Способ отбора культурного льна на устойчивость ко льноутомлению для разных зон его возделывания

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ отбора форм культурного льна на устойчивость ко льноутомлению для разных зон его возделывания, включающий приготовление в лаборатории инокулюма, обогащенного собственными токсинами льна, внесение его в почву, посев семян, выращивание растений, проведение оценки на устойчивость, отбор устойчивых растений, при этом приготовление инокулюма осуществляют путем замачивания семян здоровых растений льна водой с добавлением небольшой навески почвы, взятой с опытного участка, из расчета обработки 1 м2 участка используют 700 семян на 2 л водопроводной воды с добавлением 100 г почвы, оставления смеси для микробиологического гидролиза и брожения при комнатной температуре до окончания выделения газов из гидролизата, представляющего собой перебродившую водную взвесь ослизненных семян льна, внесение инокулюма в почву осуществляют путем равномерного полива опытного участка полученным гидролизатом на глубину заделки семян до посева или при посеве и дополнительно во время вегетации на той фазе развития растений льна, преимущественно на которой проявляется льноутомление в конкретной зоне возделывания: в фазу всходов, «елочки», бутонизации, цветения, формирования семян или их налива. Изобретение позволяет осуществить эффективный отбор растений льна на устойчивость к льноутомлению для разных зон его возделывания. 2 ил.

 

Изобретение относится к области сельского хозяйства и может быть применено в селекции льна.

Для оценки устойчивости многих культур к ряду болезней большое значение имеет создание инфекционных фонов с равномерной инфекционной нагрузкой. Часто инфекционное начало вносят в почву. Этот способ заражения растений применяют главным образом по отношению к обитающим в почве возбудителям болезней и патогенам, способным длительное время сохраняться в ней в жизнеспособном состоянии.

Для создания в полевых условиях искусственного инфекционного фона почвообитающих возбудителей болезни применяют метод монокультуры восприимчивого растения - хозяина в течение нескольких лет. Накопление инфекции можно ускорить искусственным заражением почвы путем внесения инокулюма (растительных остатков или почвы с участков, на которых отмечено эпифитотийное развитие заболевания), при этом патоген можно внести на поле при посеве и несколько раз в течение вегетационного периода.

Обязательное условие при внесении инокулюма в почву - тщательное и равномерное распределение его в ней. Это простое на первый взгляд условие далеко не всегда удается в полной мере осуществить на практике. Имеет большое значение и время внесения инфекции в почву.

Известны примеры инфицирования почвы при испытании культур на устойчивость к разным заболеваниям.

Так, для оценки устойчивости хлебных злаков к корневым гнилям проводят выделение патогена из пораженных растений в чистую культуру, затем ее размножают на искусственной питательной среде и полученный инфекционный субстрат вносят в рядки в процессе высева семян испытываемых на устойчивость зерновых культур. Часто питательный субстрат с размноженным на нем возбудителем подсушивают до сыпучести и хранят до 1 месяца в холодильной камере при положительных температурах.

Или, например, при создании инфекционного фона для оценки на устойчивость зерновых культур к склеротиниозу, тифулезу, снежной плесени предварительно размножают возбудителей этих болезней на пропаренных зерновках, помещенных в конические колбы вместительностью 1-2 л. Полученный в течение 15-20 дней инокулюм смешивают с почвой в соотношении 1:3, после чего вносят в рядки при посеве или рассыпают равномерно по поверхности почвы перед ее рыхлением (из расчета 5 кг смеси на 1 м2).

Известен способ создания инфекционного фона для селекции гороха на устойчивость к фузариозу, включающий его посев и выращивание на стационарном изолированном участке с внесением инфекционного материала, причем посев и выращивание производят через год, чередуя культуру с яровыми колосовыми, преимущественно овсом (а.с. СССР №995403, А01Н 1/04, заявка №2725484/30-15 от 19.02.1979 г.).

Недостаток известного способа - его большая длительность и неэффективность для отбора льна на устойчивость ко льноутомлению.

