Способ молекулярного маркирования пола хмеля обыкновенного (humulus lupulus l)



Способ молекулярного маркирования пола хмеля обыкновенного (humulus lupulus l)
Способ молекулярного маркирования пола хмеля обыкновенного (humulus lupulus l)
Способ молекулярного маркирования пола хмеля обыкновенного (humulus lupulus l)
C12N15 - Получение мутаций или генная инженерия; ДНК или РНК, связанные с генной инженерией, векторы, например плазмиды или их выделение, получение или очистка; использование их хозяев (мутанты или микроорганизмы, полученные генной инженерией C12N 1/00,C12N 5/00,C12N 7/00; новые виды растений A01H; разведение растений из тканевых культур A01H 4/00; новые виды животных A01K 67/00; использование лекарственных препаратов, содержащих генетический материал, который включен в клетки живого организма, для лечения генетических заболеваний, для генной терапии A61K 48/00 пептиды вообще C07K)

Владельцы патента RU 2272840:

Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московская сельскохозяйственная академия им. К.А. Тимирязева" (RU)

Изобретение относится к области молекулярной биологии, в частности при селекции хмеля для определения пола растений на стадии проростков. Определяют пол гибридных растений хмеля на стадии сеянцев с помощью молекулярного маркирования, где используют две комбинации олигонуклеотидных праймеров для проведения полимеразной цепной реакции, которые обеспечивают амплификацию специфичных для мужских растений фрагментов ДНК. Изобретение повышает эффективность селекции и позволяет сократить затраты труда, средств, площадей и времени. 3 ил., 1 табл.

 

Предлагаемое изобретение относится к области молекулярной биологии и может быть использовано в селекции хмеля для определения пола растений хмеля на стадии проростков. Хмель обыкновенный, Humulus lupulus L. (Cannabiaceae) - многолетняя двудомная лиана. Шишки хмеля (соплодия), образующиеся на женских растениях, являются важнейшим сырьем для пивоварения, применяется в медицине, парфюмерной и хлебопекарной промышленности. В производственных целях возделывают женские растения хмеля, которые размножают вегетативно. Мужские растения используют только в селекции для проведения гибридизации.

Известные способы определения пола растений хмеля:

1. По морфологии мужских и женских цветков.

При высоком уровне питания и выращивании в теплице сеянцы зацветают в первый год жизни (Либацкий Е.П. Хмелеводство. - М.: Колос, 1993. -287с.). Однако для экономии материальных ресурсов и затрат труда желательно, чтобы пол сеянцев был определен на ранних этапах их развития, и для дальнейшего выращивания и оценки были отобраны только женские растения.

2. С помощью молекулярных маркеров (Polley A., Seigner E., Ganal M.W. Identification of sex in hop (Humulus lupulus) using molecular markers. Genome, 1997, v.40, p.p.357-351). Маркер, полученный этими исследователями, разработан на основе RAPD - анализа. Он был опробован на небольшом количестве образцов хмеля немецкого происхождения. По сведениям CERENAK, Andreja, JAVORNIK, Branka (Application of male STS marker in hop (Humulus lupulus L.) breeding. Proceedings of the Scientific Commission, Pulawy, Poland, 27-30 July 1999. [S.1.]: International Hop Growers' Convention, 1999, p.39-42), данный маркер не пригоден для ряда сортов.

Наиболее близким по технической сущности к заявляемому изобретению относится способ, предложенный в вышеуказанной статье Polley A., Seigner E., Ganal M.W. Identification of sex in hop (Humulus lupulus) using molecular markers. Genome, 1997, v.40, p.p.357-351. Пол растений предлагается определятся с помощью молекулярных маркеров, разработанных на основе сиквенса специфичных для мужских растений хмеля продуктов полимеразной цепной реакции (ПЦР) со случайными праймерами (RAPD).

Предлагаемая авторами пара олигонуклеотидных праймеров

5'- ACAGAGTACAACTCAGAAACAAACC-3'

5'-AAGGTCGCACAATGACCG-3'

обеспечивает амплификацию в процессе ПЦР специфичного для мужских растений фрагмента ДНК, который выявляется с помощью электрофореза в агарозном геле. В указанной статье авторы приводят следующие методики:

Выделение ДНК:

1. 9 г свежих листьев хмеля замораживали в жидком азоте и измельчали до порошкообразного состояния.

