Мутантные микроорганизмы, устойчивые к гибели под действием лактозы

Изобретение относится к способу получения микроорганизмов, устойчивых к явлению подавления действием лактозы, к микроорганизмам, полученным указанным способом. Способ получения микроорганизмов, устойчивых к явлению подавления действием лактозы, выращенных в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, включает изменение экспрессии лактозного транспортера в микроорганизмах путем введения гетерологичного промотора перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера или путем изменения кодонов эндогенного гена лактозного транспортера на кодоны, используемые микроорганизмом чаще, или на кодоны, используемые микроорганизмом реже, последующее выращивание указанных микроорганизмов на среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы, а также добавление лактозы к указанной среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы, в процессе роста указанных микроорганизмов и обнаружение экспрессии лактозного транспортера. Осуществляют отбор микроорганизмов, устойчивых к явлению подавления действием лактозы, растущих на указанной среде, включающей лактозу и другой источник углерода, которые сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера, на основании обнаруженной экспрессии лактозного транспортера. При этом указанный источник углерода, отличный от лактозы, выбран из группы, состоящей из глицерина, мальтозы, глюкозы, фруктозы, сахарозы, фукозы, маннозы, сиаловой кислоты, крахмала, целлюлозы, полиолов, органических кислот и пентоз. Предложены также варианты микроорганизмов, полученные указанным способом. Предложена также экспрессионная кассета лактозного транспортера, приводящая к экспрессии лактозного транспортера, которая не приводит к фенотипу подавления действием лактозы, которая выделенная из варианта указанного микроорганизма. Указанную экспрессионную кассету и указанные варианты микроорганизмов применяют для производства 2-фукозиллактозы, 2'-фукозиллактозы, 3-фукозиллактозы, 2',3-дифукозиллактозы, лакто-N-триозы, лакто-N-тетраозы, лакто-nN-тетраозы, 3'-сиалиллактозы, 6'-сиалиллактозы, гликолипидов или галактозилированных соединений. Предложен также способ получения экспрессионной кассеты. Изобретение обеспечивает сохранение в полученном микроорганизме, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера, на основании обнаруженной экспрессии лактозного транспортера. 6 н. и 8 з.п. ф-лы, 1 табл., 21 пр., 21 ил.

 

Область техники

Настоящее изобретение относится к способу получения мутированных микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, и к микроорганизмам, получаемым указанным способом. Такие сконструированные микроорганизмы могут использоваться для производства специальных продуктов, включая, например, специальные углеводы, гликолипиды и галактозилированные соединения, но не ограничиваясь ими.

Уровень техники

Гибель под действием лактозы - это хорошо известная и хорошо изученная закономерность, согласно которой рост многих организмов подавляется в присутствии лактозы и другого источника углерода. Точный механизм, лежащий в основе этого явления, тем не менее, остается неизвестным, хотя ясно, что необходимо для запуска этого механизма. Гибель под действием лактозы наблюдается, когда лактозу добавляют к микробной культуре, растущей на другом источнике углерода, например, на глицерине или сахарозе, но не ограничиваясь ими. Кроме того, это происходит, когда ген лактозного транспортера либо индуцируется, либо конститутивно экспрессируется (33, 39, 75). Впервые гибель под действием лактозы наблюдали у Е. coli, когда экспрессию лактозной пермеазы модулировали с помощью IPTG и лактозы в хемостатных условиях (28). Позднее гибель под действием лактозы наблюдали также у Rhizobium meliloti, Kluyveromyces lactis и Zymomonas mobilis (55, 70, 77). Одной из возможных причин этого явления называли "высокую цену" активности лактозного транспортера для клетки, для компенсации таких больших затрат происходило снижение или ингибирование роста, кроме того, это также связано с внеклеточной концентрацией лактозы (34), которая в большинстве технологических процессов поддерживается высокой, чтобы получить достаточно высокие титры и выходы продукта. Тем не менее в данной области техники считается, что до тех пор, пока в этих условиях происходит транспорт лактозы, будет наблюдаться и гибель под действием лактозы. Для решения проблемы гибели под действием лактозы было предложено осуществить делецию лактозной пермеазы или сильно нарушить поглощение лактозы (34). Например, Lodi et al. (55) осуществили делецию (нокаут) гена лактозной пермеазы у K. lactis и обнаружили, что гибель под действием лактозы больше не наблюдается. В ходе этих экспериментов также было показано, что спонтанные мутации приводили к появлению штаммов, отрицательных по явлению гибели под действием лактозы, у которых были обнаружены сильные нарушения поглощения лактозы. Тем не менее, поглощение лактозы важно для эффективного синтеза специальных продуктов или биопродуктов. Таким образом, очевидно, что делеция лактозной пермеазы или сильное нарушение активности лактозной пермеазы не являются решением, поскольку продукция таких биопродуктов требует 1) эффективного поглощения лактозы и 2) наличия экспрессионной кассеты, с которой не связан «фенотип гибели под действием лактозы». Лактозная пермеаза уже использовалась ранее для производства биопродуктов на основе лактозы, но без решения проблемы «фенотипа гибели под действием лактозы». В прошлом эту проблему решали либо за счет сильного снижения поглощения лактозы (и, следовательно, это приводило к тому, что продуцировалось мало специальных продуктов на основе лактозы или они не продуцировались совсем), либо за счет разъединения фазы роста и фазы продукции, чтобы вначале нарастить достаточное количество биомассы. После окончания этой фазы роста во вторую фазу добавляли лактозу для получения специального продукта. В эту вторую фазу рост прекращается или заметно уменьшается (59).

Таким образом, в настоящее время, чтобы избежать гибели под действием лактозы, поглощение лактозы должно быть прекращено или сильно нарушено, поскольку нормальное поглощение лактозы всегда будет приводить к гибели под действием лактозы. Наоборот, настоящее изобретение раскрывает методику скрининга с целью обнаружения экспрессионных кассет лактозной пермеазы, которые могли бы обеспечить эффективное поглощение лактозы без последующей гибели под действием лактозы.

Лактоза является строительным блоком для многих биопродуктов, более конкретно, для специальных углеводов (14), гликолипидов и галактозилированных соединений, таких как галактозиллипиды, галактозилцерамиды и галактозилированные агликоны. Часто остатки галактозы используются для таргетной доставки фармацевтических агентов к конкретным органам (28). Использование лактозы в качестве субстрата в комбинации с другими веществами, тем не менее, не так очевидно, как может показаться, из-за описанного выше явления «гибели под действием лактозы». В большинстве случаев для избегания явления гибели под действием лактозы требуется применять многофазные системы получения, сопряженные клеточные системы не растущих клеток (32, 48).

Основной структурный каркас многих специальных углеводов состоит из остатков лактозы или галактозы. Конкретнее, олигосахариды человеческого молока и, следовательно, олигосахариды материнского молока, обширная группа сахаридов и олигосахаридов, построены из остатков галактозы и лактозы (15). Эти углеводы далее модифицируются остатками сахаров, такими как, например, N-ацетилглюкозамин, N-ацетилгалактозамин, сиаловые кислоты (такие как N-ацетилнейраминат, N-глюкоилнейраминат, 2-кето-3-дезокси-D-глицеро-галакто-нонулосоновая кислота и другие) (21), L-фукоза и другие. Для синтеза этих соединений необходимы активированные углеводы, такие как UDP-N-ацетилглюкозамин, UDP-N-ацетилгалактозамин, CMP-сиаловая кислота, GDP-фукоза и другие, которые являются дорогостоящими и трудно синтезируемыми, но которые в оптимальном виде продуцируются живыми растущими клетками, так как для их биосинтеза требуется энергия.

Олигосахаридные компоненты человеческого/материнского молока обладают противовоспалительным и пребиотическим действиями и/или могут использоваться в терапевтических целях в качестве нутрицевтика, противовоспалительного агента, пребиотика или фармацевтического агента (15, 24, 68). Тем не менее, по-прежнему существует необходимость в разработке эффективного способа получения перечисленных высокоценных соединений.

Настоящее изобретение описывает синтетические экспрессирующие системы для лактозных транспортеров, которые не приводят к гибели под действием лактозы даже при высоких концентрациях лактозы. Мутированные организмы, содержащие указанные экспрессирующие системы, таким образом, могут использоваться для производства описанных выше биопродуктов.

Краткое описание чертежей

Фигура 1. Влияние лактозы на штамм Е. coli дикого типа. Стрелкой указан момент добавления лактозы к одной из культур, в результате чего рост этой культуры немедленно прекратился, тогда как другой штамм продолжил расти в другой культуре.

Фигура 2. Влияние лактозы на штамм Е. coli, мутантный по гену лактозного транспортера, у которого экспрессия лактозного транспортера изменена с помощью синтетического конститутивного промотора. Стрелкой указан момент добавления лактозы к среде в одной из культур. В этом случае это не оказывало никакого эффекта на рост. Таким образом, эти мутантные штаммы могут быть выбраны таким способом.

Фигура 3. Пример комбинации промотора, RBS и последовательности лактозного транспортера (SEQ ID №1), для которой при введении в мутантный штамм Е. coli не наблюдается гибели под действием лактозы.

Фигура 4. Пример последовательности гена лактозной пермеазы, трансляционно связанного с геном lacZ (SEQ ID №2).

Фигура 5. Пример последовательности гена лактозной пермеазы lacY, трансляционно связанного с геном cat (SEQ ID №3).

Фигура 6. Пример последовательности гена лактозной пермеазы K. maxianus, трансляционно связанного с геном aph 1 (SEQ ID №4).

Фигура 7. Пример последовательности гена лактозной пермеазы lacy, связанного с аптамером, который связывается с (Z)-4-(3,5-дифтор-4-гидроксибензилиден)-1,2-диметил-1Н-имидазол-5(4Н)-оном (SEQ ID №5), благодаря чему возможно обнаружение экспрессии лактозной пермеазы.

Фигура 8. Устойчивость к хлорамфениколу штамма сравнения, содержащего плазмиду сравнения pSC101 без гена лактозной пермеазы, трансляционно связанного с геном устойчивости к хлорамфениколу, и мутантного штамма с геном лактозной пермеазы, трансляционно связанным геном устойчивости к хлорамфениколу. По оси X отложены различные тестируемые концентрации хлорамфеникола, по оси Y отложены значения оптической плотности культуры после 48 часов инкубации. Штамм сравнения демонстрирует замедление роста при более низких концентрациях хлорамфеникола в процессе скрининга по сравнению с мутантным штаммом, что подтверждает, что скрининг на экспрессию лактозной пермеазы может быть осуществлен путем трансляционного связывания ее гена с геном устойчивости к антибиотику. Следовательно, организмы, экспрессирующие лактозную пермеазу, могут быть отобраны из смеси не экспрессирующих и экспрессирующих организмов описанным образом.

Фигура 9. Устойчивость к хлорамфениколу штамма сравнения, содержащего плазмиду сравнения pSC101 без гена лактозной пермеазы, трансляционно связанного с геном устойчивости к хлорамфениколу, и мутантного штамма с геном лактозной пермеазы, трансляционно связанным с геном устойчивости к хлорамфениколу. По оси X отложены различные тестируемые концентрации хлорамфеникола, по оси Y отложены значения оптической плотности культуры после 92 часов инкубации. Штамм сравнения демонстрирует замедление роста при более низких концентрациях хлорамфеникола в процессе скрининга по сравнению с мутантным штаммом, что подтверждает, что скрининг на экспрессию лактозной пермеазы может быть осуществлен путем трансляционного связывания ее гена с геном устойчивости к антибиотику. Следовательно, организмы, экспрессирующие лактозную пермеазу, могут быть отобраны из смеси не экспрессирующих и экспрессирующих организмов описанным образом.

Фигура 10. pCXP14-FT_H. pylori (SEQ ID №6).

Фигура 11. Влияние лактозы на штамм дрожжей дикого типа (Kluyveromyces marxianus lactis). Стрелкой указан момент добавления лактозы к одной из культур, в результате чего рост этой культуры немедленно прекратился, тогда как другой штамм продолжил расти в другой культуре.

Фигура 12. Влияние лактозы на штаммы дрожжей (Saccharomyces cerevisiae) с мутантным лактозным транспортером, у которых экспрессия лактозного транспортера изменена с помощью синтетического конститутивного промотора. Стрелкой указан момент добавления лактозы к среде в одной из культур. В этом случае это не оказывало никакого эффекта на рост. Таким образом, эти мутантные штаммы могут быть выбраны таким способом.

Фигура 13. Пример комбинации промотора (p1), последовательности Козак, кодирующей последовательности лактозной пермеазы K. marxianus и терминатора (SEQ ID №7), для которой при введении в мутантный штамм дрожжей не наблюдается гибели под действием лактозы.

Фигура 14. Пример комбинации промотора (р2), последовательности Козак, кодирующей последовательности лактозной пермеазы K. marxianus и терминатора (SEQ ID №8), для которой при введении в мутантный штамм дрожжей не наблюдается гибели под действием лактозы.

Фигура 15. Пример комбинации промотора, последовательности Козак, кодирующей последовательности β-галактозидазы K. marxianus и терминатора (SEQ ID №9).

Фигура 16. HR1 рДНК (SEQ ID №10).

Фигура 17. HR2 рДНК (SEQ ID №11).

Фигура 18. Примеры выбранных последовательностей, обнаруженных с помощью методики скрининга на отсутствие гибели под действием лактозы, как описано в примерах (SEQ ID №12-57).

Фигура 19. Относительная скорость роста экспрессионных кассет лактозной пермеазы, по сравнению с диким типом. Усы графика обозначают стандартное отклонение, по меньшей мере, 3 повторных измерений. Последовательности, соответствующие номерам последовательностей по оси X, приведены на Фигуре 18.

Фигура 20. Последовательность экспрессионной кассеты lacIQ_lacY, которую тестировали на наличие гибели под действием лактозы в примере 16 (SEQ ID №58).

Фигура 21. Влияние лактозы на штамм Е. coli дикого типа и мутантный штамм placIQ_lacY. Оба штамма растили с добавлением и без добавления лактозы в середине экспоненциальной фазы. Стрелкой обозначен момент добавления лактозы. Рост обоих штаммов был сильно нарушен в результате добавления лактозы.

Сущность изобретения

Настоящее изобретение относится к способу получения микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, выращенных в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, где указанный способ включает:

a. мутирование экспрессии лактозных транспортеров в микроорганизмах, где указанная мутация приводит к экспрессируемому лактозному транспортеру,

b. выращивание указанных мутированных микроорганизмов на среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы,

c. добавление лактозы к указанной среде в процессе роста указанных мутированных микроорганизмов, и

d. отбор микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, растущих на указанной среде, включающей лактозу.

Конкретнее, настоящее изобретение относится к способу получения микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, выращенных в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, где указанный способ включает:

a. мутирование экспрессии лактозных транспортеров в микроорганизмах, где указанная мутация приводит к экспрессии указанного лактозного транспортера

b. выращивание указанных мутированных микроорганизмов на среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы,

c. добавление лактозы к указанной среде в процессе роста указанных мутированных микроорганизмов, и

d. отбор микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, растущих на указанной среде, включающей лактозу, и которые сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера.

Настоящее изобретение дополнительно относится к способу, как указано выше, где стадия а) осуществляется путем введения гетерологичного промотора перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера, и/или путем мутирования нетранслируемой области перед кодирующей последовательностью, которая содержит последовательность связывания рибосомы или последовательность Козак, и/или путем модифицирования частоты использования кодонов в эндогенном гене лактозного транспортера.

Настоящее изобретение также относится к способу, как описано выше, где указанное введение гетерологичного промотора перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера осуществляется за счет а) делеции эндогенных лактозных транспортеров из генома и введения их в другой участок в геноме указанного микроорганизма, или b) за счет введения гетерологичного промотора перед эндогенными лактозными транспортерами, или c) за счет нокаута эндогенного лактозного промотора и введения гетерологичного промотора в тот же участок генома указанного микроорганизма.

Настоящее изобретение дополнительно относится к способу, описанному выше, где экспрессия лактозной пермеазы на стадии b) обнаруживается с помощью трансляционного связывания с репортерным геном и/или через связывание с аптамером.

Настоящее изобретение относится к способу, описанному выше, где экспрессию лактозного транспортера обнаруживают посредством генетических конструкций, приведенных в SEQ ID №2, 3, 4 и/или 5.

Настоящее изобретение дополнительно относится к способу, описанному выше, где указанный лактозный транспортер представляет собой лактозную пермеазу.

Настоящее изобретение дополнительно относится к способу, описанному выше, где указанный микроорганизм представляет собой бактерию, дрожжи или грибы.

Настоящее изобретение относится также к последовательностям промотора, нетранслируемым областям перед кодирующей последовательностью, которые содержат последовательность связывания рибосомы или последовательность Козак, и/или последовательностям лактозной пермеазы, реализующим экспрессию лактозного транспортера, которая не приводит к фенотипу гибели под действием лактозы, когда микроорганизм, содержащий такую последовательность, растет в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим (другими) источником (источниками) углерода, и получен способом, описанным выше.

Настоящее изобретение также относится к микроорганизму, устойчивому к явлению гибели под действием лактозы, выращенному в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, и получен способом, описанным выше.

Более конкретно, настоящее изобретение относится к микроорганизму, описанному выше и содержащему гетерологичную последовательность перед геном лактозного транспортера, приведенную в SEQ ID №1, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46,47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56 или 57.

Настоящее изобретение относится также к микроорганизму, устойчивому к явлению гибели под действием лактозы, в котором гены, кодирующие ферменты из путей деградации лактозы и/или галактозы, являются менее функциональными или нефункциональными.

Настоящее изобретение также относится к применению микроорганизма, описанного выше, для производства специальных продуктов на основе лактозы, таких как специальные углеводы, гликолипиды и галактозилированные соединения.

Настоящее изобретение дополнительно относится к применению микроорганизма, описанного выше, где указанные специальные углеводы представляют собой 2-фукозиллактозу, или 2'-фукозиллактозу, или 3-фукозиллактозу, или 2',3-дифукозиллактозу, или лакто-N-триозу, или лакто-N-тетраозу, или лакто-N-тетраозу, или 3'-сиалиллактозу, или 6'-сиалиллактозу.

Подробное описание изобретения

Настоящее изобретение описывает новый способ для избегания гибели под действием лактозы путем изменения экспрессии лактозного транспортера за счет применения генно-инженерного организма, мутантного организма, экспрессирующего лактозный транспортер. С этой целью экзогенный и/или эндогенный ген лактозного транспортера экспрессируют с помощью гетерологичного промотора, что не приводит к фенотипу гибели под действием лактозы, и/или модифицируют частоту использования кодонов лактозного транспортера, чтобы получить измененную экспрессию лактозного транспортера, что не приводит к фенотипу гибели под действием лактозы. Для этого природная система контроля экспрессии лактозных транспортеров должна быть удалена и/или замещена таким образом, чтобы явление гибели под действием лактозы не наблюдалось. Например, встречающуюся в природе экспрессионную кассету лактозного транспортера удаляют из генома и заново вводят ее в другой участок, и/или гетерологичный промотор вводят перед лактозным транспортером в его исходном месте расположения, и/или лактозный транспортер сначала нокаутируют, а потом вводят с гетерологичным промотором в тот же самый участок генома и/или в другой участок генома, и/или лактозный транспортер вводят в оперон, который экспрессируется под действием гетерологичного промотора.

Настоящее изобретение, таким образом, относится к способу получения микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, выращенных в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, где указанный способ включает: 1) мутирование экспрессии лактозных транспортеров в микроорганизмах, где указанная мутация приводит к экспрессии указанного лактозного транспортера, 2) выращивание указанных мутированных микроорганизмов на среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы, 3) добавление лактозы к указанной среде в процессе роста указанных мутированных микроорганизмов и 4) отбор микроорганизмов, устойчивых к явлению гибели под действием лактозы, растущих на указанной среде, включающей лактозу, и которые сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера.

Термин «гибель под действием лактозы» относится к явлению задержки или остановки роста организма, который выращен в окружении, в котором лактоза или галактозид комбинируется с другим (другими) источником (источниками) углерода. Источники углерода представляют собой глицерин, мальтозу, глюкозу, фруктозу, сахарозу, фукозу, маннозу, сиаловую кислоту, крахмал, целлюлозу, полиолы (такие как маннит, ксилит, сорбит), органические кислоты (лактат, сукцинат, ацетат и другие) и/или пентозы (ксилоза, арабиноза и другие), но не ограничиваясь этим.

Настоящее изобретение описывает способ идентификации экспрессирующих систем лактозной пермеазы, которые не приводят к гибели под действием лактозы. Этот способ включает анализ роста мутантного штамма, к которому добавляют лактозу в середине экспоненциальной фазы. Этот способ может быть осуществлен в высокопроизводительном формате в микротитрационных планшетах или с помощью клеточных сортеров, обеспечивающих скрининг множества промоторов, сайтов связывания рибосомы, частоты использования кодонов и других факторов, которые могут влиять на экспрессию лактозной пермеазы в мутантном микроорганизме. Настоящее изобретение описывает способ обнаружения экспрессии лактозной пермеазы посредством трансляционного связывания и/или связывания с аптамером и отбора последовательностей, которые приводят к экспрессии, с помощью репортерного гена, такого как, например, ген устойчивости к антибиотику (например, хлорамфеникол, генетицин G418, но не ограничиваясь ими), ген флуоресцентного белка, ген гидролазы (например, галактозид азы, ксиланазы, но не ограничиваясь ими) и/или последовательность аптамера, но не ограничиваясь ими. Последовательности, приводящие к экспрессии лактозной пермеазы, далее отбирают с помощью репортерного гена путем выращивания на среде с антибиотиком, колориметрическим способом (например, X-gal), и/или с помощью клеточного сортера с активацией флуоресценцией, который сортирует флуоресцентные клетки, и/или с помощью анализа аптамера, например, с использованием (Z)-4-(3,5-дифтор-4-гидроксибензилиден)-1,2-диметил-1Н-имидазол-5(4Н)-она (37, 64), но не ограничиваясь этим. Настоящее изобретение дополнительно описывает методику скрининга для обнаружения мутантных организмов, экспрессирующих лактозный транспортер, которые не подвергаются гибели под действием лактозы. Кроме того, настоящее изобретение описывает создание библиотек экспрессионных кассет лактозной пермеазы из библиотек промоторов, библиотек последовательностей RBS или последовательностей Козак, библиотек терминаторов транскрипции и/или вариантов гена лактозной пермеазы с различной частотой использования кодонов. Эти библиотеки также могут быть созданы с помощью таких способов как сборка по методу Гибсона, сборка методом Golden Gate, сборка методом Cliva, LCR или рестрикцией и лигированием (25, 36, 50, 79), но не ограничиваясь этим.

Термин «которые сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера» относится к тому факту, что мутированные микроорганизмы по настоящему изобретению, несмотря на то, что они устойчивы к гибели под действием лактозы, должны сохранять, по меньшей мере, 50% (т.е. 50, 55, 60, 65, 70, 75, 80, 85, 90, 95, 99%) от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера.

Термин «экспрессионная кассета» относится к любой последовательности, в которой присутствуют последовательность промотора, последовательность нетранслируемой области (содержащая последовательность связывания рибосомы или последовательность Козак), кодирующую последовательность (например, последовательность гена лактозной пермеазы) и необязательно терминатор транскрипции (18).

Термин «лактозный транспортер» относится к любому белку, экспрессируемому в микроорганизме, который способен транслоцировать (транспортировать) лактозу через цитоплазматическую мембрану. Такими белками являются, например, лактозные пермеазы (транспортеры из суперсемейства MFS, или суперсемейства мембранных транспортеров Major Facilitator Superfamily).

Термин «гетерологичный промотор» относится к любому промотору, который не встречается в природе перед кодирующей последовательностью. "Промотор" представляет собой полную последовательность связывания с РНК-полимеразой, расположенную перед сайтом начала транскрипции, и нетранслируемую область перед кодирующей последовательностью. Последовательность "гетерологичного промотора", таким образом, представляет собой 1) вариант встречающейся в природе последовательности промотора, содержащей, по меньшей мере, 1 мутацию (т.е. 1, 2, 3, 4 или более), и/или 2) нативный промотор из мутантного микроорганизма, экспрессирующего лактозный транспортер, который не встречается в природе перед кодирующей последовательностью указанного транспортера, и/или 3) последовательность, которая не встречается в природе в микроорганизме, экспрессирующем лактозный транспортер, и/или 4) искусственный промотор, который представляет собой сконструированный in silico промотор. Эти промоторы могут быть найдены в библиотеках, например, описанных Alper et al. (2005), и/или НХТ7р, Hammer et al. (2006), De Mey et al. (2007), Coussement et al (2014) или Mutalik et al (2013) (3, 25, 29, 41, 60), (66), или Blount et al (2012), могут представлять собой промоторы, такие как ADH1p, TEF1p, TEF2p, GPDp, PDC1p, FBA1p, PGK1p, PGI1p, TDH2p, PYK1p, ENO2p, GPM1p, TPI1p (13), но не ограничиваясь ими, или промоторы, описанные, например, Rhodius et al. (2012). Термин «искусственный промотор» также относится к промоторам с последовательностями ДНК, которые представляют собой комбинации последовательности нативного (аутологичного) промотора с частями последовательностей других (аутологичных или гетерологичных) промоторов. Последовательности таких «искусственных промоторов» могут быть найдены в базах данных, таких как, например, partsregistry.org (19). Гетерологичные промоторы приводят либо к конститутивной экспрессии, либо к регулируемой экспрессии посредством транскрипционного фактора.

Термин «конститутивная экспрессия» означает экспрессию, которая не регулируется транскрипционными факторами, отличными от субъединиц РНК-полимеразы (например, бактериальные сигма-факторы), в определенных условиях роста. Неограничивающими примерами таких транскрипционных факторов являются CRP, LacI, ArcA, Cra, IclR и другие у Е. coli или Aft2p, Crz1p, Skn7 и другие у Saccharomyces cerevisiae, или DeoR, GntR, Fur и другие у В. subtilis. Эти транскрипционные факторы связываются с определенной последовательностью и могут блокировать или усиливать экспрессию в определенных условиях роста. РНК-полимераза связывается с определенной последовательностью для инициации транскрипции, например, посредством сигма-фактора в прокариотических клетках.

Термин «регулируемая экспрессия» означает экспрессию, которая регулируется транскрипционными факторами, отличными от субъединиц РНК-полимеразы (например, бактериальные сигма-факторы), в определенных условиях роста. Примеры таких транскрипционных факторов описаны выше.

Термин «нетранслируемая область» перед кодирующей последовательностью, которая содержит сайты связывания рибосомы или последовательности Козак, относится к последовательности между последовательностью связывания РНК- полимеразы и кодирующей последовательностью. Такой нетранслируемой областью является также последовательность, которая в природе присутствует перед кодирующей последовательностью, и/или последовательность, которая встречается в природе в микроорганизме, экспрессирующем лактозный транспортер, и/или последовательность, полученная из других организмов (прокариотов или эукариотов), и/или искусственно сконструированная последовательность, которая относится к неприродным или сконструированным in silico сайтам связывания рибосомы с известной или измеряемой скоростью трансляции, эти последовательности могут быть получены из библиотек, как описано Mutalik et al. (2013) (60), или созданы с помощью алгоритмов, например, как описано Salis et al. (2009) (67), или могут быть обнаружены в базах данных, таких как partsregistry.org (19).

Термин «модифицированная частота использования кодона» относится к изменению кодонов, использованных в кодирующей последовательности ДНК, либо на кодоны, используемые организмом чаще, либо на кодоны, используемые организмом реже. Частоту использования кодонов определяют с помощью баз данных, таких как база данных частоты использования кодонов (61), и частоту использования кодонов оптимизируют с помощью специальных алгоритмов оптимизации частоты использования кодонов (73).

Термин «трансляционно связанный» относится к связыванию экспрессии целевого гена с экспрессией репортерного гена, например, гена зеленого флуоресцентного белка, гена устойчивости к антибиотику, гена токсина (49, 53, 58, 63). Термин «трансляционный сенсор» относится к любому механизму, который может быть показателем экспрессии и трансляции гена, например, к флуоресцентным меткам и расщепленным меткам, описанным в следующих ссылках (17, 72).

Термин «связывание с аптамером» относится к введению последовательности аптамера в информационную (матричную) РНК лактозного транспортера, которая может быть обнаружена с помощью флуорофора, такого как (Z)-4-(3,5-дифтор-4- гидроксибензилиден)-1,2-диметил-1Н-имидазол-5(4Н)-он (37, 64).

Термин «анализ роста» относится к анализу кривой роста организма. Этот организм культивируется в среде для роста в условиях роста. Термин условие роста относится ко всем параметрам окружающей среды, таким как рН, температура, растворенный кислород. рН устанавливается с помощью буфера рН или за счет контроля рН и равен, например, 4, 4,5, 5, 5,5, 6, 6,5, 7, 7,5 или 8, но не ограничиваясь этим. Температура устанавливается равной, например, 25, 28, 30, 32, 34, 37, 40, 42, 45°С, но не ограничиваясь этим. Уровень растворенного кислорода соответствует анаэробным, микро-аэробным (концентрация растворенного кислорода меньше 1,5 мг/л), либо аэробным условиям.

Термин «среда» или «среда для роста» относится к любому раствору, содержащему вещества, необходимые организму для роста. Этими веществами являются источники азота, такие как соли аммония, нитраты, дрожжевой экстракт, пептон, казаминовые кислоты и/или аминокислоты, но не ограничиваясь ими, источники фосфора, такие как фосфаты, но не ограничиваясь ими, источники серы, такие как сульфаты, но не ограничиваясь ими, элементы, такие как медь, кобальт, железо, селен, иод, молибдат, магний, кальций, калий, натрий, цинк, никель, марганец, но не ограничиваясь ими, и/или борная кислота, и/или витамины, такие как тиамин, пантотеновая кислота, но не ограничиваясь ими, и/или ниацин, и/или источники углерода, такие как глицерин, мальтоза, глюкоза, фруктоза, сахароза, фукоза, манноза, сиаловая кислота, крахмал, целлюлоза, полиолы (такие как маннит, ксилит, сорбит), органические кислоты (лактат, сукцинат, ацетат и другие), и/или пентозы (ксилоза, арабиноза и другие), но не ограничиваясь ими.