Известен способ оценки на устойчивость линий и сортов чечевицы к корневым гнилям и увяданию в теплице, когда за 5 дней до посева вносят в почву инфицированные семена сорго в количестве 15 г/кг. Через 10-20 дней учитывают процент семян чечевицы, погибших до и после прорастания (http://сайтпчеловодов.рф/pochva/sposoby-zarazhenija-rastenii-dlia-ocenki-ustochvosti.html) Чекалин H.M. Генетические основы селекции зернобобовых культур на устойчивость к патогенам). Инокулюм готовят путем встряхивания культуральной жидкости гриба на ротационной качалке в течение 10 дней по 8 часов в день при температуре 22°С при естественном освещении в теплице. Затем в пластиковые стаканы, содержащие инокулюм пересаживают 10 - дневные проростки (4 проростка в каждый), выращенные на пластиковом подносе на влажном стерильном перлите. Оценку поражаемости проводят через 30 дней после инокуляции по 5 - бальной шкале. Недостаток известного способа - неэффективность для оценки льна на льноутомление.

Известно, что для испытания льна на устойчивость к фузариозному увяданию чистую культуру гриба Fusarium oxysporumf.lini, размноженную на стерильных зерновках овса, равномерно распределяют по поверхности почвы (100 г на 1 м2) и присыпают 4-5 - сантиметровым слоем почвы. Вместо чистой культуры можно использовать резку льняной соломы (1-3 - сантиметровая резка корней и нижней части стеблей) с участков, где наблюдались четкие симптомы фузариозного увядания. Норма внесения инфекционного начала: 5 кг смеси на 1 м2. При инфицировании участка с помощью зараженной почвы ее вносят из расчета 4-8 кг на 1 м2, после чего участок перекапывают дважды. Для проверки равномерности распределения инфекционного начала проводят уравнительный посев сильновосприимчивого к фузариозу сорта льна (http://agro-archive.ru/immunitet-rasteniy/339-metody-inokutyacii-rasteniy-pri-ih-ocenke-na-ustoychivost.html. Методы инокуляции растений при их оценке на устойчивость). Недостаток известного способа состоит в том, что он «не работает» на отбор форм культурного льна на устойчивость ко льноутомлению. Это объясняется тем, что было замечено следующее: биотипы льна, устойчивые к фузариозу, проявляют признаки угнетения на участке со льноутомленной почвой (при ускоренном возвращении культуры на прежнее место), т.е. на участке с почвой, обогащенной «своими собственными» токсинами, а не грибными токсинами фузариума.

И мы пришли к такому выводу: для отбора форм культурного льна на устойчивость к льноутомлению нужно создать искусственный инфекционный фон в поле за счет «собственных» токсинов льна и на нем отбирать устойчивые к льноутомлению биотипы.

Задачей заявляемого изобретения является создание эффективного способа отбора растений льна на устойчивость к льноутомлению для разных зон его возделывания.

Цель заявляемого изобретения - создать искусственный токсинный фон на «собственных» токсинах льна и обеспечить отбор устойчивых к льноутомлению биотипов для разных зон его возделывания.

Технический результат достигается тем, что способ отбора форм культурного льна на устойчивость к льноутомлению для разных зон его возделывания включает приготовление в лаборатории инокулюма, обогащенного собственными токсинами льна, внесение его в почву, посев семян, выращивание растений, проведение оценки на устойчивость, отбор устойчивых растений, при этом приготовление инокулюма осуществляют путем замачивания семян здоровых растений льна водой с добавлением небольшой навески почвы, взятой с опытного участка, оставления смеси для грибного и бактериального гидролиза и брожения при комнатной температуре до окончания выделения газов из полученного гидролизата, представляющего собой перебродившую водную взвесь ослизненных семян льна, внесение инокулюма в почву осуществляют путем равномерного полива опытного участка полученным гидролизатом на глубину заделки семян до посева или при посеве и дополнительно - во время вегетации на той фазе развития растений льна, преимущественно на которой проявляется льноутомление в конкретной зоне его возделывания: в фазе всходов, «елочки», бутонизации, цветения, формирования семян или их налива.

