Способ оптимального доступа к абдоминальному отделу пищевода иммунодефицитных мышей при ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и касается способа ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека иммунодефицитным мышам для получения опухолевых моделей, более точно отражающих молекулярные, генетические и морфологические особенности развития рака пищевода человека. Сущность способа заключается в том, что осуществляют ортотопическую трансплантацию фрагмента опухоли пищевода человека иммунодефицитным мышам, включающий пересадку ткани опухоли пищевода человека на предварительно поврежденную стенку пищевода в брюшной полости иммунодефицитной мыши Nu/J. Доступ к абдоминальному отделу пищевода осуществляют производя послойный разрез кожи и ткани брюшной стенки мыши на протяжении 25 мм, начало разреза находится на реберной дуге в точке пересечения с ней линии, проведенной от левого плеча до левого бедра животного, конец разреза расположен в области средней линии животного и, заходя за нее, линия разреза перпендикулярна оси тела животного. Отодвигают левую долю печени вверх, располагая край печени под углом 45° к оси тела животного. Надсекают пищевод, отступая на 3 мм вверх от уровня перехода пищевода в желудок. Разрез пищевода производят под углом 35° к оси пищевода с длинной разреза не менее половины диаметра пищевода, всего производят 3-4 таких рассечения адвентициального и мышечного слоев пищевода на расстоянии 1-1,5 мм один от другого. Продольно прошивают стенку пищевода лигатурой, которой ранее прошили фрагмент человеческой опухоли пищевода, проводя иглу перпендикулярно ранее наложенным разрезам пищевода. Лигатуру затягивают, фиксируя опухоль к стенке пищевода. Прошивают желудок животного, накладывая первый шов на 2 мм выше перехода пищевода в желудок, той же лигатурой прошивают стенку желудка ниже перехода пищевода в желудок, швы накладывают параллельно оси желудка, оказывая тракцию за шов. Направляют вектор силы под углом 35° к оси тела животного, выводя абдоминальный отдел пищевода в рану. Завязывают лигатуру на желудке. Ушивают брюшную полость. Способ позволяет обеспечить оптимальный доступ к абдоминальному отделу пищевода иммунодефицитных мышей при ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека для получения опухолевых моделей, более точно отражающих молекулярные, генетические и морфологические особенности развития рака пищевода человека, что будет способствовать разработке новых терапевтических стратегий в лечении данной онкопатологии. 5 ил.

 

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной онкологии, и касается способа ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека иммунодефицитным мышам для получения опухолевых моделей, более точно отражающих молекулярные, генетические и морфологические особенности развития рака пищевода человека.

Рак пищевода является опасным заболеванием в связи с высокой смертностью. При этом пятилетняя выживаемость в Европе составляет 9,8%. По распространению во всем мире рак пищевода занимает восьмое место в списке онкозаболеваний (см. Melsens Е., De Vlieghere Е., Descamps В. et al. Improved xenograft efficiency of esophageal adenocarcinoma cell lines through in vivo selection // Oncol Rep. 2017 Jul; 38(1): 71-81). В большинстве случаев рак пищевода диагностируется в поздних стадиях (см. Давыдов М.И., Аксель Е.М. Статистика злокачественных новообразований в России и странах СНГ в 2013 г. М., 2015) и имеет плохой прогноз. В настоящее время для лечения рака пищевода применяют мультимодальный подход, включающий хирургический, лучевой, химиотерапевтический и сочетанные методы лечения. Тем не менее, у больных раком пищевода имеют место стабильно низкие цифры отдаленной выживаемости как в развитых, так и в развивающихся странах - 17%, при этом летальный исход обусловлен локальными рецидивами и метастазированием, возникающими в течение первого года с момента установления диагноза (см. Скворцов М.Б. Рак пищевода: хирургическое лечение // Сибирский онкологический журнал. - 2011. - №4. - С. 21-30; см. Siegel R., Ward Е., Brawley О., Jenal A. Cancer statistics, 2011: the impact of eliminating socioeconomic and racial disparities on premature cancer deaths // CA Cancer J.Clin. - 2011. - Vol.61. - №4. - P. 212-236). Таким образом, агрессивное течение опухолей пищевода, неудовлетворительные результаты лечения диктуют необходимость поиска новых терапевтических подходов к лечению данной тяжелой онкопатологии, разработке новых эффективных таргетных препаратов. Для проведения доклинических исследований in vivo действия субстанций с вероятным противоопухолевым эффектом, а также изучения патогенетических механизмов используют модели злокачественного роста, воспроизводимые на лабораторных животных. В том числе, ими могут служить ксенографты опухолей пищевода на иммунодефицитных мышах.