Термин «организм» или «клетка», как указано выше, относится к микроорганизму, выбранному из списка, состоящего из бактерий, дрожжей или грибов, или относится к растительной или животной клетке. Бактерии предпочтительно принадлежат филуму Proteobacteria, или филуму Firmicutes, или филуму Cyanobactria, или филуму Deinococcus-Thermus. Бактерии, принадлежащие филуму Proteobacteria, предпочтительно принадлежит семейству Enterobacteriaceae, предпочтительно виду Escherichia coli. Бактерии предпочтительно относятся к любому штамму, принадлежащему виду Escherichia coli, например, включая, но не ограничиваясь, Escherichia coli В, Escherichia coli С, Escherichia coli W, Escherichia coli K12, Escherichia coli Nissle. Конкретнее, последний термин относится к культивируемым штаммам Escherichia coli, обозначаемым как штаммы Е. coli K12, которые хорошо адаптированы к лабораторному окружению, и, в отличие от штаммов дикого типа, потеряли свою способность расти в кишечнике. Хорошо известными примерами штаммов Е. coli K12 являются K12 дикого типа, W3110, MG1655, М182, МС1000, МС1060, МС1061, МС4100, JM101, NZN111 и АА200. Таким образом, настоящее изобретение, в частности, относится к мутированному и/или трансформированному штамму Escherichia coli, как указано выше, где указанный штамм Е. coli представляет собой штамм K12. Конкретнее, настоящее изобретение относится мутированному и/или трансформированному штамму Escherichia coli, как указано выше, где указанный штамм K12 представляет собой Е. coli MG1655. Бактерии, принадлежащие к филуму Firmicutes, предпочтительно принадлежат к Bacilli, предпочтительно к видам Bacillus. Дрожжи предпочтительно принадлежат к филуму Ascomycota, или филуму Basidiomycota, или филуму Deuteromycota, или филуму Zygomycetes. Дрожжи предпочтительно принадлежат к роду Saccharomyces, Pichia, Hansunella, Kluyveromyces, Yarrowia или Starmerella. Грибы предпочтительно принадлежат к роду Rhizopus, Dictyostelium или Aspergillus.

Настоящее изобретение описывает организмы, которые способны осуществлять поглощение лактозы и не подвергаться гибели под действием лактозы и которые способны превращать лактозу или остатки галактозы в ее составе в специальный продукт. Более конкретно, указанные специальные продукты или биопродукты представляют собой специальные углеводы, гликолипиды, включая галактолипиды и/или лактолипиды, но не ограничиваясь ими, и/или галактозилированные соединения, такие как галактозиллипиды, галактозилцерамиды и/или галактозилированные агликоны.

Настоящее изобретение описывает организмы, которые способны осуществлять поглощение лактозы, не подвергаясь гибели под действием лактозы, и превращать указанную лактозу в олигосахариды человеческого молока, такие как 3-фукозиллактоза, 2'-фукозиллактоза, 6-фукозиллактоза, 2',3-дифукозиллактоза, 2',2-дифукозиллактоза, 3,4-дифукозиллактоза, 6'-сиалиллактоза, 3'-сиалиллактоза, 3,6-дисиалиллактоза, 6,6'-дисиалиллактоза, 3,6-дисиалиллакто-N-тетраоза, лактодифукотетраоза, лакто-N-тетраоза, лакто-N-неотетраоза, лакто-N-фукопентаоза II, лакто-N-фукопентаоза I, лакто-N-фукопентаоза III, сиалиллакто-N-тетраоза с, сиалиллакто-N-тетраоза b, сиалиллакто-N-тетраоза а, лакто-N-дифукогексаоза I, лакто-N-дифукогексаоза II, лакто-N-гексаоза, лакто-N-неогексаоза, пара-лакто-N-гексаоза, монофукозилмоносиалиллакто-N-тетраоза с, монофукозил пара-лакто-N-гексаоза, монофукозиллакто-N-гексаоза III, изомерная фукозилированная лакто-N-гексаоза III, изомерная фукозилированная лакто-N-гексаоза I, сиалиллакто-N-гексаоза, сиалиллакто-N-неогексаоза II, дифукозил-пара-лакто-N-гексаоза, дифукозиллакто-N-гексаоза, дифукозиллакто-N-гексаоза а, дифукозиллакто-N-гексаоза с, галактозилированный хитозан, фукозилированные олигосахариды и/или сиалилированные олигосахариды, но не ограничиваясь ими.

Настоящее изобретение дополнительно описывает организмы, которые не подвергаются гибели под действием лактозы и которые синтезируют сахара, входящие в состав нуклеотидов, такие как GDP-L-фукоза, GDP-манноза, GDP-глюкоза, CMP-сиаловая кислота, UDP-глюкоза, UDP-галактоза, UDP-N-ацетилглюкозамин, UDP-N-ацетилманнозамин, UDP-N-ацетилгалактозамин, UDP-глюкуроновая кислота, UDP-галактуроновая кислота, UDP-ксилоза, UDP-арабиноза и/или dTDP-рамноза, но не ограничиваясь ими. Термин "сиаловая кислота", согласно определению Varki (1992) (71), относится к группе соединений, таких как нейраминовая кислота, N-ацетилнейраминовая кислота или N-гликозилнейраминовая кислота, но не ограничиваясь ими. Внутриклеточная концентрация или пул GDP-фукозы увеличивается за счет повышающей регуляции метаболического пути синтеза de novo и/или усиления реутилизации. Метаболический путь синтеза de novo состоит из GDP-4- кето-6-дезоксиманноза-3,5-эпимеразы-4-редуктазы или синтазы GDP-фукозы, 4,6-дегидратазы GDP-маннозы, пирофосфорилазы GDP-D-маннозы, изомеразы фосфоманнозы и/или фосфоманномутазы, экспрессия которых увеличивается индивидуально с помощью генетических элементов, таких как промоторы и/или сайты связывания рибосомы, но не ограничиваясь ими, и/или за счет изменения частоты использования кодонов в моноцистроне или полицистроне (структура оперона), и/или с помощью регуляторов arcA iclR в Enter obacteriaceae, и/или с помощью транскрипционного регулятора RcsA в Enterobacteriaceae или гомологичных генов в бактериях, или Xbp1, Spt20, Sfp1, Rpd3, Rap1, Gcr1, Gcn5, Cst6, Abf1, Hsf1, Reb1, Cad1, Sin4, Ash1, Ixr1, Met32, Pho2, Rgr1, Spt7, Swi4 в Saccharomyces cerevisiae, или гомологичных генов в дрожжах или грибах. Метаболический путь реутилизации состоит из киназы L-фукозы и/или пирофосфорилазы GDP-L-фукозы. Пул GDP-маннозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих пирофосфорилазу GDP-D-маннозы, изомеразу фосфоманнозы и/или фосфоманномутазу; и/или генов, кодирующих маннокиназу и пирофосфорилазу GDP-D-маннозы. Пул UDP-галактозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих галактокиназу, и/или галактоза-1-фосфат-уридилтрансферазу, и/или UDP-галактоза-4-эпимеразу, и/или UDP-галактоза/глюкоза пирофосфорилазу, и/или синтазу лактозы, и/или фосфорилазу лактозы, и/или фосфорилазы сахарозы. Пул UDP-глюкозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих глюкокиназу, и/или пирофосфорилазу UDP-глюкозы, и/или фосфорилазу сахарозы, и/или фосфоглюкомутазу, и/или синтазу сахарозы. Пул СМР-сиаловой кислоты увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих L-глутамин:D-фруктоза-6-фосфат-аминотрансферазу, и/или мутазу фосфоглюкозамина, и/или глюкозамин-1-фосфат-ацетилтрансферазу, и/или N-ацетилглюкозамин-1-фосфат-уридилтрансферазу, и/или UDR-N-ацетилглюкозамин-2-эпимеразу, и/или синтазу N-ацетилнейраминовой кислоты, и/или синтетазу цитидин-5'-монофосфат-N-ацетилнейрамината. Пул UDP-N-ацетилглюкозамина увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих L-глутамин : D-фруктоза-6-фосфат-аминотрансферазу, и/или мутазу фосфоглюкозамина, и/или глюкозамин-1-фосфат- ацетилтрансферазу, и/или N-ацетилглюкозамин-1-фосфат-уридилтрансферазу, и/или глюкозамин-6-фосфат-N-ацетилтрансферазу, и/или мутазу фосфоацетилглюкозамина, и/или UDP-N-ацетилглюкозамин-пирофосфорилазу. Пул UDP-N-ацетилманнозамина увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-N-ацетилглюкозамина, и/или генов, кодирующих UDP-N-ацетилглюкозамин-2-эпимеразу. Пул UDP-N-ацетилглюкозамина увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-N-ацетилглюкозамина, и/или генов, кодирующих UDP-N-ацетилглюкозамин-С4-эпимеразу. Пул UDP-глюкуроновой кислоты увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-глюкозы, и/или генов, кодирующих дегидрогеназу UDP-глюкозы. Пул UDP-ксилозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-глюкуроновой кислоты, и/или генов, кодирующих синтазу UDP-D-ксилозы. Пул UDP-галактуроновой кислоты увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-глюкуроновой кислоты, и/или генов, кодирующих UDP-D-глюкуроновая кислота-4-эпимеразу. Пул UDP-арабинозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, опосредующих увеличение пула UDP-глюкуроновой кислоты, и/или генов, кодирующих UDP-D-ксилоза-4-эпимеразу, и/или киназу арабинозы, и/или пирофосфорилазу UDP-L-арабинозы. Пул dTDP-рамнозы увеличивается за счет повышающей регуляции генов, кодирующих пирофосфорилазу dTDP-глюкозы, и/или dTDP-глюкоза-4,6-дегидратазу, и/или dTDP-4-дегидрорамноза-3,5-эпимеразу, и/или dTDP-4-дегидрорамноза редуктазу, и/или глюкоза-1-фосфат-тимидилтрансферазу, и/или синтазу нуклеотид-рамнозы.

Термин "пул" дополнительно относится к концентрациям метаболитов, которые в естественных условиях встречаются в организме дикого типа, например, концентрации пула сахара, входящего в состав нуклеотидов. Термин "увеличенный пул" относится к значительно увеличенной концентрации указанного пула метаболита по сравнению с пулом метаболита в организме дикого типа.

Термин "повышающая регуляция гена" относится к каждой генетической модификации, которая приводит к усиленной экспрессии гена и/или активности продукта указанного гена. Указанная генетическая модификация представляет собой модификацию промотора, в нетранслируемой области, сайта связывания рибосомы, кодирующей последовательности, локализации гена, структуры интрона/экзона и/или терминатора транскрипции, которая приводит к указанному повышению экспрессии и/или активности.

Кроме того, настоящее изобретение описывает генетически модифицированные организмы, которые способны переносить эти сахара в составе нуклеотидов в моно-, ди- или олигосахариды, такие как галактоза, лактоза, лакто-N-биоза, лакто-N-триоза, лакто-N-тетраоза, лакто-N-неотетраоза, глоботриоза, 2'-фукозиллактоза, 3-фукозиллактоза, 3-сиалиллактоза, 6-сиалиллактоза, олигосахариды человеческого молока, гепарозаны, хитозаны, факторы образования клубеньков (Nod-факторы), гликолипиды и/или агликоны, но не ограничиваясь ими, с помощью фермента гликозилтрансферазы.

Настоящее изобретение также описывает организмы, которые не подвергаются гибели под действием лактозы и которые дополнительно могут модифицировать указанную лактозу с помощью ферментов, таких как гидролазы углеводов, трансферазы углеводов, синтазы углеводов, ацетилазы, ацилтрансферазы, фосфатазы углеводов, лиазы полисахаридов, киназы, пирувилазы (pyruvylases) и/или сульфотрансферазы, но не ограничиваясь ими.

Настоящее изобретение дополнительно описывает организмы, которые не подвергаются гибели под действием лактозы и которые больше не деградируют лактозу в результате того, что ген гидролазы лактозы у этих организмов становится менее функциональным или не функциональным.

Термин «гены, которые становятся менее функциональными или нефункциональными» относится к методикам, хорошо известным специалистам в данной области технике, таким как использование миРНК, интерферирующих РНК, микроРНК, асРНК, мутированных генов, нокаута генов, транспозонного мутагенеза, CrispR/CAS и т.п., которые используются для изменения генов таким образом, что они обладают меньшей способностью (т.е. статистически значимой «меньшей способностью» по сравнению с функциональным геном дикого типа) или полностью теряют способность (например, нокаутированные гены) продуцировать функционально активные конечные продукты. Термин «нокаут (гена)», таким образом, относится к гену, который становится нефункциональным. Термин «удаленный ген» или «делеция гена» также относится к гену, который становится нефункциональным (2, 4-9, 22, 27, 30, 43, 45, 46, 51, 65, 74).

Настоящее изобретение описывает организмы, в которых гены введены/нокаутированы/повышающе регулированы с целью производства биопродуктов, описанных выше. Такие гены можно найти с помощью генетических баз данных, таких как, например, genbank, но не ограничиваясь этим, или белковых баз данных, таких как, например, uniprot, но не ограничиваясь этим, или баз данных ферментов, таких как, например, база данных ферментов Brenda, но не ограничиваясь этим (16, 23, 38), а метаболические пути синтеза биопродуктов описаны в таких базах данных как, например, KEGG, Biocyc, Metacyc (20, 44, 47), но не ограничиваясь ими. Метаболические пути синтеза некоторых биопродуктов, описанных выше, можно установить с помощью нескольких математических инструментов, описанных в данной области техники (35, 54, 57, 76).

Примеры

1. Материалы и методы для работы с Escherichia coli

Штаммы и плазмиды

Escherichia coli MG1655 [λ^-, F^-, rph-1] и JM109 были получены из Нидерландской коллекции культур бактерий (NCCB). Все мутантные штаммы были созданы с использованием способа Datsenko & Wanner (27).

Среды

Среда Luria Broth (LB) состояла из 1% триптона пептона (Difco, Эрембодегем, Бельгия), 0,5% дрожжевого экстракта (Difco) и 0,5% хлорида натрия (VWR, Лёвен, Бельгия). Среда для встряхиваемой колбы содержала 2 г/л NH₄Cl, 5 г/л (NH₄)₂SO₄, 2,993 г/л KH₂PO₄, 7,315 г/л K₂HPO₄, 8,372 г/л MOPS, 0,5 г/л NaCl, 0,5 г/л MgSO₄⋅7H₂O, 15 г/л глицерина (если не указано иное), 1 мл/л раствора витаминов, 100 мкл/л раствора молибдата и 1 мл/л раствора селена. рН среды доводили до 7 с помощью 1М KOH.

Раствор витаминов состоял из 3,6 г/л FeCl₂⋅4H₂O, 5 г/л CaCl₂⋅2H₂O, 1,3 г/л MnCl₂⋅2H₂O, 0,38 г/л CuCl₂⋅2H₂O, 0,5 г/л CoCl₂⋅6H₂O, 0,94 г/л ZnCl₂, 0,0311 г/л Н₃ВО₄, 0,4 г/л Na₂EDTA⋅2H₂O и 1,01 г/л тиамина ⋅ HCl. Раствор молибдата содержал 0,967 г/л Na₂MoO₄⋅2H₂O. Раствор селена содержал 42 г/л SeO₂.

Минимальная среда для ферментации содержала 6,75 г/л NH₄Cl, 1,25 г/л (NH₄)₂SO₄, 1,15 г/л KH₂PO₄, 0,5 г/л NaCl, 0,5 г/л MgSO₄⋅7H₂O, 30 г/л лактозы и 20 г/л сахарозы (или другие концентрации, если указано иное), 1 мл/л раствора витаминов, 100 мкл/л раствора молибдата и 1 мл/л раствора селена такого же состава, как описано выше.

Условия культивирования

Предварительную культуру от одной колонии на чашке со средой LB инкубировали в 5 мл среды LB на протяжении 8 часов при 37°C на орбитальном встряхивателе при 200 rpm. Из этой культуры 2 мл переносили в 100 мл минимальной среды во встряхиваемую колбу объемом 500 мл и инкубировали в течение 16 часов при 37°C на орбитальном встряхивателе при 200 rpm. 4% инокулят использовали в 2 или 5 л сосуде для культивирования Biostat В Plus с рабочим объемом 1,5 л или 4 л (Sartorius Stedim Biotech, Мельзунген, Германия). Условия культивирования были следующими: 37°C, перемешивание при 800 rpm и скорость подачи газа 1,5 л/мин. Аэробные условия поддерживали барботированием воздуха. рН поддерживали на уровне 7 с помощью 0,5 М H₂SO₄ и 35% М раствора аммония. Выходящий газ охлаждали до 4°C при помощи устройства для охлаждения выходящих газов (Frigomix 1000, Sartorius Stedim Biotech, Мельзунген, Германия). Когда в процессе ферментации образовывалась пена, добавляли 10% раствор кремнийорганического противовспенивающего агента (BDH 331512К, VWR Int Ltd., Пул, Англия) (приблизительно 10 мкл). Отходящий газ анализировали при помощи анализатора отходящего газа EL3020 (ABB Automation GmbH, 60488 Франкфурт-на-Майне, Германия).

Все данные регистрировали с помощью системы Sartorius MFCS/win, версия 3.0 (Sartorius Stedim Biotech, Мельзунген, Германия).

Методика отбора проб

Внутри биореактора находится собирательная трубка (BD Spinal Needle, 1,2×152 мм (BDMedical Systems, Franklin Lakes, NJ - США), которая соединена с портом реактора, а снаружи соединена с гибкой трубкой Masterflex-14 (Cole-Parmer, Антверпен, Бельгия), заканчивающейся собирательным портом с перегородкой для отбора проб. С другой стороны этот собирательный порт обратно соединен с реакционным сосудом с помощью гибкой трубки Masterflex-16. Такая система называется петлей для быстрого отбора проб. Во время отбора проб реакционный бульон прокачивается по петле для отбора проб. Было посчитано, что при скорости потока 150 мл/мин реакционный бульон достигает собирательного порта за 0,04 с и за 3,2 с возвращается обратно в реактор. При уровне рО₂, равным 50%, содержание кислорода в жидкости составляет примерно 3 мг/л при 37°C. Уровень рО₂ никогда не должен падать ниже 20%, чтобы избегать микроаэробных условий. Таким образом, во время прохождения через собирательную петлю может поглощаться 1,8 мг/л кислорода. Если предположить, что скорость поглощения кислорода составляет 0,4 г кислорода/г биомассы/ч (максимальная скорость поглощения кислорода при μ_max), то для 5 г/л биомассы скорость поглощения кислорода будет составлять 2 г/л/ч или 0,56 мг/л/с, с учетом 3,2 с (время пребывания биомассы в петле) поглощение кислорода составит 1,8 мг/л.

Для подавления метаболизма клеток во время отбора проб реакционный бульон засасывали из собирательного порта с помощью шприца, заполненного 62 г шариков из нержавеющей стали, предварительно охлажденных до -20°C, чтобы немедленно охладить 5 мл бульона до 4°C. После отбора пробы немедленно центрифугировали с охлаждением (15000 g, 5 мин, 4°C). Во время периодических экспериментов образцы для измерения OD_600нм отбирали, используя петлю для быстрого отбора проб и способ отбора проб с охлажденными стальными шариками. Способы анализа

Плотность клеток культуры постоянно контролировали путем измерения оптической плотности при 600 нм (спектрофотометр Uvikom 922, BRS, Брюссель, Бельгия). Сухую массу клеток получали центрифугированием (15 мин, 5000g, ротор GSA, Sorvall RC-5B, Goffin Meyvis, Капеллен, Бельгия) 20 г реакционного бульона в предварительно высушенных и взвешенных пробирках типа Falcon. Далее осадок один раз промывали 20 мл физиологического раствора (9 г/л NaCl) и высушивали при 70°C до постоянного веса. Чтобы иметь возможность преобразовывать результаты измерений OD_600нм в значения концентрации биомассы, была построена кривая корреляции между OD_600нм и концентрацией биомассы. Концентрации глюкозы и органических кислот определяли с помощью системы HPLC Varian Prostar (Varian, Синт-Кателейне-Вавер, Бельгия), используя колонку Aminex НРХ-87Н (Bio-Rad, Эке, Бельгия), нагретую до 65°C, оснащенную предколонкой длинной 1 см, и используя в качестве подвижной фазы 5 мМ H₂SO₄ (0,6 мл/мин). Для детектирования пика использовали двухволновой UV-VIS (210 нм и 265 нм) детектор (Varian Prostar 325) и дифференциальный рефрактометрический детектор (Merck LaChrom L-7490, Merck, Левен, Бельгия). Пики можно идентифицировать, разделив значение поглощения для пика при 265 на значения поглощения пика при 210 нм. Результаты деления представляют собой постоянную величину, характерную для определенного соединения (формула Ламберта-Бера).

Глюкозу, фруктозу, сахарозу, олигосахариды и глюкозу-1-фосфат измеряли методом HPLC с использованием колонки Hypercarb и обнаруживали с помощью детектора MSMS (Antonio et al., 2007; Nielsen et al., 2006).

Генетические способы

Способы, используемые для получения мутантов, описаны ниже.

Плазмиды поддерживали в клетка-хозяевах Е. coli DH5α (F^-, ϕ80dlacZΔM15, Δ(lacZYA-argF)U169, deoR, recA1, endA1, hsdR17(rk^-, mk⁺), phoA, supE44, λ^-, thi-1, gyrA96, relA1).

Плазмиды

Плазмиды pKD46 (вспомогательная плазмида Red, устойчивость к ампициллину), pKD3 (содержит фланкированный FRT-сайтами ген устойчивости к хлорамфениколу (cat)), pKD4 (содержит фланкированный FRT-сайтами ген устойчивости к канамицину (kan)) и рСР20 (экспрессирует FLP рекомбиназу) использовали для получения мутантных конструкций. Плазмиду pBluescript (Fermentas, Санкт-Леон-Рот, Германия) использовали для получения производных pKD3 и pKD4 с библиотекой промоторов или с аллелями, несущими точечную мутацию.

Мутации

Мутации заключались в нарушении функции гена (нокаут, KO). Они были введены с использованием концепции Datsenko и Warmer (27).

Трансформантов, содержащих вспомогательную плазмиду Red, выращивали в 10 мл среды LB с ампициллином (100 мг/л) и L-арабинозой (10 мМ) при 30°C до OD_600нм, равной 0,6. Для получения электрокомпетентных клеток клетки промывали сначала 50 мл ледяной воды, затем 1 мл ледяной воды. Далее клетки ресуспендировали в 50 мкл ледяной воды. Электропорацию проводили, используя 50 мкл клеток, 10-100 нг линейного двухцепочечного ДНК продукта и Gene Pulser™ (BioRad) (600 Ω, 25 мкФ и 250 вольт).

После электропорации клетки добавляли к 1 мл среды LB и инкубировали 1 ч при 37°C, после чего высевали на LB-агар, содержащий 25 мг/л хлорамфеникола или 50 мг/л канамицина для отбора трансформантов, устойчивых к антибиотику. Наличие мутаций в отобранных мутантах подтверждали методом ПЦР с праймерами к участкам последовательности, расположенным выше и ниже модифицированной области, далее отобранных мутантов выращивали на LB-агаре при 42°C, чтобы они утратили вспомогательную плазмиду. Мутантов тестировали на чувствительность к ампициллину.

Линейная двухцепочечная ДНК

Линейные дц-ДНК ампликоны получали с помощью ПЦР, используя в качестве матрицы pKD3, pKD4 и их производные. Часть последовательности используемых праймеров была комплементарна матрице, а другая часть комплементарна участку на хромосомной ДНК, где должна произойти рекомбинация. Для KO была сконструирована область гомологии 50 нуклеотидов до стартового кодона целевого гена и область гомологии 50 нуклеотидов после стоп- кодона целевого гена. Для KI необходимо было сохранить точку начала транскрипции (+1). ПЦР продукты очищали после ПЦР, расщепляли DpnI, вторично очищали в агарозном геле и суспендировали в элюирующем буфере (5 мМ Tris, рН 8,0).

Удаление гена устойчивости к антибиотику. Отобранных мутантов (устойчивых к хлорамфениколу или канамицину) трансформировали плазмидой рСР20, представляющей собой плазмиду с устойчивостью к ампициллину и хлорамфениколу, обладающей чувствительной к температуре репликацией и термической индукцией синтеза FLP. Устойчивых к ампициллину трансформантов отбирали при 30°C, после чего несколько колоний очищали на LB при 42°C и далее проверяли, утратили ли они всю устойчивость к антибиотикам и вспомогательную плазмиду FLP. Нокауты и вставки генов проверяли с помощью контрольных праймеров (Fw/Rv-gene-out).

Трансформация

Плазмиды трансформировали в CaCl₂ компетентные клетки по упрощенной методике Hanahan (42) или электропорацией, как описано выше.

2. Материалы и методы для работы с дрожжами

2.1. Штаммы

Saccharomyces cerevisiae BY4742 были получены из коллекции культур Euroscarf. Все мутантные штаммы были созданы путем гомологичной рекомбинации или путем трансформации плазмидой с использованием способа Gietz (40). Kluyveromyces marxianus lactis были получены из коллекции культур Лаборатории промышленной биотехнологии и биокатализа.

2.2. Среды

Штаммы выращивали на синтетической среде с точно установленным составом для дрожжей с полной смесью добавок (Synthetic Defined yeast medium with Complete Supplement Mixture, SD CSM) или CSM drop-out (SD CSM-Ura), содержащей 6,7 г.л^-1 основы азотного агара для дрожжей без аминокислот (YNB w/o АА, Difco), 20 г.л^-1 агара (Difco) (твердые культуры), 22 г.л^-1 глюкозы моногидрата или 20 г.л^-1 лактозы и 0,79 г.л^-1 CSM или 0,77 г.л^-1 CSM-Ura (MP Biomedicals).

2.3. Условия культивирования

Культуры дрожжей сначала инокулировали в 5 мл подходящей среды и инкубировали в течение ночи при 30°C и 200 rpm. Для увеличения объема культуры 2% (или больше) предварительной культуры инокулировали в 50-200 мл среды. Эти культуры снова инкубировали при 30°C и 200 rpm.

Эксперименты по анализу роста проводили в 96-луночном планшете или колбе Эрленмейера. Чтобы получить одиночные колонии в качестве стартового материала для экспериментов по анализу роста и продукции, штаммы высевали на чашки с селективной средой SD CSM и инкубировали в течение 2-3 дней при 30°C. Затем отбирали одну колонию и переносили в 5 мл среды для проведения экспериментов в колбе Эрленмейера или в 1 мл среды для проведения экспериментов в микротитрационных планшетах.

Для проведения экспериментов в колбе Эрленмейера предварительные культуры инкубировали в течение ночи при 30°C и 200 rpm и 2% от этих предварительных культур добавляли к 100 мл среды, чтобы начать эксперименты по анализу роста.

Для экспериментов по анализу роста МТР колонии добавляли к 150 мкл среды и инкубировали в течение 24 часов при 30°C. После инкубации 2 мкл предварительных культур МТР добавляли к 150 мкл свежей среды, содержащей МТР. OD измеряли каждые пятнадцать минут в течение 48 часов с помощью Infinite® 200 Pro Tecan.

2.4. Методика отбора проб

Пробы для измерения OD, клеточной фракции (0,2 мл) и фракции супернатанта (1 мл) культуры отбирали каждые два часа до достижения стационарной фазы и каждую пару часов на протяжении стационарной фазы. Пробу объемом 1 мл сначала центрифугировали (11), после чего клеточный осадок и супернатант разделяли и хранили отдельно при -20°C. Супернатант хранили для проведения анализа внеклеточных продуктов, а клеточный осадок использовали для анализа внутриклеточных метаболитов.

2.5. Способы анализа

Плотность клеток культуры постоянно контролировали путем измерения оптической плотности при 600 нм (спектрофотометр Uvikom 922, BRS, Брюссель, Бельгия) или с помощью микротитрационного планшетного ридера Biochrom Anthos Zenyth 340. Сухую массу клеток получали центрифугированием (15 мин, 5000g, ротор GSA, Sorvall RC-5B, Goffin Meyvis, Капеллен, Бельгия) 20 г реакционного бульона в предварительно высушенных и взвешенных пробирках типа Falcon. Далее осадок один раз промывали 20 мл физиологического раствора (9 г/л NaCl) и высушивали при 70°C до постоянного веса. Чтобы иметь возможность преобразовывать результаты измерений OD_600нм в значения концентрации биомассы, была построена кривая корреляции между OD_600нм и концентрацией биомассы. Концентрации глюкозы и органических кислот определяли с помощью системы HPLC Varian Prostar (Varian, Синт-Кателейне-Вавер, Бельгия), используя колонку Aminex НРХ-87Н (Bio-Rad, Эке, Бельгия), нагретую до 65°C, оснащенную предколонкой длинной 1 см и используя в качестве подвижной фазы 5 мМ H₂SO₄ (0,6 мл/мин). Для детектирования пика использовали двухволновой детектор UV-VIS (210 нм и 265 нм) (Varian Prostar 325) и дифференциальный рефрактометрический детектор (Merck LaChrom L-7490, Merck, Левен, Бельгия). Пики можно идентифицировать, разделив значение поглощения для пика при 265 на значения поглощения пика при 210 нм. Результаты деления представляют собой постоянную величину, характерную для определенного соединения (формула Ламберта-Бера).

Глюкозу, фруктозу, сахарозу, олигосахариды и глюкозу-1-фосфат измеряли методом HPLC с использованием колонки Hypercarb и обнаруживали с помощью детектора MSMS (Antonio et al., 2007; Nielsen et al., 2006).

2.6. Генетические способы

Способы, используемые для получения мутантов, описаны ниже.

Плазмиды поддерживали в клетках-хозяевах Е. coli DH5α (F^-, ϕ80dlacZΔM15, Δ(lacZYA-argF)U169, deoR, recA1, endA1, hsdR17 (rk^-, mk⁺), phoA, supE44, λ^-, thi-1, gyrA96, relAX).

Плазмиды

Экспрессионную плазмиду дрожжей p2a_2μ_Lac4, полученную из Лаборатории промышленной биотехнологии и биокатализа, использовали, чтобы обеспечить рост Saccharomyces на лактозе в качестве единственного источника С.Эта плазмида содержит ген устойчивости к ампициллину и бактериальную точку начала репликации, чтобы можно было осуществлять селекцию и поддерживать плазмиду в Е. coli. Плазмида также содержит 2μ ori дрожжей и селективный маркер Ura3, чтобы можно было осуществлять селекцию и поддерживать плазмиду в дрожжах. И последнее, плазмида содержит экспрессионную кассету β-галактозидазы (SEQ ID 9, Фигура 15).

Мутации

Мутации заключались во введении плазмиды p2a_2μ_Lac4 (как описано выше) и во вставке гена (KI) (KI в локусе рДНК) с использованием двухцепочечной линейной ДНК (как описано выше). Трансформантов высевали на среду SD CSM-Ura после трансформации плазмидной ДНК или на среду SD CSM-Ura с лактозой в качестве единственного источника С после трансформации двухцепочечной линейной ДНК. Наличие плазмид в отобранных мутантах подтверждали с помощью ПЦР с праймерами, соответствующими p2a_2μ_Lac4. Наличие геномной вставки в отобранных мутантах подтверждали с помощью ПЦР с праймерами к участкам выше и ниже модифицированной области, а также подтверждали секвенированием (проводили в LGC Genomics (LGC group, Германия)).

Линейная двухцепочечная ДНК

Линейные дц-ДНК ампликоны получали с помощью ПЦР, используя в качестве матрицы плазмиды pJet_KI_p1_Lac12_t@rDNA или pJet_KI_p2_Lac12_t@rDNA. Эти плазмиды содержат области гомологии размером 2500 пар оснований (HR1 (SEQ ID 10, Фигура 16) и HR2 (SEQ ID 11, Фигура 17)), фланкирующие SEQ ID 7 и SEQ ID 8, соответственно, вставленные по сайту множественного клонирования клонирующего вектора pJET (Thermoscientific). Используемые праймеры гомологичны 5'-концу HR1 (прямой праймер) и 3'-концу HR2 (обратный праймер). Перед трансформацией продукты ПЦР очищали после ПЦР.