2. Добавляли к измельченным листьям 19 мл экстрагирующего буфера (Буфер содержит 100 мМ ацетата натрия, 50 мМ ЭДТА, 500 мМ NaCl, 2% поливинил пиролидона, 1,4% SDS, 60 мМ цистеина, рН 5,5).

3. Смесь инкубировали 30 мин при 65°С.

4. Дважды проводили очистку смесью хлороформ / изоамиловый спирт (24:1).

5. Преципитация ДНК этанолом.

6. Осажденную ДНК растворяли в буфере, содержащем 10 мМ Tris и 1 мМ ЭДТА рН 8.

Условия проведения ПЦР с STS праймерами:

Начальная денатурация: 3 мин, 94°С.

35-45 циклов:

1 мин 94°С,

1 мин 65°С,

2 мин 72°С.

Конечный синтез: 7 мин, 72°С.

Предлагаемый нами способ определения пола у растений хмеля также основан на применении молекулярного маркирования. Маркер разработан на основе ISSR-ПЦР анализа (Inter simple sequence repeats или межмикросателлитный анализ) при исследовании молекулярно-генетического полиморфизма сортов и мужских образцов хмеля. Праймеры были получены после выделения и секвенирования (определения нуклеотидной последовательности) специфичных для мужских растений продуктов ПНР, полученных с двумя микросателлитными праймерами. На фиг.1 стрелкой указан специфичный для мужских растений фрагмент ДНК размером около 700 пн (1,2 - фореграммы мужских растений, 4,5 - женских растений хмеля), полученный с микросателлитным праймером [AC]8YG. На фиг.2 стрелкой указан специфичный для мужских растений фрагмент ДНК размером около 500 пн (обозначения те же, что на фиг.1), полученный с микросателлитным праймером [CA]8GT.

Предлагаемые нами молекулярные маркеры (две комбинации олигонуклеотидных праймеров) пригодны для определения пола у широкого спектра сортообразцов хмеля. Они были опробованы на 33 мужских линиях и 53 сортобразцах (женских растениях) хмеля. Были испытаны образцы местных популяций, сорта хмеля различного эколого-географического происхождения, в том числе российские, некоторые европейские и американские сорта (см. прилагаемую таблицу). Во всех случаях пол растений был определен правильно.

Заявляемое решение направлено на решение задачи - повышение эффективности селекции хмеля за счет сокращения затрат труда, средств, площадей (в теплицах или в поле) и времени, требуемых на возделывание мужских гибридных растений хмеля до начала цветения, когда появляется возможность их отобрать. Хмель является двудомным растением. В результате гибридизации селекционер получает, как правило, 50% мужских и 50% женских растений. Селекционную ценность представляют женские растения хмеля. Если селекционное учреждение имеет возможность возделывать гибридные растения в теплице, то они зацветают через год, если гибридные сеянцы высаживают в поле, то большинство растений зацветает на второй год. Таким образом, в течение одного года в теплице или двух лет в поле приходится выращивать около 50% балластных растений. Молекулярное маркирование позволяет определить пол растения хмеля на стадии сеянцев. Для этого требуется растительный материал (молодой лист сеянца хмеля), сухая масса которого не превышает 25 мг.

Для решения указанной задачи предлагаются две комбинации олигонуклеотидных праймеров, обеспечивающих амплификацию специфичных для мужских растений фрагментов ДНК:

11 OF 5' GGG ACT CGG TAA CAC AGA AAG GCA

110R 5' AGC CCC ACC TAC ACC ACG АСА АСС

(амплификация фрагмента ДНК длиной 542 пар нуклеотидов)

422F 5' CAG TGT TTC TCT CGG GTT CTC TTG

422R 5' ААС CAC АСА TAA TTC CCA TCT TGC

(амплификация фрагмента ДНК длиной 387 пар нуклеотидов)

Для предлагаемых комбинаций праймеров: 110F, R и 422F,R были подобраны условия проведения ПЦР, обеспечивающие хорошо воспроизводимую амплификацию специфичного фрагмента у мужских растений хмеля, проявляющегося при форезе в виде яркой полосы. На фиг.3 стрелками указаны специфичные для мужских растений (обозначены цифрами 1, 2, 3) фрагменты ДНК размером около 542пн и 387пн, полученные с комбинациями праймеров 110F,R и 422F,R соответственно. У женских растений (обозначены цифрами 4, 5, 6) указанные фрагменты ДНК не амплифицируются.

