Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека



Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека
Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека
Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека
Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека

 


Владельцы патента RU 2465327:

Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (RU)

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к способу очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека. Способ включает накопление аденовируса в пермиссивной культуре клеток линии НЕК-293, сбор этих клеток, высвобождениие рекомбинантных аденовирусов за счет разрушения клеток путем перемораживания и их очистку. Используют рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус с модифицированным капсидным белком рlХ, несущим полисахарид-связывающий домен, который выбирают из группы, включающей целлюлозо-связывающий домен, декстран-связывающий домен. Производят посадку рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов на полисахаридный носитель, который выбирают из группы, включающей целлюлозный носитель для связывания с целлюлозо-связывающим доменом, декстрановый носитель - для связывания с декстран-связывающим доменом. Инкубируют полученную смесь. Осуществляют процесс очистки, для чего полисахаридный носитель с аденовирусами осаждают центрифугированием, а полученный супернатант удаляют. Промывают осажденный полисахаридный носитель с аденовирусами промывочными буферами, после этого производят элюирование аденовирусов с полисахаридного носителя. Производят разделение полученной суспензии центрифугированием. Отбирают вируссодержащий супернатант и стабилизируют его. Предложенное изобретение позволяет получить биологически активный, хроматографически чистый и концентрированный аденовирусный препарат и сократить время его очистки. 14 з.п. ф-лы, 4 ил., 2 табл., 4 пр.

 

Изобретение относится к молекулярной биотехнологии и нанотехнологии, конкретно к процессам, связанным с очисткой рекомбинантных аденовирусов человека и млекопитающих от клеточного дебриса и других компонентов вируссодержащей среды. Изобретение может быть использовано в прикладной вирусологии, производстве псевдоаденовирусных нановакцин, нанобиотехнологии, молекулярной биологии и других областях науки и техники, где существует необходимость очистки препаративных количеств аденовирусного материала.

Традиционные способы очистки аденовирусов включают следующие основные операции: разрушение зараженных аденовирусом клеток путем 3-кратного перемораживания; осаждение клеточного дебриса низкоскоростным центрифугированием; концентрирование вирионов путем осаждения вируса на поверхность раствора CsCl плотностью 1,375 г/см3 ультрацентрифугированием; очистка вируса двукратным ультрацентрифугированием в равновесном градиенте плотности CsCI (p=1,365 г/см3) в течение суток [Green K.Y., Wold W.S.M. Human adenoviruses: growth, purification and transfection assay. // Methods Enzymology 1980 v.-80, pp.425-431]. В результате этой последовательности операций получают вирусный материал, имеющий тот или иной титр, зависящий от эффективности процесса размножения вируса. Однако существенным недостатком данного способа является содержание вирусного препарата в высокомолярном растворе хлористого цезия, являющемся токсичным продуктом, несовместимым для применения человеку и другим биологическим объектам.

В определенной степени преодолеть этот недостаток позволяет использование ионообменной хроматографии, эксклюзионной хроматографии и/или ультрафильтрации [Патент US 6537793 В2; Патент US 6261823 В1]. Однако такой способ очистки имеет несколько недостатков. Во-первых, данный метод очистки является многоступенчатым и, как следствие, трудоемким. Во-вторых, исходный клеточный лизат, содержащий аденовирус, не может быть непосредственно нанесен на хроматографическую колонку по причине потери ею функциональности вследствие «забивки» большим количеством клеточных балластных белков. В-третьих, процесс ультрафильтрации, сам по себе, также не может быть отдельно использован для очистки аденовирусного препарата из клеточного лизата, так как процесс ультрафильтрации не является абсолютным и не позволяет полностью освободиться от массы балластных белков. И, наконец, в-четвертых, в связи с многостадийностью такого способа очистки, возможны существенные потери аденовирусного материала на выходе.

В этой связи, наиболее простым в отношении процесса очистки вируса из клеточного лизата является способ, позволяющий непосредственно использовать клеточный лизат, содержащий аденовирус, для очистки аденовирионов и получать чистый препарат аденовируса на выходе. В частности, известен способ очистки капсид-модифицированных аденовирусов методом аффинной хроматографии на сорбенте, где в качестве активной фазы выступает мономерный авидин с сорбированным на нем биотином. В этом случае, в качестве очищаемого аденовируса может выступать капсид-модифицированный аденовирус, к капсидным белкам которого генетически привязаны биотин-связывающие пептиды, способные специфически взаимодействовать с биотин-авидиновым носителем. Капсидные белки аденовируса, которые могут подвергаться такой модификации, - это фиберы, пентоны, гексоны или белок pIX. Наибольшую эффективность при таком способе очистки показали pIX-модифицированные аденовирусы, которые представляют собой рекомбинантные аденовирусы, в которых к С-концу капсидного белка pIX через альфа-спиральный спейсер (длиной 45 Ангстрем) генетически привязан биотин-связывающий пептид. Таким образом, принцип очистки таких аденовирусов основан на физико-химическом специфическом взаимодействии биотин-связывающего пептида, расположенного на поверхности капсида аденовируса, и биотин-авидинового носителя. [Campos S.K., Parrott M.B., Barry M.A., 2004. Avidin-based targeting and purification of a protein IX-modified, metabolically biotinylated adenoviral vector. Mol. Ther. 9 (6), 942-954]. Такая модификация капсида аденовируса, как показали исследования, не приводит к снижению трансдуцирующей способности вируса, что может, без ущерба для биофизических свойств вируса, быть использовано в качестве платформы для очистки аденовирусов [Campos S.K., M.B., Barry 2006. Comparison of adenovirus fiber, protein IX, and hexon capsomeres as scaffolds for vector purification and cell targeting. Virology 349, 453-462].