Известен способ имплантации различных культур клеток рака пищевода под кожу иммунодефицитным мышам (Yaoping Shi, Feng Zhang, Zhibin Bai et al. Orthotopic Esophageal Cancers: Intraesophageal Hyperthermiaenhanced Direct Chemotherapy in Rats // Radiology, 2017, 1, P. 103-113; Hu T, Qi H, Li P et al. Comparison of GFP-Expressing Imageable Mouse Models of Human Esophageal Squamous Cell Carcinoma Established in Various Anatomical Sites // Anticancer research, 2015, 35 (9), P. 4655-4664), однако, согласно литературным данным, гетеротопические модели, предполагающие помещение опухолевого материала в чужеродное микроокружение, не являются адекватным отражением реального поведения данной опухоли (Xianda Zhao, Lihua Li et al. Tumor location impacts immune response in mouse models of colon cancer // Oncotarget, 2017, Vol. 8, (No. 33), P. 54775-54787).

Известен способ ортотопической имплантации путем инъекций различных культур клеток рака пищевода иммунодефицитным мышам (Xianda Zhao, Lihua Li et al. Tumor location impacts immune response in mouse models of colon cancer // Oncotarget, 2017, Vol. 8, (No. 33), P. 54775-54787). Недостатком данного способа является гомогенность вводимого опухолевого материала, в результате чего вышеописанная модель не является аналогичной картине клинического развития рака (Трещалина Е.М. Иммунодефицитные мыши Balb/c Nude и моделирование различных вариантов опухолевого роста для доклинических исследований // Российский биотерапевтический журнал, 2017, Т. 16, №3, С. 6-13). Также при введении культуры клеток высока степень их элиминации.

Из литературных источников известен способ ортотопической ксенотрансплантации фрагмента опухоли пищевода человека (Nikki P. Lee, Chung Man Chan et al. Tumor xenograft animal models for esophageal squamous cell carcinoma // Journal of Biomedical Science, 2018, 29; 25(1):66). Преимуществом данной модели является ее соответствие генетическим, гистологическим и фенотипическим свойствам опухоли донора. Однако представленный способ доступа к пищеводу мыши является неудобным, так как пищевод в этом случае расположен глубоко от входа в брюшную полость, над желудком, который приходится отводить с приложением силы, что может сильно повредить данный орган.

Техническим результатом предлагаемого изобретения является разработка способа ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека иммунодефицитным мышам, обеспечивающего оптимальный доступ к абдоминальному отделу пищевода животного.

Технический результат изобретения достигается тем, что осуществляют ортотопическую трансплантацию фрагмента опухоли пищевода человека иммунодефицитным мышам, включающий пересадку ткани опухоли пищевода человека на предварительно поврежденную стенку пищевода в брюшной полости иммунодефицитной мыши Nu/J, отличающийся тем, что доступ к абдоминальному отделу пищевода осуществляют производя послойный разрез кожи и ткани брюшной стенки мыши на протяжении 25 мм, начало разреза находится на реберной дуге в точке пересечения с ней линии, проведенной от левого плеча до левого бедра животного, конец разреза расположен в области средней линии животного и, заходя за нее, линия разреза перпендикулярна оси тела животного, отодвигают левую долю печени вверх, располагая край печени под углом 45° к оси тела животного, надсекают пищевод, отступая на 3 мм вверх от уровня перехода пищевода в желудок, разрез пищевода производят под углом 35° к оси пищевода с длинной разреза не менее половины диаметра пищевода, всего производят 3-4 таких рассечения адвентициального и мышечного слоев пищевода на расстоянии 1-1,5 мм один от другого, продольно прошивают стенку пищевода лигатурой, которой ранее прошили фрагмент человеческой опухоли пищевода, проводя иглу перпендикулярно ранее наложенным разрезам пищевода, лигатуру затягивают, фиксируя опухоль к стенке пищевода, прошивают желудок животного, накладывая первый шов на 2 мм выше перехода пищевода в желудок, той же лигатурой прошивают стенку желудка ниже перехода пищевода в желудок, швы накладывают параллельно оси желудка, оказывая тракцию за шов, направляют вектор силы под углом 35° к оси тела животного, выводя абдоминальный отдел пищевода в рану, завязывают лигатуру на желудке, ушивают брюшную полость.

