vulgaris добавляют в среду культивирования артемий из расчета ≈ 0,4⋅106 кл⋅мл-1.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что используют культуру Ch. vulgaris, находящуюся в конце фазы экспоненциального роста.

3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в инкубаторах икру после добавления культуры Ch. vulgaris выдерживают 1 час без протока, повторяя процедуру ежедневно после чистки дна инкубаторов вплоть до выклева.



 

Похожие патенты:
Способ предусматривает биологическую оценку гидробионта под выбранный гидрообъект, отбор диких производителей пресноводного лосося, получение половых продуктов, оплодотворение и инкубирование икры, выращивание мальков и выращивание смолта.

Способ предусматривает инкубацию икры, выдерживание предличинок и подращивание личинок в минеральной воде, обедненной по дейтерию с концентрацией 4-136 ppm. Молодь также выращивают в обедненной дейтерием воде с концентрацией 4-136 ppm.

Изобретение относится к швартовому оборудованию и может быть использовано для швартовки судов и плавучих конструкций. Узел в швартовочной системе (1) для плавучих конструкций (8), содержащей по меньшей мере один якорный канат (2) и по меньшей мере два других каната (3, 4), проходящих в разных направлениях относительно друг друга и в направлении, отличном от направления по меньшей мере одного якорного каната (2).

Группа изобретений относится к области промышленного разведения рыбы и может быть использована для выращивания товарных видов рыб в установках замкнутого водоснабжения.
Изобретение относится к ихтиологии и рыбоводству и представляет собой способ тестирования физиологического состояния осетровых рыб, включающий исследование сыворотки крови рыб, отличающийся тем, что сыворотку крови исследуют методом краевой дегидратаци в аналитических ячейках и производят морфологический анализ образовавшихся структур в режиме обычной микроскопии при различных увеличениях, при этом дендритные и переходные формы являются показателями нормы гомеостаза, а наличие пластинчатых структур указывает на изменения, происходящие в организме рыб.

Садок (10) для рыбы включает по меньшей мере одну стенку (30), определяющую канал (40), по которому могут перемещаться рыбы. Канал закручивается внутрь и имеет форму направленной внутрь спирали.

Способ предусматривает ежемесячный отбор 15-25 экземпляров моллюсков в исследуемой акватории, внешнее и внутреннее обследование и последующий паразитологический анализ.

Способ включает подключение бассейна для вылова рыбы к отверстию, расположенному в отсеке нахождения рыбы бассейна для рыбы, отведение воды и находящейся в ней рыбы в бассейн для улова, возврат отведенной воды в отсек нахождения рыбы.
Способ включает отбор половозрелых производителей, инъецирование их суспензией гипофиза рыб, отбор половых продуктов, осеменение икры, обесклеивание ее раствором молока при перемешивании пузырьками воздуха.
Изобретение относится к экологии и может быть использовано для неинвазивной прижизненной оценки физиологического состояния рыб по изменению цвета кожных покровов.

Способ включает получение взрослых половозрелых особей из природных условий и выдерживание их в дезинфицирующем растворе. Из яиц от половозрелых копепод в возрасте 11-12 суток формируют маточное стадо акарций при плотности не более 300 экз./л, которых кормят смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1 при аэрации не более 500 мл/мин с освещением сверху, с регулярной подменой свежей дезинфицированной морской воды. Через сутки и в течение последующих 10 суток производят сбор яиц, для чего ежедневно через каждые 12 часов отключают аэрацию и через 30 мин после ее отключения производят слив 0,01 части общего объема морской воды. Яйца акарций собирают на сито, отмывают и дезинфицируют. Затем в течение 24 часов проводят инкубацию яиц акарций до выклева науплиев, из которых выращивают возрастные когорты акарций. Изобретение обеспечивает получение и длительную эксплуатацию массовой искусственной моновидовой популяции акарций. 1 табл., 1 пр.