Трансформация

Плазмиды и линейную двухцепочечную ДНК трансформировали, используя способ Gietz (40).

3. Результаты

Пример 1. Вставка лактозной пермеазы lacYE. coli в локус agp.

Первый штамм MG1655ΔlacY был создан в соответствии со способом Datsenko и Wanner, как описано выше. Для этого MG1655 трансформировали плазмидой pKD46 и линейную ДНК конструировали из основных плазмид pKD3 и pKD4 с фланкированными областями гомологии к гену lacY. Успешных рекомбинантов далее подвергали скринингу с соответствующими антибиотиками. Чтобы убедиться, что этот штамм не способен поглощать лактозу, штамм выращивали на минимальной среде, содержащей только лактозу в качестве источника углерода. В ходе этого эксперимента рост не наблюдался, следовательно, эта клетка не может больше транспортировать лактозу через свою мембрану.

Чтобы далее получить синтетическую экспрессирующую систему, синтетический промотор и RBS были синтезированы в комбинации с геном lacY (был заказан в IDT и Geneart). Эта последовательность показана на Фигуре 3. Эта последовательность также была введена в геном в локусе гена agp, следуя адаптированной методике Datsenko и Wanner. Кратко, конструкцию лактозной пермеазы сначала собирали со скрининговой кассетой из плазмиды pKD3, в результате чего была получена новая плазмида pCX_lacY-kan. Из этой плазмиды линейная ДНК может быть амплифицирована методом ПЦР с гомологией к геномной области agp. Эта полученная линейная ДНК далее может быть трансформирована в MG1655ΔlacY Е coli, в которой присутствует плазмида pKD46. В результате происходит рекомбинация экспрессионной кассеты лактозного транспортера в геном и образуется организм, экспрессирующей лактозную пермеазу, MG1655ΔlacYΔagp::lacY_synthetic. Чтобы подтвердить восстановление способности расти на лактозе, этот штамм выращивали на минимальной среде, содержащей лактозу, как описано выше. Способность расти на лактозе была восстановлена полностью, а скорость роста была аналогична скорости роста штамма дикого типа.

Пример 2. Влияние лактозы на штамм Е. coli дикого типа и мутантный штамм Е. coli, который не подвергается гибели под действием лактозы

Эксперимент во встряхиваемой колбе, как описано в материалах и методах, проводили на MG1655 дикого типа и MG1655ΔlacYΔagp::lacY_synthetic. Эти штаммы выращивали во встряхиваемой колбе в среде с глицерином (15 г/л глицерина, как описано в материалах и методах), и в середине экспоненциальной фазы (приблизительно при OD 0,8) к штаммам добавляли лактозу (200 г/л концентрированного раствора добавляли до конечной концентрации 10 г/л). Как можно видеть на Фигуре 1 и Фигуре 2, мутантный штамм не подвергается гибели под действием лактозы.

Пример 3. Использование трансляционного связывания или трансляционных сенсоров для подтверждения экспрессии лактозного транспортера

Поскольку штамм с полностью нокаутированным геном лактозной пермеазы также не будет подвергаться гибели под действием лактозы, а целью является получение функциональной, активной, экспрессируемой лактозной пермеазы, необходимо проводить скрининг на экспрессию лактозной пермеазы. С этой целью могут быть созданы варианты последовательностей промоторов, сайтов связывания рибосом, последовательностей Козак, варианты с измененной частотой использования кодонов и варианты терминаторов транскрипции. Тем не менее, с этими вариантами последовательностей могут получиться конструкции с нулевой экспрессией, в результате чего образуются мутантные штаммы, у которых отсутствует лактозный транспортер. Поэтому должна быть создана система для обнаружения экспрессии лактозного транспортера, предпочтительно с репортерным геном, по которому легко можно провести скрининг, например, таким как lacZ, гены флуоресцентных белков или гены устойчивости к антибиотикам.

Создание трансляционно связанной системы, которая повторно инициирует трансляцию репортерного гена для обнаружения экспрессии лактозного транспортера

Два гена могут быть трансляционно связаны путем введения области повторной инициации трансляции, расположенной с 3' конца от целевого гена и с 5' конца от репортерного гена. Трансляция может быть повторно инициирована с помощью нескольких кодонов, таких как AUG, UUG, GUG или AUA (63). Последовательность такой конструкции, которая трансляционно связывает ген лактозной пермеазы и ген lacZ, показана на Фигуре 4. Для создания этой последовательности последовательности lacY и lacZ амплифицируют из генома Е. coli с использованием праймеров с сайтами рестрикции golden gate (BsaI, получены из NEB). Межгенная область, обеспечивающая трансляционное связывание, может быть заказана в любой компании, занимающейся синтезом генов, например, в IDT или Geneart. Все части далее собираются методом Golden Gate, как описано Engler et al. (2013) (36), в плазмиду pUC54 вместе с промотором и последовательностью RBS, как показано на Фигуре 3 (для Е. coli), или в плазмиду pGK12, которая реплицируется в Bacillus sp. и содержит промотор и сайт связывания рибосомы Bacillus.

Создание трансляционно связанной системы, инициирующей трансляцию репортерного гена, для обнаружения экспрессии лактозного транспортера посредством раскрытия петли на сайте связывания рибосомы

Второй способ проведения скрининга на наличие экспрессии, основанный на трансляционном связывании, описан Mendez-Perez et al. (2012) (58). Этот способ был адаптирован для скрининга на наличие экспрессии лактозной пермеазы с репортерным геном устойчивости к хлорамфениколу. В этом случае лактозный транспортер lacY связан посредством HIS-tag и сайта связывания рибосомы с репортерным геном устойчивости к хлорамфениколу. Части последовательности для этой конструкции также заказаны в IDT или Geneart и собраны по методу сборки Golden gate. Полученная последовательность приведена на Фигуре 5.

Создание трансляционно связанной системы, связывающей лактозный транспортер дрожжей с репортерным геном

Несмотря на то что у дрожжей нет цистронов, возможно провести скрининг на наличие экспрессии посредством трансляционного связывания через вирусные сайты внутренней посадки рибосомы (так называемые последовательности IRES) (56). Примером такой последовательности является последовательность Т2А (10), которая обеспечивает полностью независимую (это означает, что белки не представляют собой белок слияния), но связанную трансляцию двух белков в цистроне. Это означает, что если последний белок цистрона экспрессируется, то первый белок тоже экспрессируется.

В дрожжах, например, Kluyveromyces marxianus, ген лактозной пермеазы может использоваться для транспорта лактозы внутрь клетки. Этот ген может быть связан через последовательность Т2А с геном aph 1, кодирующим устойчивость к генетицину. Эта последовательность создана аналогично тому, как описано выше. Конечная последовательность приведена на Фигуре 6.

Создание системы, связанной с аптамером, с помощью которой аптамер вводится в матричную РНК лактозной пермеазы

Экспрессия лактозной пермеазы также может быть обнаружена на уровне матричной РНК. Для этого аптамер, связывающий (Z)-4-(3,5-дифтор-4-гидроксибензилиден)-1,2-диметил-1Н-имидазол-5(4Н)-он, клонируют после кодирующей последовательности лактозной пермеазы, как показано на фигуре 7. Экспрессия этой конструкции модулируется так же, как описано в Примере 6. По окончании роста клеток в среду добавляют (Z)-4-(3,5-дифтор-4-гидроксибензилиден)-1,2-диметил-1Н-имидазол-5(4Н)-он, как описано Pothoulakis et al (2013) (64), и мутантные штаммы, экспрессируюшие лактозную пермеазу, отбирают на клеточном сортере с активацией флуоресценции (FACS).

Пример 4. Обнаружение экспрессии лактозного транспортера, трансляционно связанного с геном устойчивости к хлорамфениколу

Были сконструированы два штамма, в которых лактозная пермеаза была удалена (нокаутирована) из генома. Оба штамма трансформировали плазмидой pSC101, содержащей ген устойчивости к канамицину, с тем отличием, что одна из плазмид содержала конститутивно экспрессируемую лактозную пермеазу, как описано в Примере 1 и 2, в результате чего были получены штамм сравнения MG1655ΔlacY pSC101_kan и штамм MG1655ΔlacY pSC101_kan_ lacY_synthetic_cat с трансляционным связыванием lacY_cat, как описано в Примере 4 и на Фигуре 5. Оба штамма выращивали на минимальной среде, как описано выше, при разных концентрациях хлорамфеникола (между 0 и 30 мг/л). На Фигурах 8 и 9 показано, что после 48 и 92 часов рост штамма сравнения ингибируется при более низкой концентрации хлорамфеникола по сравнению с мутантным штаммом с трансляционным связыванием lacY_cat, что говорит о том, что такая система является отличным вариантом проведения скрининга генетических конструкций, экспрессирующих лактозную пермеазу.

Пример 5. Методика скрининга на наличие мутантов, экспрессирующих лактозную пермеазу, и не подвергающихся гибели под действием лактозы

Как и в Примере 2, выращивали смесь двух штаммов, устойчивых к хлорамфениколу, где один штамм не гибнет под действием лактозы и экспрессирует лактозную пермеазу, трансляционно связанную с хлорамфениколом, а второй штамм имеет кассету устойчивости к хлорамфениколу, но содержит природную экспрессирующую систему лактозной пермеазы. Оба штамма выращивали в среде, как описано в Примере 2, и лактозу добавляли в середине экспоненциальной фазы, как показано в Примере 2. Мутантный штамм, который не подвергается гибели под действием лактозы, продолжал расти, тогда как другой штамм, чувствительный к гибели под действием лактозы, прекращал расти. В конце экспоненциальной фазы 0,1 мл этой культуры инокулировали во вторую встряхиваемую колбу с аналогичной средой, как описано выше. Снова, при OD 0,8 добавляли лактозу, что приводило к остановке роста штамма, чувствительного к гибели под действием лактозы, и накоплению мутантного штамма, не подвергающегося гибели под действием лактозы. После 5-кратного повторения этой процедуры доля мутантного штамма, не подвергающегося гибели под действием лактозы, составляла 99%, что позволяло легко выделить его из культуры.

Пример 6. Создание мутантных экспрессионных кассет лактозной пермеазы

Варианты последовательностей промоторов, сайтов связывания рибосом, последовательностей Козак, терминаторов транскрипции и варианты гена лактозной пермеазы (с разной частотой использования кодонов) были заказаны в компаниях, предлагающих услугу по синтезу генов, например, IDT, Geneart, Genscript, Gen9 и другие. Дизайн библиотеки промоторов для бактерий основан на консенсусной последовательности бактериальных промоторов с двумя консервативными областями в районе -10 и -35 пар оснований от точки начала транскрипции. Основания между этими консервативными областями, перед ними и после них далее случайным образом изменяли на А, Т, G или С, в результате чего получали промоторы с разной силой экспрессии. Альтернативно, изменяли консервативные области, а окружающие последовательности сохраняли, в результате чего также были получены промоторы разной силы. Эти смеси последовательностей далее клонировали (либо методом сборки по Гибсону, либо методом сборки Golden Gate, либо методом сборки Cliva, либо LCR, либо рестрикцией и лигированием) (25, 36, 50, 79) перед трансляционно связанной лактозной пермеазой, в результате чего получали библиотеку экспрессионных кассет лактозной пермеазы, которую можно подвергнуть скринингу, используя протокол, описанный в Примере 5.

Библиотеку эукариотических промоторов создавали на основе корового промотора (13). Для Saccharomyces cerevisiae этот промотор может быть гетерологичным TEF промотором pTEF1, который усилен с помощью последовательностей UAS и видоизменен мутациями для изменения силы промотора (12). Такой промотор заказывали и клонировали, как описано выше, перед трансляционно связанной лактозной пермеазой, и конечной конструкцией трансформировали дрожжи, такие как Saccharomyces cerevisiae, с использованием плазмиды или путем интеграции в хромосому.

Нетранслируемая область у прокариот состоит из сайта связывания рибосомы, а у эукариот из последовательности Козак. Обе последовательности рандомизировали и клонировали перед кодирующей последовательностью, как описано выше, в результате чего получали библиотеку экспрессионных кассет с разной трансляционной эффективностью. Рандомизация может быть рационализирована с помощью таких инструментов, как калькулятор RBS, который вычисляет корреляцию эффективности трансляции последовательности и уменьшает количество вариантов, которые должны быть включены в библиотеку (67).

Частоту использования кодонов изменяли путем изменения кодирующей последовательности гена без изменения аминокислотной последовательности белка. Это называется адаптацией кодонов. Частоту использования кодонов на протяжении последовательности изменяли таким образом, что в определенные области вводили более или менее редкие кодоны, что приводило к изменению эффективности экспрессии и эффективности фолдинга. Для пермеазы, последовательность которой содержит только редкие кодоны (определяется для организма с помощью базы данных частоты использования кодонов (61)), характерна низкая скорость трансляции по сравнению с пермеазой с полностью кодон-оптимизированной последовательностью (содержит только те кодоны, которые часто встречаются в целевом организме). Кроме того, первые кодоны кодирующей последовательности также влияют на эффективность последовательности Козак или сайта связывания рибосомы (62, 69, 78).

Область терминатора транскрипции изменяли, используя эндогенные или экзогенные последовательности терминатора транскрипции из базы данных (18, 26). Эти терминаторы транскрипции также клонировали способом, аналогичным описанному выше.

Пример 7. Обогащение экспрессионных кассет, которые экспрессируют лактозную пермеазу и не приводят к гибели под действием лактозы

Экспрессионные кассеты были созданы в соответствии с Примером 3 и 7. В результате была получена библиотека экспрессионных кассет лактозной пермеазы. Экспрессионные кассеты, которые приводили к экспрессии лактозной пермеазы, были отобраны в соответствии со способами из Примеров 3 и 4. Экспрессионные кассеты, экспрессирующие лактозную пермеазу, которые не приводили к гибели под действием лактозы, были отобраны в соответствии со способами, описанными в Примерах 2 и 5. Отобранные экспрессионные кассеты также анализировали с помощью секвенирования и способом, описанным в Примере 2.

Пример 8. Ферментативная продукция 2-фукозиллактозы бактериями Е. coli с фукозилтрансферазой из Helicobacter pylori

Мутантный штамм, в котором нокаутированы гены lacZ, glgC, agp, pfkA, pfkB, pgi, arcA, iclR, wcaJ и конститутивно экспрессируется lacY, как описано в Примере 1 и Примере 2, чтобы обеспечить экспрессию при всех условиях культивирования, далее трансформировали фукозилтрансферазой из Helicobacter pylori и фосфорилазой сахарозы из Bifidobacterium adolescentis, которые также экспрессируются конститутивно. Конститутивные промоторы были выбраны из библиотеки промоторов, описанной De Mey et al., 2007. Этот штамм культивировали в среде, как описано в материалах и методах, но с 30 г/л сахарозы и 50 г/л лактозы. В результате было получено до 1,5 г/л 2'-фукозиллактозы

Пример 9. Продукция 2-фукозиллактозы бактериями Е. coli с периодической подпиткой

Методами генной инженерии согласно методикам, описанным выше, создавали мутантный штамм с генотипом:

ΔlacZYAΔglgCΔagpΔpgiΔpfkA-P22-baSPΔpfkBΔarcAΔiclR::slΔwcaJAΔlonΔadhE-P14-frk+pCXP14-FT_H. pylori (вектор с последовательностью SEQ ID №6, смотрите Фигуру 10). Экспрессию лактозной пермеазы изменяли, как описано в Примере 1 и Примере 2. Промоторы Р22 и Р14 были получены из библиотеки промоторов, сконструированной De Mey et al. (29), и их клонировали по аналогии с методикой, описанной Aerts et al. (1). "::sl" означает «безрубцовая» делеция гена, то есть без сайта FRT, который остается на хромосоме.

Этот штамм культивировали в биореакторе, как описано выше в материалах и методах, в минеральной среде с 30 г/л сахарозы и 50 г/л лактозы. После порционной фазы в биореактор добавляли 500 г/л сахарозы, 50 г/л лактозы и 1 г/л гептагидрата сульфата магния. В результате этого в супернатанте накапливалось 27,5 г/л фукозиллактозы.

Пример 10. Продукция лакто-N-триозы бактериями Е. coli

Мутантный штамм конструировали методами генной инженерии по методикам, описанным выше, для экспрессии UDP-N-ацетилглюкозамин-трансферазы, фосфорилазы сахарозы, L-глутамин:D-фруктоза-6-фосфат-аминотрансферазы и глюкозамин-уридилтрансферазы с помощью плазмиды pBR322, в которой каждый ген экспрессировался под контролем конститутивного промотора из библиотеки промоторов De Mey et al. (29), и содержался селективный маркер бета-лактамаза. Этот вектор трансформировали в мутантный штамм Е. Coli, имеющий генотип ΔlacZYAΔglgCΔagp::Р14-frk-¥22-BaSPΔpgiΔpfkAΔpfkBΔnagABCDEΔmanAΔnanATEKΔmanXYZ, конститутивно экспрессирующий лактозную пермеазу, как описано выше. Этот штамм культивировали во встряхиваемой колбе, как описано выше, с лактозой и сахарозой в качестве источников углерода с добавлением глицерина или без него. Этот хозяин-продуцент не подвергался гибели под действием лактозы и продуцировал 62,5 и 55,3 мг/л лакто-N-триозы, соответственно, из добавляемой лактозы.

Пример 11. Конструкция лактозной пермеазы дрожжей K. marxianus (pi), введенная в локус рДНК

Сначала плазмидой p2a_2μ_Lac4 трансформировали штамм Saccharomyces cerevisiae BY4742 дикого типа. Трансформацию осуществляли, используя в общей сложности 4 мкг плазмиды, по протоколу (40). Трансформированные дрожжевые клетки высевали на чашки с SD-CSM drop-out (без урацила). Через два дня на чашках наблюдался рост, и колонии дрожжей тестировали на наличие нужной плазмиды. ПЦР для отбора колоний проводили для всех 33 колоний. Все протестированные колонии содержали плазмиду p2a_2μ_Lac4. Для дальнейшего использования была отобрана колония 5. Эту колонию трансформировали 2 мкг двухцепочечной линейной ДНК, полученной из pJet_KI_p1_Lac12_t@rDNA. Трансформированные клетки выращивали на чашках SD-CSM-Ura с лактозой в качестве единственного источника С.Через три дня после трансформации несколько колоний достаточно выросли, чтобы можно было протестировать их на наличие экспрессионной кассеты Lac12 в рДНК Saccharomyces. Для всех колоний проводили ПЦР для отбора колоний. Все протестированные колонии содержали экспрессионную кассету Lac12. Для дальнейшего использования была отобрана колония 6 {Saccharomyces KI_p1_Lac12_t@rDNA).

Пример 12. Конструкция лактозной пермеазы дрожжей K. marxianus (р2), введенная в локус рДНК

Сначала плазмидой p2a_2μ_Lac4 трансформировали штамм Saccharomyces cerevisiae BY4742 дикого типа. Трансформацию осуществляли, используя в общей сложности 4 мкг плазмиды, по протоколу Gietz (40). Трансформированные дрожжевые клетки высевали на чашки с SD-CSM drop-out (без урацила). Через два дня на чашках наблюдался рост, и колонии дрожжей тестировали на наличие нужной плазмиды. ПЦР для отбора колоний проводили для всех 33 колоний. Все протестированные колонии содержали плазмиду p2a_2μ_Lac4. Для дальнейшего использования была отобрана колония 5. Эту колонию трансформировали 2 мкг двухцепочечной линейной ДНК, полученной из pJet_KI_p2_Lac12_t@rDNA. Трансформированные клетки выращивали на чашках SD-CSM-Ura с лактозой в качестве единственного источника С. Через три дня после трансформации несколько колоний достаточно выросли, чтобы можно было протестировать их на наличие экспрессионной кассеты Lac12 в рДНК Saccharomyces. Для всех колоний проводили ПЦР для отбора колоний. Все протестированные колонии содержали экспрессионную кассету Lac12. Для дальнейшего использования была отобрана колония 7 (Saccharomyces KI_p2_Lac12_t@rDNA).

Пример 13. Рост на лактозе штамма дрожжей дикого типа и 2 мутантных штаммов дрожжей

Эксперимент во встряхиваемой колбе, как описано в материалах и методах, проводили на штаммах Kluyveromyces дикого типа, Saccharomyces KI_p1_Lac12_t@rDNA и Saccharomyces KI_p2_Lac12_t@rDNA. Эти штаммы выращивали во встряхиваемой колбе в среде, содержащей лактозу в качестве единственного источника С (20 г/л). Как можно видеть в Таблице 1, мутантные штаммы Saccharomyces растут так же быстро, как штамм Kluyveromyces marcianus lactis дикого типа, который, как известно, способен к быстрому росту на лактозе (31). Таким образом, конститутивно экспрессируемая лактозная пермеаза обеспечивает быстрый и эффективный приток лактозы в клетку дрожжей.

Пример 14. Влияние лактозы на штамм дрожжей дикого типа и мутантный штамм дрожжей, который не подвергается гибели под действием лактозы

Эксперимент во встряхиваемой колбе, как описано в материалах и методах, проводили на штаммах Kluyveromyces дикого типа, Saccharomyces KI_p1_Lac12_t@rDNA и Saccharomyces KI_p2_Lac12_t@rDNA. Эти штаммы выращивали во встряхиваемой колбе в среде с глюкозой (20 г/л глюкозы, как описано в материалах и методах), и в середине экспоненциальной фазы роста к штаммам добавляли лактозу (200 г/л концентрированного раствора добавляли до конечной концентрации 10 г/л). Как можно видеть на Фигуре 11 и Фигуре 12, мутантные штаммы не подвергаются гибели под действием лактозы. Более того, в Примере 13 было подтверждено наличие быстрого и эффективного потока лактозы внутрь этих дрожжевых клеток.

Пример 15. Секвенирование экспрессионных кассет лактозной пермеазы, которые не приводят к гибели под действием лактозы

46 колоний, отобранных в результате скрининга, как описано выше, были секвенированы, в результате чего были получены последовательности SEQ ID №12 - 57 (Фигура 18). Эти последовательности представляют собой варианты промотора и RBS, которые не приводят к гибели под действием лактозы, когда они экспрессируются в Е. coli. Следует обратить внимание на то, что было отобрано огромное количество колоний, которые были секвенированы, следовательно, с помощью этой методики скрининга было получено намного больше последовательностей, чем показано на Фигуре 18, а альтернативные методики получения библиотек, описанные выше, также приведут к последовательностям, отличным от тех, что показаны на Фигуре 18.

Пример 16. Определение μ_MAX для мутантных штаммов с экспрессионной кассетой лактозной пермеазы

Все штаммы брали либо из чашек с LB-агаром, на которых они росли, либо из криопробирок, и инокулировали в 5,0 мл среды Luria broth (10 г триптона; 5 г дрожжевого экстракта; 10 г NaCl). После выращивания в течение ночи при 37°C 1 мл этой предварительной культуры добавляли во встряхиваемую колбу объемом 500 мл, содержащую 100 мл минимальной среды с лактозой (2,0 г/л NH₄Cl; 5,0 г/л; (NH₄)₂SO₄; 3,0 г/л KH₂PO₄, 7,3 г/л K₂HPO₄; 8,4 г/л MOPS; 0,5 г/л MgSO₄×7H₂O; 0,5 г/л NaCl; 10 г/л лактозы; 0,4 мг/л Na₂EDTA×2H₂O; 0,03 мг/л Н₃ВО₃; 1,01 мг/л тиамина HCl; 0,94 мг/л ZnCl₂; 0,5 мг/л CoCl₂×6H₂O; 0,38 мг/л CuCl₂×2H₂O; 1,59 мг/л MnCl₂×4H₂O; 3,6 мг/л CaCl₂ и 0,096 мг/л Na₂MoO₄×2H₂O); рН 7,0. После выращивания в течение ночи при 37°C обе предварительные культуры разбавляли минимальной средой с лактозой до OD₆₀₀, равной 0,050. Суспензию далее переносили в 96-луночный планшет МТР (n=32), закрывали пленкой Easyseal. Измерения OD проводили каждые 10 минут на протяжении 24 часов с помощью Infinite М200 pro (TECAN) при следующих условиях: температура: 37°C+/-0,5; встряхивание 597 секунд; амплитуда встряхивания 2 мм; 280 rpm; длина волны OD₆₀₀; вспышки #10; время вспышки 150 мс).

Пример 17. Характеристика экспрессионных кассет лактозной пермеазы

Один из способов снизить или устранить гибель под действием лактозы заключается в значительном снижении или устранении активности лактозной пермеазы (смотрите Пример 16). Но с точки зрения продукции биопродуктов на основе лактозы или галактозы необходимо, чтобы в клетку поступало много лактозы. Здесь мы подтверждаем, что приток лактозы в клетку у мутантных штаммов, устойчивых к гибели под действием лактозы, сопоставим, равен или даже превышает приток лактозы в клетку у организма дикого типа, подвергающегося гибели под действием лактозы. С этой целью в штамм MG1655ΔlacY были введены новые экспрессионные кассеты лактозной пермеазы, по-прежнему экспрессирующие бета-галактозидазу. Показателем притока лактозы внутрь клетки является скорость роста этих новых штаммов, поскольку любой штамм с заметно сниженной экспрессией лактозной пермеазы будет иметь значительно более низкую скорость роста.

Результаты этого анализа показаны на Фигуре 19. Почти все штаммы, показанные на этой фигуре, имеют скорость роста, равную или более высокую по сравнению со штаммом дикого типа, что свидетельствует о том, что активность и экспрессия лактозной пермеазы для них равна или выше, чем у штамма дикого типа, тем не менее, в отличие от экспрессирующей системы дикого типа, эти экспрессионные кассеты не приводят к гибели под действием лактозы. Этот способ, тем не менее, ограничен экспрессией гена бета-галактозидазы, которая становится стадией, лимитирующей рост. Поэтому экспрессию гена лактозной пермеазы измеряли с помощью описанной выше трансляционно связанной системы. Минимальная ингибирующая концентрация (MIC) для хлорамфеникола является показателем экспрессии гена лактозной пермеазы, и MIC определяли для каждой кассеты. В качестве показателя экспрессии лактозной пермеазы дикого типа использовали самую низкую MIC, для которой по-прежнему была характерна такая же скорость роста, как и для штамма дикого типа.

Для штаммов, содержащих кассеты с наименьшей MIC и имеющих такую же скорость роста, как и штамм дикого типа, MIC составляет приблизительно 20 мг/л хлорамфеникола. Для мутантных штаммов с несколько более низкой скорость роста MIC находится в диапазоне между 15 и 20 мг/л, а для мутантных штаммов с такой же или более высокой скорость роста MIC находится в диапазоне между 20 и 80 мг/л. 85% последовательностей относятся к последней категории, что означает, что большинство последовательностей, идентифицированных как экспрессионные кассеты, не приводящие к гибели под действием лактозы, демонстрируют более высокую экспрессию лактозной пермеазы, что противоречит описанному ранее в литературе.

Пример 18. Создание экспрессионной кассеты с промотором lacIq

По аналогии с методикой, описанной выше, промотор placIQ клонировали перед геном lacY Е. coli. Финальная последовательность этой конструкции приведена на Фигуре 20.

Пример 19. Другие промоторы, используемые в уровне техники, которые приводят к гибели под действием лактозы

Промотор placIQ представляет собой промотор, который использовался в данной области техники для экспрессии лактозной пермеазы в Е. coli. При использовании этого промотора происходит поглощение лактозы внутрь клетки. Тем не менее эффект от такого поглощения не проверяли. Скорость роста на лактозе штамма дикого типа значительно не отличается от скорости роста штамма с промотором lacIq (μmax составляет 0,1 и 0,11 ч^-1, соответственно), что свидетельствует о примерно равных скоростях поглощения лактозы. Скрининг на наличие явления гибели под действием лактозы у штаммов с такой экспрессионной кассетой lacIQ подтвердил, что этот промотор также приводит к гибели под действием лактозы (смотрите Фигуру 21). Это подтверждает тот факт, что существуют определенные последовательности промоторов, которые приводят к гибели под действием лактозы, и другие последовательности, которые не приводят к гибели под действием лактозы. Рационализация последовательностей невозможна, а подбор индивидуальных последовательностей (путем проб и ошибок) - это кропотливая работа, требующая огромных затрат, таким образом, описанная выше методика идентификации экспрессионных кассет, которые не приводят к гибели под действием лактозы, является лучшей альтернативой длительной и дорогостоящей работе по скринингу.

Пример 20. Продукция лакто-N-тетраозы дрожжами S. cerevisiae

Мутантные штаммы, сконструированные в Примерах 11 и 12, далее трансформировали β-1,4-галактозилтрансферазой и β-1,3-N-ацетилглюкозаминилтрансферазой из Neisseria meningitidis, которые также конститутивно экспрессировали, используя стандартный экспрессионный вектор дрожжей, например, описанный Lee et al. (52). Штаммы культивировали в среде, как описано в материалах и методах, но с 20 г/л сахарозы и 20 г/л лактозы. В результате было получено до 30 мг/л лакто-N-тетраозы.

Пример 21. Продукция 2-фукозиллактозы дрожжами S. cerevisiae

Мутантные штаммы, сконструированные в Примерах 11 и 12, далее трансформировали синтазой GDP-фукозы и GDP-манноза-4,6-дегидратазой Е. coli и фукозилтрансферазой из Helicobacter pylori, которые также конститутивно экспрессировали, используя стандартный экспрессионный вектор дрожжей, например, описанный Lee et al. (52). Штаммы культивировали в среде, как описано в материалах и методах, но с 20 г/л сахарозы и 20 г/л лактозы. В результате было получено до 10 мг/л 2-фукозиллактозы.

Ссылки

1. Aerts, D., Т. Verhaeghe, M. De Mey, Т. Desmet, and W. Soetaert. 2010. A constitutive expression system for high throughput screening. Engineering in Life Sciences 10:DOI: 10.1002/elsc.201000065.

2. Agrawal, N., P.V.N. Dasaradhi, A. Mohmmed, P. Malhotra, R.K. Bhatnagar, and S.K. Mukherjee. 2003. RNA Interference: Biology, Mechanism, and Applications. Microbiology and Molecular Biology Reviews 67:657-685.

3. Alper, H., C. Fischer, E. Nevoigt, and G. Stephanopoulos. 2005. Tuning genetic control through promoter engineering. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America 102:12678-12683.

4. Avihoo, A., I. Gabdank, M. Shapira, and D. Barash. 2007. In silico design of small RNA switches. IEEE Transactions on Nanobioscience 6:4-11.

5. Ayres, E.K., V.J. Thomson, G. Merino, D. Balderes, and D.H. Figurski. 1993. Precise deletions in large bacterial genomes by Vector-mediated Excision (VEX): The trfA gene of promiscuous plasmid RK2 is essential for replication in several gram-negative hosts. Journal of Molecular Biology 230:174-185.

6. , P., M. Alexeyev, I. Shokolenko, F. Bolivar, and F. Valle. 1996. A pBRINT family of plasmids for integration of cloned DNA into the Escherichia coli chromosome. Gene 172:65-69.

