Способ интенсивного когортного культивирования акарций (морских каланоидных копепод)

Способ включает получение взрослых половозрелых особей из природных условий и выдерживание их в дезинфицирующем растворе. Из яиц от половозрелых копепод в возрасте 11-12 суток формируют маточное стадо акарций при плотности не более 300 экз./л, которых кормят смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1 при аэрации не более 500 мл/мин с освещением сверху, с регулярной подменой свежей дезинфицированной морской воды. Через сутки и в течение последующих 10 суток производят сбор яиц, для чего ежедневно через каждые 12 часов отключают аэрацию и через 30 мин после ее отключения производят слив 0,01 части общего объема морской воды. Яйца акарций собирают на сито, отмывают и дезинфицируют. Затем в течение 24 часов проводят инкубацию яиц акарций до выклева науплиев, из которых выращивают возрастные когорты акарций. Изобретение обеспечивает получение и длительную эксплуатацию массовой искусственной моновидовой популяции акарций. 1 табл., 1 пр.

 

Изобретение относится к области морской аквакультуры и предназначено для получения кормовых организмов и может быть использовано при культивировании ценных морских рыб и ракообразных на ранних стадиях развития, а также для проведения экспериментальных работ по морской биологии, планктонологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской токсикологии.

Характерной чертой многих морских рыб и особенно ценных видов камбалообразных является облигатное для ранних стадий развития личинок питание живыми кормами. Копеподы являются первыми кормовыми организмами личинок рыб в естественных условиях.

В отличие от кормовых организмов коловраток и артемий, стандартно применяемых в интенсивной ларвикультуре рыб, морские каланоидные копеподы обеспечивают нормальное развитие личинок морских рыб, так как их химический состав адекватен потребностям личинок по соотношению незаменимых компонентов: жирных кислот, каротиноидов, аминокислот и др. Но получение копепод путем отлова естественного планктона нецелесообразно из-за сезонной вариабельности и зависимости от погодных условий. Кроме того, при искусственном выращивании личинок рыб включение в их рацион копепод, отловленных из естественной среды, может стать причиной заражения рыб нежелательными инфекционными заболеваниями. Для разработки технологии выращивания в искусственных условиях высококачественной молоди морских рыб с характеристиками, близкими к «дикому» типу, необходима разработка высокоэффективной технологии культивирования копепод, являющихся единственно адекватными кормовыми организмами, обеспечивающими правильное скелетооборазование, пигментацию, развитие пищеварительной и иммунной систем личинок морских рыб.

Известен способ культивирования веслоногих ракообразных (веслоногие ракообразные синоним - копепод) (Пат. 34843, МПК А01К 61/00, Украина). Способ предусматривает внесение кварцевого песка, неорганических и органических удобрений в пруды или цементные бассейны, которые стимулируют спонтанное последовательное развитие бактериопланктона, фитопланктона, простейших и зоопланктона, в состав которого входят веслоногие ракообразные (копеподы) разных видов и который позволяет начинать получать продукцию копепод через 50 сут после инокуляции их в выростные объемы. Основными недостатками этого метода является необходимость использования больших прудов для выращивания (минимум 750 м3), многокомпонентность пищевой цепи, включающая слаборегулируемое наращивание сначала бактериально-инфузорного комплекса, затем фитопланктона, затем зоопланктонного комплекса (без конкретизации видового состава каждого из вышеперечисленных уровней пищевой цепи) и, как результат, слабая регуляция выхода продукции веслоногих ракообразных в смеси разновидовых беспозвоночных.

Известен способ культивирования каланоидных копепод Arctodiaptomus salinus (Daday) (Пат. 81055, МПК А01К 61/00, Украина). Недостатки способа заключаются в том, что данный вид копепод вынашивает яйца в яйцевых мешках, а не выметывает их в воду (как акарции), что усложняет возможность сбора яиц и их инкубацию в отдельных емкостях, а также долговременный период генерации, удлиняющий сроки производства живого корма данного вида.