Для определения пола растений необходимо:

1) выделить ДНК,

2) провести ПЦР,

3) провести форез в агарозном геле.

Выделение ДНК (метод SDS).

1. Смешать измельченный образец (10-20 мг высушенных лиофилизацией листьев хмеля) с 600 мкл SDS-буфера (100 мМ Трис-PH, рН 8, 50 мМ Na2EDTA, 500 мМ NaCI, 1,25% SDS, 2% поливинил пиролидона, непосредственно перед использованием добавить в буфер 40-50 мг Na2S2O5 на каждые 10 мл). Пробирки инкубировать 45 мин в водяной бане при 60°С, переворачивая каждые 15 мин.

2. Добавить 1 объем смеси хлороформ / изоамиловый спирт (24:1), перемешивать 10-15 мин, затем центрифугировать 10 мин при 10000 об/мин.

3. К надосадочной жидкости, перенесенной в новую пробирку, добавить 0,7 объема изопропанола, центрифугировать 10 мин при 10000 об/мин.

4. ДНК промыть в течение 30 мин в 500 мкл 76% этанола с 0,2М NaAc, затем 5 мин - в 100 мкл 70% этанола. Высушенную ДНК растворить в H2O mQ.

Условия проведения ПЦР

Полимеразная цепная реакция проводилась в амплификаторе Терцик МС2 (АО ДНК-технология, Москва). Реакционная смесь для ПЦР объемом 25 мкл включает: Taq-буфер (Силекс М) (70 мМ Трис-HCl, рН 8,6 (25°С), 0,001% Тритон X 100, 16,6 мМ (NH4)2SO4, 2,5 мМ MgCl2),

0,25 мМ каждого dNTP (Силекс М),

0,5 мкМ каждого праймера (ЗАО Синтол),

100-150 нг ДНК, 1 ед. Taq-полимеразы (Силекс М),

2% Formamide (Serva).

В пробирки поверх раствора добавить 25 мкл минерального масла.

Циклы ПЦР:
начальная денатурация: 94°С5 мин
30 циклов:
94°С1 мин
110F, R-58° 422F,R-60°C1,5 мин
72°С45 сек
конечный синтез: 72°С7 мин

Для фореза можно использовать 1.5% агарозный гель и 0,5х Трис-борат буфер (0,089М Трис, 0,089М борная кислота, 0,002М ЭДТА).

Таким образом, способ молекулярного маркирования позволяет определять пол гибридных растений хмеля на стадии сеянцев, что повышает эффективность селекции за счет сокращения затрат труда, средств, площадей (в теплицах или в поле) и времени (1-2 года), требуемых на возделывание мужских гибридных растений хмеля до начала цветения, когда появляется возможность их отбраковки.

