Способ предпосевной обработки патологического материала для выделения микобактерий


 


Владельцы патента RU 2542460:

Государственное научное учреждение Научно-исследовательский ветеринарный институт Нечерноземной зоны Российской Федерации Российской академии сельскохозяйственных наук (RU)

Изобретение относится к медицине и описывает способ предпосевной обработки патологического материала для выделения микобактерий, включающий воздействие дезинфекционным средством, где в качестве дезинфекционного средства используют «Септустин», причем обработку проводят смешиванием водного раствора «Септустина» в концентрации 0,5% и патологического материала в объемном соотношении 1:2 в течение 30 минут при комнатной температуре с последующей двукратной в течение 15 минут отмывкой физиологическим раствором. Изобретение обеспечивает высокую выявляемость при чистоте посевов. 3 табл., 4 пр.

 

Изобретение относится к лабораторным исследованиям, касается способа предпосевной обработки патологического материала и может быть использовано для выявления микобактерий с целью лабораторной диагностики, выявления резервуаров и механизмов передачи возбудителей.

Трудности, связанные с выделением чистых культур микобактерий, обусловлены обсемененностью большинства анализируемых образцов микроорганизмами (сапрофитами, дрожжеподобными грибами и др.), размножающимися быстрее микобактерий.

Результативность бактериологического исследования на туберкулез во многом зависит от предварительной обработки патологического материала и качества питательной среды, используемой для культурального исследования. Особенностью микобактерий является то, что наличие большого количества миколовых кислот в клеточной стенке играет важную биологическую роль в повышенной резистенции микобактерий к воздействию кислот, щелочей, спиртов, антисептических веществ и дезинфектантов. На этой особенности строения клеточной стенки микобактерий и основаны все методы предпосевной обработки патматериала перечисленными выше химическими веществами, которые, с одной стороны, сохраняют жизнеспособность микобактерий, а с другой - подавляют рост неспецифической микрофлоры, которой инфицирован исследуемый материал. Однако при обработке патологического материала не только уничтожается побочная микрофлора, но и погибает часть микобактерий. Поэтому следует использовать такие вещества и в таких концентрациях, которые оказывали бы минимальное губительное действие на микобактерий и максимальное на сопутствующую микрофлору. Обнаружение таких веществ составляет одну из актуальных задач ветеринарной и гуманной медицины.

В практике микробиологических лабораторий в настоящее время используют растворы серной (А.Ф. Коржинская, 1926; К.К. Креслинг, 1929; А.Н. Маккавейская, 1956, метод А.П. Аликаевой, 1971), соляной (Ю.А. Юденич, 1928), щавелевой кислот (метод Гона, Левенштейна-Сумиоши), едкого натра (метод флотации О.В. Мартова, 1971), гипохлорита кальция и других растворов /1/. Недостатками перечисленных методов является достаточно губительное действие кислот и щелочей на микобактерий, что влияет на скорость появления и интенсивность первичного роста колоний,

Растворы кислот в малых концентрациях для обработки исследуемого материала на наличие микобактерий не обеспечивают освобождение его от сопутствующей микрофлоры. Так, при обработке 3% растворами серной, соляной и щавелевой кислот процент загрязнения посевов может составлять от 50 до 80. При обработке 5% раствором щавелевой кислоты процент загрязнения - 33. При обработке материала 5% раствором щавелевой кислоты без последующего промывания физиологическим раствором, как рекомендует Банникова Б.Н. (1980), роста микобактерий на средах Левенштейна-Йенсена и Финн II не происходит, так как рН среды в ней изменяется ниже 6,8. При обработке материала по методу А.П. Аликаевой растворами кислот более высокой концентрации (10-15%) с однократным промыванием (в течение 5 минут физиологическим раствором) в 70% случаев посевы уничтожаются. При использовании щелочей отмечается разбухание волокон тканей, затрудняющее отбор материала и его распределение по среде при посеве /2/. Кроме того, щелочи снижают вязкость гомогената, в связи с чем посевы на питательные среды становятся затруднительными, не полностью покрывают всю поверхность среды, и, вероятно, микобактерии, находящиеся в обволоченном слизью состоянии, не находят контакта с питательной средой /3/.