Исследуя уровень техники в процессе проведения патентного поиска по всем видам сведений, общедоступных в печати, мы не выявили технических решений, имеющих существенные признаки заявляемого способа, касающиеся приготовления инокулюма, инфицирования им почвы и др. Многолетние эксперименты по выявлению причин льноутомления на участках, не зараженных фузариозом, привели нас к мысли о «собственных» токсинах посеянных семян льна, с помощью которых можно создавать искусственный токсинный фон для отбора устойчивых ко льноутомлению биотипов. Таким образом, заявляемое техническое решение соответствует критериям патентоспособности «НОВИЗНА» и «ИЗОБРЕТАТЕЛЬСКИЙ УРОВЕНЬ». Заявляемое техническое решение соответствует и критерию патентоспособности «ПРОМЫШЛЕННАЯ ПРИМЕНИМОСТЬ», т.к. оно может быть использовано в сельском хозяйстве, а сущность заявляемого технического решения достаточно раскрыта в описании изобретения.

Способ осуществляется следующим образом.

Приготовление в лаборатории инокулюма, обогащенного собственными токсинами семян льна, осуществляется так: в расчете на обработку 1 кв.м. поверхности опытного участка семена здоровых растений льна замачивают водой с добавлением небольшой навески почвы, взятой с опытного участка, оставляют смесь для микробиологического гидролиза и брожения при комнатной температуре до окончания выделения газов из полученного гидролизата, представляющего собой перебродившую взвесь ослизненных семян льна. Полученный гидролизат вносят в почву опытного участка путем равномерного полива на глубину заделки семян, которую осуществляют до полива или после полива. Во время выращивания проводят дополнительный полив полученным гидролизатом на той фазе развития растений, преимущественно на которой проявляется льноутомление в конкретной зоне выращивания, и ведется отбор устойчивых к льноутомлению биотипов льна.

Пример.

Для осуществления заявляемого способа отбора форм культурного льна на устойчивость к льноутомлению для разных зон его возделывания поступали так. В лабораторных условиях готовили инокулюм, обогащенный собственными токсинами семян льна. В расчете на обработку 1 м2 участка брали 700 шт семян льна, заливали их 2 л водопроводной воды в емкости с притертой пробкой, добавляли небольшую навеску почвы (≈100 г), взятой с опытного участка, где планируется проведение отбора селекционного материала льна на льноутомление. При этом почву брали с верхнего пахотного слоя этого участка для приближения биохимической структуры получаемого гидролизата льна к естественным почвенным аналогам. Оставляли образовавшийся коллоидный раствор слизей серо-желтого цвета для бактериального и грибного гидролиза и брожения при комнатной температуре в течение двух месяцев, периодически открывая притертую пробку и выпуская выделяющиеся газы, а потом снова закрывали на какое-то время из-за сильно специфического запаха содержимого емкости, и так до окончания выделения газов из образовавшегося гидролизата слизи льна. Полученный гидролизат слизи семян льна (токсин) равномерно наносили, например, с помощью садовой лейки на поверхность опытного участка после посева на нем семян испытуемых сортов льна. При этом почву промачивали на глубину посеянных семян. Неустойчивые ко льноутомлению растения испытуемых сортов отличались сильным угнетением, отмеченным уже на начальных этапах онтогенеза, и последующей гибелью (фото 1). На фото 1 представлен фрагмент опытного участка, на котором видна гибель растений льна после локального внесения «собственного льноутомительного токсина» - гидролизатоводнослизевой взвеси семян здоровых растений льна. При выращивании растений делали дополнительный полив гидролизатом в ту фазу развития растений, в которой наблюдается пик льноутомления в конкретной зоне возделывания льна. Устойчивые к льноутомлению биотипы отбирали в фазу спелости семян. Для Краснодарского края дополнительный полив токсинным раствором делали в фазу всходов и «елочки»(фото 1), а для средней полосы России - в фазу «елочки» и бутонизации (фото 2), для других зон возделывания -в другие фазы развития растений. Семена отобранных заявленным способом растений, устойчивых к льноутомлению, в дальнейшем сеяли на льноутомленных участках разных зон возделывания и из них получали устойчивые к льноутомлению растения.

