Состав и способ получения реагента для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-d-глюкозы

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к составу реагента для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-D-глюкозы и к способу получения этого реагента. Реагент для радионуклидной диагностики представляет собой лиофилизат водного раствора, содержащий следующие компоненты в 1 мл раствора: 1-тио-D-глюкозы в количестве 2,5 мг, олова (II) хлорида дигидрата в количестве 0,175 мг, аскорбиновой кислоты в количестве 0,5 мг. Способ получения реагента для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-D-глюкозы включает приготовление реакционной смеси, состоящей из производной глюкозы, олова (II) хлорида дигидрата, аскорбиновой кислоты в 1 мл водного раствора, фильтрующую стерилизацию полученного раствора, последующую лиофилизацию и герметизацию реагента во флаконе, при этом лиофилизацию смеси проводят без предварительного замораживания в жидком азоте. Изобретение обеспечивает получение более радиохимически чистого радиофармпрепарата ^99mTc-1-тио-D-глюкозы, имеющего более простой состав и упрощенный способа его изготовления. 2 н.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл., 2 пр.

 

Изобретение относится к медицине, в частности к разработке составов и способов получения радиоактивных диагностических препаратов, которые могут быть использованы для гамма-сцинтиграфических исследований в онкологии.

В существующей мировой практике наиболее перспективными радиофармпрепаратами (РФП) для ранней диагностики злокачественных новообразований являются меченные радиоактивными изотопами производные глюкозы. Это связано с тем, что в клетках опухоли отмечается повышенный уровень метаболизма глюкозы по сравнению с нормальными клетками. Поэтому при введении в организм меченой глюкозы в этих клетках наблюдается увеличенное количество радиоактивного маркера, что позволяет получать информацию о местоположении и размерах опухоли за счет высокого соотношения концентраций изотопа «опухоль/фон».

В настоящее время в России и за рубежом для диагностики опухолей и оценки эффективности противоопухолевой терапии применяется, главным образом, метод позитрон-эмиссионной томографии (ПЭТ) с РФП 2-фтор-2-дезокси-D-глюкоза (¹⁸F-ФДГ), содержащий позитрон-излучающий радионуклид фтор-18 [Baum R.P., Schmuecking М., Bonnet R. et all. F-18 FDG PET for metabolic 3D-radiation treatment planning of non-small cell lung cancer. // Eur. J. Nucl. Med. and Mol. Imag. - 2002. Vol. 43. - P. 96-99]. Несмотря на высокую диагностическую информативность метода ПЭТ, его широкое применение в России ограничено из-за высокой стоимости, а также малой распространенности ПЭТ-центров. Так стоимость одного обследования с ¹⁸F-ФДГ (в зависимости от исследуемой области) колеблется от 20 тыс. рублей и более, а ориентировочная стоимость строительства ПЭТ-центра составляет около 1 миллиарда рублей. В данное время в России реально функционируют около 15 центров позитронно-эмиссионной томографии, половина которых расположены в Москве и Санкт-Петербурге.

Вместе с тем, в стране существует более 250 центров, оснащенных гамма-камерами для проведения однофотонной эмиссионной компьютерной томографии (ОФЭКТ), где диагностика чаще всего осуществляется с использованием РФП на основе наиболее доступного для медицины радионуклида короткоживущего (T_1/2=6,02 ч) технеция-99 м (^99mTc). Как правило, технециевые РФП изготавливаются в виде стандартных наборов реагентов (лиофилизатов) к генератору технеция-99 м, которые представляют собой смеси, приготовленные методом сублимационной сушки при низких температурах [Лыков А.В. Сублимационная сушка // В кн.: Теория сушки. - М., Энергия. - 1968. - С. 334-362]. При их смешивании с элюатом технеция-99м (раствор натрия пертехнетата, ^99mТс), выделенного из генератора, получается готовый РФП с заданными свойствами. Срок годности лиофилизатов обычно составляет 1 год.

Разработка для ОФЭКТ в качестве диагностического средства лиофилизатов для приготовления меченых ^99mTc тех или иных производных глюкозы позволила бы во много раз увеличить количество исследований в онкологии и значительно снизить потери трудоспособного населения от социально значимых заболеваний. Однако до настоящего времени такие препараты до практического применения в России и в мире не доведены.