Используемые в медицинской практике для обработки мокроты такие детергенты, как двузамещенный фосфорнокислый натрий, трехзамещенный фосфорнокислый натрий и хлоргексидинглюконикум при воздействии на патологический материал (лимфатические узлы) в течение 30 минут, 1, 2 часов и 1 суток не обеспечивали подавление сопутствующей микрофлоры, а в 96% случаев посевы были загрязнены банальной микрофлорой.

Известно применение для обработки дезинфектантов, содержащих альдегиды («Лизоформин 3000», «Биодез-Р», «Септодор-форте», «Делаксон») и активный хлор («Хлорантоин», «Биохлор»). При обработке патологического материала 0,15% водным раствором «Делаксона», 0,2% водным раствором «Хлорантоина» и 0,5% водным раствором «Лизоформина» рост колоний M.bovis выявляли на 18 и 19 сутки, однако 0,15% водный раствор «Делаксона» в 10% случаев не полностью убивал сопутствующую микрофлору. 0,1% водный раствор «Септодор-форте» не полностью подавлял рост сопутствующей микрофлоры (пророст - 10%). При обработке биоматериала 0,25% водным раствором «Делаксона», 0,4% водным раствором «Септодора-форте» и 0,15% водным раствором «Биохлора» чистота посевов составляла 100%, срок появления колоний - 21 сутки, интенсивность роста снижена. 2 и 3% водные растворы «Биодеза-Р» задерживали рост М bovis, но не обеспечивали 100% чистоту (пророст 10 и 20% соответственно). Повышение концентрации водных растворов «Делаксона» и «Хлорантоина» до 0,5% «Лизоформина» до 1,0% и «Септодорафорте» до 0,4% губительно действовало на микобактерии /4/.

Цель изобретения - оптимизация предпосевной обработки патологического материала для выделения микобактерий.

Поставленная цель достигается предпосевной обработкой патологического материала водным раствором дезинфекционного средства «Септустин».

Сущность способа заключается в предпосевной обработке патологического материала водным раствором дезинфекционного средства "Септустин" в концентрации 0,5% смешиванием в объемном соотношении 1:2 в течение 30 минут при комнатной температуре с последующей двукратной в течение 15 минут отмывкой физиологическим раствором.

Дезинфекционное средство «Септустин» (изготовитель ООО «Уралстинол БИО», Россия), рекомендован для дезинфекции объектов ветеринарного надзора. Данный препарат из группы катионных ПАВ содержит в качестве дезинфицирующего вещества катамин АБ, а также спирт изопропиловый, неионогенное ПАВ, гидрокарбонат натрия и бромфеноловый синий /5/, обладает широким спектром действия в отношении возбудителей инфекционных болезней бактериальной (включая туберкулез), вирусной и грибковой этиологии /5/.

Пример 1. Воздействие дезинфекционного средства «Септустин» в зависимости от концентрации и экспозиции определяли на культурах микроорганизмов, полученных из ГИСК им. Л.А. Тарасовича. Результаты представлены в таблице 1.

Таблица 1
Воздействие дезинфекционного средства «Септустин» на культуры микроорганизмов в зависимости от концентрации и экспозиции
Экспозиция, мин
Культура 15 30 60 120
0,1% водный раствор
Е.coli №17 + - - -
Staph.aureus №6538 АТСС + - - -
M.avium (ГИСК) + + + +
M.tuberculosis(Academia) + + + +
M.bovis (Vallee) + + + +
0,25% водный раствор
Е.coli №17 - - - -
Staph.aureus №6538 АТСС - - - -
M.avium (ГИСК) + + + +
M.tuberculosis(Academia) + + + +
M.bovis (Vallee) + + + +
0,5% водный раствор
Е.coli№17 - - - -
Staph.aureus №6538 АТСС - - - -
M.avium (ГИСК) + + + +
M.tuberculosis(Academia) + + + +
M.bovis (Vallee) + + + +
Примечание: (+) - рост, (-) - отсутствие роста

Как видно из таблицы 1, бактерицидное действие дезинфекционного средства «Септустин» на микобактерии при испытанных концентрациях и экспозициях не отмечалось.