Известен способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) - вида наиболее крупных каланоидных копепод низкотемпературного глубоководного комплекса Черного моря (Пат.79254, МПК А01К 61/00, Украина), который включает выделение диких самок калянуса из зоопланктонных ловов, содержание их в условиях культивирования и получение от них в течение нескольких месяцев яиц и последовательное получение синхронных возрастных когорт науплиев и копеподитов. Основными недостатками этого способа является то, что он базируется на регулярном получении производителей (самок копепод рода калянус) из моря, т.е. зависит от сезонных и погодных факторов; и то, что он предназначен для культивирования крупных копепод глубоководного морского комплекса, имеющих термопреферендум в области низких температур (≤15°С) и, соответственно, замедленные темпы развития от науплиальных до копеподитных стадий (около 30 сут), что затрудняет быстрое получение массового количества необходимых стадий копепод.

Задачей «Способа интенсивного когортного культивирования каланоидных копепод (веслоногих ракообразных) рода акарции» является разработка технологии, обеспечивающей получение массовой искусственной моновидовой популяции акарций в короткие временные сроки и ее длительную эксплуатацию в течение множественных (более 100) поколений, регулярное (ежедневное) получение определенной продукции яиц, ежедневное получение из них науплиев и выращивание стандартизованной продукции размерно-возрастных категорий (когортных групп) акарций за определенные временные сроки.

Поставленная задача достигается тем, что молодых самок и самцов акарций, отловленных из естественной зоопланктонной пробы, выдерживают в дезинфекционном растворе, адаптируя к температуре культивирования в течение 6-7 часов с добавлением культивируемого корма, после чего осуществляют их подготовку для синхронного получения массы яиц, которые отмывают в дезинфекционном растворе и затем инкубируют в течение 24 часов, получая одновозрастных науплиев, которые в дальнейшем культивируют, получая синхронные возрастные когорты акарций, которые в зависимости от размера (возраста) используются для кормления личинок рыб на разных стадиях их развития.

Для выполнения поставленной задачи из первого поколения копепод, полученного от самок, отловленных из природной популяции, в возрасте 11-12 суток (при соотношении самцов к самкам не менее 1:4), формируют маточное стадо акарций при плотности не более 300 экз./л, ежесуточно получают яйца. Акарций кормят смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1 при аэрации не более 500 мл/мин с освещением сверху (в режиме 12:12 день/ночь) и подачей свежей дезинфицированной морской воды. Через сутки и в течение последующих 10 сут производят сбор яиц, для чего ежедневно через каждые 12 часов отключают аэрацию и через 30 мин после ее отключения производят слив не менее 0.01 части общего объема морской воды. Яйца акарций собирают на сито, затем в течение 24 часов проводят инкубацию яиц акарций до выклева науплиев, из которых выращивают возрастные когорты акарций в течение 11-12 сут.

Ежедневное продуцирование яиц акарциями достигается оптимальными условиями содержания половозрелых самок и самцов при оптимальном соотношении полов и в наиболее производительном возрасте. Регулярный ежесуточный сбор продуцируемых яиц и дальнейшее выращивание последовательных жизненных стадий от синхронного выклева науплиев обеспечивает регулярное и заранее рассчитанное получение массы когорты акарций определенного размера и количества.

Заявляемый способ соответствует критериям «новизна» и «технический уровень», т.к.:

- впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования яиц самками акарций, развития и выклева яиц, развития и роста молоди акарций до достижения половозрелой стадии;

- проведение дезинфекции яиц позволяет освободиться от патогенных микроорганизмов, влияющих как на выживаемость самих акарций, так и при использовании их в качестве живых кормов, на выживаемость личинок рыб;

- при данном способе культивирования акарций не происходит каннибализм старших копеподитных и взрослых стадий на младших науплиальных стадиях (т.е. не происходит потери части популяции);

