Способ культивирования ракообразных dарнniа маgnа sтr

 

Изобретение относится к гидробиологии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб. Целью изобретения является увеличение выхода биомассы ракообразных. Маточную культуру ракообразных вносят в культуральную среду с последующим введением кормовой суспензии микроводорослей и крезацина в концентрации от 20 до 200 мг/л, который вносят в среду через день. 3 табл.

СОЮЗ СОВЕТСКИХ

СОЦИАЛИСТИЧЕСКИХ

РЕСПУБЛИК (l9) (11) (s1)s А 01 К 61/00 .

ГОСУДАРСТВЕННЫЙ КОМИТЕТ

ПО ИЗОБРЕТЕНИЯМ И ОТКРЫТИЯМ

ПРИ ГКНТ СС Р

ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ

К АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (21) 4720983 /13 (22) 20.07,89 1 (46) 07.03.92, Бюл. М 9 (71) Кишиневский государственный универ.ситет и Иркутский институт органической химии CO АН СССР (72) M.Ã. Воронков, А.П. Гэрбэлэу, И.И.Дедк), В.П.Барышок и Н.В.Семенова (53) 639.36 (088.8) (56) Авторское свидетельство СССР

М 1007621, кл. А 01 К 67/00, 1983.

Изобретение относится к гидробио-. логии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб.

Известен способ культивирования ракообразных с применением солей хлорной кислоты формулы RCLO<. где R-Na, К, М9, Са, МН4, в качестве стимулятора.для повышения жизнестойкости и воспроизводительной.способности низших ракообразных.

Однако это средство характеризуется невысокой воспроизводительной способностью низших ракообразных.

Цель изобретения — повышение выхода биомассы ракообразных.

Способ осуществляют следующим образом.

В культуральную среду помещают маточную культуру 0aphnla тампа(возраст 1-2 дн) из расчета 10 экземпляров на 200 мл среды и вносят кормовую суспензию микроводорослей хлореллы. Предварительно готовят раствор крезацина исходной кон(54) СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ РАК0,ОБРАЗНЫХ DAPHNlA MAGNA STR. (57) Изобретение относится к гидробиологии и рыбоводству и может быть использовано для получения живого корма для личинок рыб.

Целью изобретения является увеличение выхода биомассы ракообразных. Маточную культуру ракообразных вносят в культураль. ную среду с последующим введением кормовой суспензии микроводорослей и крезацина в концентрации от 20 до 200 мг/л, который вносят в среду через день. 3 табл.

\ (У) центрации 10 г/л. В культуральную среду для получения растворов с содержанием крезацина 0,2 — 1000 мг/л (опыты 2 — 7) вносят объем раствора крезацина исходной концентрации, приведенные в табл. 1.

Ъ

Выращивание дафний ведут в течение

30 сут в накопительном режиме при ежедневном внесении корма. Смену среды и внесение крезацина осуществляют через день. Температура проведения опытов 18—

20 С, повторность тройная, По истечении 30 6д сут производят полное изъятие культуры, 11 подсчет численности и взвешивание.

Исследование выживаемости дафнии в среде крезацина проводят следующим образом. Первую модель, появившуюся в процессе опыта, просчитывают, известную часть отсаживают в новые емкости и таким образом ведут наблюдения за выживаемостью рачков в ряду трех поколений (табл. 2).

В табл. 2 приведены данные по выживаемости, плодовитости и массе особи дафний за 30 сут опыта, выраженные среднеариф1717032

Таблица 1 метическими величинами М со среднестатическим разбросом данных m. Как видно из табл. 2, выживаемость третьего поколения дафний удовлетворительна для растворов крезацина всех концентраций, однако самая высокая выживаемость наблюдается при содержании в среде 20 и 200 мг/л крезацина.

Влияние растворов крезацина на показатели жизнедеятельности дафний проявляется в сильно выраженном стимулировании воспроизводительной способности (росте численности) и массы особи дафний относительно контроля при концентрациях выше

2,0 мг/л. Наибольший стимулирующий эффект наблюдается при концентрации крезацина 200. мг/л, при которой численность дафний относительно контроля возрастает на 698%,.что в 17,5 раза выше численности дафний, полученной согласно известному способу. При этом масса особи возрастает по сравнению с контролем на

34;2) . Для культивирования дафний могут быть использованы концентрации крезацина 20-1000 мг/л (опыты 3-7), однако концентрации 20-200 мг/л (опыты 4 и 5) наиболее эффективны по показателям и экономичны.