Пример 2. Патологический материал (сердце, почки, легкие) от мышей, зараженных М. avium (шт. ГИСК), измельчали в стерильной ступке стерильными ножницами, кусочки заливали раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,1, 0,25 и 0,5% концентрации в объемном соотношении 1:2 и оставляли на 30, 60 и 120 минут при комнатной температуре. Затем сливали надосадочную жидкость и промывали стерильным физиологическим раствором дважды в течение 15 минут, хорошо перемешивали и сливали, а кусочки растирали песком стерильным пестиком. Полученный гомогенат заливали стерильным физиологическим раствором, ступку закрывали стерильной пергаментной бумагой и через 5 минут отбирали верхний слой суспензии стерильной пипеткой и переносили в бактериологическую пробирку, из которой производили посев на питательную среду Левенштейна-Йенсена. Результаты представлены в таблице 2.

Таблица 2
Результаты исследования патологического материала от мышей (М.avium)
Концентрация дезинфекционного средства «Септустин», %
0,1 0,25 0,5
Экспозиция, мин
30 60 120 30 60 120 30 60 120
- - - - - - + + +

Как видно из таблицы 2, микобактерии выделяли после обработки патологического материала водным раствором дезинфицирующего средства «Септустин» 0,5% концентрации с экспозицией 30 минут, причем увеличение экспозиции не влияло на выявляемость.

Пример 3. Провели культуральное исследование патологического материала (брыжеечные лимфатические узлы) от убитой с контрольно-диагностической целью коровы с положительной реакцией на ППД-туберкулин для млекопитающих без видимых патологоанатомических изменений, характерных для туберкулеза, в хозяйстве, благополучном по туберкулезу. Патологический материал измельчали в стерильной ступке стерильными ножницами, кусочки заливали раствором дезинфекционного средства «Септустин» 0,5% концентрации в объемном соотношении 1:2 и оставляли на 30 минут при комнатной температуре. Затем сливали надосадочную жидкость и промывали стерильным физиологическим раствором дважды в течение 15 минут, хорошо перемешивали и сливали, а кусочки растирали стерильным пестиком со стерильным песком. Полученный гомогенат залили стерильным физиологическим раствором и провели посев на питательную среду Левенштейна-Йенсена с последующим культивированием при температуре 37°С. Через 19 дней выросли мелкие колонии белого цвета, которые окрашивали по Цилю-Нильсену и по морфологическим признакам идентифицировали как микобактерии, что подтверждали исследованием жирно-кислотного спектра клеток методом газожидкостной хроматографии. По хемотаксономическим характеристикам (по соотношению на хроматограммах эфиров миколовых кислот с числом атомов углерода больше 20, пик С24:0 больше пика С22:0, пик С26:0 отсутствовал) микобактерии идентифицировали как М.scrofulaceum.

Пример 4. Провели культуральное исследование патологического материала (брыжеечные, заглоточные, подчелюстные, лимфатические узлы, печень, легкие) от четырех коров с положительной реакцией на ППД-туберкулин для млекопитающих, как в примере 2. При просматривании посевов учитывали выделение культур и чистоту посевов. В качестве контроля выбран метод А.П. Аликаевой. Результаты представлены в таблице 3.

Таблица 3
Результаты исследования патологического материала от положительно реагировавших на ППД-туберкулин для млекопитающих коров
Показатели Концентрация дезинфекционного средства «Септустин», % 6% серная кислота, экспозиция - 30 мин, контроль
0,1 0,25 0,5
Экспозиция, мин
30 60 30 60 30 60
Количество проб 4 4 4 4 4 4 4
Количество засеянных пробирок, из них с проростом (%) 40 12(30) 40 10(25) 40 4(10) 40 2(5) 40 40 40
Обнаружен рост микобактерии, количество проб - - - 3 3 2 -