- предлагаемый способ когортных культур удобно применять для кормления личинок, т.к. нет необходимости многократного слива культуры акарций и разделения ее на стадии с помощью сит с разным размером ячеи, достаточно просто сконцентрировать на сито определенного размера заранее рассчитанный объем культуры определенного возраста;

- предлагаемый способ позволяет заранее осуществлять предварительную оценку количества и качества получаемых кормовых организмов;

- предлагаемый способ позволяет получать полноценные кормовые организмы (вместо коловраток - науплии акарций, вместо артемий - копеподитные стадии акарций);

- в отличие от используемых в интенсивной ларвикультуре коловраток, получаемые предложенным способом кормовые организмы не создают избыточных концентраций пищи в выростных системах, не создают избыточных метаболитов, приводящих к повышению бактериального титра, не образуют поверхностной бактериальной пленки, препятствующей развитию личинок;

- получаемые кормовые организмы обеспечивают личинок морских рыб адекватным их потребностям незаменимыми компонентами (ненасыщенными жирными кислотами, аминокислотами и высокоэффективными каротиноидами с большой долей астаксантина); обеспечивают полноценное переваривание пищи в результате высокого содержания в копеподах экзоферментов и, как следствие, более раннее развитие у рыб полноценной пищеварительной системы взрослого типа; повышают резистентность к стрессу; снижают до минимума аномалии скелетообразования и пигментации; обеспечивают правильный метаморфоз.

В течение жизненного цикла акарций проходят 6 науплиальных (личиночных, обозначаемых N1-N6), 5 - копеподитных стадий (C1-С5) и одну, последнюю, 12-ю жизненную стадию - половозрелые акарции (самка или самец, обозначаемую или ). Переход от одной стадии к другой осуществляется в результате морфологических и физиологических изменений, нарастания массы и размеров тела и смены покровов (линьки). После перехода (линьки) в стадию С6, акарций достигают терминальных размеров тела, и линек больше не происходит. В дальнейшем может происходить только прирост биомассы акарций, например, за счет отложения запасных веществ и формирования генеративной продукции (яиц). Сроки достижения (прохождения очередной линьки) каждой последующей стадии акарций обусловлены эндогенными (запрограммированными генетически) механизмами процессов и зависят от комплекса модифицирующих их температурных и трофических условий содержания организмов.

Способ реализуется следующим образом.

1) Выделение в культуру взрослых акарций (самцов и самок) (полученных из продезинфицированных яиц от самок из естественного планктона).

2) Содержание акарций в культуре при оптимальных температурных, трофических и гидрологических условиях в течение наиболее продуктивного периода и замена по истечении его новым поколением половозрелых копепод.

3) Процедура получения (и сбора) ежедневной стандартизованной продукции яиц акарций.

4) Инкубация яиц акарций до выклева науплиев.

5) Выращивание возрастных когорт акарций.

6) Сбор биомассы акарций определенной возрастной когорты для кормления личинок рыб определенного возраста.

Пример реализации способа

Предлагаемый способ интенсивного когортного культивирования акарций (морских каланоидных копепод) был успешно апробирован для кормления личинок камбалы калкан при выращивании их в пилотных установках ИМБИ, и мальки камбалы калкан, выращенные при применении данных копепод в качестве дополнительных кормов, не имели проблем с аномалиями пигментации и скелетообразования, которые обычно наблюдаются при кормлении личинок только солоноватоводными коловратками и артемиями.

Выделение в культуру взрослых акарций

Живых половозрелых самок и самцов Acartia clausi (или Acartia tonsa) селекционировали из проб, собранных в прибрежных водах Севастопольской бухты Черного моря, выдерживали в дезинфекционном растворе, промывали стерилизованной морской водой и помещали в выростной бассейн, в который добавляли стерилизованную морскую воду с кормовыми микроводорослями, собранными из массовых культур в экспоненциальной фазе, и количество которых корректировали в соответствии с со скоростью их выедания копеподами. Отложенные самками акарций яйца служили «маточным стадом» акарций, которые в дальнейшем служили для получения массовой культуры когортных возрастных групп акарций.