Основные проблемы, с которыми сталкиваются исследователи при получении меченных ^99mTc производных глюкозы, связаны с химическими свойствами этого радионуклида. В отличие от РФП на основе таких изотопов, как ¹²³I и ¹⁸F, которые могут быть получены в результате простых реакций нуклеофильного (изотопного) замещения стабильных изотопов йода или фтора в структуре лиганда, РФП с ^99mTc обычно получают только через координационную связь с определенным лигандом, что является гораздо более трудным. Тем более, что глюкоза имеет в молекуле только кислород и атомы углерода, и здесь сложно сформировать устойчивую координационную связь с ^99mTc. Решением указанной проблемы является введение в молекулы производных глюкозы азота или серы, так как ^99mTc в степени окисления +4, +5 может образовывать стабильную координационную связь с этими атомами. Как известно, ^99mTc, выделяемый из генератора в виде пертехнетат-ионов ^99mTcO^4-, имеет степень окисления +7. Поэтому для образования координационных связей с производными глюкозы, содержащими в молекуле атом азота или серы, необходимо снизить валентность ^99mTc, например, с помощью восстанавливающего агента - олова (II) хлорида дигидрата (SnCl₂⋅2H₂O).

В настоящее время имеется достаточно много работ, посвященных получению меченных технецием-99м различных производных глюкозы. Например, способы приготовления меченных радионуклидами комплексов производных глюкозы рассматриваются в работе [Zhu Lin Liu. Glucose Derivative complex marked with ^99mTc, ¹⁸⁸Re or ¹⁸⁶Re and its prepn process // CN Заявка №101020697 МПК A61K 51/04; C07F 13/00; A61K 103/10 - 22.08.2008]. Отмечается, что комплексы глюкозы с ^99mTc имеют низкую стоимость в сочетании с удобным периодом полураспада и энергией излучения для проведения ОФЭКТ исследований.

Известен относительно простой способ получения 5-тио-D-глюкозы с технецием-99м [Suleyman Kutlan Ozker, Bert David Collier. Imaging methods and compositions // United States Patent No.: 60998222003 A61K 51/00 - 08.08.2000], в соответствии с которым препарат ^99mTc-5-тио-D-глюкозу готовят путем смешивания 10 мг 5-тио-D-глюкозы с 74 мкг хлорида олова (II) дигидрата с последующим введением в полученную смесь 2-4 мл раствора пертехнетата, ^99mTc с активностью 50-100 мКи (1,85-3,7 ГБк) и инкубацией в течение 30 мин. При этом эффективность мечения составляет 98,5±0,8% и остается стабильной 24 ч. Авторы предполагают, что реакция мечения будет хорошо проходить в присутствии 0,01-2 мг ионов олова (II) в виде хлорида дигидрата или фторида. Недостатком предложенного способа является то, что, в отличие от лиофилизатов, исходная смесь реагентов для получения препарата не может храниться более 1-2 часов, вследствие окисления олова (II) до 4-х валентного состояния.

Такой же недостаток имеет методика мечения 5-тио-D-глюкозы, предложенная в [Hee-Kyung Lee, Dae-Hybk Moon, Jin-Sook Ryu et al. Radioisotope-labeled complexes of glucose derivatives and kits for the preparation thereof // Patent United States Pub. No.: 2003/0120046 A1 - 26.06.2003]. Здесь во флакон, содержащий смесь 5-тио-D-глюкозы (5 мг, 0,51 ммоль) и SnCl₂⋅2H₂O (80 мкг), добавляют 20 мКи/мл ^99mTcO^4-. После перемешивают в течение 10 мин. Затем проводят исследования.

Наиболее близким к заявляемому является состав и способ получения реагента для приготовления меченной ^99mTc производной 1-тио-D-глюкозы, приведенный в этой же работе и выбранный нами в качестве прототипа. Согласно этому способу смесь, содержащую 1 мг 1-тио-β-D-глюкозы, 80 мкг хлорида олова (II), 100 мкл 0,02 М HCl и 0,5 мг аскорбиновой кислоты, используемой в качестве добавки, препятствующей восстановлению олова (II), растворяют в 1 мл физиологического раствора. Затем полученный раствор пропускают через стерильный фильтр (размер пор 0,22 мкм) и вносят во флакон вместимостью 10 мл. После содержимое флакона замораживают в жидком азоте и лиофилизируют. По окончании обезвоживания, флакон запечатывают алюминиевой крышкой под вакуумом и выдерживают при комнатной температуре. Для приготовления РФП во флакон с реагентом (лиофилизатом) вносят 1,5 мл элюата ^99mTc с активностью 50 мКи (1,85 ГБк) и перемешивают при комнатной температуре в течение 10 минут. В результате получаемый препарат имеет следующий состав:

Недостатком способа прототипа является завышенное содержание в получаемом препарате натрия хлорида, за счет его присутствия в составе реагента. В результате общее количество этого компонента превышает нормативное значение 8,0-10,0 мг/мл для препаратов, используемых для внутривенного введения. Кроме того, в состав входит соляная кислота в сочетании с большим количеством аскорбиновой кислоты. Завышенным также является содержание в радиофармпрепарате хлорида олова (II), используемого для восстановления технеция-99м. С технологической точки зрения, способ включает стадию замораживания смеси реагентов в жидком азоте, что усложняет процесс приготовления лиофилизата.

Новый технический результат - получение более радиохимически чистого радиофармпрепарата ^99mTc-1-тио-D-глюкозы, имеющего более простой состав, упрощение способа его изготовления.

Для достижения нового технического результата в способе получения реагента для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-D-глюкозы включающем приготовление реакционной смеси, состоящей из производной глюкозы, олова (II) хлорида дигидрата и аскорбиновой кислоты в 1 мл раствора, фильтрующую стерилизацию полученного раствора с последующей лиофилизацией реагента и его герметизацией во флаконе, реакционная смесь имеет состав: 2,5 мг 1-тио-D-глюкозы, 0,175 мг олова (II) хлорида дигидрата и 0,5 мг аскорбиновой кислоты в 1 мл воды, при этом, лиофилизацию смеси проводят без предварительного замораживания в жидком азоте.

Сущность изобретения поясняется примерами его конкретного выполнения.

Пример 1. Во флакон вместимостью 10 мл вносят 1 мл водного раствора, содержащего 2,5 мг 1-тио-D-глюкозы. Затем последовательно добавляют 50 мкл водного раствора аскорбиновой кислоты с концентрацией 10 мг/мл (0,5 мг) и 25 мкл свежеприготовленного раствора олова (II) хлорида дигидрата с концентрацией - 7 мг/мл (0,175 мг). Полученную смесь пропускают через стерилизующий фильтр (размер пор 0,22 мкм) во флакон вместимостью 10 мл. После флакон без предварительного замораживания смеси помещают в холодильную камеру лиофилизатора и проводят процесс лиофилизации в автоматическом режиме при заданных параметрах: Р=0,2 Па, t=-50°С в течение 24 часов.

Для приготовления препарата во флакон с реагентом (лиофилизатом) вводят 4 мл элюата ^99mTc с активностью 3,7-5,0 ГБк (100-135 мКи) и инкубируют в ультразвуковой ванне в течение 30 мин.

Радиохимическую чистоту (РХЧ) полученного продукта оценивают путем снятия хроматограмм в двух подвижных фазах: в ацетоне с использованием пластин силикагеля ПТСХ-АФ-А-УФ (Sorbfil) и в смеси С₂Н₅ОН: 25% NH₄OH: H₂O÷2:5:5 на полосках ватмана Filtrak-17 (Германия) с последующим изучением распределения активности ^99mTc по длине радиохроматограмм.

В среде ацетона комплекс ^99mTc-1-тио-D-глюкоза остается на линии старта, а непрореагировавшие ионы ^99mTc(VII) поднимаются с фронтом растворителя, что позволяет сделать количественную оценку этой примеси. Напротив, в среде этанола с фронтом элюента вместе с ионами ^99mTc(VII) поднимается и комплекс ^99mTc-1-тио-D-глюкоза, а на линии старта остается примесь несвязанного с субстанцией гидролизированного оксида технеция (^99mTcO₂), что также позволяет сделать ее количественную оценку. Хроматограммы меченой ^99mTc-1-тио-D-глюкозы, полученные в ацетоне и в смеси этанола с аммиаком, представлены на фиг. 1 и 2, соответственно. Расчеты, сделанные по этим хроматограммам, показывают, что общее содержание примесей ^99mTc(VII) и гидролизованного оксида (^99mTcO₂) в препарате не превышает 1,5%, а его радиохимическая чистота составляет более 97% и остается на этом уровне в течение 24 ч. Приготовленный препарат имеет состав, приведенный в таблице.

В отличие от прототипа, при равном количестве 1-тио-D-глюкозы, содержание SnCl₂⋅2H₂O в готовом препарате составляет 0,044 мг/мл против 0,053 мг/мл. Кроме того, в нем отсутствует соляная кислота. Содержание NaCl составляет 8,0-10,0 мг/мл против 13,5-16,5 мг/мл, а аскорбиновой кислоты - 0,125 мг/мл против 0,330 мг/мл.