Устройство включает снабженный крышкой с выпускным патрубком цилиндрический контейнер с расположенным в его нижней части впускным патрубком. Внутреннее пространство контейнера разделено удерживающей решеткой с защитной сеткой на инкубационную пластину-субстрат, накопительную и отстойную камеры. Над накопительной камерой на расстоянии 10-30 мм от удерживающей решетки закреплена пластина-субстрат, в которой по концентрическим окружностям образованы инкубационные канавки для оплодотворенных икринок, рассчитанные на инкубацию 4-7 эмбрионов каждая. На дне каждой канавки выполнена сквозная щель для выхода личинок в накопительную камеру. Над пластиной с оплодотворенной икрой, для исключения выноса икры и личинок, закреплена прижимающая решетка с защитной сеткой. Изобретение обеспечивает повышение эффективности и продуктивности нереста лососей рода Oncorhynchus в естественных условиях. 7 з.п. ф-лы, 4 ил.

Способ предусматривает использование очищенного полисахаридного комплекса микробных клеток Saccharomyces cerevisiae и левамизола. Эти компоненты растворяют в 1%-ном растворе желатины и смешивают с гранулированным комбикормом. Изобретение исключает потерю ингредиентов в водной среде. 3 табл., 2 пр.

Способ предусматривает укоренение и проращивание на берегу водоема наклонно в сторону водоема быстрорастущих деревьев и размещение на поверхности водоема двухъярусных плотов. Верхний ярус плотов имеет светоотражающую поверхность. Суммарная площадь светоотражающих поверхностей плотов не превышает половину площади водной поверхности водоема. Предложена также система для осуществления способа. Изобретение обеспечивает исключение перегрева рыб от солнечного света. 2 н.п. ф-лы, 2 ил.
Способ предусматривает выбор акватории, формирование биотопа, погружение его в водную среду и экспонирование. После этого биотоп обертывают, извлекают в обернутом виде в воздушную среду, снимают обертывающий материал и извлекают населяющих биотоп животных. Изобретение обеспечивает возможность получения живых, неповрежденных образцов криптобентических животных. 1 з.п. ф-лы.

Устройство включает лотки, в каждом из которых установлен моллюск и преобразователь перемещения его свободной створки, который содержит датчик Холла, взаимодействующий с постоянным магнитом, связанным со свободной створкой моллюска. Выходы датчиков Холла подключены к коммутатору, подключенному к преобразователю напряжение - цифра, подключенному к блоку регистрации и управления, который является выходом устройства. Моллюск одной своей створкой жестко закреплен на основании лотка, преобразователь перемещения свободной створки моллюска содержит закрепленный на основании лотка каркас, на котором закреплены под острым углом друг к другу жесткая планка, на конце которой в зоне размещения моллюска закреплен датчик Холла, и выполненная из упругого необрастающего пластика гибкая планка, конец которой опирается на свободную створку моллюска. Напротив датчика Холла на конце планки закреплен постоянный магнит. На жесткой планке в зоне размещения моллюска закреплен светодиод, подключенный к управляемому источнику питания и блоку регистрации и управления. Изобретение обеспечивает повышение чувствительности и точности измерений. 2 ил.
Способ предусматривает добавление хлорита в воду для рыбоводства, имеющую pH в диапазоне от 5,5 до 8,5, в концентрации, составляющей 2,5 - 200 частей на миллион в пересчете на эффективный диоксид хлора. Реакцию осуществляют в течение по меньшей мере 60 минут. Изобретение обеспечивает уничтожение водяной плесени менее токсичным и более безопасным способом, чем при использовании бронопола. 2 табл.