Содержание акарций в культуре и регулярное кормление

Для культивирования акарций применяли морскую воду соленостью 17.5±0.5‰, к которой добавляли микроводоросли, служащие кормом копеподам. Оптимальная температура культивирования Acartia clausi - 21±1°С (но возможно культивирование в температурном диапазоне 15-24°С), оптимум Acartia tonsa 24±2°С (возможно содержание в температурном диапазоне 15-28°С). Постоянный уровень освещенности - 1000-3000 люкс на поверхности воды в инкубаторе, нижняя часть которого затемнена.

Плотность половозрелых акарций в цикле продуцирования яиц поддерживали в пределах не более 300 экз./л, а ежедневная подмена воды составляла не менее 1% общего объема среды. После чистки дна культиватора добавляли свежую стерильную морскую воду с одновременным добавлением свежих культур микроводорослей в экспоненциальной фазе развития.

Половозрелых копепод для оптимизации ежедневного продуцирования качественных яиц кормили смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1. Искусственно выращенные микроводоросли используют в конце экспоненциальной фазы роста их культуры.

«Маточное стадо» акарций, состоявшее из половозрелых копепод в возрасте 11-12 суток (смесь самцов и самок в соотношении не менее 1: 4) при плотности не более 300 экз./л, помещали в емкость, снабженную мягкой продувкой воздухом (не более 500 мл/мин) с освещением сверху (в режиме 12:12 день:ночь) и подачей свежей воды.

Процедура получения ежедневной продукции (ежедневного сбора) яиц акарций

В процессе продукционного цикла ежедневно, лучше через каждые 12 часов, но не реже 1 раза в 24 часа, начиная с 8-9 часов утра, отключали аэрацию и через 30 мин после ее отключения путем резкого поворота сливного крана производили резкий слив 1% общего объема морской воды, который отфильтровали через газовое сито с ячеей 60 мкм. В результате позитивного фототаксиса взрослые акарции перемещались в верхний наиболее хорошо освещаемый слой воды, яйца акарций из-за высокой удельной плотности опускались вниз и, таким образом, при резком сливе нижней части объема на сите концентрировался преимущественно детрит и яйца акарций, свободные и прикрепленные к детритным частицам.

Суточная продукция яиц на взрослую особь (общее количество самцов и самок) в популяции акарций (при соотношении самка:самец около 4:1 в период в период наиболее активного репродуктивного периода самок, т.е. около 10-15 суток после начала репродукции) составляла в среднем 25±4 в сутки при питании смесью монокультур микроводорослей при концентрации их биомассы 3 мг⋅л-1. Лаг-фаза между началом питания копепод и началом продуцирования яиц самками акарций составляла не более 24 часов. Время оптимальной эксплуатации маточного стада акарций (от момента получения первых яиц), т.е. период максимальной плодовитости самок, составлял от 14 до 30 сут в зависимости от вариаций температурного режима.

При содержании взрослых акарций в 1 м3 при максимально возможной физиологически плотности акарций 300 экз./л, оптимальном кормлении и гидрологическом режиме и среднепопуляционной продукции яиц в сутки (при соотношении самцов к самкам не менее 1:4) 25 яиц, общая суточная продукция яиц акарций составляла около 7 млн.

Инкубация яиц акарций до выклева науплиев стадии N1.

Свежесобранные яйца копепод тщательно промывали дезинфекционным раствором, который затем смывали стерильной морской водой и подготавливали яйца для инокуляции в инкубационный бассейн со стерильной водой 18‰, в котором устанавливали на первые 12 час интенсивную аэрацию, создающую концентрацию кислорода не менее 85% насыщения и поддерживающую яйца акарций в толще воды. Над поверхностью поддерживали круглосуточное освещение, а температура воды составляла 20-22°С. В условиях оптимального содержания взрослых акарций, продуцировавших яйца, процент выклева жизнеспособных науплиев из свежеотложенных яиц составлял 94-100%. Через 24 часа после начала инкубации из 7 млн свежеотложенных яиц акарций получали выклев не менее 6.5 млн качественных науплиев стадии N1.