Схема такой очистки включает следующие этапы.

1. Подготовка вирус-содержащего материала.

а) Накопление аденовируса в клетках.

Для наращивания капсид-модифицированного аденовируса с биотин-связывающими пептидами, клетки линии 293А высевают на 150-мм культуральные чашки и выращиваются на питательной среде, содержащей биотин, до достижения ими конфлюэнтности, равной 95%. После этого отработанную среду удаляют, а клетки инфицируют вирусом с множественностью инфекции 20 вирусных частиц на клетку. Инфицирование проводят в 7 мл ростовой среды DMEM с добавлением 30 мкМ биотина в течение 3 ч при 37°C. Затем к клеткам добавляли 18 мл полной питательной среды и выращивали в течение 72 ч.

б) Сбор зараженных клеток и их отмывка от культуральной среды.

После того, как у всех зараженных аденовирусом клеток регистрировали цитопатическое действие вируса, они были собраны в 50-мл конические пробирки и центрифугированы при 300 g в течение 10 минут, а супернатант удален. Осадок клеток дважды промывают 15 мл стабилизирующего буфера (50 мМ Трис, рН=8; 150 мМ NaCl; 5% глицерин) для удаления белковых и нуклеиновых примесей и переносят в 15-мл конические пробирки. Снова центрифугируют при 300 g 10 минут, супернатант удаляют, а клеточный осадок ресуспендируют в 1 мл стабилизирующего буфера (СБ).

в) Лизис клеток для высвобождения аденовируса.

Суспензию отмытых от культуральной среды клеток переносят в микроцентрифужные пробирки и лизируют клетки путем трехкратного замораживания-оттаивания для высвобождения вируса из клеток.

г) Освобождение от клеточного дебриса.

Клеточные лизаты после трехкратного перемораживания центрифугируют при 10000 g для осаждения клеточного дебриса и отбирают супернатант, содержащий аденовирус, для последующей очистки аденовируса.

Описанный выше этап 1 (подэтапы а, б, в, г) подготовки вирус-содержащего материала является общеизвестным и используется в качестве подготовительного этапа при всех известных способах очистки аденовирусов (в плотности хлористого цезия, в ионообменной и эксклюзионной хроматографии, в ультрафильтрации).

2. Непосредственная очистка аденовируса на носителе с мономерным авидином, которая состоит из следующих стадий.

а) Предварительная подготовка носителя для очистки аденовируса.

Для очистки капсид-модифицированного аденовируса из клеточного лизата, носитель с мономерным авидином (2,5 мл, «SoftLink») активировали путем адсорбции на нем биотина и регенерировали в соответствии с инструкциями производителя. Затем активированный носитель промывали один раз в 10 мл СБ и ресуспендировали в конечном объеме СБ 2,5 мл.

б) Посадка аденовируса на биотиновый носитель. 500 мкл вируссодержащего лизата добавляли к 500 мкл ресуспендированного активированного носителя и инкубировали в течение 4 ч при медленном встряхивании при +4°С.

в) Осаждение носителя с аденовирусом.

Для осаждения носителя, связавшегося с аденовирусом, смесь вируса и носителя центрифугируют.

г) Промывка носителя с аденовирусом.

Носитель с аденовирусом для освобождения от нуклеиновых и белковых примесей промывали путем добавления 12 мл СБ и последующего осаждения носителя с аденовирусом и удаления супернатанта (как в п.5.4). Такую процедуру проводили 5 раз.

д) Элюирование аденовируса с носителя.

Аденовирус элюировали добавлением 500 мкл СБ и 5 мМ биотина при аккуратном встряхивании в течение ночи при +4°С.

е) Отбор вирус-содержащего раствора.

Элюированный с носителя капсид-модифицированный аденовирус отбирали в супернатанте после осаждения (путем центрифугирования) носителя.

Для этого способа очистки капсид-модифицированного аденовируса характерны достаточная чистота получаемого препарата аденовируса, а также технологичность процесса очистки аденовирусного препарата.

Данное техническое решение, как наиболее близкое к заявляемому по использованию капсид-модифицированных аденовирусов для очистки с помощью аффинной хроматографии на носителе, выбрано за прототип.