7. Balbas, P., and G. Gosset. 2001. Chromosomal editing in Escherichia coli. Molecular Biotechnology 19:1-12.

8. Barrett, A.R., Y. Kang, K.S. Inamasu, M.S. Son, J.M. Vukovich, and Т.T. Hoang. 2008. Genetic tools for allelic replacement in Burkholderia species. Applied and Environmental Microbiology 74:4498-4508.

9. Beauprez, J. 2010. Metabolic modelling and engineering of Escherichia coli for succinate production. PhD. Ghent University, Ghent.

10. Beekwilder, J., H.M. van Rossum, F. Koopman, F. Sonntag, M. Buchhaupt, J. Schrader, R.D. Hall, D. Bosch, J. T. Pronk, A. J. A. van Maris, and J.-M. Daran. 2014. Polycistronic expression of a b-carotene biosynthetic pathway in Saccharomyces cerevisiae coupled to b-ionone production.

11. Biofuge, H. Thermo.

12. Blazeck, J., R. Garg, B. Reed, and H.S. Alper. 2012. Controlling promoter strength and regulation in Saccharomyces cerevisiae using synthetic hybrid promoters. Biotechnology And Bioengineering 109:2884-2895.

13. Blount, В.A., T. Weenink, S. Vasylechko, and T. Ellis. 2012. Rational Diversification of a Promoter Providing Fine-Tuned Expression and Orthogonal Regulation for Synthetic Biology. PLoS ONE 7:e33279.

14. Bode, L. 2012. Human milk oligosaccharides: Every baby needs a sugar mama. Glycobiology 22:1147-1162.

15. Bode, L. 2006. Recent Advances on Structure, Metabolism, and Function of Human Milk Oligosaccharides. The Journal of Nutrition 136:2127-2130.

16. Brenda Database 2006, в соответствии с датой публикации на веб-сайте, [доступно онлайн]

17. Cabantous, S., Т.С. Terwilliger, and G.S. Waldo. 2005. Protein tagging and detection with engineered self-assembling fragments of green fluorescent protein. Nat Biotech 23:102-107.

18. Cambray, G., J.C. Guimaraes, V.K. Mutalik, C. Lam, Q.-A. Mai, T. Thimmaiah, J.M. Carothers, A.P. Arkin, and D. Endy. 2013. Measurement and modeling of intrinsic transcription terminators. Nucleic Acids Research 41:5139-5148.

19. Canton, В., A. Labno, and D. Endy. 2008. Refinement and standardization of synthetic biological parts and devices. Nat Biotech 26:787-793.

20. Caspi, R., T. Altman, R. Billington, K. Dreher, H. Foerster, C.A. Fulcher, T.A. Holland, I.M. Keseler, A. Kothari, A. Kubo, M. Krummenacker, M. Latendresse, L.A. Mueller, Q. Ong, S. Paley, P. Subhraveti, D.S. Weaver, D. Weerasinghe, P. Zbang, and P.D. Karp. 2014. The MetaCyc database of metabolic pathways and enzymes and the BioCyc collection of Pathway/Genome Databases. Nucleic Acids Research 42:D459-D471.

21. Chen, X., and A. Varki. 2009. Advances in the Biology and Chemistry of Sialic Acids. ACS Chemical Biology 5:163-176.

22. Cherepanov, P.P., and W. Wackernagel. 1995. Gene disruption in Escherichia coli: TcR and KmR cassettes with the option of Flp-catalyzed excision of the antibiotic- resistance determinant. Gene 158:9-14.

23. Consortium, T.U. 2015. UniProt: a hub for protein information. Nucleic Acids Research 43:D204-D212.

24. Coppa, G.V., L. Zampini, T. Galeazzi, and O. Gabrielli. 2006. Prebiotics in human milk: a review. Digestive and Liver Disease 38:S291-S294.

25. Coussement, P., J. Maertens, J. Beauprez, W. Van Bellegem, and M. De Mey. 2014. One step DNA assembly for combinatorial metabolic engineering, p.70-77, vol. 23.

26. Curran, K.A., A.S. Karim, A. Gupta, and H.S. Alper. 2013. Use of expression-enhancing terminators in Saccharomyces cerevisiae to increase mRNA half-life and improve gene expression control for metabolic engineering applications, p.88-97, vol. 19.

27. Datsenko, K.A., and B.L. Wanner. 2000. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K-12 using PCR products. Proceedings of the national academy of sciences of the United States of America 97:6640-6645.

28. Davis, S.S. 1997. Biomedical applications of nanotechnology - implications for drug targeting and gene therapy. Trends in Biotechnology 15:217-224.

29. De Mey, M., J. Maertens, G.J. Lequeux, W.K. Soetaert, and E.J. Vandamme. 2007. Construction and model-based analysis of a promoter library for E.coli: an indispensable tool for metabolic engineering. BMC Biotechnology 7:34-48.

30. DiCarlo, J.E., J.E. Norville, P. Mali, X. Rios, J. Aach, and G.M. Church. 2013. Genome engineering in Saccharomyces cerevisiae using CRISPR-Cas systems. Nucleic Acids Research.

31. , E., M. , Z. , M. , and I. Hapala. 2015. Production of squalene by lactose-fermenting yeast Kluyveromyces lactis with reduced squalene epoxidase activity. Letters in Applied Microbiology 61:77-84.

32. Dumon, С, B. Priem, S.L. Martin, A. Heyraud, C. Bosso, and E. Samain. 2001. In vivo fucosylation of lactoN-neotetraose and lactoN-neohexaose by heterologous expression of Helicobacter pylori α-1,3 fucosyltransferase in engineered Escherichia coli. Glycoconjugate Journal 18:465-474.

33. Dykhuizen, D., and D. Hartl. 1978. Transport by the lactose permease of Escherichia coli as the basis of lactose killing. Journal of Bacteriology 135:876-882.

34. Eames, M., and T. Kortemme. 2012. Cost-Benefit Tradeoffs in Engineered lac Operons. Science 336:911-915.

35. Edwards, J.S., R. Ramakrishna, С.H. Schilling, and В.O. Palsson. 1999. Metabolic flux balance analysis. Metabolic Engineering: 13-57.

36. Engler, С, R. Gruetzner, R. Kandzia, and S. Marillonnet. 2009. Golden Gate Shuffling: A One-Pot DNA Shuffling Method Based on Type lis Restriction Enzymes. PLoS ONE 4:e5553.

37. Filonov, G.S., J.D. Moon, N. Svensen, and S. R. Jaffrey. 2014. Broccoli: Rapid Selection of an RNA Mimic of Green Fluorescent Protein by Fluorescence-Based Selection and Directed Evolution. Journal of the American Chemical Society.

38. Galperin, M.Y., and G.R. Cochrane. 2009. Nucleic Acids Research annual Database Issue and the NAR online Molecular Biology Database Collection in 2009. Nucleic Acid Research 37:Dl-4.

39. Ghazi, A., H. Therisod, and E. Shechter. 1983. Comparison of lactose uptake in resting and energized Escherichia coli cells: high rates of respiration inactivate the lac carrier. Journal of Bacteriology 154:92-103.

40. Gietz, R.D., R.H. Schiestl, A.R. Willems, and R.A. Woods. 1995. Studies on the transformation of intact yeast cells by the LiAc/SS-DNA/PEG procedure. Yeast 11:355-360.

41. Hammer, K., I. Mijakovic, and P.R. Jensen. 2006. Synthetic promoter libraries - tuning of gene expression. TRENDS in Biotechnology 24:53-55.

42. Hanahan, D., J. Jessee, and F.R. Bloom. 1991. Plasmid transformation of Escherichia coli and other bacteria. Methods in Enzymology 204:63-113.

43. Hebert, C.G., J.J. Valdes, and W. E. Bentley. 2008. Beyond silencing- engineering applications of RNA interference and antisense technology for altering cellular phenotype. Current opinion in biotechnology 19:500-505.

44. Heinemann, M., A. Kummel, R. Ruinatscha, and S. Panke. 2005. KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. In silico genome-scale reconstruction and validation of the Staphylococcus aureus metabolic network. Biotechnol Bioeng 92:850-864.

45. Hoang, Т.Т., R.R. Karkhoff-Schweizer, A.J. Kutchma, and H.P. Schweizer. 1998. A broad-host-range Flp-FRT recombination system for site-specific excision of chromosomally-located DNA sequences: application for isolation of unmarked Pseudomonas aeruginosa mutants. Gene 212:77-86.

46. Jiang, W., D. Bikard, D. Cox, F. Zhang, and L. A. Marraffini. 2013. RNA-guided editing of bacterial genomes using CRISPR-Cas systems. Nat Biotech 31:233-239.

47. Kanehisa, M., M. Araki, S. Goto, M. Hattori, M. Hirakawa, M. Itoh, T. Katayama, S. Kawashima, S. Okuda, T. Tokimatsu, and Y. Yamanishi. 2008. KEGG for linking genomes to life and the environment. Nucleic Acid Research 36:D480-484.

48. Koizumi, S., T. Endo, K. Tabata, and A. Ozaki. 1998. Large-scale production of UDP-galactose and globotriose by coupling metabolically engineered bacteria. Nat Biotech 16:847-850.

49. Kojima, K.K., T. Matsumoto, and H. Fujiwara. 2005. Eukaryotic Translational Coupling in UAAUG Stop-Start Codons for the Bicistronic RNA Translation of the Non-Long Terminal Repeat Retrotransposon SART1. Molecular and Cellular Biology 25:7675-7686.

50. Kok, S.d., L.H. Stanton, T. Slaby, M. Durot, V.F. Holmes, K.G. Patel, D. Piatt, E.B. Shapland, Z. Serber, J. Dean, J.D. Newman, and S.S. Chandran. 2014. Rapid and Reliable DNA Assembly via Ligase Cycling Reaction. ACS Synthetic Biology 3:97-106.

51. Kristensen, C.S., L. Eberl, J. M. Sanchez-Romero, M. Givskov, S. Molin, and V. De Lorenzo. 1995. Site-specific deletions of chromosomally located DNA segments with the multimer resolution system of broad-host-range plasmid RP4. Journal of Bacteriology 177:52-58.

52. Lee, M.E., W.C. DeLoache, B. Cervantes, and J.E. Dueber. 2015. A Highly Characterized Yeast Toolkit for Modular, Multipart Assembly. ACS Synthetic Biology 4:975-986.

53. Levin-Karp, A., U. Barenholz, T. Bareia, M. Dayagi, L. Zelcbuch, N. Antonovsky, E. Noor, and R. Milo. 2013. Quantifying Translational Coupling in E.coli Synthetic Operons Using RBS Modulation and Fluorescent Reporters. ACS Synthetic Biology 2:327-336.

54. Llaneras, F., and J. . 2008. Stoichiometric modelling of cell metabolism. Journal of Bioscience and Bioengineering 105:1-11.

55. Lodi, Т., and C. Donnini. 2005. Lactose-induced cell death of b-galactosidase mutants in Kluyveromyces lactis. FEMS Yeast Research 5:727-734.

56. Martin, P., O. Albagli, M. Poggi, K. Boulukos, and P. Pognonec. 2006. Development of a new bicistronic retroviral vector with strong IRES activity. BMC Biotechnology 6:4.

57. McShan, D.С, S. Rao, and I. Shah. 2003. PathMiner: predicting metabolic pathways by heuristic search. Bioinformatics 19:1692-1698.

58. Mendez-Perez, D., S. Gunasekaran, V.J. Orler, and B.F. Pfleger. 2012. A translation-coupling DNA cassette for monitoring protein translation in Escherichia coli. Metabolic Engineering 14:298-305.

59. Merighi, M., J.M. Mccoy, and M.I. Heidtman. 2012. Biosynthesis of human milk oligosaccharides in engineered bacteria. WO 2012112777

60. Mutalik, V.K., J.C. Guimaraes, G. Cambray, C. Lam, M.J. Christoffersen, Q.-A. Mai, A.B. Tran, M. Paull, J.D. Keasling, A.P. Arkin, and D. Endy. 2013. Precise and reliable gene expression via standard transcription and translation initiation elements. Nat Meth 10:354-360.

61. Nakamura, Y., T. Gojobori, and T. Ikemura. 2000. Codon usage tabulated from international DNA sequence databases: status for the year 2000. Nucleic Acids Research 28:292.

62. Pechmann, S., and J. Frydman. 2012. Evolutionary conservation of codon optimality reveals hidden signatures of cotranslational folding. Nat Struct Mol Biol 20:237-243.

63. Peijnenburg, А. С.M., G. Venema, and S. Bron. 1990. Translational coupling in a penP-lacZ gene fusion in Bacillus subtilis and Escherichia coli: Use of AUA as a restart codon. 1990 221:267-272.

64. Pothoulakis, G., F. Ceroni, B. Reeve, and T. Ellis. 2014. The Spinach RNA Aptamer as a Characterization Tool for Synthetic Biology. ACS Synthetic Biology 3:182-187.

65. Rasmussen, L., H. Sperling-Petersen, and K. Mortensen. 2007. Hitting bacteria at the heart of the central dogma: sequence-specific inhibition. Microbial Cell Factories 6:24.

66. Rhodius, V.A., V.K. Mutalik, and C.A. Gross. Predicting the strength of UP-elements and full-length E. coli SigmaE promoters. Nucleic Acids Research 40:2907-2924.

67. Salis, H.M., E.A. Mirsky, and C.A. Voigt. 2009. Automated design of synthetic ribosome binding sites to control protein expression. Nat Biotech 27:946-950.

68. Seed, В., and J. Holgersson. 1999. Fucosyltransferase genes and uses thereof. Патент US 5858752

69. Supek, F., and T. muc. 2010. On Relevance of Codon Usage to Expression of Synthetic and Natural Genes in Escherichia coli. Genetics 185:1129-1134.

70. Timblin, C.R., and M.L. Kahn. 1984. Lactose inhibits the growth of Rhizobium meliloti cells that contain an actively expressed Escherichia coli lactose operon. Journal of Bacteriology 158:1204-1207.

71. Varki, A. 1992. Diversity in the sialic acids. Glycobiology 2:25-40.

72. Waldo, G.S., В.M. Standish, J. Berendzen, and Т.C. Terwilliger. 1999. Rapid protein-folding assay using green fluorescent protein. Nat Biotech 17:691-695.

73. Welch, M., S. Govindarajan, J.E. Ness, A. Villalobos, A. Gurney, J. Minshull, and C. Gustafsson. 2009. Design Parameters to Control Synthetic Gene Expression in Escherichia coli. PLoS ONE 4:e7002.

74. Williams, J., J. Luke, and C. Hodgson. 2009. Strain engineering by genome mass transfer: Efficient chromosomal trait transfer method utilizing donor genomic DNA and recipient recombineering hosts. Molecular Biotechnology 43:41-51.

75. Wilson, D.M., R.M. Putzrath, and Т.H. Wilson. 1981. Inhibition of growth of Escherichia coli by lactose and other galactosides. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes 649:377-384.

76. Xu, X.J., L.M. Cao, and X. Chen. 2008. Elementary flux mode analysis for optimized ethanol yield in anaerobic fermentation of glucose with Saccharomyces cerevisiae. Chinese Journal of Chemical Engineering 16:135-142.

77. Yanase, H., J. Kurii, and K. Tonomura. 1988. Fermentation of lactose by Zymomonas mobilis carrying a Lac+ recombinant plasmid. Journal of Fermentation Technology 66:409-415.

78. Zhou, M., J. Guo, J. Cha, M. Chae, S. Chen, J. M. Barral, M. S. Sachs, and Y. Liu. 2013. Non-optimal codon usage affects expression, structure and function of clock protein FRQ. Nature 495:111-115.

79. Zou, R., K. Zhou, G. Stephanopoulos, and H.P. Too. 2013. Combinatorial Engineering of 1-Deoxy-D-Xylulose 5-Phosphate Pathway Using Cross-Lapping In Vitro Assembly (CLIVA) Method. PLoS ONE 8:e79557.

--->

ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙ

<110> ЮНИВЕРСИТЕЙТ ГЕНТ

<120> МУТАНТНЫЕ МИКРООРГАНИЗМЫ, УСТОЙЧИВЫЕ К ГИБЕЛИ ПОД ДЕЙСТВИЕМ ЛАКТОЗЫ

<130> P2013/049PCT

<150> EP14193151.9

<151> 2014-11-14

<160> 58

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1

<211> 1460

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 1

agcgcaacgc aattaatgtg agttagctca ctcattaggc accccaggct tgtgtaggct 60

ggagctgctt cgaagttcct atactttcta gagaatagga acttcggaat aggaactaag 120

gaggatattc atatggaccg atatcccggg cggccgctct agaagaagct tgggatccgt 180

cgacctcgaa ttcggaggaa acaaagatgt actatttaaa aaacacaaac ttttggatgt 240

tcggtttatt ctttttcttt tactttttta tcatgggagc ctacttcccg tttttcccga 300

tttggctaca tgacatcaac catatcagca aaagtgatac gggtattatt tttgccgcta 360

tttctctgtt ctcgctatta ttccaaccgc tgtttggtct gctttctgac aaactcgggc 420

tgcgcaaata cctgctgtgg attattaccg gcatgttagt gatgtttgcg ccgttcttta 480

tttttatctt cgggccactg ttacaataca acattttagt aggatcgatt gttggtggta 540

tttatctagg cttttgtttt aacgccggtg cgccagcagt agaggcattt attgagaaag 600

tcagccgtcg cagtaatttc gaatttggtc gcgcgcggat gtttggctgt gttggctggg 660

cgctgtgtgc ctcgattgtc ggcatcatgt tcaccatcaa taatcagttt gttttctggc 720

tgggctctgg ctgtgcactc atcctcgccg ttttactctt tttcgccaaa acggatgcgc 780

cctcttctgc cacggttgcc aatgcggtag gtgccaacca ttcggcattt agccttaagc 840

tggcactgga actgttcaga cagccaaaac tgtggttttt gtcactgtat gttattggcg 900

tttcctgcac ctacgatgtt tttgaccaac agtttgctaa tttctttact tcgttctttg 960

ctaccggtga acagggtacg cgggtatttg gctacgtaac gacaatgggc gaattactta 1020

acgcctcgat tatgttcttt gcgccactga tcattaatcg catcggtggg aaaaacgccc 1080

tgctgctggc tggcactatt atgtctgtac gtattattgg ctcatcgttc gccacctcag 1140

cgctggaagt ggttattctg aaaacgctgc atatgtttga agtaccgttc ctgctggtgg 1200

gctgctttaa atatattacc agccagtttg aagtgcgttt ttcagcgacg atttatctgg 1260

tctgtttctg cttctttaag caactggcga tgatttttat gtctgtactg gcgggcaata 1320

tgtatgaaag catcggtttc cagggcgctt atctggtgct gggtctggtg gcgctgggct 1380

tcaccttaat ttccgtgttc acgcttagcg gccccggccc gctttccctg ctgcgtcgtc 1440

aggtgaatga agtcgcttaa 1460

<210> 2

<211> 4432

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Genetic constructs detecting expressed lactose transporters

<400> 2

atgtactatt taaaaaacac aaacttttgg atgttcggtt tattcttttt cttttacttt 60

tttatcatgg gagcctactt cccgtttttc ccgatttggc tacatgacat caaccatatc 120

agcaaaagtg atacgggtat tatttttgcc gctatttctc tgttctcgct attattccaa 180

ccgctgtttg gtctgctttc tgacaaactc gggctgcgca aatacctgct gtggattatt 240

accggcatgt tagtgatgtt tgcgccgttc tttattttta tcttcgggcc actgttacaa 300

tacaacattt tagtaggatc gattgttggt ggtatttatc taggcttttg ttttaacgcc 360

ggtgcgccag cagtagaggc atttattgag aaagtcagcc gtcgcagtaa tttcgaattt 420

ggtcgcgcgc ggatgtttgg ctgtgttggc tgggcgctgt gtgcctcgat tgtcggcatc 480

atgttcacca tcaataatca gtttgttttc tggctgggct ctggctgtgc actcatcctc 540

gccgttttac tctttttcgc caaaacggat gcgccctctt ctgccacggt tgccaatgcg 600

gtaggtgcca accattcggc atttagcctt aagctggcac tggaactgtt cagacagcca 660

aaactgtggt ttttgtcact gtatgttatt ggcgtttcct gcacctacga tgtttttgac 720

caacagtttg ctaatttctt tacttcgttc tttgctaccg gtgaacaggg tacgcgggta 780

tttggctacg taacgacaat gggcgaatta cttaacgcct cgattatgtt ctttgcgcca 840

ctgatcatta atcgcatcgg tgggaaaaac gccctgctgc tggctggcac tattatgtct 900

gtacgtatta ttggctcatc gttcgccacc tcagcgctgg aagtggttat tctgaaaacg 960

ctgcatatgt ttgaagtacc gttcctgctg gtgggctgct ttaaatatat taccagccag 1020

tttgaagtgc gtttttcagc gacgatttat ctggtctgtt tctgcttctt taagcaactg 1080

gcgatgattt ttatgtctgt actggcgggc aatatgtatg aaagcatcgg tttccagggc 1140

gcttatctgg tgctgggtct ggtggcgctg ggcttcacct taatttccgt gttcacgctt 1200

agcggccccg gcccgctttc cctgctgcgt cgtcaggtga atgaagtcgc tgataaaaac 1260

tggaggcgtc ataggggatc ccgtcgtttt acaacgtcgt gactgggaaa accctggcgt 1320

tacccaactt aatcgccttg cagcacatcc ccctttcgcc agctggcgta atagcgaaga 1380

ggcccgcacc gatcgccctt cccaacagtt gcgcagcctg aatggcgaat ggcgctttgc 1440

ctggtttccg gcaccagaag cggtgccgga aagctggctg gagtgcgatc ttcctgaggc 1500

cgatactgtc gtcgtcccct caaactggca gatgcacggt tacgatgcgc ccatctacac 1560

caacgtgacc tatcccatta cggtcaatcc gccgtttgtt cccacggaga atccgacggg 1620

ttgttactcg ctcacattta atgttgatga aagctggcta caggaaggcc agacgcgaat 1680

tatttttgat ggcgttaact cggcgtttca tctgtggtgc aacgggcgct gggtcggtta 1740

cggccaggac agtcgtttgc cgtctgaatt tgacctgagc gcatttttac gcgccggaga 1800

aaaccgcctc gcggtgatgg tgctgcgctg gagtgacggc agttatctgg aagatcagga 1860

tatgtggcgg atgagcggca ttttccgtga cgtctcgttg ctgcataaac cgactacaca 1920

aatcagcgat ttccatgttg ccactcgctt taatgatgat ttcagccgcg ctgtactgga 1980

ggctgaagtt cagatgtgcg gcgagttgcg tgactaccta cgggtaacag tttctttatg 2040

gcagggtgaa acgcaggtcg ccagcggcac cgcgcctttc ggcggtgaaa ttatcgatga 2100

gcgtggtggt tatgccgatc gcgtcacact acgtctgaac gtcgaaaacc cgaaactgtg 2160

gagcgccgaa atcccgaatc tctatcgtgc ggtggttgaa ctgcacaccg ccgacggcac 2220

gctgattgaa gcagaagcct gcgatgtcgg tttccgcgag gtgcggattg aaaatggtct 2280

gctgctgctg aacggcaagc cgttgctgat tcgaggcgtt aaccgtcacg agcatcatcc 2340

tctgcatggt caggtcatgg atgagcagac gatggtgcag gatatcctgc tgatgaagca 2400

gaacaacttt aacgccgtgc gctgttcgca ttatccgaac catccgctgt ggtacacgct 2460

gtgcgaccgc tacggcctgt atgtggtgga tgaagccaat attgaaaccc acggcatggt 2520

gccaatgaat cgtctgaccg atgatccgcg ctggctaccg gcgatgagcg aacgcgtaac 2580

gcgaatggtg cagcgcgatc gtaatcaccc gagtgtgatc atctggtcgc tggggaatga 2640

atcaggccac ggcgctaatc acgacgcgct gtatcgctgg atcaaatctg tcgatccttc 2700

ccgcccggtg cagtatgaag gcggcggagc cgacaccacg gccaccgata ttatttgccc 2760

gatgtacgcg cgcgtggatg aagaccagcc cttcccggct gtgccgaaat ggtccatcaa 2820

aaaatggctt tcgctacctg gagagacgcg cccgctgatc ctttgcgaat acgcccacgc 2880

gatgggtaac agtcttggcg gtttcgctaa atactggcag gcgtttcgtc agtatccccg 2940

tttacagggc ggcttcgtct gggactgggt ggatcagtcg ctgattaaat atgatgaaaa 3000

cggcaacccg tggtcggctt acggcggtga ttttggcgat acgccgaacg atcgccagtt 3060

ctgtatgaac ggtctggtct ttgccgaccg cacgccgcat ccagcgctga cggaagcaaa 3120

acaccagcag cagtttttcc agttccgttt atccgggcaa accatcgaag tgaccagcga 3180

atacctgttc cgtcatagcg ataacgagct cctgcactgg atggtggcgc tggatggtaa 3240

gccgctggca agcggtgaag tgcctctgga tgtcgctcca caaggtaaac agttgattga 3300

actgcctgaa ctaccgcagc cggagagcgc cgggcaactc tggctcacag tacgcgtagt 3360

gcaaccgaac gcgaccgcat ggtcagaagc cgggcacatc agcgcctggc agcagtggcg 3420

tctggcggaa aacctcagtg tgacgctccc cgccgcgtcc cacgccatcc cgcatctgac 3480

caccagcgaa atggattttt gcatcgagct gggtaataag cgttggcaat ttaaccgcca 3540

gtcaggcttt ctttcacaga tgtggattgg cgataaaaaa caactgctga cgccgctgcg 3600

cgatcagttc acccgtgcac cgctggataa cgacattggc gtaagtgaag cgacccgcat 3660

tgaccctaac gcctgggtcg aacgctggaa ggcggcgggc cattaccagg ccgaagcagc 3720

gttgttgcag tgcacggcag atacacttgc tgatgcggtg ctgattacga ccgctcacgc 3780

gtggcagcat caggggaaaa ccttatttat cagccggaaa acctaccgga ttgatggtag 3840

tggtcaaatg gcgattaccg ttgatgttga agtggcgagc gatacaccgc atccggcgcg 3900

gattggcctg aactgccagc tggcgcaggt agcagagcgg gtaaactggc tcggattagg 3960

gccgcaagaa aactatcccg accgccttac tgccgcctgt tttgaccgct gggatctgcc 4020

attgtcagac atgtataccc cgtacgtctt cccgagcgaa aacggtctgc gctgcgggac 4080

gcgcgaattg aattatggcc cacaccagtg gcgcggcgac ttccagttca acatcagccg 4140

ctacagtcaa cagcaactga tggaaaccag ccatcgccat ctgctgcacg cggaagaagg 4200

cacatggctg aatatcgacg gtttccatat ggggattggt ggcgacgact cctggagccc 4260

gtcagtatcg gcggaattcc agctgagcgc cggtcgctac cattaccagt tggtctggtg 4320

tcaaaaataa gctggtttga agggtattgg tcggtcagtt tcacctgatt tacgtaaaaa 4380

cccgcttcgg cgggtttttg cttttggagg ggcagaaaga tgaatgactg tc 4432

<210> 3

<211> 2093

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Genetic constructs detecting expressed lactose transporters

<400> 3

atgtactatt taaaaaacac aaacttttgg atgttcggtt tattcttttt cttttacttt 60

tttatcatgg gagcctactt cccgtttttc ccgatttggc tacatgacat caaccatatc 120

agcaaaagtg atacgggtat tatttttgcc gctatttctc tgttctcgct attattccaa 180

ccgctgtttg gtctgctttc tgacaaactc gggctgcgca aatacctgct gtggattatt 240

accggcatgt tagtgatgtt tgcgccgttc tttattttta tcttcgggcc actgttacaa 300

tacaacattt tagtaggatc gattgttggt ggtatttatc taggcttttg ttttaacgcc 360

ggtgcgccag cagtagaggc atttattgag aaagtcagcc gtcgcagtaa tttcgaattt 420

ggtcgcgcgc ggatgtttgg ctgtgttggc tgggcgctgt gtgcctcgat tgtcggcatc 480

atgttcacca tcaataatca gtttgttttc tggctgggct ctggctgtgc actcatcctc 540

gccgttttac tctttttcgc caaaacggat gcgccctctt ctgccacggt tgccaatgcg 600

gtaggtgcca accattcggc atttagcctt aagctggcac tggaactgtt cagacagcca 660

aaactgtggt ttttgtcact gtatgttatt ggcgtttcct gcacctacga tgtttttgac 720

caacagtttg ctaatttctt tacttcgttc tttgctaccg gtgaacaggg tacgcgggta 780

tttggctacg taacgacaat gggcgaatta cttaacgcct cgattatgtt ctttgcgcca 840

ctgatcatta atcgcatcgg tgggaaaaac gccctgctgc tggctggcac tattatgtct 900

gtacgtatta ttggctcatc gttcgccacc tcagcgctgg aagtggttat tctgaaaacg 960

ctgcatatgt ttgaagtacc gttcctgctg gtgggctgct ttaaatatat taccagccag 1020

tttgaagtgc gtttttcagc gacgatttat ctggtctgtt tctgcttctt taagcaactg 1080

gcgatgattt ttatgtctgt actggcgggc aatatgtatg aaagcatcgg tttccagggc 1140

gcttatctgg tgctgggtct ggtggcgctg ggcttcacct taatttccgt gttcacgctt 1200

agcggccccg gcccgctttc cctgctgcgt cgtcaggtga atgaagtcgc tcatcatcac 1260

caccatcatt aggatggtgg tgatgataat ggagaaaaaa atcactggat ataccaccgt 1320

tgatatatcc caatggcatc gtaaagaaca ttttgaggca tttcagtcag ttgctcaatg 1380

tacctataac cagaccgttc agctggatat tacggccttt ttaaagaccg taaagaaaaa 1440

taagcacaag ttttatccgg cctttattca cattcttgcc cgcctgatga atgctcatcc 1500

ggagttccgt atggcaatga aagacggtga gctggtgata tgggatagtg ttcacccttg 1560

ttacaccgtt ttccatgagc aaactgaaac gttttcatcg ctctggagtg aataccacga 1620

cgatttccgg cagtttctac acatatattc gcaagatgtg gcgtgttacg gtgaaaacct 1680

ggcctatttc cctaaagggt ttattgagaa tatgtttttc gtcagcgcca atccctgggt 1740

gagtttcacc agttttgatt taaacgtggc caatatggac aacttcttcg cccccgtttt 1800

cactatgggc aaatattata cgcaaggcga caaggtgctg atgccgctgg cgattcaggt 1860

tcatcatgcc gtttgtgatg gcttccatgt cggcagaatg cttaatgaat tacaacagta 1920

ctgcgatgag tggcagggcg gggcgtaagg atccaaaggt acctctagag tcgacctgca 1980

ggccttcgta aatctggcga gtggggaact gccagacatc aaataaaaca aaaggctcag 2040

tcggaagact gggccttttg ttttatctgt tgtttgtcgg tgaacactct ccc 2093

<210> 4

<211> 2628

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Genetic constructs detecting expressed lactose transporters