Таблица 1

Перечень и происхождение сортов и линий хмеля, использованных для тестирования молекулярных маркеров пола.
№п/п№ДНКНазвание образцаМесто оригинального происхожденияРодословная
121АполлонЮгославияBrewer's Gold (Англия) × 3/3 (югославский дикорастущий)
222КоноБельгияВозможно, происходит от Brewer's Gold
326ПолюншерАвстрия-
427Порфир 16Украина-
5114Клон 18Украина, УИСХИндивидуальный отбор из сортосмеси Житомирской области чешского происхождения
6112ОрловскийРоссия-
730Нордгаард 978Дания-
8127Крылатский (1992)Россия, Моск. обл., РНИСХГибрид 38-4 от свободного опыления сорта Мурановский (Россия, РНИХС)
925Лейт КластерСШАГибрид от свободного опыления европейского English cluster с дикорастущим американским хмелем
1028СполэчныУкраина-
11120Э 88/20Россия, ЧувашияОбразец из местной популяции
12124Цивильский 1996Россия, Чувашия, НИПТИХНадеждинский (гибридный сорт получен в РНИСХ) × 14-13 (происходит из гибридной комбинации Серебрянка × Смолистый (свободное опыление))
13121Сумерь 1993Россия, Моск. обл., РНИСХГибрид 38-11 от свободного опыления гибрида 14-38(Россия, РНИХС), происхождение которого не указывается
1423К 692266Япония-
15128ЧА89/19АлтайОбразец из местной популяции
1629ЗакладУкраина-
17122Подвязный(1990)Россия, Моск. обл., РНИСХГибрид 14-17 от свободного опыления бельгийского сорта Юроп
18111Ранний 1972Россия, Моск. обл., РНИСХИндивидуальный отбор из сортосмеси Кировской области
19115Чувашский местныйРоссия, ЧувашияОбразец из местной популяции
20113Литовский местныйЛитва-
21116ГуслицкийРоссияМестный стародавний сорт Московской области
22118Жатецкий позднийЧехословакия-
23123Э 88/12Россия, ЧувашияОбразец из местной популяции
24125Михайловский 2000Россия, Чувашия, НИПТИХИстринский 16 (МОВИР) × 24-10 (Ранний × свободное опыление)
25126Дружный 1996Россия, Чувашия, НИПТИХСмолистый × 14-13 ((Серебрянка × Смолистый) × свободное опыление)
26119СвалефШвеция-
27109Смолистый 1985РНИХСГибрид 11-36 Шпальтский (Германия) × 58-32 (Уштецкий (Чехия) × 20-4 × 7-33 (происхождение не уточняется)
28110Истринский 15 1980МОВИРЗаацер (Чехия) × (Клон 18 × дикорастущий из Тибета)
2920АхиллСловенияBrewer's Gold × 3/3
30133Northern BrewerГерманияCanterbury Golding × OB21 (от Brewer's Gold)
31134Oswald clone 114Германия-
32135Original SaazerЧехияМестный сорт
33136US HallertauerСША-
34137FuggleАнглияМестный сорт
35138SpalterГерманияМестный сорт
36139Hallertauer mittelfruehГерманияМестный сорт
37140HersbruckerГерманияМестный сорт
38141PerleГерманияNorthern Brewer × 63/5/27M (Hallertauer Mfr, Spalter, Saazer)
39142Oswald cloneГермания-
40143Spalter В 1914Германия-
41144US Tettnanger 1США-
42145SaazerЧехияМестный сорт
43147TettnangerГерманияМестный сорт
44149LibertyСШАHallertauer Mfr.(2n=4x=40) × 64035M(67% Hallertauer Mfr, 17% German hop, 16%. неизвестно)
45150TaurusГермания82/39/37 × 85/54/15М
46151Hersbruecker spatГерманияМестный сорт
47152Brewer's GoldАнглияВВ1 (дикорастущий хмель из Манитобы, Канада) × свободное опыление
48154MagnumГерманияGalena × 75/5/3 немецкого происхождения
49155Wye ChallengerАнглия17/54/2 × 1/61/57М
50156DensityАнглияKeyworth's Midseason (происходит от Y90 - дикорастущий из Нью Мексико) × мужское растение английского происхождения
51157OlympicСША(Brewer's Gold2 × Fuggle-Fuggle S) × (Brewer's Gold2 × East Kent Golding - Bavarian Seedling)
52158CascadeСША[(Fuggle × (Серебрянка × Fuggle)] × свободное опыление
53159GalenaСШАBrewer's Gold × свободное опыление
«-» родословная неизвестна
Мужские растения
№п/п№ДНКНазвание образнаМесто оригинального происхожденияРодословная
Материнская форма-сортОтцовская форма и ее происхождение
1312-6НИПТИХИстринский 15ПМФ23 (Истринский 15 × от комбинации сорта Смолистый)
2323-9НИПТИХАниевский (местный сорт)ПМФ64 (Кругляк Серяк × от Смолистый)
3339-3НИПТИХСумерьПМФ24 (Истринский 15 × от Серебрянка)
4341-4НИПТИХГибрид 5642 (Украина)ПМФ24 (Ф-102 (Литва) × от Серебрянка)
5355-5НИПТИХРоудницкий(Чехия)ПМФ23 (Истринский 15 × от Смолистый)
6365-24НИПТИХ-"--"-
7373-1НИПТИХПодвязныйПМФ2 (Гуслицкий × от Урожайный)
8382-7НИПТИХЮгославский красностебельныйПМФ37 (Серебрянка Калистовская × от Смолистый)
9392-20 (?2-26)НИПТИХ-"--"-
10406-7НИПТИХГустяк (старинный местный сорт)ПМФ58 (Смолистый × от Смолистый)
11417-1НИПТИХСумерьПМФ68 (Фредос, Бельгия × от Урожайный)
12427-2НИПТИХ-"--"-
13438-5НИПТИХПодвязныйПМФ57 (Смолистый × от Урожайный)
14448-7НИПТИХ-"--"-
15458-9НИПТИХ-"--"-
16468-10НИПТИХ-"--"-
17479-13НИПТИХЛейт Кластер (США)Свободное опыление
184811-11НИПТИХСумерь-"-
194911-17НИПТИХ-"--"-
205012-2НИПТИХИстринский 15-"-
215813-9НИПТИХ-"--"-
225913-11НИПТИХ-"--"-
236014-9НИПТИХЧувашский местный-"-
246115-1НИПТИХСмолистый-"-
256417-5НИПТИХДружный-"-
266817-18НИПТИХ-"--"-
27761-34НИПТИХЮгославский красностебельный-"-
28771-35НИПТИХ-"--"-
29781-36НИПТИХ-"--"-
30792-7НИПТИХПодвязный-"-
31808-19НИПТИХ-"--"-
32WHУниверситет Хоенхайм, ШтуттгартДикорастущий из Германии
33Воронеж 12Воронежская областьДикорастущий из Воронежской области