Выращивание возрастных когорт акарций

Науплии стадии N1 продолжали культивировать в том же объеме (для исходного количества - 6.5 млн науплиев стадии N1 необходимо их размещение в минимум 0.65 м3 стерильной воды). Дальнейшее разбавление культуры производили путем добавления необходимого объема свежей стерильной морской воды (для снижения плотности копепод более старшего возраста) с одновременным добавлением необходимой концентрации смеси микроводорослей, состав которых изменяли по мере перехода копепод от одной жизненной стадии к другой. В результате предлагаемого интенсивного способа культивирования акарций получали следующие возрастные группы (когорты) акарций через определенные временные промежутки (табл. 1).

Микроводоросли, используемые для кормления копепод, необходимо корректировать как в количественном, так и в качественном (таксономический состав) соотношении в зависимости от стадии развития. Размер микроводорослей, которыми наиболее эффективно питаются (отфильтровывают) копеподы, находится в прямой пропорциональной зависимости от размера возрастной стадии копепод. Оптимальный размер и максимально возможный размер пищевых организмов, которые могут эффективно отфильтровывать и поглощать разные стадии акарций, возрастает от 7 мкм (10-14 мкм максимальный) для науплиальных стадий NII-NIII и до 14-70 мкм для взрослых стадий акарций (Bergreen et al., 1988).

При кормлении науплиальных стадий в кормовой смеси преобладали Isochrysis galbana и Rhodomonas baltica (1:1); при кормлении копепод на переходе от науплиальных к копеподитным - долю Isochrysis galbana снижали и добавляли Prorocentrum minimum, на поздних копеподитных стадиях постепенно увеличивая долю последнего вида микроводорослей в смеси Rhodomonas baltica и Prorocentrum minimum до соотношения концентрации клеток 1:1.

При оптимальных условиях содержания выживаемость копепод от науплиальных стадий до достижения половозрелости составляет 75-95%, а минимальное время генерации - 10±1 суток.

Через 11 сут после посадки на выращивание 6.5 млн науплиев при условии соблюдения оптимальных условий (концентрация кислорода не менее 85% насыщения, 20-22°С, и снижении плотности акарций по мере их роста и развития, от 5000 экз⋅л-1 на стадии N2 до 300 экз⋅л-1 на стадии поздних копеподитов (С5), ежедневная частичная подмена чистой воды и поддержание концентрации вышеперечисленных кормовых микроводорослей 3 мкг⋅мл-1) количество взрослых акарций составит не менее 4.5 млн.

По истечении продукционного цикла яиц акарций (оптимум 15 суток при температуре 20-22°С) культиватор сливают, дезинфицируют, промывают и готовят к новому продукционному циклу. Когорта половозрелых акарций (в возрасте 11-12 сут) может быть использована для дальнейшей эскалации культуры акарций (для производства яиц).

Таким образом, смена циклов производства акарций происходит приблизительно за период достижения когортой акарций половозрелости.

Способ интенсивного когортного культивирования акарций (морских каланоидных копепод), включающий получение взрослых половозрелых особей из природных условий, их выдерживание в дезинфицирующем растворе, отличающийся тем, что из яиц от половозрелых копепод, в возрасте 11-12 суток (смесь самцов и самок в соотношении не менее 1:4), формируют маточное стадо акарций при плотности не более 300 экз./л, которых кормят смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1 при аэрации не более 500 мл/мин с освещением сверху (в режиме 12:12 день/ночь), с регулярной подменой свежей дезинфицированной морской воды, а через сутки и в течение последующих 10 суток производят сбор яиц, для чего ежедневно через каждые 12 часов отключают аэрацию и через 30 мин после ее отключения производят слив 0.01 части общего объема морской воды, собирая яйца акарций на сито, отмывая и дезинфицируя их, и затем в течение 24 часов проводят инкубацию яиц акарций до выклева науплиев, из которых выращивают возрастные когорты акарций.



