Способ определения характера фильтрации жидкости в пласте

 

Изобретение относится к нефтегазодобывающей промышленности. Цель изобретения - повышение достоверности и упрощение способа за счет исключения деструкции индикатора и сорбции его породой. Для этого в качестве индикатора в нагнетательную скважину закачивают предварительно введенные в клетки микроорганизмов флюорохромы, устойчивые к пластовой жидкости. При этом в качестве флюорохрома закачивают эритрозии или акридиновый оранжевый, или эозин, или флюоресцеин, или родамин Ж. При реализации способа в нагнетательную скважину закачивают один из указанных индикаторов. Затем отбирают индикатор из продукции добывающей скважины. По наличию индикатора в отобранной продукции судят о сообщаемости нефтяного и газового пластов. 1 з. п. ф-лы.

Изобретение относится к нефтегазодобывающей промышленности, в частности способам определения характера фильтрации жидкости в пласте. Цель изобретения - повышение достоверности и упрощение способа за счет исключения деструкции индикатора и сорбции его породой. В основе способа лежит введение флюорохромов в клетки микроорганизмов, клеточная оболочка которых препятствует внешнему воздействию на флюорохромы факторов среды и пластовых условий (температуры, давления, агрессивных компонентов пластовых флюидов). Флюорохромы в дальнейшем легко диагностируются методом люминесцентной микроскопии. Способ определения характера фильтрации жидкости в пласте осуществляют путем закачки индикатора в нагнетательную скважину и последующего его определения в отбираемой из добывающей скважины продукции, при этом в качестве индикатора в нагнетательную скважину закачивают предварительно введенные в клетки микроорганизмов флюорохромы. В качестве флюорохромов в нагнетательную скважину закачивают предварительно введенный в клетки микроорганизмов эритрозин или акридиновый оранжевый, или эозин, или флюоресцин, или родамин Ж. П р и м е р 1. Для изучения устойчивости люминесцентных красителей (флюорохромов), адсорбированных различными органоидами клеток во времени, к воздействию пластовых условий (анаэробиоз - отсутствие кислорода, наличие нефти, содержащей сероводород, повышенная температура, наличие сульфатизированного карбонатного керна), активный ил, содержащий микроорганизмы, окрашивали различными флюорохромами в концентрации: акридиновый оранжевый 0,01 мг/мл, флюоресцеин 0,01 мг/мл, аурофосфин 0,01 мг/мл, акридиновый желтый 0,01 мг/мл, риванол 0,01 мг/мл, эозин 0,03 мг/мл, родамин Ж 0,01 мг/мл, эритрозин 0,01 мг/мл. Выбор концентрации флюорохромов проводили в соответствии с известными рекомендациями по окрашиванию клеток. Окрашенный активный ил с микроорганизмами помещали в герметичные емкости (100 мл) и имитировали пластовые условия, для чего в каждую пробу добавляли по 10 мл нефти, содержащей сероводород, просушенный сульфатизированный карбонатный керн массой 3 г и продували аргоном для создания анаэробных условий. Обработанные таким образом пробы помещали в термостат, где поддерживали постоянную температуру 32^оС. Продолжительность опыта 12 мес. Ежедневно проводился люминесцентный микроскопический контроль микроорганизмов активного или опытных проб. Установлено, что люминесцентные красители (риванол, акридиновый желтый, аурофосфин) не отвечают требованиям окрашивания микроорганизмов. Ривонол обладает бактерицидными свойствами. Уже через 4 ч после окрашивания микроорганизмов этим флюорохромом наблюдается гибель и разрушение клеток. Акридиновый желтый и аурофосфин разрушаются под действием пластовых условий. Через 7 дней клетки, окрашенные этими флюорохромами, теряют способность к люминесценции. В опытных пробах, окрашенных эритрозином, акридиновым оранжевым, эозином, флюоресцеином, родамином Ж, не наблюдается снижения интенсивности люминесцентного свечения с течением времени и от воздействия пластовых условий. Данные флюорохромы отвечают требованиям, предъявляемым к люминесцентному окрашиванию микроорганизмов. П р и м е р 2. Излучение адсорбции и движения окрашенных микроорганизмов через пористую среду, насыщенную нефтью, проводят на специальном стенде, на котором также проводят опыты с составом по прототипу. Стенд состоит из люминесцентной колонки длиной 60 см с внутренним диаметром 3,3 см. Внутрь колонки помещают пористую среду (песок, дробленый керн и т. д. ). С одной стороны колонка соединена посредством штуцера с манометром и мерной емкостью, предназначенной для сбора вытесняемых флюидов. С другой стороны к колонке подключен источник давления с манометром, соединенный со специально оборудованным потенциометром для подачи в колонку флюида. Для этого внутрь потенциометра вводят сифон - металлическую трубку диаметром 2 мм. Жидкость из потенциометра под давлением поступает в колонку, а из колонки - в сборники для вытесняемого флюида. В колонку засыпают предварительно просушенный дробленый керн (диаметр частиц 0,315-0,620 мм). Создают остаточную водонасыщенность керна пластовой водой в количестве 20% от порового объема, а затем керн насыщают нефтью. В состав, приготовленный согласно