Пример 2. Реакционную смесь готовят так же, как и в примере 1, с тем отличием, что после ее фильтрации через стерилизующий фильтр во флакон, проводят предварительное замораживание флакона в жидком азоте с последующим его помещением в холодильную камеру лиофилизатора и проводят лиофилизацию смеси в том же режиме. Для приготовления препарата во флакон с реагентом также вводят 4 мл элюата ^99mTc с активностью 3,7-5,0 ГБк и инкубируют в ультразвуковой ванне в течение 30 мин.

Способ основан на анализе результатов экспериментальных исследований. Как известно [Зайцева Л.Л., Величко А.В., Виноградов И.В. Соединения технеция и области их применения // Итоги науки и техники. - М.: ВИНИТИ, 1984. - Т. 9. - С. 180] от количества хлорида олова (II) напрямую зависит радиохимическая чистота (РХЧ)получаемого радиофармпрепарата и количество образующего в нем коллоида типа (-О-TcO-O-SnCl₂-O-TcO-)_n, где n=2, 3 … - число, зависящее от pH раствора.

В этой связи были проведены предварительные исследования для установления необходимого и достаточного количества Sn (II) в составе лиофилизата, которое бы обеспечивало практически полное восстановление ^99mTc(VII) при минимальном количестве, образующегося коллоида. Результаты этих исследований представлены в таблице 1.

Активность ^99mTc, связанного на коллоиде С_К, определяли путем фильтрации препарата через фильтрующие насадки типа Minisart с диаметром пор 50 нм с последующим измерением активности фильтрата А_Ф и ее сопоставлением с исходной активностью препарата А_Исх. Для расчета вклада активности коллоида использовали соотношение:

Радиохимическую чистоту препаратов, полученных из лиофилизатов с различным содержанием SnCl₂⋅2H₂O, определяли методом тонкослойной хроматографии в двух подвижных фазах по методике, приведенной в Примере 1.

Из представленных в таблице 1 результатов следует, что оптимальной концентрацией SnCl₂⋅2H₂O в составе смеси является 0,0438 мг/мл (п. 3), при которой достигается максимальное значение радиохимической чистоты препарата при минимальном содержании радиоактивного коллоида. В смеси п. 4, где количество Sn(II) составляет 0,053 мг/мл, такое же, как и в способе прототипе, содержание коллоида больше в 4 раза, вследствие чего возможно нецелевое накопление радиоактивности в печени.

Изобретение, также, поясняется фигурами, на которых представлено:

Фиг. 1. Радиохроматограмма препарата ^99mTc-1-тио-D-глюкоза. Подвижная фаза: ацетон.

Фиг. 2. Радиохроматограмма препарата ^99mTc-1-тио-D-глюкоза. Подвижная фаза - смесь С₂Н₅ОН : 25% NH₄OH : H₂O ÷ 2:5:5 (по объему).

Фиг. 3. Сцинтиграмма мыши линии C57BL/6 с привитой в область бедра карциномой Льюиса (LLC) через 30 мин после инъекции препарата ^99mTc-1-тио-D-глюкоза.

В целом предлагаемый способ позволяет получать реагент для приготовления меченного технецием-99м препарата на основе 1-тио-D-глюкозы, пригодный для проведения гамма-сцинтиграфических исследований в онкологии, о чем свидетельствует сцинтиграмма на фиг. 3, полученная через 30 минут после введения радиофармпрепарата экспериментальному животному (мыши).

1. Состав реагента для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-D-глюкозы, представляющий собой лиофилизат водного раствора, содержащего: производную глюкозы, олова (II) хлорида дигидрат, аскорбиновую кислоту, при следующем соотношении компонентов в 1 мл раствора:

1-тио-D-глюкозы	2,5 мг
олова (II) хлорида дигидрата	0,175 мг
аскорбиновой кислоты	0,5 мг

2. Способ получения реагента по п. 1 для радионуклидной диагностики на основе меченной технецием-99m 1-тио-D-глюкозы, включающий приготовление реакционной смеси, состоящей из производной глюкозы, олова (II) хлорида дигидрата, аскорбиновой кислоты в 1 мл водного раствора, фильтрующую стерилизацию полученного раствора, последующую лиофилизацию и герметизацию реагента во флаконе, при этом лиофилизацию смеси проводят без предварительного замораживания в жидком азоте.