<400> 4

atggcagatc attcgagcag ctcatcttcg ctgcagaaga agccaattaa tactatcgag 60

cataaagaca ctttgggcaa tgatcgggat cacaaggaag ccttgaacag tgataatgat 120

aatacttctg gattgaaaat caatggtgtc cccatcgagg acgctagaga ggaagtgctc 180

ttaccaggtt acttgtcgaa gcaatattac aaattgtacg gtttatgttt tataacatat 240

ctgtgtgcta ctatgcaagg ttatgatggg gctttaatgg gttctatcta taccgaagat 300

gcatatttga aatactacca tttggatatt aactcatcct ctggtactgg tctagtgttc 360

tctattttca acgttggtca aatttgcggt gcattctttg ttcctcttat ggattggaaa 420

ggtagaaaac ctgctatttt aattgggtgt ctgggtgttg ttattggtgc tattatttcg 480

tctttaacaa caacaaagag tgcattaatt ggtggtagat ggttcgtggc ctttttcgct 540

acaatcgcta atgcagcagc tccaacatac tgtgcagaag tggctccagc tcacttaaga 600

ggtaaggttg caggtcttta taacaccctt tggtctgtcg gttccattgt tgctgccttt 660

agcacttacg gtaccaacaa aaacttccct aactcctcca aggcttttaa gattccatta 720

tacttacaaa tgatgttccc aggtcttgtg tgtatatttg gttggttaat cccagaatct 780

ccaagatggt tggttggtgt tggccgtgag gaagaagctc gtgaattcat tatcaaatac 840

cacttaaatg gcgatagaac tcatccatta ttggatatgg agatggcaga aataatagaa 900

tctttccatg gtacagattt atcaaaccct ctagaaatgt tagatgtaag gagcttattc 960

agaacgagat cggataggta cagagcaatg ttggttatac ttatggcttg gttcggtcaa 1020

ttttccggta acaatgtgtg ttcgtactat ttgcctacca tgttgagaaa tgttggtatg 1080

aagagtgtct cattgaatgt gttaatgaat ggtgtttatt ccatcgtcac ttggatttct 1140

tcaatttgcg gtgcattctt tattgataag attggtagaa gggaaggttt ccttggttct 1200

atctcaggtg ctgcattagc attgacaggt ctatctatct gtactgctcg ttatgagaag 1260

actaagaaga agagtgcttc caatggtgca ttggtgttca tttatctctt tggtggtatc 1320

ttttcttttg ctttcactcc aatgcaatcc atgtactcaa cagaagtgtc tacaaacttg 1380

acgagatcta aggcccaact cctcaacttt gtggtttctg gtgttgccca atttgttaat 1440

caatttgcta ctccaaaggc aatgaagaat atcaaatatt ggttctatgt gttctacgtt 1500

ttcttcgata ttttcgaatt tattgttatc tacttcttct tcgttgaaac taagggtaga 1560

agcttagaag aattagaagt tgtctttgaa gctccaaacc caagaaaggc atccgttgat 1620

caagcattct tggctcaagt cagggcaact ttggtccaac gaaatgacgt tagagttgca 1680

aatgctcaaa atttgaaaga gcaagagcct ctaaagagcg atgctgatca tgtcgaaaag 1740

ctttcagagg cagaatctgt tagagcagaa ggaaggggtt ctttgttgac ttgtggagat 1800

gttgaggaga atccaggacc aggtaaggaa aagactcacg tttcgaggcc gcgattaaat 1860

tccaacatgg atgctgattt atatgggtat aaatgggctc gcgataatgt cgggcaatca 1920

ggtgcgacaa tctatcgatt gtatgggaag cccgatgcgc cagagttgtt tctgaaacat 1980

ggcaaaggta gcgttgccaa tgatgttaca gatgagatgg tcagactaaa ctggctgacg 2040

gaatttatgc ctcttccgac catcaagcat tttatccgta ctcctgatga tgcatggtta 2100

ctcaccactg cgatccccgg caaaacagca ttccaggtat tagaagaata tcctgattca 2160

ggtgaaaata ttgttgatgc gctggcagtg ttcctgcgcc ggttgcattc gattcctgtt 2220

tgtaattgtc cttttaacag cgatcgcgta tttcgtctcg ctcaggcgca atcacgaatg 2280

aataacggtt tggttgatgc gagtgatttt gatgacgagc gtaatggctg gcctgttgaa 2340

caagtctgga aagaaatgca taagcttttg ccattctcac cggattcagt cgtcactcat 2400

ggtgatttct cacttgataa ccttattttt gacgagggga aattaatagg ttgtattgat 2460

gttggacgag tcggaatcgc agaccgatac caggatcttg ccatcctatg gaactgcctc 2520

ggtgagtttt ctccttcatt acagaaacgg ctttttcaaa aatatggtat tgataatcct 2580

gatatgaata aattgcagtt tcatttgatg ctcgatgagt ttttctaa 2628

<210> 5

<211> 1457

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Genetic constructs detecting expressed lactose transporters