Способ осуществляют следующим образом.

Фрагмент опухоли, выделенный во время операции у больного раком пищевода - донора, помещается в культуральную среду 199. Время от момента взятия опухоли до имплантации иммунодефицитным мышам составляет 10-15 минут. Имплантируют опухолевый материал объемом 5 мм3.

Реципиентом опухолевого материала служат иммунодефицитные мыши Nu/J.

В качестве премедикации используют ксилазин концентрацией 20 мг/мл. Животных наркотизируют при помощи золетила концентрацией 22,57 мг/мл.

Для обеспечения доступа к пищеводу производят послойный разрез кожи и ткани брюшной стенки мыши на протяжении 25 мм. Начало разреза находится на реберной дуге в точке пересечения с ней линии, проведенной от левого плеча до левого бедра животного, конец разреза расположен в области средней линии животного и заходя за нее, линия разреза перпендикулярна оси тела животного.

Для получения доступа к абдоминальному отделу пищевода отодвигают левую долю печени вверх, располагая край печени под углом 45° к оси тела животного. Пищевод надсекают, отступая на 3 мм вверх от уровня его перехода в желудок, разрез осуществляют под углом 35° к оси пищевода. Длина разреза составляет не менее половины диаметра пищевода. Всего производят 3-4 таких рассечения адвентициального и мышечного слоев пищевода на расстоянии 1-1,5 мм один от другого.

Лигатурой прошивают сперва фрагмент человеческой опухоли, затем - продольно стенку пищевода, проводя иглу перпендикулярно ранее наложенным разрезам пищевода. Лигатуру затягивают, фиксируя опухоль к стенке пищевода.

Желудок мыши прошивают, накладывая первый шов на 2 мм выше перехода пищевода в желудок, той же лигатурой прошивают стенку желудка ниже перехода пищевода в желудок. Швы накладывают параллельно оси желудка, оказывая тракцию за шов, направляя вектор силы под углом 35° к оси тела животного и выводя абдоминальный отдел пищевода в рану. Лигатуру завязывают на желудке. Послойно ушивают брюшную полость.

Изобретение иллюстрируется фигурами (1-5).

На Фиг 1. изображено прошитие лигатурой фрагмента опухоли пищевода человека.

На Фиг 2. изображена имплантация фрагмента опухоли пищевода человека на стенку абдоминального отдела пищевода иммунодефицитной мыши Nu/J.

На Фиг 3. изображено прошитие лигатурой стенки желудка иммунодефицитной мыши Nu/J ниже перехода пищевода в желудок.

На Фиг 4. изображен желудок иммунодефицитной мыши Nu/J после наложения швов.

На Фиг 5. изображена иммунодефицитная мышь Nu/J после ортотопической трансплантации опухоли пищевода человека.

Данным способом произведена ортотопическая трансплантация опухоли пищевода человека 20 иммунодефицитным мышам Nu/J.

Технико-экономическая эффективность данного способа заключается в том, что способ позволяет обеспечить оптимальный доступ к абдоминальному отделу пищевода иммунодефицитных мышей при ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека для получения опухолевых моделей, более точно отражающих молекулярные, генетические и морфологические особенности развития рака пищевода человека.