Способ молекулярного маркирования пола хмеля обыкновенного (Humulus lupulus L), включающий проведение полимеразной цепной реакции (ПЦР), отличающийся тем, что используют комбинацию олигонуклеотидных праймеров 5' GGG ACT CGG TAA CAC AGA AAG GCA и 5'-AGC CCC ACC TAC ACC ACG ACA ACC, которая обеспечивает синтез специфичного для мужских растений хмеля фрагмента ДНК размером 542 пн, и комбинацию олигонуклеотидных праймеров 5'CAG TGT TTC TCT CGG GTT CTC TTG и 5' AAC CAC ACA TAA TTC CCA TCT TGC, которая обеспечивает синтез специфичного для мужских растений хмеля фрагмента ДНК размером 387 пн.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области медицины, а именно к способу прогнозирования эффективности лечения инфекционных и воспалительных заболеваний рекомбинантными цитокинами, и может быть использовано при иммунотерапии, иммунокоррекции, иммунореабилитации или иммунопрофилактики различных заболеваний, в частности, заболеваний ЛОР-органов, хронического гепатита С и туберкулеза легких.

Изобретение относится к биотехнологии. .
Изобретение относится к медицине, а именно к лабораторной диагностике негонококковых урогенитальных инфекций у детей. .

Изобретение относится к области молекулярной биологии и биотехнологии и может быть использовано в медицине. .

Изобретение относится к биотехнологии и может найти применение в медицине. .

Изобретение относится к молекулярной биологии и генной инженерии и предназначено для выявления типичных маркерных чужеродных последовательностей ДНК, используемых при модификации растений, в трансгенном растительном материале и продуктах на его основе.

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для идентификации E.coli серотипов O157:Н7, O26:Н11, O55:Н7, O111:Н8, O113:Н21, O117:Н14. .

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для лечения вирусных заболеваний. .

Изобретение относится к генной инженерии и предназначено для идентификации одной или более областей в геноме организма. .

Изобретение относится к области молекулярной биологии и биотехнологии и может быть использовано в ветеринарии, медицине и пищевой промышленности. .
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения нуклеината натрия из хлебопекарных дрожжей. .
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для выделения хромосомной ДНК из бактериальных клеток. .

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для выделения ДНК микроорганизмов. .

Изобретение относится к области молекулярной биологии и может быть использовано в научно-исследовательской и медицинской практике. .

Изобретение относится к области молекулярной биологии и может быть использовано для синтеза, выявления и идентификации ДНК в биологических образцах. .

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генной инженерии, и может быть использовано для осуществления in vitro мутагенеза и рекомбинации полинуклеотидных последовательностей.

Изобретение относится к биотехнологии, биологии, медицине и ветеринарии. .

Изобретение относится к области медицины и биотехнологии и касается способа анализа активности in vitro для ДНК-полимеразы вируса гепатита В (НВV) человека, который предусматривает использование в качестве 5'-олигонуклеотида в ПЦР-амплификации ДНК-полимеразы НВV из пробы олигонуклеотида, в который был встроен промотор SP6-вирусной полимеразы, прямую транскрипцию и трансляцию ПЦР-продуктов в присутствии радиоактивно меченого агента и измерение праймирования ДНК-полимеразы НВV.

Изобретение относится к биотехнологии и представляет собой фермент гликозилгидролазу (варианты), продуцируемый гифомицетами, в частности Chrysosporium lucknowense, а также нуклеиновокислотный конструкт для экспрессии гликозилгидролазы.
Наверх