Как видно из таблицы 3, при обработке патологического материала водным раствором дезинфекционного средства «Септустин» концентрацией 0,5% с экспозицией 30 минут обеспечивалась 75% выявляемость микобактерий при 100% чистоте посевов. При увеличении экспозиции до 60 минут микобактерии выявлялись в 50% проб. В одной пробе рост мелких колоний белого цвета, не продуцирующих пигмент на свету и в темноте, отмечали на 7 сутки (на 10 сутки - в контроле). По результатам окраски по Цилю-Нильсену и по морфологическим признакам их идентифицировали как микобактерии, что подтверждали исследованием жирно-кислотного спектра клеток методом газожидкостной хроматографии. По хемотаксономическим характеристикам (хорошо выражены пики ненасыщенных жирных кислот С22:0 и С24:0, преобладала тетракозановая кислота) микобактерии идентифицировали как М.fortuitum. В двух пробах на 7 сутки выросли слизистые блестящие колонии желтого цвета. По результатам окраски по Цилю-Нильсену и по морфологическим признакам их идентифицировали как микобактерии, что подтверждали исследованием жирно-кислотного спектра клеток методом газожидкостной хроматографии. По хемотаксономическим характеристикам (четко выражены пики кислот с 17 и 19 атомами углерода и ненасыщенных жирных кислот с числом атомов углерода больше 20, преобладала бегеновая кислота С22:0, пик С26:0 отсутствовал) микобактерии идентифицировали как M.vaccae.

Проведенные исследования показали, что при предпосевной обработке биоматериала на выделение микобактерии туберкулеза наиболее эффективным является 0,5% раствор дезинфекционного средства «Септустин» при экспозиции 30 минут, что подтверждается высокой выявляемостью и чистотой посевов.

Источники информации

1. Дончеко Н.А. Усовершенствование средств и методов диагностики и профилактики туберкулеза крупного рогатого скота: автореф. дис… докт. вет. наук: 16.00.03, 16.00.04. - Новосибирск, 2008. - 36 с.

2. Гертман М.И. / Интенсификация молочного скотоводства и пути увеличения производства молока: Тез. докл. науч.-практ. конф. - Челябинск, 1986.

3. Патент РФ №2328526 С1, 2008.

4. http://www.nbuv.ua

5. Наставление по применению препарата «Септустин» для дезинфекции объектов ветнадзора. Уралстинол. - БИО. - 2002.

Способ предпосевной обработки патологического материала для выделения микобактерий, включающий воздействие дезинфекционным средством, отличающийся тем, что в качестве дезинфекционного средства используют «Септустин», причем обработку проводят смешиванием водного раствора «Септустина» в концентрации 0,5% и патологического материала в объемном соотношении 1:2 в течение 30 минут при комнатной температуре с последующей двукратной в течение 15 минут отмывкой физиологическим раствором.



 

Похожие патенты:
Группа изобретений относится к области медицинской микробиологии, в частности к лабораторной диагностике возбудителей инфекционных заболеваний. Заявлен унифицированный, ускоренный, высокочувствительный, высокоспецифичный, малотрудоемкий способ для ускоренной лабораторной диагностики коклюшной инфекции, включающий проведение следующих этапов: взятие патологического материала с задней стенки глотки больного, пробоподготовка клинического образца, выделение ДНК из клинического материала сорбционным методом, проведение амплификации при изотермальных условиях и электрофореза в агарозном геле, а также диагностический набор.
Изобретение относится к области медицины, а именно к неврологии, и может быть использовано в клинической практике инфекционистов и неврологов. Определяют наличие коматозного состояния в днях; на МРТ - очаги структурных изменений головного мозга; на ЭЭГ - эпилептиформную активность, диффузные острые волны, острые волны, спайки, редуцированные комплексы, высокоамплитудные пароксизмы медленной активности, частые пароксизмы комплексов «пик-медленная волна», «спайк-медленная волна».

Группа изобретений относится к области медицины и может быть использована для определения присутствия клинически релевантного количества бактерий в донорской крови или ткани.
Изобретение относится к медицине, в частности к элюированию сконцентрированного на магнитной матрице патогена. Способ элюции осуществляется следующим образом: 0,1 мл 10% взвеси магнитно-иммунного сорбента (МИС) туляремийного, чумного или бруцеллезного инкубируют с микробными взвесями возбудителей туляремии, бруцеллеза или чумы в течение 30 мин, удаляют надосадок, далее МИС инкубируют с 0,5 мл элюирующего раствора в течение 10 мин, pH элюата возвращают к физиологическому значению, проводят постановку реакции непрямой гемагглютинации или реакции агглютинации латекса.