В табл, 3 приведены сравнительные данные предлагаемого и известного способов. Из табл. 3 видно, что при использовании раствора аммоневой соли хлорной кислоты концентрации 20 мг/л с целью повышения воспроизводительной способности и жизнестойкости дафний (известный способ) за 30дн опыта прирост численности составляет 30 g к контролю, при использовании с той же целью раствора крезацина концентрации 20 мг/л прирост за 30 дн опыта составляет 265 /. При содержании крезацина в культуральной среде в количестве

200 мг/л (табл, 3, опыт 2) приросту численности к контролю увеличивается до 569 Д.

Сравнение результатов двух способов культивирования целесообразно проводит

5 также по таким продукционным параметрам, как биомасса и средняя скорость роста культуры, которые не приведены для известного способа. Поэтому сравнение полученных данных возможно только от10 носительна контрольного опыта, не содержащего крезацина, при прочих равных условиях. В опытах 1-3 (табл. 3) по предлагаемому способу культивирования дафний начальная биомасса рачков составляет

15 2,5 г/м . В результате культивирования дафэ ний в течение 30. сут в среде, содержащей .крезацин в количествах 20 и 200 мг/л (опыты

1 и 2, табл. 3), при полном изъятии культуры биомасса дафний выше контрольной вели20 чины соответственно в 4,7 и 8,9 раза.

Таким образом, предлагаемый способ культивирования дафний обеспечивает жизнестойкость, прирост массы особи, значительно увеличивает воспроизводитель25 ную способность дафний, что приводит к повышению выхода биомассы культуры.

Формула изобретения

Способ культивирования ракообразных

30 Daphnia .magna Sit, предусматривающий внесение культуры ракообразных в культуральную среду, последующее периодическое внесение кормовой сус пензии микроводорослей и добавление в среду хи35 мического соединения — стимулятора развития ракообразных, отличающийся тем, что, с целью повышения выхода биомассы ракообразных, в качестве химического соединения используют крезацин в концентра40 ции 20-200 мг/л, при этом внесение крезацина осуществляют через день.

1717032

Таблица 2

Влияние растворов креэацина на показатели янзмедеятельности давний

Опыт Текстируеная

) концентрация раствора крезацина> мг/л

Средняя плодовитость за

30 сут..я расчете ма

10 особей, вт

Выямваемость поколеним за 30 сут., Ф

Средняя масса особи за

30 сут., мг/особь

Первое Второе )Третье поколение поколение1поколение

Исходные особи

Отклонение от контроля, Ф

Отклонение т,а

И8м

37,33 д 1 85

24,672 4.33

44,33 t 7,75

159,67й 10.,27

298, O0 2 37, 0O

283,33 в 18 ° О

289,00 + 18 ° 5

-34,51

+18,75

+327,73

+698,29

+658,92

+674,18

Таблица 3

Тестируемая концентрация стимулятора

Способ

Прирост Биомасса за к кон- 30 сут опыта, тротвв,8 г/и

Число особей

Прирост к контроле, 2

Иерт вне особ» в конце опыта в накале е конце опыта опыта

Раствор аннониевой сопи хлорной кислоты концентрации 20 нг/л (0,0022) Известный I

400

678

522 . 504

Контроль

Раствор крезацина кон центрации 20 нг/л

ll

265

2536,8х

100 ° 8

84,48

Предлага- 1 еный

3,02 30,7

Раствор крезацина концентрации 200 нг/л

3,10 34,2

569

924

159,05

17.96

138

2,31

Контроль

Составитель А, Гзрбэлзу

Техред М.Моргентал Корректор M. Кучерявая

Редактор А. Огар

Заказ 823 Тираж Подписное

ВНИИПИ Государственного комитета по изобретениям и открытиям при ГКНТ СССР

113035, Москва, Ж 35, Раушская наб., 4/5

Производственно-издательский комбинат -"Патент", г, Ужгород, ул.Гагарина, 101

1 Контроль (вода)

2 0,2

3 2,0

4 20

5 200

6 500

7 1000

90,0

76,7

90,0

83,3

100,0

90,0

90,0

90,0

86,7

76,7

86,6

80,0

80,0

90,0

100,0

96,7

90 ° О

96 ° 7

83,3

86,7

80,0

100,0

95,0

83.3

96,7.

96 ° 7

86,7

90,0

2,3Т

2,09

2;.Зб

3,02

3,10

3,19

3,06

Ф0,2

0,14

+0,09

З0,12

20,11

+ 0,07

+ 0,18

-9,52

+2 ° 16

+30,7

+34,2

+38 ° I

+32,5

Средняя масса особи в конце опыта .

4774,02

+169,"

531,0-"

+46,0

Средмяя скорость роста куяьтуры, r/è, за

1 сут