Патенты автора Сабурина Ирина Николаевна (RU)
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к клеточному сфероиду для создания костных тканей и тканеинженерных конструкций, используемых для восполнения костных дефектов, и биотрансплантату для регенерации костной ткани при хирургическом лечении деструктивных, дегенеративно-дистрофических, травматических или врожденных поражений костной ткани. Клеточный сфероид, характеризующийся тем, что включает мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, индуцированные в ангиогенном направлении, помещен в полную ростовую среду, имеет сферическую форму, диаметр 50-200 мкм, гладкую поверхность. Способ получения биотрансплантата включает нанесение указанного клеточного сфероида на поверхность стерильной матрицы-носителя в виде биокомпозиционного материала и инкубирование не менее 1 суток. Изобретение позволяет повысить эффективность регенерации поврежденных тканей. 3 н. и 5 з.п. ф-лы, 3 ил., 3 пр.
Тест-система и способ ее получения // 2706071
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к клеточному сфероиду, его получению и оценке эффекта воздействия на функциональную активность меланоцитов. Способ включает суспендирование культуры меланоцитов в полной ростовой среде для меланоцитов, высевание культуры меланоцитов на чашки Петри в плотности 104 кл/см2, пассирование культуры с получением культуры меланоцитов 3 пассажа, растворение агарозы в базовой ростовой среде с получением раствора агарозы с концентрацией 20 г/л, помещение раствора агарозы в пластмассовую форму с получением пластмассовой формы, содержащей полимеризованную агарозу, выдавливание полимеризованной агарозы из пластмассовой формы в базовую ростовую среду с получением агарозного планшета и перенесение культуры меланоцитов 3 пассажа на полученный агарозный планшет с получением клеточного сфероида. Клеточный сфероид помещен в полную ростовую среду для меланоцитов, находится в неадгезивных условиях, включает 500-3000 меланоцитов, имеет сферическую форму, гладкую поверхность, диаметр 50-200 мкм, способен к синтезу меланина, при этом меланоциты в составе сфероида не пролиферируют в отсутствие оцениваемого физического и/или химического воздействия. Способ оценки эффекта воздействия на функциональную активность меланоцитов с использованием клеточного сфероида включает физическое и/или химическое воздействие на клеточный сфероид, измерение уровня функциональной активности меланоцитов в составе клеточного сфероида и оценку эффекта воздействия путем сравнения уровня функциональной активности меланоцитов в составе клеточного сфероида, подвергнутых воздействию, с уровнем функциональной активности меланоцитов в составе клеточного сфероида контрольной группы. Изобретение позволяет расширить арсенал имеющихся технических средств. 3 н. и 34 з.п. ф-лы, 1 табл., 15 ил., 2 пр.
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к получению мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных в виде сфероидов и индуцированных в ангиогенном направлении. Способ включает изолирование фрагмента ткани донора, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, перенос фрагмента ткани донора в среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту и антибиотик, механическое измельчение фрагмента ткани донора с получением гомогената, инкубирование полученного гомогената в растворе протеолитических ферментов при 37°С до момента получения клеточной суспензии. Далее добавляют питательную среду, содержащую культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови; осуществляют центрифугирование клеточной суспензии до момента полного осаждения клеток, удаление супернатанта, ресуспендирование выделенных клеток в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, культивирование выделенных клеток в монослойной культуре при 37°С в среде 5% СО2 как минимум 2 пассажа, дезагрегация монослоя, культивирование в неадгезивных условиях клеток как минимум 2-го пассажа в концентрации от 1×106 кл/мл до 5×106 кл/мл в питательной среде, содержащей культуральную среду, аминокислоту, антибиотик, сыворотку крови, фактор индукции ангиогенеза с получением клеточной культуры, содержащей мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов. Изобретение позволяет получить мультипотентные мезенхимальные стромальные клетки, культивированные в виде сфероидов и индуцированные в ангиогенном направлении. 24 з.п. ф-лы, 3 ил, 3 пр.
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОРГАННОЙ КУЛЬТУРЫ ХОРОИДАЛЬНО-ПИГМЕНТНОГО КОМПЛЕКСА ИЗ ГЛАЗА ВЗРОСЛОГО ДОНОРА-ТРУПА // 2578526
Изобретение относится к медицине. После удаления из глазного яблока взрослого донора-трупа роговично-склерального диска глазное яблоко при отсутствии сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части собственно сосудистой оболочки (ССО) и выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости полностью погружают в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером с рН 7,4. Производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка». Со стороны супрахориоидального пространства пересекают вортикозные вены и внутрисклеральную часть зрительного нерва. Производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и ретинального пигментного эпителия (РПЭ). Первый круговой разрез производят на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный разрез - в любом меридиане в направлении от первого разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх. Добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 (DMEM/F12) - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. При этом культуру инкубируют при 37°C и при 5% концентрации СО2, питательную среду заменяют 2 раза в день. Изобретение позволяет снизить степень загрязнения продукта. 2 ил., 1 пр.