Изобретение относится к медицине, а именно к инфекционной иммунологии. Способ предусматривает использование для сенсибилизации твердой фазы противогриппозной вакцины, при том что визуализацию сформировавшихся в ходе инкубации сенсибилизированной поверхности иммуносорбента с тестируемой сывороткой, содержащей антитела к вирусу гриппа, комплексов антиген-антитело проводят при помощи оптически контрастного конъюгата G белок-углерод в течение 10-15 минут.
Изобретение относится к медицине, в частности к гинекологии, и может быть использовано для прогнозирования риска развития инфекционно-воспалительных осложнений у женщин с внутриматочной патологией после гистероскопии.
Изобретение относится к области вирусологии и касается штамма вируса гриппа H10N7-cyбтипа. Охарактеризованный штамм вируса гриппа A/pochard/Siberia/249/08-МА H10N7-субтипа выделен из клоакального смыва красноголового нырка и адаптирован к линии BALB/c мышей.

Изобретение относится к штамму вируса иммунодефицита человека, принадлежащему к субтипу B, и может быть использовано в вирусологии, медицине и биотехнологии. Представленный штамм вируса иммунодефицита человека I-го типа ИВ735 субтипа В депонирован в Государственной коллекции вирусов ФГБУ НИИ вирусологии им.

Изобретение относится к области фармацевтики. Создана иммуногенная композиция, способная индуцировать иммунный ответ в отношении по меньшей мере двух штаммов и/или серотипов Streptococcus uberis, включающая по меньшей мере один выделенный и/или рекомбинантный белок, имеющий определенную аминокислотную последовательность, полученный способом, включающим трансформацию прокариотической, эукариотической клеток или микроорганизма, такого как бактерия, дрожжи или грибы, конструкцией нуклеиновой кислоты, кодирующей указанный протеин, рекомбинантную молекулу нуклеиновой кислоты, рекомбинантный носитель и/или их иммуногенную часть, производное и/или аналог.

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой способ определения неспецифической устойчивости патогенных микроорганизмов к антибиотикам и факта присутствия бактериальных биопленок на основании измерения каталитической активности фосфодиэстераз, расщепляющих циклический дигуанозинмонофосфат, с пороговой чувствительностью 50 пг/мл, включающий: 1) выделение фосфодиэстеразы-мишени из лизированных бактериальных клеток; 2) связывание фосфодиэстеразы биотинилированными антителами, специфичными к некаталитическим доменам фосфодиэстеразы; 3) аффинную очистку комплексов, сформированных фосфодиэстеразой-мишенью и биотинилированным антителом при помощи парамагнитных частиц, содержащих нейтравидин или его аналоги, связывающие биотин; 4) взаимодействие комплексов фосфодиэстераза/биотинилированное антитело, иммобилизованных на парамагнитных частицах, с комплексами, содержащими с-di-GMP в форме G-квадруплексов с интеркалированным красителем, сопровождающееся падением интенсивности флуоресценции по мере разрушения комплексов интеркалирующего красителя c-di-GMP; 5) измерение падения флуоресценции при гидролизе c-di-GMP и разрушении комплекса c-di-GMP с интеркалирующим красителем с последующим количественным определением активности фосфодиэстеразы на основании калибровочных кривых, построенных с использованием известных количеств рекомбинантного фермента фосфодиэстеразы, идентичного исследуемой мишени; 6) выявление повышенного уровня фосфодиэстеразной активности, обнаруживаемого тестируемыми антибиотикоустойчивыми бактериальными штаммами, способными к формированию биопленок, по сравнению с уровнем фосфодиэстеразной активности, обнаруживаемым для контрольных штаммов бактерий того же вида, не обладающих антибиотикоустойчивостью и способностью к формированию биопленок.