 

Похожие патенты:

Перед помещением икры в инкубатор предварительно инокулируют культуру микроводоросли Chlorella vulgaris. В выростные емкости с личинками на стадии эндогенного питания также добавляют культуру хлореллы.
Способ предусматривает биологическую оценку гидробионта под выбранный гидрообъект, отбор диких производителей пресноводного лосося, получение половых продуктов, оплодотворение и инкубирование икры, выращивание мальков и выращивание смолта.

Способ предусматривает инкубацию икры, выдерживание предличинок и подращивание личинок в минеральной воде, обедненной по дейтерию с концентрацией 4-136 ppm. Молодь также выращивают в обедненной дейтерием воде с концентрацией 4-136 ppm.

Изобретение относится к швартовому оборудованию и может быть использовано для швартовки судов и плавучих конструкций. Узел в швартовочной системе (1) для плавучих конструкций (8), содержащей по меньшей мере один якорный канат (2) и по меньшей мере два других каната (3, 4), проходящих в разных направлениях относительно друг друга и в направлении, отличном от направления по меньшей мере одного якорного каната (2).

Группа изобретений относится к области промышленного разведения рыбы и может быть использована для выращивания товарных видов рыб в установках замкнутого водоснабжения.
Изобретение относится к ихтиологии и рыбоводству и представляет собой способ тестирования физиологического состояния осетровых рыб, включающий исследование сыворотки крови рыб, отличающийся тем, что сыворотку крови исследуют методом краевой дегидратаци в аналитических ячейках и производят морфологический анализ образовавшихся структур в режиме обычной микроскопии при различных увеличениях, при этом дендритные и переходные формы являются показателями нормы гомеостаза, а наличие пластинчатых структур указывает на изменения, происходящие в организме рыб.

Садок (10) для рыбы включает по меньшей мере одну стенку (30), определяющую канал (40), по которому могут перемещаться рыбы. Канал закручивается внутрь и имеет форму направленной внутрь спирали.

Способ предусматривает ежемесячный отбор 15-25 экземпляров моллюсков в исследуемой акватории, внешнее и внутреннее обследование и последующий паразитологический анализ.

Способ включает подключение бассейна для вылова рыбы к отверстию, расположенному в отсеке нахождения рыбы бассейна для рыбы, отведение воды и находящейся в ней рыбы в бассейн для улова, возврат отведенной воды в отсек нахождения рыбы.
Способ включает отбор половозрелых производителей, инъецирование их суспензией гипофиза рыб, отбор половых продуктов, осеменение икры, обесклеивание ее раствором молока при перемешивании пузырьками воздуха.

Устройство включает снабженный крышкой с выпускным патрубком цилиндрический контейнер с расположенным в его нижней части впускным патрубком. Внутреннее пространство контейнера разделено удерживающей решеткой с защитной сеткой на инкубационную пластину-субстрат, накопительную и отстойную камеры. Над накопительной камерой на расстоянии 10-30 мм от удерживающей решетки закреплена пластина-субстрат, в которой по концентрическим окружностям образованы инкубационные канавки для оплодотворенных икринок, рассчитанные на инкубацию 4-7 эмбрионов каждая. На дне каждой канавки выполнена сквозная щель для выхода личинок в накопительную камеру. Над пластиной с оплодотворенной икрой, для исключения выноса икры и личинок, закреплена прижимающая решетка с защитной сеткой. Изобретение обеспечивает повышение эффективности и продуктивности нереста лососей рода Oncorhynchus в естественных условиях. 7 з.п. ф-лы, 4 ил.

Способ предусматривает использование очищенного полисахаридного комплекса микробных клеток Saccharomyces cerevisiae и левамизола. Эти компоненты растворяют в 1%-ном растворе желатины и смешивают с гранулированным комбикормом. Изобретение исключает потерю ингредиентов в водной среде. 3 табл., 2 пр.