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ОРГАННОЙ КУЛЬТУРЫ СОБСТВЕННО СОСУДИСТОЙ ОБОЛОЧКИ ИЗ ГЛАЗА ВЗРОСЛОГО ДОНОРА-ТРУПА // 2576573
Изобретение относится к медицине, в частности к офтальмологии и трансплантологии, и касается получения органной культуры собственно сосудистой оболочки глаза (ССО). Для этого удаляют из глазного яблока взрослого донора-трупа роговично-склеральный диск. Затем глазное яблоко осматривают на предмет наличия сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части ССО, а также выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости. При отсутствии перечисленных признаков полностью погружают глазное яблоко в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером с pH 7,4. Производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва. Производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и ретинального пигментного эпителия (РПЭ). Первый круговой разрез производят на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный - в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва. Еще один круговой разрез проводят на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх. Заливают ХПК 2 мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему. Инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 20 минут. После этого РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера pH=7,4. ССО переносят в отдельную чашку Петри, несколько раз промывают раствором стерильного фосфатно-солевого буфера pH 7,4. К выделенной ССО добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 (DMEM/F12) - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. ССО инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2. При этом питательную среду заменяют 2 раза в день. Способ обеспечивает снижение степени загрязнения посторонними клеточными элементами получаемой органной культуры ССО. 2 ил.
СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК РЕТИНАЛЬНОГО ПИГМЕНТНОГО ЭПИТЕЛИЯ ИЗ ГЛАЗА ВЗРОСЛОГО ДОНОРА-ТРУПА // 2569481
Изобретение относится к медицине. Для получения культуры клеток ретинального пигментного эпителия (РПЭ) взрослого донора-трупа производят удаление из глазного яблока донора-трупа роговично-склерального диска. При целостности всех частей сосудистой оболочки, глазное яблоко без роговично-склерального диска полностью погружают в емкость с фосфатно-солевым буфером с pH 7,4, производят полное отделение склеры от собственно сосудистой оболочки глаза (ССО) путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва, после чего производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и РПЭ: первый круговой разрез на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх, заливают 3 мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 25 минут, после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера с pH 7,4. Полученную взвесь клеток собирают в пробирку, центрифугируют, сливают надосадочную жидкость, к полученному осадку добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. При этом культуру клеток инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют каждые 3-4 дня. Изобретение позволяет снизить степень загрязнения культуры клеток. 2 ил., 1 пр.
Изобретение относится к области медицины, офтальмологии и биотехнологии. Предложен способ подготовки клеточных культур в виде сфероидов для формирования передних слоев искусственной роговицы, включающий использование кусочков лимба. Изобретение может использоваться для конструирования передних слоев искусственной роговицы с целью компенсации поврежденных тканей роговицы глаза. 1 пр.
Изобретение относится к биотехнологии
Изобретение относится к медицине, а именно к офтальмологии
Изобретение относится к биофармакологии, в частности, касается получения культуры генетически немодифицированных мезенхимальных стволовых клеток, миобластов и фибробластов и способа лечения хронической ишемии нижних конечностей и осложнений данного заболевания
Изобретение относится к химико-фармацевтической промышленности и биотехнологии
Изобретение относится к медицине и биофармакологии
БИОТРАНСПЛАНТАТ, СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ КОСМЕТИЧЕСКИХ ДЕФЕКТОВ КОЖИ (ВАРИАНТЫ) // 2271818
Изобретение относится к медицине и биофармакологии
Изобретение относится к медицине и биофармакологии
БИОТРАНСПЛАНТАТ, СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ (ВАРИАНТЫ) И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ДИЛЯТАЦИОННОЙ КАРДИОМИОПАТИИ // 2268062
Изобретение относится к области биофармакологии и касается биотрансплантата для лечения дилятационной кардиомиопатии, содержащий мезенхимальные стволовые клетки (МСК), полученные из фетального или донорского материала, при этом ткань дезагрегируют, далее культивируют в виде прикрепленных колоний в ростовой среде, содержащей эмбриональную телячью сыворотку и глутамин, затем неоднократно пассируют в низкой плотности с изменением состава среды, а культивирование ведут избегая накопления в культуре клеток зрелой стромы, в качестве фетального материала используют ткани на сроках гестации: печень 5-8 недель, тимус 18-20 недель, костный мозг 17-20 недель, подкожная жировая ткань 17-19 недель, в качестве донорского материала используют костный мозг, подкожную жировую ткань, тимус (у детей 6 лет), которые забирают у пациента для последующей аутотрансплантации и аллотрансплантации, а также способ его получения
БИОТРАНСПЛАНТАТ, СПОСОБ ЕГО ПОЛУЧЕНИЯ (ВАРИАНТЫ) И СПОСОБ ЛЕЧЕНИЯ ИШЕМИЧЕСКОЙ БОЛЕЗНИ СЕРДЦА // 2268061
Изобретение относится к области биофармакологии и медицины и касается биотрансплантатов и способов лечения ишемической болезни сердца, содержащий мезенхимальные стволовые клетки (МСК), полученные из фетального или донорского материала или из ткани скелетных мышц фетусов человека 1-2 триместра беременности