Предложенная группа изобретений относится к области медицины. Предложены способы и устройства для определения количества процессированного полипептида нейротоксина в растворе путем вычитания количества частично процессированного и непроцессированного нейротоксина из количества общего нейротоксина. Предложены наборы, содержащие систему первого антитела захвата, второго антитела захвата и антитела обнаружения, средства для вычисления количества зрелого полипептида нейротоксина и соответствующие инструкции. Предложенная группа изобретений позволяет эффективно определять количество процессированного нейротоксина в препарате. 6 н. и 18 з.п. ф-лы, 4 ил., 3 табл.
Группа изобретений относится к медицине, в частности к клинической лабораторной диагностике, иммунохимии, и касается диагностики цитомегаловирусной инфекции методом иммунного блоттинга, который является референтным, наиболее высокочувствительным, высокоспецифичным, подтверждающим (или исключающим) диагноз при подозрении на инфицирование в случае получения положительных или сомнительных (неопределенных) результатов. Группа изобретений представляет собой способ получения тест-системы для диагностики цитомегаловирусной инфекции, включающий получение очищенного вирусного лизата, приготовление иммуносорбента, содержащего специфичные ЦМВ белки рр 150, рр 130, gp 75, рр 65, gp 55, pp52, p 38, pp 28, приготовление растворов для электрофореза, приготовление раствора для разведения сывороток, приготовление 5-кратного концентрата промывочного раствора, приготовление конъюгата, комплектацию тест-системы, а также тест-систему, полученную вышеуказанным способом. Использование натурального лизатного высокоочищенного антигена цитомегаловируса штамм «CMV AD 169» при получении иммуносорбента и наличие в нем полного спектра белков, специфичных ЦМВ (всего 8 белков), имеет следующие преимущества: значительно повышается чувствительность анализа, сокращается время постановки, отсутствует необходимость в предварительном разведении образцов и отсутствует первоначальный этап блокировки иммуносорбента, более удобная упаковка значительно сокращает время исследования. 2 н. и 2 з.п. ф-лы, 6 табл.
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано для определения жизнеспособности некультивируемых форм (НФ) Vibrio cholerae O1/O139 в водных объектах при мониторинговых исследованиях, в научно-исследовательской работе с НФ в экспериментах по индукции НС, при изучении устойчивости НФ к физическим и химическим воздействиям, в других исследованиях, в которых необходимо подтвердить жизнеспособность культуры, нивелировав отсутствие роста НФ на плотных питательных средах. Способ заключается в том, что проводят предварительную подготовку контрольных вегетативных культур V. cholerae O1 и V. cholerae O139 и исследуемых образцов, определяют во всех образцах концентрацию белка по Лоури, параллельно из всех образцов готовят препараты «раздавленная капля» с акридиновым оранжевым, фиксируя в люминесцентном микроскопе характер флуоресценции (зеленая - жизнеспособные, красная/оранжевая - мертвые), с последующим определением активности рибулозодифосфаткарбоксилазы (РДФК) радиоизотопным методом с меченым бикарбонатом. Результаты учитывают в сцинтилляционном счетчике, выражают в имп.мин/мкг белка. Наличие в исследуемой пробе активности РДФК указывает на жизнеспособность НФ V. cholerae O1/O139. Использование способа позволяет определить жизнеспособность НФ V. cholerae O1/O139 разного возраста в водной среде различного состава. 2 табл., 2 пр.

Изобретение относится к способам цитологического или гистологического анализа. Согласно способу производят обработку пробы для выделения патологических клеток среди здоровых. Получают множество изображений пробы, каждое из которых характеризует одну зону пластинки для анализа. Множество изображений, расположенных рядом друг с другом, образуют изображение всей пробы, в результате чего получают виртуальную пластинку для анализа. На полученной виртуальной пластинке выполняют компьютерную обработку по окрашиванию изображений. Указанное окрашивание соответствует виртуальному окрашиванию типа окрашивания по Папаниколау, Шорру, Маю-Грюнвальду-Гимзе или Гимзе. При этом обработка обеспечивает возможность менять указанные цвета и интенсивность цвета по усмотрению лица, производящего анализ. Технический результат - повышение достоверности и качества анализа. 7 з.п. ф-лы, 6 ил.
Изобретение относится к области медицинской микробиологии, а именно к способу диагностики токсигенных штаммов Clostridium difficile. Сущность способа состоит в том, что пробу кала пациента выдерживают в абсолютном 96% спирте 30-60 мин при соотношении спирта и кала 1:1, центрифугируют 15-20 минут, далее обрабатывают пробу кала 1% раствором дезоксихолата натрия при соотношении 1:1 30-60 минут, центрифугируют, удаляют надосадочную жидкость, затем проводят первичный посев осадка на среде с добавлением 1% лактозы и 0,5-1,0 мМ арабинозы, инкубируют в анаэростате в течение 24-48 ч, выросшие колонии наносят на стандартные диски, пропитанные хромогенным субстратом - орто-нитрофенил-β-D-галактозидазой. При появлении ярко-желтой окраски диска диагностируют токсигенные штаммы Clostridium difficile. Использование заявленного способа позволяет с высокой чувствительностью и специфичностью, простотой и доступностью диагностировать токсигенные штаммы Clostridium difficile. 3 пр.