Таким образом, совокупность существенных признаков заявляемого способа отбора форм культурного льна на устойчивость к льноутомлению для разных зон возделывания льна необходимы и достаточны для достижения поставленной цели и решения поставленной задачи.

Способ отбора форм культурного льна на устойчивость ко льноутомлению для разных зон его возделывания, включающий приготовление в лаборатории инокулюма, обогащенного собственными токсинами льна, внесение его в почву, посев семян, выращивание растений, проведение оценки на устойчивость, отбор устойчивых растений, при этом приготовление инокулюма осуществляют путем замачивания семян здоровых растений льна водой с добавлением небольшой навески почвы, взятой с опытного участка, из расчета обработки 1 м2 участка используют 700 семян на 2 л водопроводной воды с добавлением 100 г почвы, оставления смеси для микробиологического гидролиза и брожения при комнатной температуре до окончания выделения газов из гидролизата, представляющего собой перебродившую водную взвесь ослизненных семян льна, внесение инокулюма в почву осуществляют путем равномерного полива опытного участка полученным гидролизатом на глубину заделки семян до посева или при посеве и дополнительно во время вегетации на той фазе развития растений льна, преимущественно на которой проявляется льноутомление в конкретной зоне возделывания: в фазу всходов, «елочки», бутонизации, цветения, формирования семян или их налива.



 

Похожие патенты:

Настоящее изобретение относится к способу получения комбинации стевиолгликозидов, используемых в качестве подсластителей в пищевой промышленности. Предложен способ получения комбинации двух или нескольких стевиолгликозидов, включающий экстракцию листьев стевии горячей водой, очистку общего экстракта и разделение комбинации двух или нескольких стевиолгликозидов методом непрерывной хроматографии, где непрерывную хроматография осуществляется с использованием градиентного элюирования двумя или более растворителями, и градиента температуры, где два или более растворителей содержат воду, и где комбинация двух или несколько стевиолгликозидов содержит менее чем 25% по массе ребаудиозида А.

Изобретение относится к области физиологии и нанобиотехнологии растений. Способ включает выращивание растений в присутствии тяжелых металлов меди и никеля и последующую оценку устойчивости.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ оценки и отбора высокоурожайных генотипов сои по устьичной проводимости паров воды листьев, включающий определение устьичной проводимости листьев по измерению проводимости паров воды на центральной листовой пластине тройчатого листа, расположенного на 4 сверху узле главного побега растений сои в фазу плодообразования, при этом измерения проводят с 8:00 до 11:00 часов дня с помощью переносного газоанализатора марки LI-6400 XT и отбирают формы со значениями устьичной проводимости паров воды на 25% больше от средней по оцениваемой выборке.