Способ оптимального доступа к абдоминальному отделу пищевода иммунодефицитных мышей при ортотопической трансплантации фрагмента опухоли пищевода человека, включающий пересадку ткани опухоли пищевода человека на предварительно поврежденную стенку пищевода в брюшной полости иммунодефицитной мыши Nu/J, отличающийся тем, что доступ к абдоминальному отделу пищевода осуществляют, производя послойный разрез кожи и ткани брюшной стенки мыши на протяжении 25 мм, начало разреза находится на реберной дуге в точке пересечения с ней линии, проведенной от левого плеча до левого бедра животного, конец разреза расположен в области средней линии животного и заходя за нее, линия разреза перпендикулярна оси тела животного, отодвигают левую долю печени вверх, располагая край печени под углом 45° к оси тела животного, надсекают пищевод, отступая на 3 мм вверх от уровня перехода пищевода в желудок, разрез пищевода производят под углом 35° к оси пищевода с длинной разреза не менее половины диаметра пищевода, всего производят 3-4 таких рассечения адвентициального и мышечного слоев пищевода на расстоянии 1-1,5 мм один от другого, продольно прошивают стенку пищевода лигатурой, которой ранее прошили фрагмент человеческой опухоли пищевода, проводя иглу перпендикулярно ранее наложенным разрезам пищевода, лигатуру затягивают, фиксируя опухоль к стенке пищевода, прошивают желудок животного, накладывая первый шов на 2 мм выше перехода пищевода в желудок, той же лигатурой прошивают стенку желудка ниже перехода пищевода в желудок, швы накладывают параллельно оси желудка, оказывая тракцию за шов, направляют вектор силы под углом 35° к оси тела животного, выводя абдоминальный отдел пищевода в рану, завязывают лигатуру на желудке, ушивают брюшную полость.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной офтальмологии, и может быть использовано для моделирования в эксперименте рецидивирующей эрозии роговицы.

Изобретение относится к медицине, а именно экспериментальной фармакологии, и может быть использовано для коррекции нарушения микроциркуляции в плаценте при ADMA-подобной модели преэклампсии.
Изобретение относится к медицине, в частности к патологической физиологии, и касается моделирования ожирения у травоядных животных в эксперименте. Животным создают режим гиподинамии.

Изобретение относится к медицине, а именно к офтальмологии, и может быть использовано в экспериментальной офтальмологии для моделирования атрофии ретинального пигментного эпителия.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для моделирования острого панкреатита различной степени тяжести у крыс.
Изобретение относится к офтальмологии, а именно к офтальмоонкологии, и предназначено для создания модели интраокулярной ретинобластомы. Иммунодефицитным мышам линии BALB/cnude вводят суспензию клеток первичной культуры ретинобластомы, полученной при энуклеации у больного с ретинобластомой.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии. Моделирование проводится на трупах мужского пола.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной фармакологии, может быть использовано для коррекции эндотелиальной дисфункции при ADMA-подобной модели преэклампсии.

Изобретение относится к области медицины, а именно к экспериментальной фармакологии. Воспроизводят модель преэклампсии у крыс линии Wistar ежедневным с 14 по 20 день беременности внутрибрюшинным введением L-нитро-аргинин-метилового эфира в дозе 25 мг/кг.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к экспериментальной медицине, и может быть использована для создания животных моделей для исследования сухого кератоконъюнктивита.

Изобретение относится к медицине, а именно к вирусологии, и стоматологии, и экспериментальной фармакологии, и может быть использовано для моделирования экспериментального рецидивирующего герпетического стоматита. Осуществляют дозированное введение мышам вируса простого герпеса 1 типа (ВПГ-1). Предварительно экспериментальным животным вводят 0,2 мл гидрокортизона за 2 часа до инфицирования. Затем герпесвирусную суспензию вводят внутрибрюшинно двукратно в течение 3-х недель в дозе 1LD50. Через 21 день после первичного заражения проводят повторное инфицирование мышей путем скарифицирования слизистой полости рта и внесения на поврежденную слизистую 30 мкл суспензии ВПГ-1 в дозе 1 LD50. Способ обеспечивает повышение воспроизводимости и приближение модели экспериментального рецидивирующего герпетического стоматита к клиническому течению данной патологии у человека за счет дозированного введения лабораторным мышам в течение заданного времени суспензии ВПГ-1, осуществляемого на фоне иммунодепрессии, вызываемой введением гидрокортизона. 3 табл., 3 пр.
Наверх