Способ предусматривает укоренение и проращивание на берегу водоема наклонно в сторону водоема быстрорастущих деревьев и размещение на поверхности водоема двухъярусных плотов. Верхний ярус плотов имеет светоотражающую поверхность. Суммарная площадь светоотражающих поверхностей плотов не превышает половину площади водной поверхности водоема. Предложена также система для осуществления способа. Изобретение обеспечивает исключение перегрева рыб от солнечного света. 2 н.п. ф-лы, 2 ил.
Способ предусматривает выбор акватории, формирование биотопа, погружение его в водную среду и экспонирование. После этого биотоп обертывают, извлекают в обернутом виде в воздушную среду, снимают обертывающий материал и извлекают населяющих биотоп животных. Изобретение обеспечивает возможность получения живых, неповрежденных образцов криптобентических животных. 1 з.п. ф-лы.

Устройство включает лотки, в каждом из которых установлен моллюск и преобразователь перемещения его свободной створки, который содержит датчик Холла, взаимодействующий с постоянным магнитом, связанным со свободной створкой моллюска. Выходы датчиков Холла подключены к коммутатору, подключенному к преобразователю напряжение - цифра, подключенному к блоку регистрации и управления, который является выходом устройства. Моллюск одной своей створкой жестко закреплен на основании лотка, преобразователь перемещения свободной створки моллюска содержит закрепленный на основании лотка каркас, на котором закреплены под острым углом друг к другу жесткая планка, на конце которой в зоне размещения моллюска закреплен датчик Холла, и выполненная из упругого необрастающего пластика гибкая планка, конец которой опирается на свободную створку моллюска. Напротив датчика Холла на конце планки закреплен постоянный магнит. На жесткой планке в зоне размещения моллюска закреплен светодиод, подключенный к управляемому источнику питания и блоку регистрации и управления. Изобретение обеспечивает повышение чувствительности и точности измерений. 2 ил.
Способ предусматривает добавление хлорита в воду для рыбоводства, имеющую pH в диапазоне от 5,5 до 8,5, в концентрации, составляющей 2,5 - 200 частей на миллион в пересчете на эффективный диоксид хлора. Реакцию осуществляют в течение по меньшей мере 60 минут. Изобретение обеспечивает уничтожение водяной плесени менее токсичным и более безопасным способом, чем при использовании бронопола. 2 табл.

Изобретения относятся к области рыбного хозяйства, а именно к биотехнологии аквакультуры. В способе из естественного водоема-реципиента с минерализацией 30-350 г/л производят забор воды и грунта. Далее транспортируют яйца 30-40% в сухом виде, остальное в увлажненном с грунтом, науплии и взрослых рачков артемии в резервуарах с водой. В резервуары постепенно добавляют воду из водоема-реципиента в количестве 30-50% от общего объема и грунт в количестве 30-50% от общего объема из водоема-реципиента. Заселяют артемию в водоем-реципиент, вселение производится взрослыми рачками 15-25%, науплиями 15-25% и яйцами 50-70%. Причем 60-70% яиц рассыпают по поверхности литоральных участков водоема плотностью 20000-40000 шт./м2, остальную часть яиц засыпают донными отложениями на глубину 2-4 см в прибрежной зоне водоема. В способе из естественного водоема-реципиента производят забор грунта, выбирают размер фракции грунта, в котором отмечается большая всхожесть яиц артемии. Далее грунтом такой фракции наполняют контейнер, в него вносят яйца артемии и контейнер заглубляют на дно естественного водоема-реципиента или устанавливают на берегу и заполняют 20-30% воды из водоема-реципиента и 70-80% из водоема-донора артемии. После выклева науплий и развития рачка артемию выпускают в водоем-реципиент. В способе обустраивают водоем-реципиент площадью 0,01-10 га и заполняют водой на 0,15-2 м. На расстоянии 0,5-1,5 м от водоема-реципиента заглубляют перфорированный контейнер с размером отверстий 0,5-3 мм, который заполняют грунтом, взятым с участков с водоемами, в которых присутствует популяция артемии, в грунт вносится соль в расчете 0,8-1,2 г на 1 кг грунта и яйца артемии. Способы позволяют натурализовать артемию в водоеме, которая акклиматизируется с естественным воспроизводством, т.е. позволяют получать как зародышевые формы артемии и взрослого рачка, так и яйца на всех стадиях жизненного цикла артемии. 3 н. и 9 з.п. ф-лы, 1 ил.