Группа изобретений относится к области биотехнологии. Применяют экстракт рибосомального белка (RPE) вида Leishmania для диагностики лейшманиоза у индивидуума, причем RPE содержит, по меньшей мере, два рибосомальных белка. Применение экстракта рибосомальных белков позволяет проводить досимптоматическую диагностику лейшманиоза. 3 н. и 3 з.п. ф-лы, 3 ил., 1 табл.

Группа изобретений относится к медицине и касается способа лечения или профилактики RHD, связанного с инфекцией GAS, включающего введение пациенту по меньшей мере одного антигена GAS, выбранного из группы, включающей аминокислотные последовательности SEQ ID NO: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7 или 8 или их функциональные эквиваленты. Группа изобретений также касается способа диагностики RHD, связанного с инфекцией GAS, у пациента; белкового чипа для диагностики RHD, связанного с инфекцией GAS, у пациента; набора, содержащего указанный белковый чип и инструкции для применения в диагностике пациентов с наличием или с риском развития ревматического порока сердца, связанного с инфекцией GAS. Группа изобретений обеспечивает лечение RHD, связанного с инфекцией GAS; точную диагностику RHD. 6 н. и 7 з.п. ф-лы, 7 ил., 1 табл., 1 пр.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к антителу или его функциональному фрагменту, направленным против эпитопа стафилококка золотистого, а также к их применению для обнаружения стафилококка золотистого. Раскрыта линия клеток гибридомы, которая продуцирует вышеуказанное антитело, где линия клеток гибридомы является клеточной линией, хранящейся в DSMZ под инвентарным номером DSM АСС2987. Также изобретение относится к способу лечения или профилактики, который содержит введение вышеуказанного антитела или его функционального фрагмента человеку или животному, где лечение является лечением инфекции человека или животного, где инфекция вызвана стафилококком золотистым, и где профилактика является профилактикой такой инфекции, вызванной стафилококком золотистым. Изобретение позволяет эффективно лечить инфекцию человека, вызванную стафилококком золотистым. 4 н. и 16 з.п. ф-лы, 7 ил., 1 табл.
Изобретение относится к области медицины и предназначено для диагностики туберкулезной инфекции. Осуществляют взятие периферической венозной крови, определение в гепаринизированной крови уровня стимулированного ИФН-γ иммуноферментным методом. В гепаринизированной цельной крови определяют уровень CD4+CD27- - лимфоцитов методом лазерной проточной цитофлюориметрии. У людей с отрицательными кожными пробами на препарат Диаскинтест при совокупном повышении уровня стимулированного ИФН-γ более 18,0 пг/мл и CD4+CD27- - лимфоцитов более 15,0% подтверждают наличие туберкулезной инфекции. Изобретение позволяет диагностировать туберкулезную инфекцию у лиц с подозрением на туберкулез при отрицательных результатах кожной пробы с препаратом Диаскинтест путем определения иммунного ответа на антигены препарата Диаскинтест in vitro. 4 пр.

Изобретение относится к ветеринарной медицине, а именно к определению наличия антител к бактериальным антигенам в сыворотке крови животных. Для этого антиген смешивают с тестируемой сывороткой крови в различных разведениях в лунках микропланшета с V-образным дном с последующей визуализацией результатов реакции агглютинации с использованием источника ультрафиолетового излучения, преимущественно трансиллюминатора. В качестве антигена используют флюоресцентно-меченую суспензию инактивированных бактериальных клеток, которую получают при обработке бактериальных клеток 1,0% водным раствором флюоресцентного красителя, выбранного из группы: бромистый этидий, пропидия иодид, акридиновый оранжевый. Изобретение позволяет упростить проведение иммуноферментного анализа для определения наличия различных патогенных микроорганизмов и автоматизировать учет результатов. 2 з.п. ф-лы, 3 табл., 4 пр.
Наверх