<400> 5

atgtactatt taaaaaacac aaacttttgg atgttcggtt tattcttttt cttttacttt 60

tttatcatgg gagcctactt cccgtttttc ccgatttggc tacatgacat caaccatatc 120

agcaaaagtg atacgggtat tatttttgcc gctatttctc tgttctcgct attattccaa 180

ccgctgtttg gtctgctttc tgacaaactc gggctgcgca aatacctgct gtggattatt 240

accggcatgt tagtgatgtt tgcgccgttc tttattttta tcttcgggcc actgttacaa 300

tacaacattt tagtaggatc gattgttggt ggtatttatc taggcttttg ttttaacgcc 360

ggtgcgccag cagtagaggc atttattgag aaagtcagcc gtcgcagtaa tttcgaattt 420

ggtcgcgcgc ggatgtttgg ctgtgttggc tgggcgctgt gtgcctcgat tgtcggcatc 480

atgttcacca tcaataatca gtttgttttc tggctgggct ctggctgtgc actcatcctc 540

gccgttttac tctttttcgc caaaacggat gcgccctctt ctgccacggt tgccaatgcg 600

gtaggtgcca accattcggc atttagcctt aagctggcac tggaactgtt cagacagcca 660

aaactgtggt ttttgtcact gtatgttatt ggcgtttcct gcacctacga tgtttttgac 720

caacagtttg ctaatttctt tacttcgttc tttgctaccg gtgaacaggg tacgcgggta 780

tttggctacg taacgacaat gggcgaatta cttaacgcct cgattatgtt ctttgcgcca 840

ctgatcatta atcgcatcgg tgggaaaaac gccctgctgc tggctggcac tattatgtct 900

gtacgtatta ttggctcatc gttcgccacc tcagcgctgg aagtggttat tctgaaaacg 960

ctgcatatgt ttgaagtacc gttcctgctg gtgggctgct ttaaatatat taccagccag 1020

tttgaagtgc gtttttcagc gacgatttat ctggtctgtt tctgcttctt taagcaactg 1080

gcgatgattt ttatgtctgt actggcgggc aatatgtatg aaagcatcgg tttccagggc 1140

gcttatctgg tgctgggtct ggtggcgctg ggcttcacct taatttccgt gttcacgctt 1200

agcggccccg gcccgctttc cctgctgcgt cgtcaggtga atgaagtcgc tgataactct 1260

acgacaacct cttcacagcc aatctcgccc ggatagctca gtcggtagag cagcggccgg 1320

acgcaactga atgaaatggt gaaggacggg tccaggtgtg gctgcttcgg cagtgcagct 1380

tgttgagtag agtgtgagct ccgtaactag tcgcgtccgg ccgcgggtcc agggttcaag 1440

tccctgttcg ggcgcca 1457

<210> 6

<211> 3638

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Vector

<400> 6

cgcgttggat gcaggcatgc aagcttggct gttttggcgg atgagagaag attttcagcc 60

tgatacagat taaatcagaa cgcagaagcg gtctgataaa acagaatttg cctggcggca 120

gtagcgcggt ggtcccacct gaccccatgc cgaactcaga agtgaaacgc cgtagcgccg 180

atggtagtgt ggggtctccc catgcgagag tagggaactg ccaggcatca aataaaacga 240

aaggctcagt cgaaagactg ggcctttcgt tttatctgtt gtttgtcggt gaacgctctc 300

ctgagtagga caaatccgcc gggagcggat ttgaacgttg cgaagcaacg gcccggaggg 360

tggcgggcag gacgcccgcc ataaactgcc aggcatcaaa ttaagcagaa ggccatcctg 420

acggatggcc tttttgcgtt tctacaaact ctttttgttt atttttctaa atacattcaa 480

atatgtatcc gctcatgaga caataaccct gataaatgct tcaataatat tgaaaaagga 540

agagtatgag tattcaacat ttccgtgtcg cccttattcc cttttttgcg gcattttgcc 600

ttcctgtttt tgctcaccca gaaacgctgg tgaaagtaaa agatgctgaa gatcagttgg 660

gtgcacgagt gggttacatc gaactggatc tcaacagcgg taagatcctt gagagttttc 720

gccccgaaga acgttttcca atgatgagca cttttaaagt tctgctatgt ggcgcggtat 780

tatcccgtgt tgacgccggg caagagcaac tcggtcgccg catacactat tctcagaatg 840

acttggttga gtactcacca gtcacagaaa agcatcttac ggatggcatg acagtaagag 900

aattatgcag tgctgccata accatgagtg ataacactgc ggccaactta cttctgacaa 960

cgatcggagg accgaaggag ctaaccgctt ttttgcacaa catgggggat catgtaactc 1020

gccttgatcg ttgggaaccg gagctgaatg aagccatacc aaacgacgag cgtgacacca 1080

cgatgcctac agcaatggca acaacgttgc gcaaactatt aactggcgaa ctacttactc 1140

tagcttcccg gcaacaatta atagactgga tggaggcgga taaagttgca ggaccacttc 1200

tgcgctcggc ccttccggct ggctggttta ttgctgataa atctggagcc ggtgagcgtg 1260

ggtctcgcgg tatcattgca gcactggggc cagatggtaa gccctcccgt atcgtagtta 1320

tctacacgac ggggagtcag gcaactatgg atgaacgaaa tagacagatc gctgagatag 1380

gtgcctcact gattaagcat tggtaactgt cagaccaagt ttactcatat atactttaga 1440

ttgatttaaa acttcatttt taatttaaaa ggatctaggt gaagatcctt tttgataatc 1500

tcatgaccaa aatcccttaa cgtgagtttt cgttccactg agcgtcagac cccgtagaaa 1560

agatcaaagg atcttcttga gatccttttt ttctgcgcgt aatctgctgc ttgcaaacaa 1620

aaaaaccacc gctaccagcg gtggtttgtt tgccggatca agagctacca actctttttc 1680

cgaaggtaac tggcttcagc agagcgcaga taccaaatac tgtccttcta gtgtagccgt 1740

agttaggcca ccacttcaag aactctgtag caccgcctac atacctcgct ctgctaatcc 1800

tgttaccagt ggctgctgcc agtggcgata agtcgtgtct taccgggttg gactcaagac 1860

gatagttacc ggataaggcg cagcggtcgg gctgaacggg gggttcgtgc acacagccca 1920

gcttggagcg aacgacctac accgaactga gatacctaca gcgtgagcta tgagaaagcg 1980

ccacgcttcc cgaagggaga aaggcggaca ggtatccggt aagcggcagg gtcggaacag 2040

gagagcgcac gagggagctt ccagggggaa acgcctggta tctttatagt cctgtcgggt 2100

ttcgccacct ctgacttgag cgtcgatttt tgtgatgctc gtcagggggg cggagcctat 2160

ggaaaaacgc cagcaacgcg gcctttttac ggttcctggc cttttgctgg ccttttgctc 2220

acatgttctt tcctgcgtta tcccctgatt ctgtggataa ccgtattacc gcctttgagt 2280

gagctgatac cgctcgccgc agccgaacga ccgagcgcag cgagtcagtg agcgaggaag 2340

cggaagagcg cctgatgcgg tattttctcc ttacgcatct gtgcggtatt tcacaccgca 2400

tatggtgcac tctcagtaca atctgctctg atgccgcata gttaagccag tatacactcc 2460

gctatcgcta cgtgactggg tcatggctgc gccccgacac ccgccaacac ccgctgacgc 2520

gccctgacgg gcttgtctgc tcccggcatc cgcttacaga caagctgtga ccgtctccgg 2580

gagagctcga tatcccgggc ggccgccttc attctataag tttcttgaca tcttggccgg 2640

catatggtat aatagggaaa tttccatggc ggccgctcta gaagaagctt gggatccgtc 2700

gacctcgaat tcggaggaaa caaagatggc ctttaaagtt gttcagattt gtggtggtct 2760

gggcaatcag atgtttcagt atgcatttgc aaaaagcctg cagaaacata gcaatacacc 2820

ggttctgctg gatattacca gctttgattg gagcaatcgt aaaatgcagc tggaactgtt 2880

tccgattgat ctgccgtatg caagcgaaaa agaaattgca attgccaaaa tgcagcatct 2940

gccgaaactg gttcgtaatg ttctgaaatg catgggtttt gatcgtgtga gccaagaaat 3000

cgtgtttgaa tatgaaccga aactgctgaa aaccagccgt ctgacctatt tttatggcta 3060

ttttcaggat ccgcgttatt ttgatgcaat tagtccgctg atcaaacaga cctttaccct 3120

gcctccgcct ccggaaaatg gtaataacaa aaaaaaagaa gaagagtatc atcgtaaact 3180

ggcactgatt ctggcagcaa aaaatagcgt gtttgtgcat attcgtcgcg gtgattatgt 3240

tggtattggt tgtcagctgg gcatcgatta tcagaaaaaa gcactggaat acatggcaaa 3300

acgtgttccg aatatggaac tgtttgtgtt ttgcgaggac ctggaattta cccagaatct 3360

ggatctgggc tatccgttta tggatatgac cacccgtgat aaagaggaag aggcatattg 3420

ggatatgctg ctgatgcaga gctgtaaaca tggtattatt gccaacagca cctatagttg 3480

gtgggcagca tatctgatta ataacccgga aaaaatcatt attggtccga aacattggct 3540

gtttggccat gaaaacatcc tgtgtaaaga atgggtgaaa atcgaaagcc actttgaagt 3600

gaaaagccag aaatataatg cctaataaga gctcccaa 3638

<210> 7

<211> 2660

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 7

tattttagat tcctgacttc aactcaagac gcacagatat tataacatct gcagaatagg 60

catttgcaag aattactcgt gagtaaggaa agagtgagga actatcgcat acctgcattt 120

aaagatgccg atttgggcgc gaatccttta ttttggcttc accctcatac tattatcagg 180

gccagaaaaa ggaagtgttt ccctccttct tgaattgatg ttaccctcat aaagcacgtg 240

gcctcttatc gagaaagaaa ttaccgtcgc tcgtgatttg tttgcaaaaa gaacaaaact 300

gaaaaaaccc agacacgctc gacttcctct cttcctattg attgcagctt ccaatttcgt 360

cacacaacaa ggtcctagcg acggctcaca ggttttgtaa caagcaatcg aaggttctgg 420

aatggcggga aagggtttag taccacatgc tatgatgccc actgtgatca ccagagcaaa 480

gttcgttcga tcgtactgtt actctctctc tttcaaacag aattgtccga atcgtgtgac 540

aacaacagcc tgttctcaca cactcttttc ttctaaccaa gggggtggtt tagtttagta 600

gaacctcgtg aaacttacat ttacatatat ataaacttgc ataaattggt caatgcaaga 660

aatacatatt tggtcttttc taattcgtag ttttttcaag ttcttagatg ctttcttttt 720

ctcttttttt acagatcatc aaggaagtaa ttatctactt tttacaacaa atataaaaaa 780

aatggcagat cattcgagca gctcatcttc gctgcagaag aagccaatta atactatcga 840

gcataaagac actttgggca ttgatctgga tcacaaggaa gccttgaaca gtgataatga 900

taatacttct ggattgaaaa tcaatggtgt ccccatcgag gacgctagag aggaagtgct 960

cttaccaggt tacttgtcga agcaatatta caaattgtac agtttatgtt ttgtaacata 1020

tctgtgtgct actatgcaag gttatgatgg ggctttaatg ggttctatct ataccgaaaa 1080

tgcatatttg gaatactacc atttggatat taactcatcc agtggtactg gtctagtgtt 1140

ctctattttc aacgttggtc aaatttgcgg tgcattcttt gttcctctta tggattggaa 1200

aggtagaaaa cctgctattt taattgggtg tctgggtgtt gttattggtg gtattattac 1260

gtctgtaaca acaacaaaga gtgcattaat tggtggtaga tggttcatgg cctttttcgc 1320

tacaatcgct aattcagcag ctccagcata ctgtgcagaa gtggctccag ctcacttaag 1380

aggtaaggtt gcaggtcttt ataacaccct ttggtctgtc ggttccattg ttgctgcctt 1440

taccactctc ggtaccaaca aaaacttccc taactcctcc aaggctttta agattccatt 1500

atacttacaa atgatgttcc caggtcttgt gtgtatattt ggttggttaa tcccagaatc 1560

tccaagatgg ttggttggtg ttggccgtga ggaagaagct cgtgaattca ttatcaaata 1620

ccacttaaat ggcgatagaa ctcatccatt attggatatg gagatggcag aaataataga 1680

atctttccat ggtacagatt tatcaaaccc tctagaaatg ttagatgtaa ggatcttatt 1740

cagaacgaga tcggataggt acagagcaat gttggttata cttatggctt ggttcggtca 1800

attttccggt aacaatgtgt gttcgtacta tttgcctacc atgttgagaa atgttggtat 1860

gaagagtgtc tcattgaatg tgttaatgaa tggtgtttat tccatcgtct cttggatttc 1920

ttcaatttgc ggtgcattct ttattgataa gattggtaga agggaaggtt tccttggttc 1980

tatctcaggt gctgcattag cattgacagg tctatctatc tgtactgctc gttatgagaa 2040

gactaagaag aagagtgctt ccaatggtgc attggtgttc atttatctct ttggtgttat 2100

cttttctttt gctttcactc caatgcaatc catgtactca acagaagtgt ctacaaactt 2160

gacgagatct aaggcccaac tcctcaacgg tgtggtttct ggtgttgccc aatttgttaa 2220

tcaatttgct actccaaagg caatgaagaa tatcaaatat tggttctatg tgttctacgt 2280

tttcttcgat attttcgaat ttattgttat ctacttcttc ttcgttgaaa ctaagggtag 2340

aagcttagaa gaattagaag ctgtctttga agctccaaac ccaagaaagg catccgttga 2400

tcaagcattc ttggctcaag ccagggcaac tttggtccaa caaaatgacg ttagagttgc 2460

aaatgctcaa aatttgaaag agcaagagct tctaaagagc gatgctgatc atgtcgaaaa 2520

gctttcagag gcagaatctg tttaaagagt cttttgtaac gaccccgtct ccaccaactt 2580

ggtatgcttg aaatctcaag gccattacac attcagttat gtgaacgaaa ggtctttatt 2640

taacgtagca taaactaaat 2660

<210> 8

<211> 2554

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 8

aggaataagg atacttcaag actagattcc cccctgcatt cccatcagaa ccgtaaacct 60

tggcgctttc cttgggaagt attcaagaag tgccttgtcc ggtttctgtg gctcacaaac 120

cagcgcgccc gatatggctt tcttttcact tatgaatgta ccagtacggg acaattagaa 180

cgctcctgta acaatctctt tgcaaatgtg gggttacatt ctaaccatgt cacactgctg 240

acgaaattca aagtaaaaaa aaatgggacc acgtcttgag aacgatagat tttctttatt 300

ttacattgaa cagtcgttgt ctcagcgcgc tttatgtttt cattcatact tcatattata 360

aaataacaaa agaagaattt catattcacg cccaagaaat caggctgctt tccaaatgca 420

attgacactt cattagccat cacacaaaac tctttcttgc tggagcttct tttaaaaaag 480

acctcagtac accaaacacg ttacccgacc tcgttatttt acgacaacta tgataaaatt 540

ctgaagaaaa aataaaaaaa ttttcatact tcttgctttt atttaaacca ttgaatgatt 600

tcttttgaac aaaactacct gtttcaccaa aggaaataga aagaaaaaat caattagaag 660

aaaacaaaaa acaaaatggc agatcattcg agcagctcat cttcgctgca gaagaagcca 720

attaatacta tcgagcataa agacactttg ggcattgatc tggatcacaa ggaagccttg 780

aacagtgata atgataatac ttctggattg aaaatcaatg gtgtccccat cgaggacgct 840

agagaggaag tgctcttacc aggttacttg tcgaagcaat attacaaatt gtacagttta 900

tgttttgtaa catatctgtg tgctactatg caaggttatg atggggcttt aatgggttct 960

atctataccg aaaatgcata tttggaatac taccatttgg atattaactc atccagtggt 1020

actggtctag tgttctctat tttcaacgtt ggtcaaattt gcggtgcatt ctttgttcct 1080

cttatggatt ggaaaggtag aaaacctgct attttaattg ggtgtctggg tgttgttatt 1140

ggtggtatta ttacgtctgt aacaacaaca aagagtgcat taattggtgg tagatggttc 1200

atggcctttt tcgctacaat cgctaattca gcagctccag catactgtgc agaagtggct 1260

ccagctcact taagaggtaa ggttgcaggt ctttataaca ccctttggtc tgtcggttcc 1320

attgttgctg cctttaccac tctcggtacc aacaaaaact tccctaactc ctccaaggct 1380

tttaagattc cattatactt acaaatgatg ttcccaggtc ttgtgtgtat atttggttgg 1440

ttaatcccag aatctccaag atggttggtt ggtgttggcc gtgaggaaga agctcgtgaa 1500

ttcattatca aataccactt aaatggcgat agaactcatc cattattgga tatggagatg 1560

gcagaaataa tagaatcttt ccatggtaca gatttatcaa accctctaga aatgttagat 1620

gtaaggatct tattcagaac gagatcggat aggtacagag caatgttggt tatacttatg 1680

gcttggttcg gtcaattttc cggtaacaat gtgtgttcgt actatttgcc taccatgttg 1740

agaaatgttg gtatgaagag tgtctcattg aatgtgttaa tgaatggtgt ttattccatc 1800

gtctcttgga tttcttcaat ttgcggtgca ttctttattg ataagattgg tagaagggaa 1860

ggtttccttg gttctatctc aggtgctgca ttagcattga caggtctatc tatctgtact 1920

gctcgttatg agaagactaa gaagaagagt gcttccaatg gtgcattggt gttcatttat 1980

ctctttggtg ttatcttttc ttttgctttc actccaatgc aatccatgta ctcaacagaa 2040

gtgtctacaa acttgacgag atctaaggcc caactcctca acggtgtggt ttctggtgtt 2100

gcccaatttg ttaatcaatt tgctactcca aaggcaatga agaatatcaa atattggttc 2160

tatgtgttct acgttttctt cgatattttc gaatttattg ttatctactt cttcttcgtt 2220

gaaactaagg gtagaagctt agaagaatta gaagctgtct ttgaagctcc aaacccaaga 2280

aaggcatccg ttgatcaagc attcttggct caagccaggg caactttggt ccaacaaaat 2340

gacgttagag ttgcaaatgc tcaaaatttg aaagagcaag agcttctaaa gagcgatgct 2400

gatcatgtcg aaaagctttc agaggcagaa tctgtttaaa gagtcttttg taacgacccc 2460

gtctccacca acttggtatg cttgaaatct caaggccatt acacattcag ttatgtgaac 2520

gaaaggtctt tatttaacgt agcataaact aaat 2554

<210> 9

<211> 4141

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 9

tattttagat tcctgacttc aactcaagac gcacagatat tataacatct gcagaatagg 60

catttgcaag aattactcgt gagtaaggaa agagtgagga actatcgcat acctgcattt 120

aaagatgccg atttgggcgc gaatccttta ttttggcttc accctcatac tattatcagg 180

gccagaaaaa ggaagtgttt ccctccttct tgaattgatg ttaccctcat aaagcacgtg 240

gcctcttatc gagaaagaaa ttaccgtcgc tcgtgatttg tttgcaaaaa gaacaaaact 300

gaaaaaaccc agacacgctc gacttcctct cttcctattg attgcagctt ccaatttcgt 360

cacacaacaa ggtcctagcg acggctcaca ggttttgtaa caagcaatcg aaggttctgg 420

aatggcggga aagggtttag taccacatgc tatgatgccc actgtgatca ccagagcaaa 480

gttcgttcga tcgtactgtt actctctctc tttcaaacag aattgtccga atcgtgtgac 540

aacaacagcc tgttctcaca cactcttttc ttctaaccaa gggggtggtt tagtttagta 600

gaacctcgtg aaacttacat ttacatatat ataaacttgc ataaattggt caatgcaaga 660

aatacatatt tggtcttttc taattcgtag ttttttcaag ttcttagatg ctttcttttt 720

ctcttttttt acagatcatc aaggaagtaa ttatctactt tttacaacaa atataaaaaa 780

aatgtcttgc cttattcctg agaatttaag gaaccccaaa aaggttcacg aaaatagatt 840

gcctactagg gcttactact atgatcagga tattttcgaa tctctcaatg ggccttgggc 900

ttttgcgttg tttgatgcac ctcttgacgc tccggatgct aagaatttag actgggaaac 960

ggcaaagaaa tggagcacca tttctgtgcc atcccattgg gaacttcagg aagactggaa 1020

gtacggtaaa ccaatttaca cgaacgtaca gtaccctatc ccaatcgaca tcccaaatcc 1080

tcccactgta aatcctactg gtgtttatgc tagaactttt gaattagatt cgaaatcgat 1140

tgagtcgttc gagcacagat tgagatttga gggtgtggac aattgttacg agctttatgt 1200

taatggtcaa tatgtgggtt tcaataaggg gtcccgtaac ggggctgaat ttgatatcca 1260

aaagtacgtt tctgagggcg aaaacttagt ggtcgtcaag gttttcaagt ggtccgattc 1320

cacttatatc gaggaccaag atcaatggtg gctctctggt atttacagag acgtttcttt 1380

actaaaattg cctaagaagg cccatattga agacgttagg gtcactacaa cttttgtgga 1440

ctctcagtat caggatgcag agctttctgt gaaagttgat gtccagggtt cttcttatga 1500

tcacatcaat ttcacacttt acgaacctga agatggatct aaagtttacg atgcaagctc 1560

tttgttgaac gaggagaatg ggaacacgac tttttcaact aaagaattta tttccttctc 1620

caccaaaaag aacgaagaaa cagctttcaa gatcaacgtc aaggccccag aacattggac 1680

cgcagaaaat cctactttgt acaagtacca gttggattta attggatctg atggcagtgt 1740

gattcaatct attaagcacc atgttggttt cagacaagtg gagttgaagg acggtaacat 1800

tactgttaat ggcaaagaca ttctctttag aggtgtcaac agacatgatc accatccaag 1860

gttcggtaga gctgtgccat tagattttgt tgttagggac ttgattctaa tgaagaagtt 1920

taacatcaat gctgttcgta actcgcatta tccaaaccat cctaaggtgt atgacctctt 1980

cgataagctg ggcttctggg tcattgacga ggcagatctt gaaactcatg gtgttcaaga 2040

gccatttaat cgtcatacga acttggaggc tgaatatcca gatactaaaa ataaactcta 2100

cgatgttaat gcccattact tatcagataa tccagagtac gaggtcgcgt acttagacag 2160

agcttcccaa cttgtcctaa gagatgtcaa tcatccttcg attattatct ggtccttggg 2220

taacgaagct tgttatggca gaaaccacaa agccatgtac aagttaatta aacaattgga 2280

tcctaccaga cttgtgcatt atgagggtga cttgaacgct ttgagtgcag atatctttag 2340

tttcatgtac ccaacatttg aaattatgga aaggtggagg aagaaccaca ctgatgaaaa 2400

tggtaagttt gaaaagcctt tgatcttgtg tgagtacggc catgcaatgg gtaacggtcc 2460

tggctctttg aaagaatatc aagagttgtt ctacaaggag aagttttacc aaggtggctt 2520

tatctgggaa tgggcaaatc acggtattga attcgaagat gttagtactg cagatggtaa 2580

gttgcataaa gcttatgctt atggtggtga ctttaaggaa gaggttcatg acggagtgtt 2640

catcatggat ggtttgtgta acagtgagca taatcctact ccgggccttg tagagtataa 2700

gaaggttatt gaacccgttc atattaaaat tgcgcacgga tctgtaacaa tcacaaataa 2760

gcacgacttc attacgacag accacttatt gtttatcgac aaggacacgg gaaagacaat 2820

cgacgttcca tctttaaagc cagaagaatc tgttactatt ccttctgata caacttatgt 2880

tgttgccgtg ttgaaagatg atgctggtgt tctaaaggca ggtcatgaaa ttgcctgggg 2940

ccaagctgaa cttccattga aggtacccga ttttgttaca gagacagcag aaaaagctgc 3000

gaagatcaac gacggtaaac gttatgtctc agttgaatcc agtggattgc attttatctt 3060

ggacaaattg ttgggtaaaa ttgaaagcct aaaggtcaag ggtaaggaaa tttccagcaa 3120

gtttgagggt tcttcaatca ctttctggag acctccaacg aataatgatg aacctaggga 3180

ctttaagaac tggaagaagt acaatattga tttaatgaag caaaacatcc atggagtgag 3240

tgtcgaaaaa ggttctaatg gttctctagc tgtagtcacg gttaactctc gtatatcccc 3300

agttgtattt tactatgggt ttgagactgt tcagaagtac acgatctttg ctaacaaaat 3360

aaacttgaac acttctatga agcttactgg cgaatatcag cctcctgatt tcccaagagt 3420

tgggtacgaa ttctggctag gagatagtta tgaatcattt gaatggttag gtcgcgggcc 3480

cggcgaatca tatccggata agaaggaatc tcaaagattc ggtctttacg attccaaaga 3540

tgtagaggaa ttcgtatatg actatcctca agaaaatgga aatcatacag atacccactt 3600

tttgaacatc aaatttgaag gtgcaggaaa actatcgatc ttccaaaagg agaagccatt 3660

taacttcaag atttcagacg aatacggggt tgatgaagct gcccacgctt gtgacgttaa 3720

aagatacggc agacactatc taaggttgga ccatgcaatc catggtgttg gtagcgaagc 3780

atgcggacct gctgttctgg accagtacag attgaaagct caagatttca actttgagtt 3840

tgatctcgct tttgaataag ccggccattg aattgaattg aaatcgatag atcaattttt 3900

ttcttttctc tttccccatc ctttacgcta aaataatagt ttattttatt ttttgaatat 3960

tttttattta tatacgtata tatagactat tatttatctt ttaatgatta ttaagatttt 4020

tattaaaaaa aaattcgcac ctcttttaat gcctttatgc agtttttttt tcccattcga 4080

tatttctatg ttcgggttca gcgtatttta agtttaataa ctcgaaaatt ctgcgtttcg 4140

a 4141

<210> 10

<211> 1187

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 10

ttaatctcag cagatcgtaa caacaaggct actctactgc ttacaatacc ccgttgtaca 60

tctaagtcgt atacaaatga tttatcccca cgcaaaatga cattgcaatt cgccagcaag 120

cacccaaggc ctttccgcca agtgcaccgt tgctagcctg ctatggttca gcgacgccac 180

aaggacgcct tattcgtatc catctatatt gtgtggagca aagaaatcac cgcgttctag 240

catggattct gacttagagg cgttcagcca taatccagcg gatggtagct tcgcggcaat 300

gcctgatcag acagccgcaa aaaccaatta tccgaatgaa ctgttcctct cgtactaagt 360

tcaattacta ttgcggtaac attcatcagt agggtaaaac taacctgtct cacgacggtc 420

taaacccagc tcacgttccc tattagtggg tgaacaatcc aacgcttacc gaattctgct 480

tcggtatgat aggaagagcc gacatcgaag aatcaaaaag caatgtcgct atgaacgctt 540

gactgccaca agccagttat ccctgtggta acttttctgg cacctctagc ctcaaattcc 600

gagggactaa aggatcgata ggccacactt tcatggtttg tattcacact gaaaatcaaa 660

atcaaggggg cttttaccct tttgttctac tggagatttc tgttctccat gagcccccct 720

taggacatct gcgttatcgt ttaacagatg tgccgcccca gccaaactcc ccacctgaca 780

atgtcttcaa cccggatcag ccccgaatgg gaccttgaat gctagaacgt ggaaaatgaa 840

ttccagctcc gcttcattga ataagtaaag aaactataaa ggtagtggta tttcactggc 900

gccgaagctc ccacttattc tacaccctct atgtctcttc acaatgtcaa actagagtca 960

agctcaacag ggtcttcttt ccccgctgat tctgccaagc ccgttccctt ggctgtggtt 1020

tcgctagata gtagataggg acagtgggaa tctcgttaat ccattcatgc gcgtcactaa 1080

ttagatgacg aggcatttgg ctaccttaag agagtcatag ttactcccgc cgtttacccg 1140

cgcttggttg aatttcttca ctttgacatt cagagcactg ggcagaa 1187

<210> 11

<211> 2010

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 11

agtagtccgc ctagcagagc aagccccacc aagcagtcca caagcacgcc cgctgcgtct 60

gaccaaggcc ctcactaccc gacccttaga gccaatcctt atcccgaagt tacggatcta 120

ttttgccgac ttcccttatc tacattattc tatcaactag aggctgttca ccttggagac 180

ctgctgcggt tatcagtacg acctggcatg aaaactattc cttcctgtgg attttcacgg 240

gccgtcacaa gcgcaccgga gccagcaaag gtgctggcct cttccagcca taagacccca 300

tctccggata aaccaattcc ggggtgataa gctgttaaga agaaaagata actcctccca 360

gggctcgcgc cgacgtctcc acattcagtt acgttaccgt gaagaatcca tatccaggtt 420

ccggaatctt aaccggattc cctttcgatg gtggcctgca taaaatcagg cctttgaaac 480

ggagcttccc catctcttag gatcgactaa cccacgtcca actgctgttg acgtggaacc 540

tttccccact tcagtcttca aagttctcat ttgaatattt gctactacca ccaagatctg 600

cactagaggc cgttcgaccc gaccttacgg tctaggcttc gtcactgacc tccacgcctg 660

cctactcgtc agggcatcat atcaaccctg acggtagagt ataggtaaca cgcttgagcg 720

ccatccattt tcagggctag ttcattcggc cggtgagttg ttacacactc cttagcggat 780

tccgacttcc atggccaccg tccggctgtc tagatgaact aacacctttt gtggtgtctg 840

atgagcgtgt attccggcac cttaactcta cgttcggttc atcccgcatc gccagttctg 900

cttaccaaaa atggcccact aaaagctctt cattcaaatg tccacgttca attaagtaac 960

aaggacttct tacatattta aagtttgaga ataggtcaag gtcatttcga ccccggaacc 1020

tctaatcatt cgctttacct cataaaactg atacgagctt ctgctatcct gagggaaact 1080

tcggcaggaa ccagctacta gatggttcga ttagtctttc gcccctatac ccaaattcga 1140

cgatcgattt gcacgtcaga accgctacga gcctccacca gagtttcctc tggcttcacc 1200

ctattcaggc atagttcacc atctttcggg tcccaacagc tatgctctta ctcaaatcca 1260

tccgaagaca tcaggatcgg tcgattgtgc acctcttgcg aggccccaac ctacgttcac 1320

tttcattacg cgtatgggtt ttacacccaa acactcgcat agacgttaga ctccttggtc 1380

cgtgtttcaa gacgggcggc atataaccat tatgccagca tccttgactt acgtcgcagt 1440

cctcagtccc agctggcagt attcccacag gctataatac ttaccgaggc aagctacatt 1500

cctatggatt tatcctgcca ccaaaactga tgctggccca gtgaaatgcg agattcccct 1560

acccacaagg agcagagggc acaaaacacc atgtctgatc aaatgccctt ccctttcaac 1620

aatttcacgt actttttcac tctcttttca aagttctttt catctttcca tcactgtact 1680

tgttcgctat cggtctctcg ccaatattta gctttagatg gaatttacca cccacttaga 1740

gctgcattcc caaacaactc gactcttcga aggcacttta caaagaaccg cactcctcgc 1800

cacacgggat tctcaccctc tatgacgtcc tgttccaagg aacatagaca aggaacggcc 1860

ccaaagttgc cctctccaaa ttacaactcg ggcaccgaag gtaccagatt tcaaatttga 1920

gcttttgccg cttcactcgc cgttactaag gcaatcccgg ttggtttctt ttcctccgct 1980

tattgatatg cttaagttca gcgggtactc 2010

<210> 12

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 12

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccaa ttcattaatg gtataaggtt 180

cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 13

<211> 1551

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 13

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 180

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 240

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 300

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 360

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 420

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 480

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 540

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 600

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 660

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 720

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 780

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 840

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 900

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 960

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 1020

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1080

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1140

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1200

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1260

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1320

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1380

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1440

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1500

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1551

<210> 14

<211> 1398

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 14

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtacatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc 180

ggtttattct ttttctttta cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt 240

tggctacatg acatcaacca tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt 300

tctctgttct cgctattatt ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg 360

cgcaaatacc tgctgtggat tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt 420

tttatcttcg ggccactgtt acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt 480

tatctaggct tttgttttaa cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc 540

agccgtcgca gtaatttcga atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg 600

ctgtgtgcct cgattgtcgg catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg 660

ggctctggct gtgcactcat cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc 720

tcttctgcca cggttgccaa tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg 780

gcactggaac tgttcagaca gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt 840

tcctgcacct acgatgtttt tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct 900

accggtgaac agggtacgcg ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac 960

gcctcgatta tgttctttgc gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg 1020

ctgctggctg gcactattat gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg 1080

ctggaagtgg ttattctgaa aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc 1140

tgctttaaat atattaccag ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc 1200

tgtttctgct tctttaagca actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg 1260

tatgaaagca tcggtttcca gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc 1320

accttaattt ccgtgttcac gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag 1380

gtgaatgaag tcgcttaa 1398

<210> 15

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 15

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcattaatg gtataaggtt 180

cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 16

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 16

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcttataaa tcattatctt 180

cttgacattt tagaaacaat atggtataat ataacgataa gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 17

<211> 1471

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 17

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcttat taacaatatc cttcttgaca ttttgcaggg attgtgatat 120

aatcaataag tatgggccca agttcactta aaaaggagat caacaatgaa agcaattttc 180

gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg tactatttaa aaaacacaaa 240

cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt atcatgggag cctacttccc 300

gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc aaaagtgata cgggtattat 360

ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg ctgtttggtc tgctttctga 420

caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc ggcatgttag tgatgtttgc 480

gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac aacattttag taggatcgat 540

tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt gcgccagcag tagaggcatt 600

tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt cgcgcgcgga tgtttggctg 660

tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg ttcaccatca ataatcagtt 720

tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc gttttactct ttttcgccaa 780

aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta ggtgccaacc attcggcatt 840

tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa ctgtggtttt tgtcactgta 900

tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa cagtttgcta atttctttac 960

ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt ggctacgtaa cgacaatggg 1020

cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg atcattaatc gcatcggtgg 1080

gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta cgtattattg gctcatcgtt 1140

cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg catatgtttg aagtaccgtt 1200

cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt gaagtgcgtt tttcagcgac 1260

gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg atgattttta tgtctgtact 1320

ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct tatctggtgc tgggtctggt 1380

ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc ggccccggcc cgctttccct 1440

gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1471

<210> 18

<211> 1632

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 18

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc caattaatta 120

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca 180

agttcactta aaaaggagat caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta 240

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aaataattta gttagggccc 300

aagttcactt aaaaaggaga tcaacaatga aagcaatttt cgtactgaaa catcttaatc 360

atgcgtagga ttttttctat gtactattta aaaaacacaa acttttggat gttcggttta 420

ttctttttct tttacttttt tatcatggga gcctacttcc cgtttttccc gatttggcta 480

catgacatca accatatcag caaaagtgat acgggtatta tttttgccgc tatttctctg 540

ttctcgctat tattccaacc gctgtttggt ctgctttctg acaaactcgg gctgcgcaaa 600

tacctgctgt ggattattac cggcatgtta gtgatgtttg cgccgttctt tatttttatc 660

ttcgggccac tgttacaata caacatttta gtaggatcga ttgttggtgg tatttatcta 720

ggcttttgtt ttaacgccgg tgcgccagca gtagaggcat ttattgagaa agtcagccgt 780

cgcagtaatt tcgaatttgg tcgcgcgcgg atgtttggct gtgttggctg ggcgctgtgt 840

gcctcgattg tcggcatcat gttcaccatc aataatcagt ttgttttctg gctgggctct 900

ggctgtgcac tcatcctcgc cgttttactc tttttcgcca aaacggatgc gccctcttct 960

gccacggttg ccaatgcggt aggtgccaac cattcggcat ttagccttaa gctggcactg 1020

gaactgttca gacagccaaa actgtggttt ttgtcactgt atgttattgg cgtttcctgc 1080

acctacgatg tttttgacca acagtttgct aatttcttta cttcgttctt tgctaccggt 1140

gaacagggta cgcgggtatt tggctacgta acgacaatgg gcgaattact taacgcctcg 1200

attatgttct ttgcgccact gatcattaat cgcatcggtg ggaaaaacgc cctgctgctg 1260

gctggcacta ttatgtctgt acgtattatt ggctcatcgt tcgccacctc agcgctggaa 1320

gtggttattc tgaaaacgct gcatatgttt gaagtaccgt tcctgctggt gggctgcttt 1380

aaatatatta ccagccagtt tgaagtgcgt ttttcagcga cgatttatct ggtctgtttc 1440

tgcttcttta agcaactggc gatgattttt atgtctgtac tggcgggcaa tatgtatgaa 1500

agcatcggtt tccagggcgc ttatctggtg ctgggtctgg tggcgctggg cttcacctta 1560

atttccgtgt tcacgcttag cggccccggc ccgctttccc tgctgcgtcg tcaggtgaat 1620

gaagtcgctt aa 1632

<210> 19

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 19

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcattaatg gtataaggtt 180

cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 20

<211> 1571

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 20

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaggctta cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta 180

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca 240

agttcactta aaaaggagat caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca 300

tgcgtaggat tttttctatg tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat 360

tctttttctt ttactttttt atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac 420

atgacatcaa ccatatcagc aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt 480

tctcgctatt attccaaccg ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat 540

acctgctgtg gattattacc ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct 600

tcgggccact gttacaatac aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag 660

gcttttgttt taacgccggt gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc 720

gcagtaattt cgaatttggt cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg 780

cctcgattgt cggcatcatg ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg 840

gctgtgcact catcctcgcc gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg 900

ccacggttgc caatgcggta ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg 960

aactgttcag acagccaaaa ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca 1020

cctacgatgt ttttgaccaa cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg 1080

aacagggtac gcgggtattt ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga 1140

ttatgttctt tgcgccactg atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg 1200

ctggcactat tatgtctgta cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag 1260

tggttattct gaaaacgctg catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta 1320

aatatattac cagccagttt gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct 1380

gcttctttaa gcaactggcg atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa 1440

gcatcggttt ccagggcgct tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa 1500

tttccgtgtt cacgcttagc ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg 1560

aagtcgctta a 1571

<210> 21

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 21

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcattt aaccgataag cttcttgaca 60

tgtttagggt gttatgatat aatcacccaa ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 22

<211> 1951

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 22

ggcacctgag tcgctgtctt tttcgtgaca ttcagttcgc tgcgctcacg gctctggcag 60

tgaatggggg taaatggcac tacaggcgcc ttttatggat tcatgcaagg aaactaccca 120

taatacaaga aaagcccgtc acgggcttct cagggcgttt tatggcgggt ctgctatgtg 180

gtgctatctg actttttgct gttcagcagt tcctgccctc tgattttcca gtctgaccac 240

ttcggattat cccgtgacag gtcattcaga ctggctaatg cacccagtaa ggcagcggta 300

tcatcaacag gcttacccgt cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt aaaggagatc 360

aacaatgaaa gcactgtcgg gaattcgcgt tggccgattc attaatggta taaggttctt 420

gacatcttac aatcaatatg gtataataat ttagttaggg cccaagttca cttaaaaagg 480

agatcaacaa tgaaagcaag cggtatcatc aacaggctta cccgtcttac tgtcgggaat 540

tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat 600

aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat caacaatgaa agcaattttc 660

gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg tactatttaa aaaacacaaa 720

cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt atcatgggag cctacttccc 780

gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc aaaagtgata cgggtattat 840

ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg ctgtttggtc tgctttctga 900

caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc ggcatgttag tgatgtttgc 960

gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac aacattttag taggatcgat 1020

tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt gcgccagcag tagaggcatt 1080

tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt cgcgcgcgga tgtttggctg 1140

tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg ttcaccatca ataatcagtt 1200

tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc gttttactct ttttcgccaa 1260

aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta ggtgccaacc attcggcatt 1320

tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa ctgtggtttt tgtcactgta 1380

tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa cagtttgcta atttctttac 1440

ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt ggctacgtaa cgacaatggg 1500

cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg atcattaatc gcatcggtgg 1560

gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta cgtattattg gctcatcgtt 1620

cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg catatgtttg aagtaccgtt 1680

cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt gaagtgcgtt tttcagcgac 1740

gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg atgattttta tgtctgtact 1800

ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct tatctggtgc tgggtctggt 1860

ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc ggccccggcc cgctttccct 1920

gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1951

<210> 23

<211> 1749

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 23

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 120

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattaaagg agatcaacaa tgaaagctta 180

ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcgaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 240

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 300

aaaaaggaga tcaacaatga aagcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat 360

ggtataaggt tcttgacatc ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag 420

ttcacttaaa aaggagatca acaatgaaag caattttcgt actgaaacat cttaatcatg 480

cgtaggattt tttctatgta ctatttaaaa aacacaaact tttggatgtt cggtttattc 540

tttttctttt acttttttat catgggagcc tacttcccgt ttttcccgat ttggctacat 600

gacatcaacc atatcagcaa aagtgatacg ggtattattt ttgccgctat ttctctgttc 660

tcgctattat tccaaccgct gtttggtctg ctttctgaca aactcgggct gcgcaaatac 720

ctgctgtgga ttattaccgg catgttagtg atgtttgcgc cgttctttat ttttatcttc 780

gggccactgt tacaatacaa cattttagta ggatcgattg ttggtggtat ttatctaggc 840

ttttgtttta acgccggtgc gccagcagta gaggcattta ttgagaaagt cagccgtcgc 900

agtaatttcg aatttggtcg cgcgcggatg tttggctgtg ttggctgggc gctgtgtgcc 960

tcgattgtcg gcatcatgtt caccatcaat aatcagtttg ttttctggct gggctctggc 1020

tgtgcactca tcctcgccgt tttactcttt ttcgccaaaa cggatgcgcc ctcttctgcc 1080

acggttgcca atgcggtagg tgccaaccat tcggcattta gccttaagct ggcactggaa 1140

ctgttcagac agccaaaact gtggtttttg tcactgtatg ttattggcgt ttcctgcacc 1200

tacgatgttt ttgaccaaca gtttgctaat ttctttactt cgttctttgc taccggtgaa 1260

cagggtacgc gggtatttgg ctacgtaacg acaatgggcg aattacttaa cgcctcgatt 1320

atgttctttg cgccactgat cattaatcgc atcggtggga aaaacgccct gctgctggct 1380

ggcactatta tgtctgtacg tattattggc tcatcgttcg ccacctcagc gctggaagtg 1440

gttattctga aaacgctgca tatgtttgaa gtaccgttcc tgctggtggg ctgctttaaa 1500

tatattacca gccagtttga agtgcgtttt tcagcgacga tttatctggt ctgtttctgc 1560

ttctttaagc aactggcgat gatttttatg tctgtactgg cgggcaatat gtatgaaagc 1620

atcggtttcc agggcgctta tctggtgctg ggtctggtgg cgctgggctt caccttaatt 1680

tccgtgttca cgcttagcgg ccccggcccg ctttccctgc tgcgtcgtca ggtgaatgaa 1740

gtcgcttaa 1749

<210> 24

<211> 1556

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 24

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatac taagcattat attcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcactgtcg ggaattcgcg ttggccaatt aattaatggt ataaggttct 180

tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg gcccaagttc acttaaaaag 240

gagatcaaca atgaaagcaa ttttcgtact gaaacatctt aatcatgcgt aggatttttt 300

ctatgtacta tttaaaaaac acaaactttt ggatgttcgg tttattcttt ttcttttact 360

tttttatcat gggagcctac ttcccgtttt tcccgatttg gctacatgac atcaaccata 420

tcagcaaaag tgatacgggt attatttttg ccgctatttc tctgttctcg ctattattcc 480

aaccgctgtt tggtctgctt tctgacaaac tcgggctgcg caaatacctg ctgtggatta 540

ttaccggcat gttagtgatg tttgcgccgt tctttatttt tatcttcggg ccactgttac 600

aatacaacat tttagtagga tcgattgttg gtggtattta tctaggcttt tgttttaacg 660

ccggtgcgcc agcagtagag gcatttattg agaaagtcag ccgtcgcagt aatttcgaat 720

ttggtcgcgc gcggatgttt ggctgtgttg gctgggcgct gtgtgcctcg attgtcggca 780

tcatgttcac catcaataat cagtttgttt tctggctggg ctctggctgt gcactcatcc 840

tcgccgtttt actctttttc gccaaaacgg atgcgccctc ttctgccacg gttgccaatg 900

cggtaggtgc caaccattcg gcatttagcc ttaagctggc actggaactg ttcagacagc 960

caaaactgtg gtttttgtca ctgtatgtta ttggcgtttc ctgcacctac gatgtttttg 1020

accaacagtt tgctaatttc tttacttcgt tctttgctac cggtgaacag ggtacgcggg 1080

tatttggcta cgtaacgaca atgggcgaat tacttaacgc ctcgattatg ttctttgcgc 1140

cactgatcat taatcgcatc ggtgggaaaa acgccctgct gctggctggc actattatgt 1200

ctgtacgtat tattggctca tcgttcgcca cctcagcgct ggaagtggtt attctgaaaa 1260

cgctgcatat gtttgaagta ccgttcctgc tggtgggctg ctttaaatat attaccagcc 1320

agtttgaagt gcgtttttca gcgacgattt atctggtctg tttctgcttc tttaagcaac 1380

tggcgatgat ttttatgtct gtactggcgg gcaatatgta tgaaagcatc ggtttccagg 1440

gcgcttatct ggtgctgggt ctggtggcgc tgggcttcac cttaatttcc gtgttcacgc 1500

ttagcggccc cggcccgctt tccctgctgc gtcgtcaggt gaatgaagtc gcttaa 1556

<210> 25

<211> 1802

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 25

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattaaagg agatcaacaa tgaaagctta 120

ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa ggttcttgac atcttacaat 180

caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt aaaaaggaga tcaacactta 240

ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccaattaatt aatggtataa ggttcttgac atcttacaat 300

caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt aaaaaggaga tcaacaatga 360

aagcaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 420

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 480

aaaaaggaga tcaacaatga aagcaatttt cgtactgaaa catcttaatc atgcgtagga 540

ttttttctat gtactattta aaaaacacaa acttttggat gttcggttta ttctttttct 600

tttacttttt tatcatggga gcctacttcc cgtttttccc gatttggcta catgacatca 660

accatatcag caaaagtgat acgggtatta tttttgccgc tatttctctg ttctcgctat 720

tattccaacc gctgtttggt ctgctttctg acaaactcgg gctgcgcaaa tacctgctgt 780

ggattattac cggcatgtta gtgatgtttg cgccgttctt tatttttatc ttcgggccac 840

tgttacaata caacatttta gtaggatcga ttgttggtgg tatttatcta ggcttttgtt 900

ttaacgccgg tgcgccagca gtagaggcat ttattgagaa agtcagccgt cgcagtaatt 960

tcgaatttgg tcgcgcgcgg atgtttggct gtgttggctg ggcgctgtgt gcctcgattg 1020

tcggcatcat gttcaccatc aataatcagt ttgttttctg gctgggctct ggctgtgcac 1080

tcatcctcgc cgttttactc tttttcgcca aaacggatgc gccctcttct gccacggttg 1140

ccaatgcggt aggtgccaac cattcggcat ttagccttaa gctggcactg gaactgttca 1200

gacagccaaa actgtggttt ttgtcactgt atgttattgg cgtttcctgc acctacgatg 1260

tttttgacca acagtttgct aatttcttta cttcgttctt tgctaccggt gaacagggta 1320

cgcgggtatt tggctacgta acgacaatgg gcgaattact taacgcctcg attatgttct 1380

ttgcgccact gatcattaat cgcatcggtg ggaaaaacgc cctgctgctg gctggcacta 1440

ttatgtctgt acgtattatt ggctcatcgt tcgccacctc agcgctggaa gtggttattc 1500

tgaaaacgct gcatatgttt gaagtaccgt tcctgctggt gggctgcttt aaatatatta 1560

ccagccagtt tgaagtgcgt ttttcagcga cgatttatct ggtctgtttc tgcttcttta 1620

agcaactggc gatgattttt atgtctgtac tggcgggcaa tatgtatgaa agcatcggtt 1680

tccagggcgc ttatctggtg ctgggtctgg tggcgctggg cttcacctta atttccgtgt 1740

tcacgcttag cggccccggc ccgctttccc tgctgcgtcg tcaggtgaat gaagtcgctt 1800

aa 1802

<210> 26

<211> 1947

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 26

cctgagtcgc tgtctttttc gtgacattca gttcgctgcg ctcacggctc tggcagtgaa 60

tgggggtaaa tggcactaca ggcgcctttt atggattcat gcaaggaaac tacccataat 120

acaagaaaag cccgtcacgg gcttctcagg gcgttttatg gcgggtctgc tatgtggtgc 180

tatctgactt tttgctgttc agcagttcct gccctctgat tttccagtct gaccacttcg 240

gattatcccg tgacaggtca ttcagactgg ctaatgcacc cagtaaggca gcggtatcat 300

caacaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattaaag gagatcaaca 360

atgaaagcac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 420

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 480

caacaatgaa agcaagcggt atcatcaaca ggcttacccg tcttactgtc gggaattcgc 540

gttggccgat tcattaatgg tataaggttc ttgacatctt acaatcaata tggcataata 600

atttagttag ggcccaagtt cacttaaaaa ggagatcaac aatgaaagca attttcgtac 660

tgaaacatct taatcatgcg taggattttt tctatgtact atttaaaaaa cacaaacttt 720

tggatgttcg gtttattctt tttcttttac ttttttatca tgggagccta cttcccgttt 780

ttcccgattt ggctacatga catcaaccat atcagcaaaa gtgatacggg tattattttt 840

gccgctattt ctctgttctc gctattattc caaccgctgt ttggtctgct ttctgacaaa 900

ctcgggctgc gcaaatacct gctgtggatt attaccggca tgttagtgat gtttgcgccg 960

ttctttattt ttatcttcgg gccactgtta caatacaaca ttttagtagg atcgattgtt 1020

ggtggtattt atctaggctt ttgttttaac gccggtgcgc cagcagtaga ggcatttatt 1080

gagaaagtca gccgtcgcag taatttcgaa tttggtcgcg cgcggatgtt tggctgtgtt 1140

ggctgggcgc tgtgtgcctc gattgtcggc atcatgttca ccatcaataa tcagtttgtt 1200

ttctggctgg gctctggctg tgcactcatc ctcgccgttt tactcttttt cgccaaaacg 1260

gatgcgccct cttctgccac ggttgccaat gcggtaggtg ccaaccattc ggcatttagc 1320

cttaagctgg cactggaact gttcagacag ccaaaactgt ggtttttgtc actgtatgtt 1380

attggcgttt cctgcaccta cgatgttttt gaccaacagt ttgctaattt ctttacttcg 1440

ttctttgcta ccggtgaaca gggtacgcgg gtatttggct acgtaacgac aatgggcgaa 1500

ttacttaacg cctcgattat gttctttgcg ccactgatca ttaatcgcat cggtgggaaa 1560

aacgccctgc tgctggctgg cactattatg tctgtacgta ttattggctc atcgttcgcc 1620

acctcagcgc tggaagtggt tattctgaaa acgctgcata tgtttgaagt accgttcctg 1680

ctggtgggct gctttaaata tattaccagc cagtttgaag tgcgtttttc agcgacgatt 1740

tatctggtct gtttctgctt ctttaagcaa ctggcgatga tttttatgtc tgtactggcg 1800

ggcaatatgt atgaaagcat cggtttccag ggcgcttatc tggtgctggg tctggtggcg 1860

ctgggcttca ccttaatttc cgtgttcacg cttagcggcc ccggcccgct ttccctgctg 1920

cgtcgtcagg tgaatgaagt cgcttaa 1947

<210> 27

<211> 1511

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 27

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc caattaatta 120

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca 180

agttcactta aaaaggagat caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca 240

tgcgtaggat tttttctatg tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat 300

tctttttctt ttactttttt atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac 360

atgacatcaa ccatatcagc aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt 420

tctcgctatt attccaaccg ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat 480

acctgctgtg gattattacc ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct 540

tcgggccact gttacaatac aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag 600

gcttttgttt taacgccggt gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc 660

gcagtaattt cgaatttggt cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg 720

cctcgattgt cggcatcatg ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg 780

gctgtgcact catcctcgcc gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg 840

ccacggttgc caatgcggta ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg 900

aactgttcag acagccaaaa ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca 960

cctacgatgt ttttgaccaa cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg 1020

aacagggtac gcgggtattt ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga 1080

ttatgttctt tgcgccactg atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg 1140

ctggcactat tatgtctgta cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag 1200

tggttattct gaaaacgctg catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta 1260

aatatattac cagccagttt gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct 1320

gcttctttaa gcaactggcg atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa 1380

gcatcggttt ccagggcgct tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa 1440

tttccgtgtt cacgcttagc ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg 1500

aagtcgctta a 1511

<210> 28

<211> 1950

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 28

cctgagtcgc tgtctttttc gtgacattca gttcgctgcg ctcacggctc tggcagtgaa 60

tgggggtaaa tggcactaca ggcgcctttt atggattcat gcaaggaaac tacccataat 120

acaagaaaag cccgtcacgg gcttctcagg gcgttttatg gcgggtctgc tatgtggtgc 180

tatctgactt tttgctgttc agcagttcct gccctctgat tttccagtct gaccacttcg 240

gattatcccg tgacaggtca ttcagactgg ctaatgcacc cagtaaggca gcggtatcat 300

caacaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattaaag gagatcaaca 360

atgaaagcac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 420

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 480

caacaatgaa agcaagcggt atcatcaaca ggcttacccg tcttactgtc gggaattcgc 540

gttggccgat tcattaatgg tataaggttc tttgacatct tacaatcaat atggtataat 600

aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa aaggagatca acaatgaaag caattttcgt 660

actgaaacat cttaatcatg cgtaggattt ttttctatgt actatttaaa aaacacaaac 720

ttttggatgt tcggtttatt ctttttcttt tactttttta tcatgggagc ctacttcccg 780

tttttcccga tttggctaca tgacatcaac catatcagca aaagtgatac gggtattatt 840

tttgccgcta tttctctgtt ctcgctatta ttccaaccgc tgtttggtct gctttctgac 900

aaactcgggc tgcgcaaata cctgctgtgg attattaccg gcatgttagt gatgtttgcg 960

ccgttcttta tttttatctt cgggccactg ttacaataca acattttagt aggatcgatt 1020

gttggtggta tttatctagg cttttgtttt aacgccggtg cgccagcagt agaggcattt 1080

attgagaaag tcagccgtcg cagtaatttc gaatttggtc gcgcgcggat gtttggctgt 1140

gttggctggg cgctgtgtgc ctcgattgtc ggcatcatgt tcaccatcaa taatcagttt 1200

gttttctggc tgggctctgg ctgtgcactc atcctcgccg ttttactctt tttcgccaaa 1260

acggatgcgc cctcttctgc cacggttgcc aatgcggtag gtgccaacca ttcggcattt 1320

agccttaagc tggcactgga actgttcaga cagccaaaac tgtggttttt gtcactgtat 1380

gttattggcg tttcctgcac ctacgatgtt tttgaccaac agtttgctaa tttctttact 1440

tcgttctttg ctaccggtga acagggtacg cgggtatttg gctacgtaac gacaatgggc 1500

gaattactta acgcctcgat tatgttcttt gcgccactga tcattaatcg catcggtggg 1560

aaaaacgccc tgctgctggc tggcactatt atgtctgtac gtattattgg ctcatcgttc 1620

gccacctcag cgctggaagt ggttattctg aaaacgctgc atatgtttga agtaccgttc 1680

ctgctggtgg gctgctttaa atatattacc agccagtttg aagtgcgttt ttcagcgacg 1740

atttatctgg tctgtttctg cttctttaag caactggcga tgatttttat gtctgtactg 1800

gcgggcaata tgtatgaaag catcggtttc cagggcgctt atctggtgct gggtctggtg 1860

gcgctgggct tcaccttaat ttccgtgttc acgcttagcg gccccggccc gctttccctg 1920

ctgcgtcgtc aggtgaatga agtcgcttaa 1950

<210> 29

<211> 1551

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 29

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggcataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 180

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 240

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtatgat tttttctatg 300

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 360

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 420

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 480

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 540

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 600

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 660

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 720

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 780

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 840

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 900

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 960

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 1020

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1080

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1140

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1200

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1260

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1320

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1380

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1440

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1500

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1551

<210> 30

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 30

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 31

<211> 1551

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 31

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcattc aatccaatag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 180

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 240

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 300

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 360

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 420

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 480

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 540

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 600

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 660

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 720

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 780

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 840

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 900

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 960

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 1020

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1080

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1140

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1200

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1260

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1320

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1380

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1440

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1500

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1551

<210> 32

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 32

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatgggat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcttataaa tcattatctt 180

cttgacattt tagaaacaat atggtataat ataacgataa gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 33

<211> 1542

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 33

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgctggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattaaagg agatcaacta tgaaagctta 120

ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa ggctcttgac atcttacaat 180

caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt aaaaaggaga tcaacaatga 240

aagcaatttt cgtactgaaa catcttaatc atgcgtagga ttttttctat gtactattta 300

aaaaacacaa acttttggat gttcggttta ttctttttct tttacttttt tatcatggga 360

gcctacttcc cgtttttccc gatttggcta catgacatca accatatcag caaaagtgat 420

acgggtatta tttttgccgc tatttctctg ttctcgctat tattccaacc gctgtttggt 480

ctgctttctg acaaactcgg gctgcgcaaa tacctgctgt ggattattac cggcatgtta 540

gtgatgtttg cgccgttctt tatttttatc ttcgggccac tgttacaata caacatttta 600

gtaggatcga ttgttggtgg tatttatcta ggcttttgtt ttaacgccgg tgcgccagca 660

gtagaggcat ttattgagaa agtcagccgt cgcagtaatt tcgaatttgg tcgcgcgcgg 720

atgtttggct gtgttggctg ggcgctgtgt gcctcgattg tcggcatcat gttcaccatc 780

aataatcagt ttgttttctg gctgggctct ggctgtgcac tcatcctcgc cgttttactc 840

tttttcgcca aaacggatgc gccctcttct gccacggttg ccaatgcggt aggtgccaac 900

cattcggcat ttagccttaa gctggcactg gaactgttca gacagccaaa actgtggttt 960

ttgtcactgt atgttattgg cgtttcctgc acctacgatg tttttgacca acagtttgct 1020

aatttcttta cttcgttctt tgctaccggt gaacagggta cgcgggtatt tggctacgta 1080

acgacaatgg gcgaattact taacgcctcg attatgttct ttgcgccact gatcattaat 1140

cgcatcggtg ggaaaaacgc cctgctgctg gctggcacta ttatgtctgt acgtattatt 1200

ggctcatcgt tcgccacctc agcgctggaa gtggttattc tgaaaacgct gcatatgttt 1260

gaagtaccgt tcctgctggt gggctgcttt aaatatatta ccagccagtt tgaagtgcgt 1320

ttttcagcga cgatttatct ggtctgtttc tgcttcttta agcaactggc gatgattttt 1380

atgtctgtac tggcgggcaa tatgtatgaa agcatcggtt tccagggcgc ttatctggtg 1440

ctgggtctgg tggcgctggg cttcacctta atttccgtgt tcacgcttag cggccccggc 1500

ccgctttccc tgctgcgtcg tcaggtgaat gaagtcgctt aa 1542

<210> 34

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 34

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatac tacccataat gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 35

<211> 1551

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 35

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 180

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 240

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 300

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 360

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 420

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 480

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 540

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 600

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 660

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 720

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 780

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 840

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 900

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 960

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 1020

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1080

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1140

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1200

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1260

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1320

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1380

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1440

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1500

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1551

<210> 36

<211> 1491

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 36

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgatggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcttac acgatatata cttcttgaca 120

ttttgcggga attatggtat aatcacaagg ttagggccca agttcactta aaaaggagat 180

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 240

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 300

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 360

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 420

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 480

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 540

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 600

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 660

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 720

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 780

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 840

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 900

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 960

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1020

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1080

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1140

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1200

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1260

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1320

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1380

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1440

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1491

<210> 37

<211> 1405

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 37

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaggg cccaagttca cttaaaaagg agatcaacaa tgaaagcaat tttcgtactg 120

aaacatctta atcatgcgta ggattttttc tatgtactat ttaaaaaaca caaacttttg 180

gatgttcggt ttattctttt tcttttactt ttttatcatg ggagcctact tcccgttttt 240

cccgatttgg ctacatgaca tcaaccatat cagcaaaagt gatacgggta ttatttttgc 300

cgctatttct ctgttctcgc tattattcca accgctgttt ggtctgcttt ctgacaaact 360

cgggctgcgc aaatacctgc tgtggattat taccggcatg ttagtgatgt ttgcgccgtt 420

ctttattttt atcttcgggc cactgttaca atacaacatt ttagtaggat cgattgttgg 480

tggtatttat ctaggctttt gttttaacgc cggtgcgcca gcagtagagg catttattga 540

gaaagtcagc cgtcgcagta atttcgaatt tggtcgcgcg cggatgtttg gctgtgttgg 600

ctgggcgctg tgtgcctcga ttgtcggcat catgttcacc atcaataatc agtttgtttt 660

ctggctgggc tctggctgtg cactcatcct cgccgtttta ctctttttcg ccaaaacgga 720

tgcgccctct tctgccacgg ttgccaatgc ggtaggtgcc aaccattcgg catttagcct 780

taagctggca ctggaactgt tcagacagcc aaaactgtgg tttttgtcac tgtatgttat 840

tggcgtttcc tgcacctacg atgtttttga ccaacagttt gctaatttct ttacttcgtt 900

ctttgctacc ggtgaacagg gtacgcgggt atttggctac gtaacgacaa tgggcgaatt 960

acttaacgcc tcgattatgt tctttgcgcc actgatcatt aatcgcatcg gtgggaaaaa 1020

cgccctgctg ctggctggca ctattatgtc tgtacgtatt attggctcat cgttcgccac 1080

ctcagcgctg gaagtggtta ttctgaaaac gctgcatatg tttgaagtac cgttcctgct 1140

ggtgggctgc tttaaatata ttaccagcca gtttgaagtg cgtttttcag cgacgattta 1200

tctggtctgt ttctgcttct ttaagcaact ggcgatgatt tttatgtctg tactggcggg 1260

caatatgtat gaaagcatcg gtttccaggg cgcttatctg gtgctgggtc tggtggcgct 1320

gggcttcacc ttaatttccg tgttcacgct tagcggcccc ggcccgcttt ccctgctgcg 1380

tcgtcaggtg aatgaagtcg cttaa 1405

<210> 38

<211> 1491

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 38

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcttac acgatatata cttcttgaca 120

ttttgcggga attatggtat aatcacaagg ttagggccca agttcactta aaaaggagat 180

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 240

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 300

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 360

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 420

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 480

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 540

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 600

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 660

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 720

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 780

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 840

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 900

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 960

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 1020

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1080

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1140

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1200

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1260

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1320

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1380

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1440

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1491

<210> 39

<211> 2116

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 39

cctgagtcgc tgtctttttc gtgacattca gttcgctgcg ctcacggctc tggcagtgaa 60

tgggggtaaa tggcactaca ggcgcctttt atggattcat gcaaggaaac tacccataat 120

acaagaaaag cccgtcacgg gcttctcagg gcgttttatg gcgggtctgc tatgtggtgc 180

tatctgactt tttgctgttc agcagttcct gccctctgat tttccagtct gaccacttcg 240

gattatcccg tgacaggtca ttcagactgg ctaatgcacc cagtaaggca gcggtatcat 300

caacaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 360

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 420

aaaaaggaga tcaacaatga aagcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat 480

ggtataaggt tcttgacatc ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag 540

ttcacttaaa aaggagatca acaatgaaag cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt 600

cattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg 660

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca cttactgtcg ggaattcgcg ttggccaatt 720

aattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg 780

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca atgaaagcaa ttttcgtact gaaacatctt 840

aatcatgcgt aggatttttt ctatgtacta tttaaaaaac acaaactttt ggatgttcgg 900

tttattcttt ttcttttact tttttatcat gggagcctac ttcccgtttt tcccgatttg 960

gctacatgac atcaaccata tcagcaaaag tgatacgggt attatttttg ccgctatttc 1020

tctgttctcg ctattattcc aaccgctgtt tggtctgctt tctgacaaac tcgggctgcg 1080

caaatacctg ctgtggatta ttaccggcat gttagtgatg tttgcgccgt tctttatttt 1140

tatcttcggg ccactgttac aatacaacat tttagtagga tcgattgttg gtggtattta 1200

tctaggcttt tgttttaacg ccggtgcgcc agcagtagag gcatttattg agaaagtcag 1260

ccgtcgcagt aatttcgaat ttggtcgcgc gcggatgttt ggctgtgttg gctgggcgct 1320

gtgtgcctcg attgtcggca tcatgttcac catcaataat cagtttgttt tctggctggg 1380

ctctggctgt gcactcatcc tcgccgtttt actctttttc gccaaaacgg atgcgccctc 1440

ttctgccacg gttgccaatg cggtaggtgc caaccattcg gcatttagcc ttaagctggc 1500

actggaactg ttcagacagc caaaactgtg gtttttgtca ctgtatgtta ttggcgtttc 1560

ctgcacctac gatgtttttg accaacagtt tgctaatttc tttacttcgt tctttgctac 1620

cggtgaacag ggtacgcggg tatttggcta cgtaacgaca atgggcgaat tacttaacgc 1680

ctcgattatg ttctttgcgc cactgatcat taatcgcatc ggtgggaaaa acgccctgct 1740

gctggctggc actattatgt ctgtacgtat tattggctca tcgttcgcca cctcagcgct 1800

ggaagtggtt attctgaaaa cgctgcatat gtttgaagta ccgttcctgc tggtgggctg 1860

ctttaaatat attaccagcc agtttgaagt gcgtttttca gcgacgattt atctggtctg 1920

tttctgcttc tttaagcaac tggcgatgat ttttatgtct gtactggcgg gcaatatgta 1980

tgaaagcatc ggtttccagg gcgcttatct ggtgctgggt ctggtggcgc tgggcttcac 2040

cttaatttcc gtgttcacgc ttagcggccc cggcccgctt tccctgctgc gtcgtcaggt 2100

gaatgaagtc gcttaa 2116

<210> 40

<211> 2122

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 40

tgtctttttc gtgacattca gttcgctgcg ctcacggctc tggcagtgaa tgggggtaaa 60

tggcactaca ggcgcctttt atggattcat gcaaggaaac tacccataat acaagaaaag 120

cccgtcacgg gcttctcagg gcgttttatg gcgggtctgc tatgtggtgc tatctgactt 180

tttgctgttc agcagttcct gccctctgat tttccagtct gaccacttcg gattatcccg 240

tgacaggtca ttcagactgg ctaatgcacc cagtaaggca gcggtatcat caacaggctt 300

acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa ggttcttgac 360

atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt aaaaaggaga 420

tcaacaatga aagcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat ggtataaggt 480

tcttgacatc ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa 540

aaggagatca acaatgaaag cactgtcggg aattcgcgtt ggccgattca ttaatggtat 600

aaggttcttg acatcttaca atcaatatgg tataataatt tagttagggc ccaagttcac 660

ttaaaaagga gatcaacaat gaaagcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta 720

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca 780

agttcactta aaaaggagat caacacttta ctgtcgggga attcgccgtt gggccaattt 840

aattaatggg tataagggtt ccttgacaat gtactattta aaaaacacaa acttttggat 900

gttcggttta ttctttttct tttacttttt tatcatggga gcctacttcc cgtttttccc 960

gatttggcta catgacatca accatatcag caaaagtgat acgggtatta tttttgccgc 1020

tatttctctg ttctcgctat tattccaacc gctgtttggt ctgctttctg acaaactcgg 1080

gctgcgcaaa tacctgctgt ggattattac cggcatgtta gtgatgtttg cgccgttctt 1140

tatttttatc ttcgggccac tgttacaata caacatttta gtaggatcga ttgttggtgg 1200

tatttatcta ggcttttgtt ttaacgccgg tgcgccagca gtagaggcat ttattgagaa 1260

agtcagccgt cgcagtaatt tcgaatttgg tcgcgcgcgg atgtttggct gtgttggctg 1320

ggcgctgtgt gcctcgattg tcggcatcat gttcaccatc aataatcagt ttgttttctg 1380

gctgggctct ggctgtgcac tcatcctcgc cgttttactc tttttcgcca aaacggatgc 1440

gccctcttct gccacggttg ccaatgcggt aggtgccaac cattcggcat ttagccttaa 1500

gctggcactg gaactgttca gacagccaaa actgtggttt ttgtcactgt atgttattgg 1560

cgtttcctgc acctacgatg tttttgacca acagtttgct aatttcttta cttcgttctt 1620

tgctaccggt gaacagggta cgcgggtatt tggctacgta acgacaatgg gcgaattact 1680

taacgcctcg attatgttct ttgcgccact gatcattaat cgcatcggtg ggaaaaacgc 1740

cctgctgctg gctggcacta ttatgtctgt acgtattatt ggctcatcgt tcgccacctc 1800

agcgctggaa gtggttattc tgaaaacgct gcatatgttt gaagtaccgt tcctgctggt 1860

gggctgcttt aaatatatta ccagccagtt tgaagtgcgt ttttcagcga cgatttatct 1920

ggtctgtttc tgcttcttta agcaactggc gatgattttt atgtctgtac tggcgggcaa 1980

tatgtatgaa agcatcggtt tccagggcgc ttatctggtg ctgggtctgg tggcgctggg 2040

cttcacctta atttccgtgt tcacgcttag cggccccggc ccgctttccc tgctgcgtcg 2100

tcaggtgaat gaagtcgctt aa 2122

<210> 41

<211> 2130

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 41

tcgctgtctt tttcgtgaca ttcagttcgc tgcgctcacg gctctggcag tgaatggggg 60

taaatggcac tacaggcgcc ttttatggat tcatgcaagg aaactaccca taatacaaga 120

aaagcccgtc acgggcttct cagggcgttt tatggcgggt ctgctatgtg gtgctatctg 180

actttttgct gttcagcagt tcctgccctc tgattttcca gtctgaccac ttcggattat 240

cccgtgacag gtcattcaga ctggctaatg cacccagtaa ggcagcggta tcatcaacag 300

gcttacccgt cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt cattaatggt ataaggttct 360

tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg gcccaagttc acttaaaaag 420

gagatcaaca atgaaagctt actgtcggga attcgcgttg gccgattcat taatggtata 480

aggttcttga catcttacaa tcaatatggt ataataattt agttagggcc caagttcact 540

taaaaaggag atcaacaatg aaagcactgt cgggaattcg cgttggccga ttcattaatg 600

gtataagggt cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttaggta ggggccaagt 660

tcacttagaa aggagatcaa caatgaaagc ttactgtcgg gaattcgcgt tggccgattc 720

attaatggta taaggttctt gacatcttac aatctatatg gtatcataat atacttaggg 780

cccaagttca cttaaaaagg agatcaacac ttactgtcgc gaattcgcgt tggccaatta 840

attcatggta taaggttctt gacatcttac aatcaaatgt actatttaaa aaacacaaac 900

ttttggatgt tcggtttatt ctttttcttt tactttttta tcatgggagc ctacttcccg 960

tttttcccga tttggctaca tgacatcaac catatcagca aaagtgatac gggtattatt 1020

tttgccgcta tttctctgtt ctcgctatta ttccaaccgc tgtttggtct gctttctgac 1080

aaactcgggc tgcgcaaata cctgctgtgg attattaccg gcatgttagt gatgtttgcg 1140

ccgttcttta tttttatctt cgggccactg ttacaataca acattttagt aggatcgatt 1200

gttggtggta tttatctagg cttttgtttt aacgccggtg cgccagcagt agaggcattt 1260

attgagaaag tcagccgtcg cagtaatttc gaatttggtc gcgcgcggat gtttggctgt 1320

gttggctggg cgctgtgtgc ctcgattgtc ggcatcatgt tcaccatcaa taatcagttt 1380

gttttctggc tgggctctgg ctgtgcactc atcctcgccg ttttactctt tttcgccaaa 1440

acggatgcgc cctcttctgc cacggttgcc aatgcggtag gtgccaacca ttcggcattt 1500

agccttaagc tggcactgga actgttcaga cagccaaaac tgtggttttt gtcactgtat 1560

gttattggcg tttcctgcac ctacgatgtt tttgaccaac agtttgctaa tttctttact 1620

tcgttctttg ctaccggtga acagggtacg cgggtatttg gctacgtaac gacaatgggc 1680

gaattactta acgcctcgat tatgttcttt gcgccactga tcattaatcg catcggtggg 1740

aaaaacgccc tgctgctggc tggcactatt atgtctgtac gtattattgg ctcatcgttc 1800

gccacctcag cgctggaagt ggttattctg aaaacgctgc atatgtttga agtaccgttc 1860

ctgctggtgg gctgctttaa atatattacc agccagtttg aagtgcgttt ttcagcgacg 1920

atttatctgg tctgtttctg cttctttaag caactggcga tgatttttat gtctgtactg 1980

gcgggcaata tgtatgaaag catcggtttc cagggcgctt atctggtgct gggtctggtg 2040

gcgctgggct tcaccttaat ttccgtgttc acgcttagcg gccccggccc gctttccctg 2100

ctgcgtcgtc aggtgaatga agtcgcttaa 2130

<210> 42

<211> 1865

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 42

gcccgtcacg ggcttctcag ggcgttttat ggcgggtctg ctatgtggtg ctatctgact 60

ttttgctgtt cagcagttcc tgccctctga ttttccagtc tgaccacttc ggattatccc 120

gtgacaggtc attcagactg gctaatgcac ccagtaaggc agcggtatca tcaacaggct 180

tacccgtctt actgtcggga attcgcgttg gccgattcat taatggtata aggttcttga 240

catcttacaa tcaatatggt ataataattt agttagggcc caagttcact taaaaaggag 300

atcaacaatg aaagcttact gtcgggaatt cgcgttggcc gattcattaa tggtataagg 360

ttcttgacat cttacaatca atatggtata ataatttagt tagggcccaa gttcacttaa 420

aaaggagatc aacaatgaaa gcactgtcgg gaattcgcgt tggccaatta attaatggta 480

taaggttctt gacatcttac aatcaatatg gtataataat ttagttaggg cccaagttca 540

cttaaaaagg agatcaacaa tgaaagcaat tttcgtactg aaacatctta atcatgcgta 600

ggattttttc tatgtactat ttaaaaaaca caaacttttg gatgttcggt ttattctttt 660

tcttttactt ttttatcatg ggagcctact tcccgttttt cccgatttgg ctacatgaca 720

tcaaccatat cagcaaaagt gatacgggta ttatttttgc cgctatttct ctgttctcgc 780

tattattcca accgctgttt ggtctgcttt ctgacaaact cgggctgcgc aaatacctgc 840

tgtggattat taccggcatg ttagtgatgt ttgcgccgtt ctttattttt atcttcgggc 900

cactgttaca atacaacatt ttagtaggat cgattgttgg tggtatttat ctaggctttt 960

gttttaacgc cggtgcgcca gcagtagagg catttattga gaaagtcagc cgtcgcagta 1020

atttcgaatt tggtcgcgcg cggatgtttg gctgtgttgg ctgggcgctg tgtgcctcga 1080

ttgtcggcat catgttcacc atcaataatc agtttgtttt ctggctgggc tctggctgtg 1140

cactcatcct cgccgtttta ctctttttcg ccaaaacgga tgcgccctct tctgccacgg 1200

ttgccaatgc ggtaggtgcc aaccattcgg catttagcct taagctggca ctggaactgt 1260

tcagacagcc aaaactgtgg tttttgtcac tgtatgttat tggcgtttcc tgcacctacg 1320

atgtttttga ccaacagttt gctaatttct ttacttcgtt ctttgctacc ggtgaacagg 1380

gtacgcgggt atttggctac gtaacgacaa tgggcgaatt acttaacgcc tcgattatgt 1440

tctttgcgcc actgatcatt aatcgcatcg gtgggaaaaa cgccctgctg ctggctggca 1500

ctattatgtc tgtacgtatt attggctcat cgttcgccac ctcagcgctg gaagtggtta 1560

ttctgaaaac gctgcatatg tttgaagtac cgttcctgct ggtgggctgc tttaaatata 1620

ttaccagcca gtttgaagtg cgtttttcag cgacgattta tctggtctgt ttctgcttct 1680

ttaagcaact ggcgatgatt tttatgtctg tactggcggg caatatgtat gaaagcatcg 1740

gtttccaggg cgcttatctg gtgctgggtc tggtggcgct gggcttcacc ttaatttccg 1800

tgttcacgct tagcggcccc ggcccgcttt ccctgctgcg tcgtcaggtg aatgaagtcg 1860

cttaa 1865

<210> 43

<211> 1802

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 43

gctgttcagc agttcctgcc ctctgatttt ccagtctgac cacttcggat tatcccgtga 60

caggtcattc agactggcta atgcacccag taaggcagcg gtatcatcaa caggcttacc 120

cgtcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat ggtataaggt tcttgacatc 180

ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa aaggagatca 240

acaatgaaag cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt cattaatggt ataaggttct 300

tgacatctta caatcaatat gggtataata atttagttag ggcccaagtt cacttaaaaa 360

ggagatcaac aatgaaagca ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 420

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 480

aaaaaggaga tcaacaatga aagcaatttt cgtactgaaa catcttaatc atgcgtagga 540

ttttttctat gtactattta aaaaacacaa acttttggat gttcggttta ttctttttct 600

tttacttttt tatcatggga gcctacttcc cgtttttccc gatttggcta catgacatca 660

accatatcag caaaagtgat acgggtatta tttttgccgc tatttctctg ttctcgctat 720

tattccaacc gctgtttggt ctgctttctg acaaactcgg gctgcgcaaa tacctgctgt 780

ggattattac cggcatgtta gtgatgtttg cgccgttctt tatttttatc ttcgggccac 840

tgttacaata caacatttta gtaggatcga ttgttggtgg tatttatcta ggcttttgtt 900

ttaacgccgg tgcgccagca gtagaggcat ttattgagaa agtcagccgt cgcagtaatt 960

tcgaatttgg tcgcgcgcgg atgtttggct gtgttggctg ggcgctgtgt gcctcgattg 1020

tcggcatcat gttcaccatc aataatcagt ttgttttctg gctgggctct ggctgtgcac 1080

tcatcctcgc cgttttactc tttttcgcca aaacggatgc gccctcttct gccacggttg 1140

ccaatgcggt aggtgccaac cattcggcat ttagccttaa gctggcactg gaactgttca 1200

gacagccaaa actgtggttt ttgtcactgt atgttattgg cgtttcctgc acctacgatg 1260

tttttgacca acagtttgct aatttcttta cttcgttctt tgctaccggt gaacagggta 1320

cgcgggtatt tggctacgta acgacaatgg gcgaattact taacgcctcg attatgttct 1380

ttgcgccact gatcattaat cgcatcggtg ggaaaaacgc cctgctgctg gctggcacta 1440

ttatgtctgt acgtattatt ggctcatcgt tcgccacctc agcgctggaa gtggttattc 1500

tgaaaacgct gcatatgttt gaagtaccgt tcctgctggt gggctgcttt aaatatatta 1560

ccagccagtt tgaagtgcgt ttttcagcga cgatttatct ggtctgtttc tgcttcttta 1620

agcaactggc gatgattttt atgtctgtac tggcgggcaa tatgtatgaa agcatcggtt 1680

tccagggcgc ttatctggtg ctgggtctgg tggcgctggg cttcacctta atttccgtgt 1740

tcacgcttag cggccccggc ccgctttccc tgctgcgtcg tcaggtgaat gaagtcgctt 1800

aa 1802

<210> 44

<211> 2245

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 44

ggcacctgag tcgctgtctt tttcgtgaca ttcagttcgc tgcgctcacg gctctggcag 60

tgaatggggg taaatggcac tacaggcgcc ttttatggat tcatgcaagg aaactaccca 120

taatacaaga aaagcccgtc acgggcttct cagggcgttt tatggcgggt ctgctatgtg 180

gtgctatctg actttttgct gttcagcagt tcctgccctc tgattttcca gtctgaccac 240

ttcggattat cccgtgacag gtcattcaga ctggctaatg cacccagtaa ggcagcggta 300

tcatcaacag gcttacccgt cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt cattaatggt 360

ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg gcccaagttc 420

acttaaaaag gagatcaaca atgaaagctt actgtcggga attcgcgttg gccgattcat 480

taatggtata aggttcttga catcttacaa tcaatatggt ataataattt agttagggcc 540

caagttcact taaaaaggag atcaacaatg aaagcactgt cgggaattcg cgttggccga 600

ttcattaatg gtataaggtt cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttagtta 660

gggcccaagt tcacttaaaa aggagatcaa caatgaaagc ttactgtcgg gaattcgcgt 720

tggccgattc attaatggta taaggttctt gacatcttac aatcaatatg gtataataat 780

ttagttaggg cccaagttca cttaaaaagg agatcaacac ttactgtcgg gaattcgcgt 840

tggccaatta attaatggta taaggttctt gacatcttac aatcaatatg gtataataat 900

ttagttaggg cccaagttca cttaaaaagg agatcaacaa tgaaagcaat tttcgtactg 960

aaacatctta atcatgcgta ggattttttc tatgtactat ttaaaaaaca caaacttttg 1020

gatgttcggt ttattctttt tcttttactt ttttatcatg ggagcctact tcccgttttt 1080

cccgatttgg ctacatgaca tcaaccatat cagcaaaagt gatacgggta ttatttttgc 1140

cgctatttct ctgttctcgc tattattcca accgctgttt ggtctgcttt ctgacaaact 1200

cgggctgcgc aaatacctgc tgtggattat taccggcatg ttagtgatgt ttgcgccgtt 1260

ctttattttt atcttcgggc cactgttaca atacaacatt ttagtaggat cgattgttgg 1320

tggtatttat ctaggctttt gttttaacgc cggtgcgcca gcagtagagg catttattga 1380

gaaagtcagc cgtcgcagta atttcgaatt tggtcgcgcg cggatgtttg gctgtgttgg 1440

ctgggcgctg tgtgcctcga ttgtcggcat catgttcacc atcaataatc agtttgtttt 1500

ctggctgggc tctggctgtg cactcatcct cgccgtttta ctctttttcg ccaaaacgga 1560

tgcgccctct tctgccacgg ttgccaatgc ggtaggtgcc aaccattcgg catttagcct 1620

taagctggca ctggaactgt tcagacagcc aaaactgtgg tttttgtcac tgtatgttat 1680

tggcgtttcc tgcacctacg atgtttttga ccaacagttt gctaatttct ttacttcgtt 1740

ctttgctacc ggtgaacagg gtacgcgggt atttggctac gtaacgacaa tgggcgaatt 1800

acttaacgcc tcgattatgt tctttgcgcc actgatcatt aatcgcatcg gtgggaaaaa 1860

cgccctgctg ctggctggca ctattatgtc tgtacgtatt attggctcat cgttcgccac 1920

ctcagcgctg gaagtggtta ttctgaaaac gctgcatatg tttgaagtac cgttcctgct 1980

ggtgggctgc tttaaatata ttaccagcca gtttgaagtg cgtttttcag cgacgattta 2040

tctggtctgt ttctgcttct ttaagcaact ggcgatgatt tttatgtctg tactggcggg 2100

caatatgtat gaaagcatcg gtttccaggg cgcttatctg gtgctgggtc tggtggcgct 2160

gggcttcacc ttaatttccg tgttcacgct tagcggcccc ggcccgcttt ccctgctgcg 2220

tcgtcaggtg aatgaagtcg cttaa 2245

<210> 45

<211> 2029

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 45

gcaaggaaac tacccataat acaagaaaag cccgtcacgg gcttctcagg gcgttttatg 60

gcgggtctgc tatgtggtgc tatctgactt tttgctgttc agcagttcct gccctctgat 120

tttccagtct gaccacttcg gattatcccg tgacaggtca ttcagactgg ctaatgcacc 180

cagtaaggca gcggtatcat caacaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg 240

ccgattaatt aatggtataa ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta 300

gttagggccc aagttcactt aaaaaggaga tcaacaatga aagcttactg tcgggaattc 360

gcgttggccg attcattaat ggtataaggt tcttgacatc ttacaatcaa tatggtataa 420

taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa aaggagatca acaatgaaag caggcttacc 480

cgtcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat ggtataaggt tcttgacatc 540

ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa aaggagatca 600

acacttactg tcgggaattc gcgttggcca attaattaat ggtataaggt tcttgacatc 660

ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa aaggagatca 720

acaatgaaag caattttcgt actgaaacat cttaatcatg cgtaggattt tttctatgta 780

ctatttaaaa aacacaaact tttggatgtt cggtttattc tttttctttt acttttttat 840

catgggagcc tacttcccgt ttttcccgat ttggctacat gacatcaacc atatcagcaa 900

aagtgatacg ggtattattt ttgccgctat ttctctgttc tcgctattat tccaaccgct 960

gtttggtctg ctttctgaca aactcgggct gcgcaaatac ctgctgtgga ttattaccgg 1020

catgttagtg atgtttgcgc cgttctttat ttttatcttc gggccactgt tacaatacaa 1080

cattttagta ggatcgattg ttggtggtat ttatctaggc ttttgtttta acgccggtgc 1140

gccagcagta gaggcattta ttgagaaagt cagccgtcgc agtaatttcg aatttggtcg 1200

cgcgcggatg tttggctgtg ttggctgggc gctgtgtgcc tcgattgtcg gcatcatgtt 1260

caccatcaat aatcagtttg ttttctggct gggctctggc tgtgcactca tcctcgccgt 1320

tttactcttt ttcgccaaaa cggatgcgcc ctcttctgcc acggttgcca atgcggtagg 1380

tgccaaccat tcggcattta gccttaagct ggcactggaa ctgttcagac agccaaaact 1440

gtggtttttg tcactgtatg ttattggcgt ttcctgcacc tacgatgttt ttgaccaaca 1500

gtttgctaat ttctttactt cgttctttgc taccggtgaa cagggtacgc gggtatttgg 1560

ctacgtaacg acaatgggcg aattacttaa cgcctcgatt atgttctttg cgccactgat 1620

cattaatcgc atcggtggga aaaacgccct gctgctggct ggcactatta tgtctgtacg 1680

tattattggc tcatcgttcg ccacctcagc gctggaagtg gttattctga aaacgctgca 1740

tatgtttgaa gtaccgttcc tgctggtggg ctgctttaaa tatattacca gccagtttga 1800

agtgcgtttt tcagcgacga tttatctggt ctgtttctgc ttctttaagc aactggcgat 1860

gatttttatg tctgtactgg cgggcaatat gtatgaaagc atcggtttcc agggcgctta 1920

tctggtgctg ggtctggtgg cgctgggctt caccttaatt tccgtgttca cgcttagcgg 1980

ccccggcccg ctttccctgc tgcgtcgtca ggtgaatgaa gtcgcttaa 2029

<210> 46

<211> 2088

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 46

ttcagttcgc tgcgctcacg gctctggcag tgaatggggg taaatggcac tacaggcgcc 60

ttttatggat tcatgcaagg aaactaccca taatacaaga aaagcccgtc acgggcttct 120

cagggcgttt tatggcgggt ctgctatgtg gtgctatctg actttttgct gttcagcagt 180

tcctgccctc tgattttcca gtctgaccac ttcggattat cccgtgacag gtcattcaga 240

ctggctaatg cacccagtaa ggcagcggta tcatcaacag gcttacccgt cttactgtcg 300

ggaattcgcg ttggccgatt cattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat 360

ggtataataa tttagttagg gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca atgaaagctt 420

actgtcggga attcgcgttg gccgattcat taatggtata aggttcttga catcttacaa 480

tcaatatggt ataataattt agttagggcc caagttcact taaaaaggag atcaacaatg 540

aaagcactgt cgggaattcg cgttggccga ttcattaatg gtataaggtt cttgacatct 600

tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa aggagatcaa 660

cacttactgt cgggaattcg cgttggccaa ttaattaatg gtataaggtt cttgacatct 720

tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa aggagatcaa 780

caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt ttctatgtac 840

tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta cttttttatc 900

atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca tatcagcaaa 960

agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt ccaaccgctg 1020

tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat tattaccggc 1080

atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt acaatacaac 1140

attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa cgccggtgcg 1200

ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga atttggtcgc 1260

gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg catcatgttc 1320

accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat cctcgccgtt 1380

ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa tgcggtaggt 1440

gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca gccaaaactg 1500

tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt tgaccaacag 1560

tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg ggtatttggc 1620

tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc gccactgatc 1680

attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat gtctgtacgt 1740

attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa aacgctgcat 1800

atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag ccagtttgaa 1860

gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca actggcgatg 1920

atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca gggcgcttat 1980

ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac gcttagcggc 2040

cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 2088

<210> 47

<211> 2102

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 47

gctgcgctca cggctctggc agtgaatggg ggtaaatggc actacaggcg ccttttatgg 60

attcatgcaa ggaaactacc cataatacaa gaaaagcccg tcacgggctt ctcagggcgt 120

tttatggcgg gtctgctatg tggtgctatc tgactttttg ctgttcagca gttcctgccc 180

tctgattttc cagtctgacc acttcggatt atcccgtgac aggtcattca gactggctaa 240

tgcacccagt aaggcagcgg tatcatcaac aggcttaccc gtcttactgt cgggaattcg 300

cgttggccga ttcgaattcg cgttggccga ttcgaattcg cgttggccga ttcgaattcg 360

cgttggccga ttcgaattcg cgttggccga ttcgaattcg cgttggccga ttcgaattcg 420

cgttggccga ttcgaattcg cgttggccga ttcattaatg gtataaggtt cttgacatct 480

tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa aggagatcaa 540

caatgaaagc ttactgtcgg gaattcgcgt tggccgattc attaatggta taaggttctt 600

gacatcttac aatcaatatg gtataataat ttagttaggg cccaagttca cttaaaaagg 660

agatcaacaa tgaaagctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 720

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 780

aaaaaggaga tcaacaatga aagcaatttt cgtactgaaa catcttaatc atgcgtagga 840

ttttttctat gtactattta aaaaacacaa acttttggat gttcggttta ttctttttct 900

tttacttttt tatcatggga gcctacttcc cgtttttccc gatttggcta catgacatca 960

accatatcag caaaagtgat acgggtatta tttttgccgc tatttctctg ttctcgctat 1020

tattccaacc gctgtttggt ctgctttctg acaaactcgg gctgcgcaaa tacctgctgt 1080

ggattattac cggcatgtta gtgatgtttg cgccgttctt tatttttatc ttcgggccac 1140

tgttacaata caacatttta gtaggatcga ttgttggtgg tatttatcta ggcttttgtt 1200

ttaacgccgg tgcgccagca gtagaggcat ttattgagaa agtcagccgt cgcagtaatt 1260

tcgaatttgg tcgcgcgcgg atgtttggct gtgttggctg ggcgctgtgt gcctcgattg 1320

tcggcatcat gttcaccatc aataatcagt ttgttttctg gctgggctct ggctgtgcac 1380

tcatcctcgc cgttttactc tttttcgcca aaacggatgc gccctcttct gccacggttg 1440

ccaatgcggt aggtgccaac cattcggcat ttagccttaa gctggcactg gaactgttca 1500

gacagccaaa actgtggttt ttgtcactgt atgttattgg cgtttcctgc acctacgatg 1560

tttttgacca acagtttgct aatttcttta cttcgttctt tgctaccggt gaacagggta 1620

cgcgggtatt tggctacgta acgacaatgg gcgaattact taacgcctcg attatgttct 1680

ttgcgccact gatcattaat cgcatcggtg ggaaaaacgc cctgctgctg gctggcacta 1740

ttatgtctgt acgtattatt ggctcatcgt tcgccacctc agcgctggaa gtggttattc 1800

tgaaaacgct gcatatgttt gaagtaccgt tcctgctggt gggctgcttt aaatatatta 1860

ccagccagtt tgaagtgcgt ttttcagcga cgatttatct ggtctgtttc tgcttcttta 1920

agcaactggc gatgattttt atgtctgtac tggcgggcaa tatgtatgaa agcatcggtt 1980

tccagggcgc ttatctggtg ctgggtctgg tggcgctggg cttcacctta atttccgtgt 2040

tcacgcttag cggccccggc ccgctttccc tgctgcgtcg tcaggtgaat gaagtcgctt 2100

aa 2102

<210> 48

<211> 2056

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<220>

<221> misc_feature

<222> (616)..(616)

<223> n is a, c, g, or t

<220>

<221> misc_feature

<222> (656)..(656)

<223> n is a, c, g, or t

<220>

<221> misc_feature

<222> (674)..(674)

<223> n is a, c, g, or t

<400> 48

gctgttcagc agttcctgcc ctctgatttt ccagtctgac cacttcggat tatcccgtga 60

caggtcattc agactggcta atgcacccag taaggcagcg gtatcatcaa caggcttacc 120

cgtcttactg tcgggaattc gcgttggccg attaattaat ggtataaggt tcttgacatc 180

ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag ttcacttaaa aaggagatca 240

acaatgaaag cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt cattaatggt ataaggttct 300

tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg gcccaagttc acttaaaaag 360

gagatcaaca atgaaagcag gcttacccgt cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt 420

cattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg 480

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca cttactgtcg ggaattcgcg ttggccaatt 540

aattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg 600

gcccaagttc acttanaaag gagatcaaca cttactgtcg ggaattcgcg ttggcncatt 660

aattaatggt atanagttct tgacatctta ccaatcatat ggtataataa tttagttagg 720

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca atgaaagcaa ttttcgtact gaaacatctt 780

aatcatgcgt aggatttttt ctatgtacta tttaaaaaac acaaactttt ggatgttcgg 840

tttattcttt ttcttttact tttttatcat gggagcctac ttcccgtttt tcccgatttg 900

gctacatgac atcaaccata tcagcaaaag tgatacgggt attatttttg ccgctatttc 960

tctgttctcg ctattattcc aaccgctgtt tggtctgctt tctgacaaac tcgggctgcg 1020

caaatacctg ctgtggatta ttaccggcat gttagtgatg tttgcgccgt tctttatttt 1080

tatcttcggg ccactgttac aatacaacat tttagtagga tcgattgttg gtggtattta 1140

tctaggcttt tgttttaacg ccggtgcgcc agcagtagag gcatttattg agaaagtcag 1200

ccgtcgcagt aatttcgaat ttggtcgcgc gcggatgttt ggctgtgttg gctgggcgct 1260

gtgtgcctcg attgtcggca tcatgttcac catcaataat cagtttgttt tctggctggg 1320

ctctggctgt gcactcatcc tcgccgtttt actctttttc gccaaaacgg atgcgccctc 1380

ttctgccacg gttgccaatg cggtaggtgc caaccattcg gcatttagcc ttaagctggc 1440

actggaactg ttcagacagc caaaactgtg gtttttgtca ctgtatgtta ttggcgtttc 1500

ctgcacctac gatgtttttg accaacagtt tgctaatttc tttacttcgt tctttgctac 1560

cggtgaacag ggtacgcggg tatttggcta cgtaacgaca atgggcgaat tacttaacgc 1620

ctcgattatg ttctttgcgc cactgatcat taatcgcatc ggtgggaaaa acgccctgct 1680

gctggctggc actattatgt ctgtacgtat tattggctca tcgttcgcca cctcagcgct 1740

ggaagtggtt attctgaaaa cgctgcatat gtttgaagta ccgttcctgc tggtgggctg 1800

ctttaaatat attaccagcc agtttgaagt gcgtttttca gcgacgattt atctggtctg 1860

tttctgcttc tttaagcaac tggcgatgat ttttatgtct gtactggcgg gcaatatgta 1920

tgaaagcatc ggtttccagg gcgcttatct ggtgctgggt ctggtggcgc tgggcttcac 1980

cttaatttcc gtgttcacgc ttagcggccc cggcccgctt tccctgctgc gtcgtcaggt 2040

gaatgaagtc gcttaa 2056

<210> 49

<211> 1558

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 49

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcttataaa tcattatctt 180

cttgacattt tagaaacaat atggtataat ataacgataa gggcccaagt tcacttaaaa 240

aggagatcaa caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt 300

ttctatgtac tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta 360

cttttttatc atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca 420

tatcagcaaa agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt 480

ccaaccgctg tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat 540

tattaccggc atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt 600

acaatacaac attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa 660

cgccggtgcg ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga 720

atttggtcgc gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg 780

catcatgttc accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat 840

cctcgccgtt ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa 900

tgcggtaggt gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca 960

gccaaaactg tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt 1020

tgaccaacag tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg 1080

ggtatttggc tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc 1140

gccactgatc attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat 1200

gtctgtacgt attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa 1260

aacgctgcat atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag 1320

ccagtttgaa gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca 1380

actggcgatg atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca 1440

gggcgcttat ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac 1500

gcttagcggc cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1558

<210> 50

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 50

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcattt aaccgataag cttcttgaca 60

tgtttagggt gttatgatat aatcacccaa ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 51

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 51

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 52

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 52

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcttaa attcaataac tttcttgaca 60

tgttattaga tttatggtat aatgacccga tatgggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 53

<211> 1571

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 53

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattaatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaggctta cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc caattaatta 180

atggtataag gttcttgaca tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca 240

agttcactta aaaaggagat caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca 300

tgcgtaggat tttttctatg tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat 360

tctttttctt ttactttttt atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac 420

atgacatcaa ccatatcagc aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt 480

tctcgctatt attccaaccg ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat 540

acctgctgtg gattattacc ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct 600

tcgggccact gttacaatac aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag 660

gcttttgttt taacgccggt gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc 720

gcagtaattt cgaatttggt cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg 780

cctcgattgt cggcatcatg ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg 840

gctgtgcact catcctcgcc gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg 900

ccacggttgc caatgcggta ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg 960

aactgttcag acagccaaaa ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca 1020

cctacgatgt ttttgaccaa cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg 1080

aacagggtac gcgggtattt ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga 1140

ttatgttctt tgcgccactg atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg 1200

ctggcactat tatgtctgta cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag 1260

tggttattct gaaaacgctg catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta 1320

aatatattac cagccagttt gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct 1380

gcttctttaa gcaactggcg atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa 1440

gcatcggttt ccagggcgct tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa 1500

tttccgtgtt cacgcttagc ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg 1560

aagtcgctta a 1571

<210> 54

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 54

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 55

<211> 1968

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 55

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcgaat 60

tcgcgttggc cgattcgaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 120

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 180

caacacttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atggtataag gttcttgaca 240

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 300

caacaatgaa agcttactgt cgggaattcg cgttggccga ttcattaatg gtataaggtt 360

cttgacatct tacaatcaat atggtataat aatttagtta gggcccaagt tcacttaaaa 420

aggagatcaa caatgaaagc ttactgtcgg gaattcgcgt tggccgattc attaatggta 480

taaggttctt gacatcttac aatcaatatg gtataataat ttagttaggg cccaagttca 540

cttaaaaagg agatcaacac ttactgtcgg gaattcgcgt tggccaatta attaatggta 600

taaggttctt gacatcttac catcaatatg gggcccaagt tcacttaaaa aggagatcaa 660

caatgaaagc aattttcgta ctgaaacatc ttaatcatgc gtaggatttt ttctatgtac 720

tatttaaaaa acacaaactt ttggatgttc ggtttattct ttttctttta cttttttatc 780

atgggagcct acttcccgtt tttcccgatt tggctacatg acatcaacca tatcagcaaa 840

agtgatacgg gtattatttt tgccgctatt tctctgttct cgctattatt ccaaccgctg 900

tttggtctgc tttctgacaa actcgggctg cgcaaatacc tgctgtggat tattaccggc 960

atgttagtga tgtttgcgcc gttctttatt tttatcttcg ggccactgtt acaatacaac 1020

attttagtag gatcgattgt tggtggtatt tatctaggct tttgttttaa cgccggtgcg 1080

ccagcagtag aggcatttat tgagaaagtc agccgtcgca gtaatttcga atttggtcgc 1140

gcgcggatgt ttggctgtgt tggctgggcg ctgtgtgcct cgattgtcgg catcatgttc 1200

accatcaata atcagtttgt tttctggctg ggctctggct gtgcactcat cctcgccgtt 1260

ttactctttt tcgccaaaac ggatgcgccc tcttctgcca cggttgccaa tgcggtaggt 1320

gccaaccatt cggcatttag ccttaagctg gcactggaac tgttcagaca gccaaaactg 1380

tggtttttgt cactgtatgt tattggcgtt tcctgcacct acgatgtttt tgaccaacag 1440

tttgctaatt tctttacttc gttctttgct accggtgaac agggtacgcg ggtatttggc 1500

tacgtaacga caatgggcga attacttaac gcctcgatta tgttctttgc gccactgatc 1560

attaatcgca tcggtgggaa aaacgccctg ctgctggctg gcactattat gtctgtacgt 1620

attattggct catcgttcgc cacctcagcg ctggaagtgg ttattctgaa aacgctgcat 1680

atgtttgaag taccgttcct gctggtgggc tgctttaaat atattaccag ccagtttgaa 1740

gtgcgttttt cagcgacgat ttatctggtc tgtttctgct tctttaagca actggcgatg 1800

atttttatgt ctgtactggc gggcaatatg tatgaaagca tcggtttcca gggcgcttat 1860

ctggtgctgg gtctggtggc gctgggcttc accttaattt ccgtgttcac gcttagcggc 1920

cccggcccgc tttccctgct gcgtcgtcag gtgaatgaag tcgcttaa 1968

<210> 56

<211> 1431

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 56

cccgtcttac tgtcgggaat tcgcgttggc cgattcatta atgggataag gttcttgaca 60

tcttacaatc aatatggtat aataatttag ttagggccca agttcactta aaaaggagat 120

caacaatgaa agcaattttc gtactgaaac atcttaatca tgcgtaggat tttttctatg 180

tactatttaa aaaacacaaa cttttggatg ttcggtttat tctttttctt ttactttttt 240

atcatgggag cctacttccc gtttttcccg atttggctac atgacatcaa ccatatcagc 300

aaaagtgata cgggtattat ttttgccgct atttctctgt tctcgctatt attccaaccg 360

ctgtttggtc tgctttctga caaactcggg ctgcgcaaat acctgctgtg gattattacc 420

ggcatgttag tgatgtttgc gccgttcttt atttttatct tcgggccact gttacaatac 480

aacattttag taggatcgat tgttggtggt atttatctag gcttttgttt taacgccggt 540

gcgccagcag tagaggcatt tattgagaaa gtcagccgtc gcagtaattt cgaatttggt 600

cgcgcgcgga tgtttggctg tgttggctgg gcgctgtgtg cctcgattgt cggcatcatg 660

ttcaccatca ataatcagtt tgttttctgg ctgggctctg gctgtgcact catcctcgcc 720

gttttactct ttttcgccaa aacggatgcg ccctcttctg ccacggttgc caatgcggta 780

ggtgccaacc attcggcatt tagccttaag ctggcactgg aactgttcag acagccaaaa 840

ctgtggtttt tgtcactgta tgttattggc gtttcctgca cctacgatgt ttttgaccaa 900

cagtttgcta atttctttac ttcgttcttt gctaccggtg aacagggtac gcgggtattt 960

ggctacgtaa cgacaatggg cgaattactt aacgcctcga ttatgttctt tgcgccactg 1020

atcattaatc gcatcggtgg gaaaaacgcc ctgctgctgg ctggcactat tatgtctgta 1080

cgtattattg gctcatcgtt cgccacctca gcgctggaag tggttattct gaaaacgctg 1140

catatgtttg aagtaccgtt cctgctggtg ggctgcttta aatatattac cagccagttt 1200

gaagtgcgtt tttcagcgac gatttatctg gtctgtttct gcttctttaa gcaactggcg 1260

atgattttta tgtctgtact ggcgggcaat atgtatgaaa gcatcggttt ccagggcgct 1320

tatctggtgc tgggtctggt ggcgctgggc ttcaccttaa tttccgtgtt cacgcttagc 1380

ggccccggcc cgctttccct gctgcgtcgt caggtgaatg aagtcgctta a 1431

<210> 57

<211> 2296

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Heterologous sequences in front of a lactose transporter gene

<400> 57

ggcacctgag tcgctgtctt tttcgtgaca ttcagttcgc tgcgctcacg gctctggcag 60

tgaatggggg taaatggcac tacaggcgcc ttttatggat tcatgcaagg aaactaccca 120

taatacaaga aaagcccgtc acgggcttct cagggcgttt tatggcgggt ctgctatgtg 180

gtgctatctg actttttgct gttcagcagt tcctgccctc tgattttcca gtctgaccac 240

ttcggattat cccgtgacag gtcattcaga ctggctaatg cacccagtaa ggcagcggta 300

tcatcaacag gcttacccgt cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt cgaattcgcg 360

ttggccgatt cttagagata aaaaatttct tgacatgttc tatgttttgt gatataatcg 420

tgagataagg gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca atgaaagcaa gcggtatcat 480

caacaggctt acccgtctta ctgtcgggaa ttcgcgttgg ccgattcatt aatggtataa 540

ggttcttgac atcttacaat caatatggta taataattta gttagggccc aagttcactt 600

aaaaaggaga tcaacaatga aagcttactg tcgggaattc gcgttggccg attcattaat 660

ggtataaggt tcttgacatc ttacaatcaa tatggtataa taatttagtt agggcccaag 720

ttcacttaaa aaggagatca acaatgaaag cttactgtcg ggaattcgcg ttggccgatt 780

cattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat ggtataataa tttagttagg 840

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca cttactgtcg ggaattcgcg ttggccaatt 900

aattaatggt ataaggttct tgacatctta caatcaatat tgtataataa tttagttagg 960

gcccaagttc acttaaaaag gagatcaaca atgaaagcaa ttttcgtact gaaacatctt 1020

aatcatgcgt aggatttttt ctatgtacta tttaaaaaac acaaactttt ggatgttcgg 1080

tttattcttt ttcttttact tttttatcat gggagcctac ttcccgtttt tcccgatttg 1140

gctacatgac atcaaccata tcagcaaaag tgatacgggt attatttttg ccgctatttc 1200

tctgttctcg ctattattcc aaccgctgtt tggtctgctt tctgacaaac tcgggctgcg 1260

caaatacctg ctgtggatta ttaccggcat gttagtgatg tttgcgccgt tctttatttt 1320

tatcttcggg ccactgttac aatacaacat tttagtagga tcgattgttg gtggtattta 1380

tctaggcttt tgttttaacg ccggtgcgcc agcagtagag gcatttattg agaaagtcag 1440

ccgtcgcagt aatttcgaat ttggtcgcgc gcggatgttt ggctgtgttg gctgggcgct 1500

gtgtgcctcg attgtcggca tcatgttcac catcaataat cagtttgttt tctggctggg 1560

ctctggctgt gcactcatcc tcgccgtttt actctttttc gccaaaacgg atgcgccctc 1620

ttctgccacg gttgccaatg cggtaggtgc caaccattcg gcatttagcc ttaagctggc 1680

actggaactg ttcagacagc caaaactgtg gtttttgtca ctgtatgtta ttggcgtttc 1740

ctgcacctac gatgtttttg accaacagtt tgctaatttc tttacttcgt tctttgctac 1800

cggtgaacag ggtacgcggg tatttggcta cgtaacgaca atgggcgaat tacttaacgc 1860

ctcgattatg ttctttgcgc cactgatcat taatcgcatc ggtgggaaaa acgccctgct 1920

gctggctggc actattatgt ctgtacgtat tattggctca tcgttcgcca cctcagcgct 1980

ggaagtggtt attctgaaaa cgctgcatat gtttgaagta ccgttcctgc tggtgggctg 2040

ctttaaatat attaccagcc agtttgaagt gcgtttttca gcgacgattt atctggtctg 2100

tttctgcttc tttaagcaac tggcgatgat ttttatgtct gtactggcgg gcaatatgta 2160

tgaaagcatc ggtttccagg gcgcttatct ggtgctgggt ctggtggcgc tgggcttcac 2220

cttaatttcc gtgttcacgc ttagcggccc cggcccgctt tccctgctgc gtcgtcaggt 2280

gaatgaagtc gcttaa 2296

<210> 58

<211> 2210

<212> DNA

<213> Artificial sequence

<220>

<223> Terminator construct

<400> 58

tcgcgttggc cgattcggaa taggacacca tcgaatggtg caaaaccttt cgcggtatgg 60

catgatagcg cccggaagag agtcaattca gggtggtgaa tatgtactat ttaaaaaaca 120

caaacttttg gatgttcggt ttattctttt tcttttactt ttttatcatg ggagcctact 180

tcccgttttt cccgatttgg ctacatgaca tcaaccatat cagcaaaagt gatacgggta 240

ttatttttgc cgctatttct ctgttctcgc tattattcca accgctgttt ggtctgcttt 300

ctgacaaact cgggctgcgc aaatacctgc tgtggattat taccggcatg ttagtgatgt 360

ttgcgccgtt ctttattttt atcttcgggc cactgttaca atacaacatt ttagtaggat 420

cgattgttgg tggtatttat ctaggctttt gttttaacgc cggtgcgcca gcagtagagg 480

catttattga gaaagtcagc cgtcgcagta atttcgaatt tggtcgcgcg cggatgtttg 540

gctgtgttgg ctgggcgctg tgtgcctcga ttgtcggcat catgttcacc atcaataatc 600

agtttgtttt ctggctgggc tctggctgtg cactcatcct cgccgtttta ctctttttcg 660

ccaaaacgga tgcgccctct tctgccacgg ttgccaatgc ggtaggtgcc aaccattcgg 720

catttagcct taagctggca ctggaactgt tcagacagcc aaaactgtgg tttttgtcac 780

tgtatgttat tggcgtttcc tgcacctacg atgtttttga ccaacagttt gctaatttct 840

ttacttcgtt ctttgctacc ggtgaacagg gtacgcgggt atttggctac gtaacgacaa 900

tgggcgaatt acttaacgcc tcgattatgt tctttgcgcc actgatcatt aatcgcatcg 960

gtgggaaaaa cgccctgctg ctggctggca ctattatgtc tgtacgtatt attggctcat 1020

cgttcgccac ctcagcgctg gaagtggtta ttctgaaaac gctgcatatg tttgaagtac 1080

cgttcctgct ggtgggctgc tttaaatata ttaccagcca gtttgaagtg cgtttttcag 1140

cgacgattta tctggtctgt ttctgcttct ttaagcaact ggcgatgatt tttatgtctg 1200

tactggcggg caatatgtat gaaagcatcg gtttccaggg cgcttatctg gtgctgggtc 1260

tggtggcgct gggcttcacc ttaatttccg tgttcacgct tagcggcccc ggcccgcttt 1320

ccctgctgcg tcgtcaggtg aatgaagtcg ctcatcatca ccaccatcat taggatggtg 1380

gtgatgataa tggagaaaaa aatcactgga tataccaccg ttgatatatc ccaatggcat 1440

cgtaaagaac attttgaggc atttcagtca gttgctcaat gtacctataa ccagaccgtt 1500

cagctggata ttacggcctt tttaaagacc gtaaagaaaa ataagcacaa gttttatccg 1560

gcctttattc acattcttgc ccgcctgatg aatgctcatc cggagttccg tatggcaatg 1620

aaagacggtg agctggtgat atgggatagt gttcaccctt gttacaccgt tttccatgag 1680

caaactgaaa cgttttcatc gctctggagt gaataccacg acgatttccg gcagtttcta 1740

cacatatatt cgcaagatgt ggcgtgttac ggtgaaaacc tggcctattt ccctaaaggg 1800

tttattgaga atatgttttt cgtcagcgcc aatccctggg tgagtttcac cagttttgat 1860

ttaaacgtgg ccaatatgga caacttcttc gcccccgttt tcactatggg caaatattat 1920

acgcaaggcg acaaggtgct gatgccgctg gcgattcagg ttcatcatgc cgtttgtgat 1980

ggcttccatg tcggcagaat gcttaatgaa ttacaacagt actgcgatga gtggcagggc 2040

ggggcgtaag gatccaaagg tacctctaga gtcgacctgc aggccttcgt aaatctggcg 2100

agtggggaac tgccagacat caaataaaac aaaaggctca gtcggaagac tgggcctttt 2160

gttttatctg ttgtttgtcg gtgaacactc tcccgtgtag gctggagctg 2210

<---

1. Способ получения микроорганизмов, устойчивых к явлению подавления действием лактозы, выращенных в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим источником углерода, где способ включает:

a. изменение экспрессии лактозного транспортера в микроорганизмах путем введения гетерологичного промотора перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера или путем изменения кодонов эндогенного гена лактозного транспортера на кодоны, используемые микроорганизмом чаще, или на кодоны, используемые микроорганизмом реже,

b. выращивание указанных микроорганизмов на среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы,

c. добавление лактозы к указанной среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы, в процессе роста указанных микроорганизмов и

d. обнаружение экспрессии лактозного транспортера, и

e. отбор микроорганизмов, устойчивых к явлению подавления действием лактозы, растущих на указанной среде, включающей лактозу и другой источник углерода, которые сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера, на основании обнаруженной экспрессии лактозного транспортера,

причем указанный источник углерода, отличный от лактозы, выбран из группы, состоящей из глицерина, мальтозы, глюкозы, фруктозы, сахарозы, фукозы, маннозы, сиаловой кислоты, крахмала, целлюлозы, полиолов, органических кислот и пентоз.

2. Способ по п. 1, где введение гетерологичного промотора перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера осуществляют за счет а) делеции эндогенных лактозных транспортеров из генома и введения их в другой участок в геноме указанного микроорганизма, или b) за счет введения гетерологичного промотора перед эндогенными лактозными транспортерами, или с) за счет нокаута эндогенного лактозного промотора и введения гетерологичного промотора в тот же участок генома указанного микроорганизма.

3. Способ по пп. 1, 2, где указанный экспрессированный лактозный транспортер обнаруживают с помощью трансляционного связывания с репортерным геном и/или через связывание с аптамером.

4. Способ по пп. 1-3, где указанный экспрессированный лактозный транспортер обнаруживают посредством генетических конструкций, приведенных в SEQ ID NO 2, 3, 4 и/или 5.

5. Способ по пп. 1, 2, где указанный экспрессированный лактозный транспортер обнаруживают путем измерения скорости роста мутированных микроорганизмов.

6. Способ по пп. 1, 2, где указанный экспрессированный лактозный транспортер обнаруживают путем измерения скорости роста мутированных микроорганизмов на среде, включающей лактозу в качестве единственного источника углерода.

7. Способ по пп. 1-6, где указанный лактозный транспортер представляет собой лактозную пермеазу.

8. Способ по пп. 1-7, где указанный микроорганизм представляет собой бактериальную, дрожжевую или грибную клетку.

9. Микроорганизм, устойчивый к явлению подавления действием лактозы, выращенный в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим (другими) источником (источниками) углерода, выбранным(и) из группы, состоящей из глицерина, мальтозы, глюкозы, фруктозы, сахарозы, фукозы, маннозы, сиаловой кислоты, крахмала, целлюлозы, полиолов, органических кислот и пентоз, причем указанный микроорганизм получают способом по пп. 1-8, и причем указанный микроорганизм содержит гетерологичный промотор перед эндогенным или экзогенным геном лактозного транспортера или эндогенный ген лактозного транспортера, в котором кодоны изменены на кодоны, используемые микроорганизмом чаще, или на кодоны, используемые микроорганизмом реже.

10. Микроорганизм, устойчивый к явлению подавления действием лактозы, выращенный в окружении, в котором лактоза комбинируется с другим (другими) источником (источниками) углерода, выбранным(и) из группы, состоящей из глицерина, мальтозы, глюкозы, фруктозы, сахарозы, фукозы, маннозы, сиаловой кислоты, крахмала, целлюлозы, полиолов, органических кислот и пентоз, содержащий экспрессионную кассету лактозного транспортера, содержащую последовательность, приведенную в SEQ ID NO 1, 7, 8, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56 или 57, причем указанный микроорганизм получают способом по пп. 1-8.

11. Микроорганизм по пп. 9, 10, в котором гены, кодирующие ферменты из путей деградации лактозы и/или галактозы, являются менее функциональными по сравнению с функциональным геном дикого типа или нефункциональными.

12. Экспрессионная кассета лактозного транспортера, приводящая к экспрессии лактозного транспортера и которая не приводит к фенотипу подавления действием лактозы, причем указанную экспрессионную кассету лактозного транспортера получают путем выделения из микроорганизма по п. 10, и где указанная экспрессионная кассета содержит последовательность, приведенную в SEQ ID NO 1, 7, 8, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56 или 57.

13. Применение микроорганизма по любому из пп. 9-11 или экспрессионной кассеты лактозного транспортера по п. 12 для производства 2-фукозиллактозы, 2'-фукозиллактозы, 3-фукозиллактозы, 2',3-дифукозиллактозы, лакто-N-триозы, лакто-N-тетраозы, лакто-nN-тетраозы, 3'-сиалиллактозы, 6'-сиалиллактозы, гликолипидов или галактозилированных соединений.

14. Способ получения экспрессионной кассеты лактозного транспортера, которая не приводит к фенотипу подавления действием лактозы, включающий:

- создание мутантов экспрессионной кассеты лактозного транспортера путем введения гетерологичного промотора перед геном лактозного транспортера или путем изменения кодонов гена лактозного транспортера на кодоны, используемые микроорганизмом чаще, или на кодоны, используемые микроорганизмом реже, причем указанные мутанты демонстрируют измененную экспрессию гена лактозного транспортера по сравнению с экспрессией соответствующего гена лактозного транспортера дикого типа;

- скрининг мутантных экспрессионных кассет на наличие экспрессионных кассет, которые обеспечивают экспрессию лактозного транспортера в микроорганизме, трансформированном указанной экспрессионной кассетой;

- скрининг мутантных экспрессионных кассет, которые обеспечивают экспрессию лактозного транспортера на наличие экспрессионных кассет, которые не приводят к подавлению действием лактозы в микроорганизме, трансформированном указанной экспрессионной кассетой путем выращивания микроорганизмов, трансформированных указанными экспрессионными кассетами в среде, включающей источник углерода, отличный от лактозы, и добавления лактозы во время середины экспоненциальной фазы, причем указанный источник углерода, отличный от лактозы, выбран из группы, состоящей из глицерина, мальтозы, глюкозы, фруктозы, сахарозы, фукозы, маннозы, сиаловой кислоты, крахмала, целлюлозы, полиолов, органических кислот и пентоз; и

- выделение указанной экспрессионной кассеты из указанных трансформированных микроорганизмов, которые (i) устойчивы к явлению подавления действием лактозы и которые (ii) сохраняют, по меньшей мере, 50% от уровня транспорта лактозы в клетку, достигаемого с экспрессионной кассетой дикого типа указанного лактозного транспортера.