Способ предусматривает пересадку мидий с литорали на установку, состоящую из наплавов (1), последовательно соединенных между собой несущим канатом (2). С наплавов (1) свисают состоящие из линя и дели коллекторы (3), имеющие вид гирлянд (4), с отверстиями (5) для изъятия мидий. Культивирование мидий начинают с июня-июля. Установку с мидиями размещают на расстоянии 30 м от берега моря при глубине более 6 м. В гирлянде находятся пересажанные с литорали мидии размером от 10 мм в возрасте более 1 года с биомассой более 2 кг, выделяющие в процессе жизнедеятельности метаболиты, способствующие образованию обильного спата на коллекторах. Способ позволяет получать тихоокеанскую мидию промыслового размера без инородных примесей. 1 ил.

Устройство включает взаимодействующие между собой посредством водопроводов и информационно-коммутационных каналов блоки выращивания гидробионтов, стабилизационный водяной танк, блок механической фильтрации, блок биологического обогащения воды, денитрификационный биофильтр, нитрификационный биофильтр, канал аэрации, блок ультрафиолетового облучения, бойлер, блок стабилизации рН воды, насос, первый воздушный компрессор, рыбные танки, резервный танк для воды, второй воздушный компрессор, блок подачи свежей воды, блок отвода отработанной воды и осадочных фракций, первый, второй и третий затворы, блок уровневой автоматики, блок слежения и управления параметрами воды, насос откачки осадочных фракций из блока биологического обогащения воды, смеситель, насос блока биологического обогащения воды и насос резервного танка воды. Изобретение обеспечивает повышение уровня посадки товарных пород рыб. 4 ил., 6 табл.
Способ включает установку в водоемах множества переносных модулей-нерестовиков с искусственными ложегнездами, оборудованными частотно-звуковыми генераторами. Генераторы настроены на воспроизведение звуков отдельных видов рыб для привлечения маточных особей к икрометанию на искусственные ложегнезда посредством частотно-звуковой модуляции, воспроизводящей звуки, издаваемые в момент икрометания самцами или самками. Одновременно с частотно-звуковой модуляцией осуществляют импульсно-световую модуляцию. Изобретение обеспечивает сбор отметанной икры ценных пород рыб в промышленных масштабах.

Способ включает получение взрослых половозрелых особей из природных условий и выдерживание их в дезинфицирующем растворе. Из яиц от половозрелых копепод в возрасте 11-12 суток формируют маточное стадо акарций при плотности не более 300 экз.л, которых кормят смесью микроводорослей Isochrysis galbana, Rhodomonas baltica, Prorocentrum minimum в объемном соотношении культур 1:1:1 при аэрации не более 500 млмин с освещением сверху, с регулярной подменой свежей дезинфицированной морской воды. Через сутки и в течение последующих 10 суток производят сбор яиц, для чего ежедневно через каждые 12 часов отключают аэрацию и через 30 мин после ее отключения производят слив 0,01 части общего объема морской воды. Яйца акарций собирают на сито, отмывают и дезинфицируют. Затем в течение 24 часов проводят инкубацию яиц акарций до выклева науплиев, из которых выращивают возрастные когорты акарций. Изобретение обеспечивает получение и длительную эксплуатацию массовой искусственной моновидовой популяции акарций. 1 табл., 1 пр.

Наверх