примеру 1, вводят люминесцентный краситель - эритрозин в количестве, аналогичном примеру 1. Проводят люминесцентную микроскопию состава под микроскопом МБИ-15. Определяют наличие окрашенных светящихся бактериальных клеток. Параллельно приготовляют состав согласно примеру 1, но вместо флюорохрома вводят компоненты прототипа. Хроматографически определяют наличие в составе формамида, ацетамида, мочевины и тиомочевины. Затем заполняют потенциометр составом с окрашенными клетками и прокачивают его через колонку. Объемная скорость прокачки состава составляет 10^-4 см³/с. В процессе прокачивания состава через колонку микроорганизмы вступают во взаимодействие с пористой средой - с керном (адсорбция) с нефтью, содержащей сероводород. При появлении состава в сборнике проводят люминесцентную микроскопию жидкости, прошедшей через колонку. Общий объем прокачанной жидкости равен 10 поровым объемам. Для люминесцентной микроскопии отбирались пробы из каждого прокачанного порового объема жидкости. Во всех случаях в прокачанной жидкости определяют светящиеся бактериальные клетки. Таким образом, люминесцентный краситель (эритрозин), адсорбируясь внутри бактериальных клеток, не изменяет своих свойств под влиянием пористой среды, наличия пластовой воды и нефти, содержащей сероводород. Аналогичные результаты дает применение акридинового оранжевого, эозина, флюоресцина и родамина Ж. Затем прокачивают через колонку состав по прототипу и также в каждой вытесненной пробе определяют хроматографически наличие формамида, ацетамида, мочевины и тиомочевины. Результаты исследования показывают, что в пробах после прокачивания введенные по прототипу компоненты отсутствуют. Таким образом, применение состава по прототипу невозможно на месторождениях, где применяется биообработка пласта или на давно эксплуатируемых месторождениях, которые, как показывают исследования, значительно заражены микроорганизмами. П р и м е р 3. В нагнетательную скважину газоконденсатного месторождения произведена опытная закачка согласно предлагаемому способу с целью определения характера фильтрации закачиваемой жидкости в пласте. Продуктивная толща сложена отложениями, представленными известняками с повышенным содержанием сульфатов и битумов. В скважину закачивают 127 м³ ассоциации бактерий активных метантенков, 165 м³ ассоциации бактерий активного ила очистных сооружений газоперерабатывающего завода, 8 м³ технического метанола. Закачку осуществляют нефтями по 20 м³ указанного биореагента. Предварительно в каждую порцию вносят флюорохром (эритрозин) из расчета 400 г на 20 м³. В течение месяца скважина стоит под обработкой, затем ее осваивают и пускают в эксплуатацию. Каждые две недели после освоения скважины на соседних добывающих скважинах, вскрывающих нефтяную залежь, отбирают пробы жидкости (нефть + +вода). На люминесцентной приставке к микроскопу МБИ-15 определяют наличие светящихся микроорганизмов в водных пробах. Спустя месяц указанные микроорганизмы находят в виде продукции ряда скважин. Делают вывод о сообщаемости нефтяного и газового пластов вследствие фильтрации жидкости биореагента, закачанной в газовую скважину, к забою нефтяных скважин. Для осуществления способа могут быть использованы микроорганизмы любых физиологических групп, применяемые в газонефтепромысловой практике для биообработки продуктовых пластов с целью интенсификации притока. Упрощение способа достигается благодаря более простой технике люминесцентной микроскопии по сравнению с методом газовой хроматографии используемой при осуществлении способа-прототипа. Экспериментальные исследования определения характера фильтрации жидкости в пласт показали, что по сравнению со способом аналогичного назначения (прототипом) предлагаемый способ обеспечивает получение более достоверных данных о путях и характере фильтрации жидкости в пластах, вскрытых системами добывающих и нагнетательных скважин, что необходимо для выбора рациональной системы вскрытия нефтеазоконденсатных пластов, управления вытеснением нефти при поддержании пластового давления водой, разработки эффективных технологий, уменьшения прогрессирующего обводнения эксплуатационных нефтяных и газовых скважин. (56) Корш Л. Е. и Артемова Т. З. Ускоренные методы санитарно-бактериологического исследования воды. М. : Медицина, 1978, с. 91. Патент США N 4555488, кл. 436/27, опублик. 1985.

Формула изобретения

1. СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ХАРАКТЕРА ФИЛЬТРАЦИИ ЖИДКОСТИ В ПЛАСТЕ, основанный на закачке индикатора в нагнетательную скважину и последующим его определении в отбираемой из добывающей скважины продукции, отличающийся тем, что, с целью повышения достоверности и упрощения способа за счет исключения деструкции индикатора и сорбции его породой, в качестве индикатора в нагнетательную скважину закачивают предварительно введенные в клетки микроорганизмов флюорохромы, устойчивые к пластовой жидкости. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве флюорохрома закачивают эритрозин или акридиновый оранжевый, или эозин, или флюоресцеин, или родамин Ж.