Изобретения относятся к области рыбного хозяйства, а именно к биотехнологии аквакультуры. В способе из естественного водоема-реципиента с минерализацией 30-350 г/л производят забор воды и грунта. Далее транспортируют яйца 30-40% в сухом виде, остальное в увлажненном с грунтом, науплии и взрослых рачков артемии в резервуарах с водой. В резервуары постепенно добавляют воду из водоема-реципиента в количестве 30-50% от общего объема и грунт в количестве 30-50% от общего объема из водоема-реципиента. Заселяют артемию в водоем-реципиент, вселение производится взрослыми рачками 15-25%, науплиями 15-25% и яйцами 50-70%. Причем 60-70% яиц рассыпают по поверхности литоральных участков водоема плотностью 20000-40000 шт./м2, остальную часть яиц засыпают донными отложениями на глубину 2-4 см в прибрежной зоне водоема. В способе из естественного водоема-реципиента производят забор грунта, выбирают размер фракции грунта, в котором отмечается большая всхожесть яиц артемии. Далее грунтом такой фракции наполняют контейнер, в него вносят яйца артемии и контейнер заглубляют на дно естественного водоема-реципиента или устанавливают на берегу и заполняют 20-30% воды из водоема-реципиента и 70-80% из водоема-донора артемии. После выклева науплий и развития рачка артемию выпускают в водоем-реципиент. В способе обустраивают водоем-реципиент площадью 0,01-10 га и заполняют водой на 0,15-2 м. На расстоянии 0,5-1,5 м от водоема-реципиента заглубляют перфорированный контейнер с размером отверстий 0,5-3 мм, который заполняют грунтом, взятым с участков с водоемами, в которых присутствует популяция артемии, в грунт вносится соль в расчете 0,8-1,2 г на 1 кг грунта и яйца артемии. Способы позволяют натурализовать артемию в водоеме, которая акклиматизируется с естественным воспроизводством, т.е. позволяют получать как зародышевые формы артемии и взрослого рачка, так и яйца на всех стадиях жизненного цикла артемии. 3 н. и 9 з.п. ф-лы, 1 ил.

Способ предусматривает пересадку мидий с литорали на установку, состоящую из наплавов (1), последовательно соединенных между собой несущим канатом (2). С наплавов (1) свисают состоящие из линя и дели коллекторы (3), имеющие вид гирлянд (4), с отверстиями (5) для изъятия мидий. Культивирование мидий начинают с июня-июля. Установку с мидиями размещают на расстоянии 30 м от берега моря при глубине более 6 м. В гирлянде находятся пересажанные с литорали мидии размером от 10 мм в возрасте более 1 года с биомассой более 2 кг, выделяющие в процессе жизнедеятельности метаболиты, способствующие образованию обильного спата на коллекторах. Способ позволяет получать тихоокеанскую мидию промыслового размера без инородных примесей. 1 ил.

Устройство включает взаимодействующие между собой посредством водопроводов и информационно-коммутационных каналов блоки выращивания гидробионтов, стабилизационный водяной танк, блок механической фильтрации, блок биологического обогащения воды, денитрификационный биофильтр, нитрификационный биофильтр, канал аэрации, блок ультрафиолетового облучения, бойлер, блок стабилизации рН воды, насос, первый воздушный компрессор, рыбные танки, резервный танк для воды, второй воздушный компрессор, блок подачи свежей воды, блок отвода отработанной воды и осадочных фракций, первый, второй и третий затворы, блок уровневой автоматики, блок слежения и управления параметрами воды, насос откачки осадочных фракций из блока биологического обогащения воды, смеситель, насос блока биологического обогащения воды и насос резервного танка воды. Изобретение обеспечивает повышение уровня посадки товарных пород рыб. 4 ил., 6 табл.

Перед помещением икры в инкубатор предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris. В выростные емкости с личинками на стадии эндогенного питания также добавляют культуру хлореллы. На стадии экзогенного питания личинок рыб коловратками в среду добавляют фильтрат хлореллы. Перед закладкой цист артемий на выклев культуру хлореллы добавляют в среду культивирования. Изобретение обеспечивает оптимальные микробиологические условия в системе искусственного выращивания рыб и их кормовых организмов без применения антибиотиков. 2 з.п. ф-лы, 1 табл., 1 пр.

Наверх