Изобретение относится к области сельского хозяйства и может быть использовано в селекции льна на устойчивость к льноутомлению. Способ включает наработки токсина в лабораторных условиях и последующее равномерное его распределение по поверхности почвы опытного участка.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ отбора материнских растений Picea pungens Engelm., продуцирующих семенное потомство с разным уровнем стабильности генетического материала, включает сбор и проращивание семян фенотипически здоровых материнских растений Picea pungens Engelm., приготовление из корешка каждого проростка длиной 0,5-1 см постоянно-давленного микропрепарата, анализ не менее 19 (нечетное количество) микропрепаратов и не менее 300 клеток каждого микропрепарата по следующим цитогенетическим показателям каждого микропрепарата: «митотический индекс с учетом стадии профазы», «митотический индекс без учета стадии профазы», «% клеток в профазе», «% клеток в метафазе», «% клеток в анафазе», «% клеток в телофазе», «уровень патологий митоза»; сравнение полученных значений цитогенетических показателей со значениями для мутабильной или слабомутабильной групп; если более 3 показателей оказались в слабомутабильной группе, то и проросток относят к слабомутабильной группе, а если 3 и менее, то к мутабильной; если не менее половины проростков оказались в слабомутабильной группе, уровень стабильности генетического материала материнского растения оценивается как высокий, если менее - то как низкий.
Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ повышения семенной продуктивности люцерны, включающий скрещивание родительских пар с использованием доноров рецессивных генов, контролирующих фенотипический признак - соцветие типа «цветная капуста» с полной мужской и женской стерильностью, где в качестве материнской используют фертильную форму - донор, образующий при макроспорогенезе порядка 50% женских гамет, содержащих рецессивные гены, из полученных гибридных семян выращивают растения F1 и в фазу цветения отбирают формы, имеющие отцовскую окраску лепестков венчика, эти растения подвергают естественному опылению насекомыми, после созревания бобов определяют семенную продуктивность каждого растения и выявляют образцы с самым высоким показателем данного признака, отобранные растения после срезки, последующего отрастания и цветения подвергают принудительному самоопылению или переопылению между собой, из полученных семян выращивают растения I1 или F2, в фазу цветения и плодообразования которых отбирают только формы с отцовским фенотипом, эти образцы обладают высокой семенной продуктивностью.

Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности к растениеводству. Способ включает определение вегетативной массы побега и массы зерна колоса в фазу полной спелости, расчет удельного коэффициента пропорциональной зависимости массы зерна колоса от вегетативной массы побега – коэффициента удельной продуктивности побега.

Изобретение относится к области измерения магнитных величин слабых магнитных полей, амплитуда которых сравнима или значительно меньше амплитуды геомагнитного поля, в селекции у растений многолетних трав и некоторых видов растений - резерватов патогенов.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой способ отбора материнских растений Rhododendron ledebourii Pojark., продуцирующих семенное потомство с разным уровнем стабильности генетического материала, включающий сбор и проращивание семян фенотипически здоровых материнских растений Rhododendron ledebourii Pojark., приготовление из корешка каждого проростка длиной 0,5-1 см постоянно-давленного микропрепарата, анализ следующих цитогенетических показателей каждого микропрепарата: «митотическая активность» как отношение числа делящихся клеток к общему числу подсчитанных клеток (%), «уровень патологий митоза» как отношение числа клеток с нарушениями митоза к общему числу делящихся клеток (%), «спектр патологий митоза» как отношение числа клеток с нарушением деления к числу делящихся клеток с аберрациями (%), «уровень клеток с остаточными ядрышками» на стадии метафазы-телофазы митоза как отношение числа клеток с остаточными ядрышками к общему числу клеток на указанных стадиях (%), «средняя площадь поверхности одиночных ядрышек» (в мкм2); где проводят анализ не менее 19 микропрепаратов и не менее 500 клеток каждого микропрепарата, «средняя площадь поверхности одиночных ядрышек» определяется по 200 клеткам на каждом микропрепарате, полученные значения цитогенетических показателей сравнивают со значениями для мутабильной или слабомутабильной группы, причем показатель «митотическая активность» относится к мутабильной группе при значении не более 8%, «уровень патологий митоза» - при значении более 2,5%, «спектр патологий митоза» - более 50%, «уровень клеток с остаточными ядрышками» - более 8%, «площадь поверхности одиночных ядрышек» - при значении не менее 76 мкм2, в противном случае показатели относятся к слабомутабильной группе; если более 2 показателей оказались в мутабильной группе, то и проросток относят к мутабильной группе, а если 2 и менее, то к слабомутабильной; если не менее половины проростков оказались в слабомутабильной группе, уровень стабильности генетического материала материнского растения оценивается как высокий, если менее - то, как низкий.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к изолированным цис-регуляторным элементам для придания промотору индуцируемости патогеном, химерному промотору, обладающему индуцируемостью патогеном, рекомбинантному гену для экспрессии в растительной клетке после контакта с патогеном, экспрессирующим вектору для повышения устойчивости растения к патогенам, где патоген представляет собой грибок или оомицет.
Наверх