Недостатками прототипа являются:

- Невозможность непосредственного использования носителя для сорбции на нем капсид-модифицированного аденовируса. Данный недостаток связан с тем, что носитель, используемый для очистки капсид-модифицированных аденовирусов и представляющий собой сорбент с активной фазой в виде мономерного авидина, нуждается в предварительной подготовке: активировании и регенерации, суть которой сводится к сорбированию на поверхности носителя молекул биотина и отмывке активированного носителя в стабилизирующем буфере. Эта подготовка представляет собой дополнительный этап очистки, который существенно увеличивает трудоемкость процесса в целом и требует затрат на дополнительные расходные материалы (биотин, компоненты буфера).

- Высокое соотношение объема вирус-содержащего лизата клеток и объема ресуспендированного носителя, которое в данном способе составляет 1:1. Такое соотношение является невыгодным как с экономической точки зрения, так и с точки зрения возможности концентрирования аденовирусного препарата. В связи с большим объемом носителя, для элюирования капсид-модифицированного аденовируса необходимы большие объемы элюирующего буфера, что приводит к неизбежному разбавлению конечного продукта.

Длительная подготовка клеточного вирус-содержащего материала (первичное центрифугирование, 2-кратное отмывание, центрифугирование, ресуспендирование), что может приводить к потерям аденовирусного урожая на этом этапе очистки в связи с механическим разрушением клеток при многократных процедурах промывания и центрифугирования клеток. Кроме того, длительная подготовка клеточного материала усложняет технологию очистки и увеличивает ее время.

- В прототипе используется более дорогостоящий носитель (авидин-биотиновый), чем предлагамый в заявленном изобретении - полисахаридный (например, целлюлозный или декстрановый), для очистки аденовируса, что существенно увеличивает себестоимость целевого продукта.

- Кроме того, в прототипе после цикла очистки аденовирусный препарат оказывается связанным с биотином через модифицированный белок pIX, что препятствует дальнейшей модификации аденовектора путем физико-химического привязывания к модифицированному белку pIX различных целевых лигандов (бактериальные антигены, антитела против маркерных клеточных рецепторов) для использования векторов как наноносителей антигенов для вакцинации или для направленной трансдукции капсид-модифицированными аденовирусами определенных типов клеток человека и животных.

Задачей предлагаемого изобретения является разработка способа очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека, позволяющего получать биологически активный, хроматографически чистый и концентрированный аденовирусный препарат и сократить время его очистки, при этом удешевить способ за счет использования более дешевого носителя.

Указанная задача решается за счет того, что в предлагаемом способе, включающем накопление аденовируса в пермиссивной культуре клеток, сбор этих клеток, высвобождение рекомбинантных аденовирусов за счет разрушения клеток путем перемораживания, и их очистку, в качестве очищаемого рекомбинантного аденовируса выбирают рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус с модифицированным капсидным белком pIX, несущим полисахарид-связывающий домен, а в процессе очистки производят посадку рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов на полисахаридный носитель путем смешивания полисахаридного носителя с вируссодержащим лизатом и инкубируют, при этом рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы аффинно связываются с полисахаридным носителем за счет полисахарид-связывающих доменов. Затем осуществляют процесс очистки, для чего полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами путем осаждения его центрифугированием освобождают от клеточных растворимых продуктов, разрушенных клеток и других балластных веществ, оставшихся от питательной среды, в которой выращивались клетки, а полученный супернатант удаляют, после чего осажденный полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами промывают промывочными буферами для окончательного удаления балластных веществ и опять осаждают, а полученный супернатант удаляют. После этого производят элюирование рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов с полисахаридного носителя, для чего добавляют элюирующий буфер и инкубируют раствор, при этом происходит диссоциация и рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы переходят в раствор, а для дальнейшего разделения полисахаридного носителя и рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов производят разделение полученной суспензии центрифугированием. Затем отбирают вируссодержащий супернатант и стабилизируют его путем нейтрализации за счет добавления нейтрализующего буфера. В качестве полисахаридного носителя используют нерастворимый в водных средах субстрат, полностью состоящий из целлюлозы, а в качестве целлюлозы используют аморфную целлюлозу, либо модифицированные формы целлюлозы, например метилцеллюлозу, карбоксиметилцеллюлозу. В качестве полисахаридного носителя могут быть использованы целлюлозные остатки, привитые к субстрату другой, не полисахаридной химической природы. В качестве полисахаридного носителя может быть использован декстрановый носитель, например, сефадексы, либо сефакрилы. В качестве полисахаридного носителя могут быть использованы декстрановые остатки, привитые к субстрату другой, не полисахаридной химической природы. В заявленном способе смешивание полисахаридного носителя с вируссодержащим лизатом производят в соотношении по массе от 1:1 до 1:100, а инкубирование осуществляют в течение 2-24 часов в динамическом режиме. В способе осажденный полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами промывают в два этапа, при этом сначала промывают нейтральным промывочным буфером с рН от 6,0 до 7,8 в соотношении от 1:5 до 1:100 по объему, причем промывку осуществляют многократно, затем промывают кислым отмывочным буфером рН от 3,7 до 6,0 однократно. Элюирование рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов с полисахаридного носителя производят, с добавлением элюирующего буфера с рН от 2,9 до 3,5 а инкубирование производят продолжительностью от 20 до 90 минут. Вируссодержащий супернатант, содержащий рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы, нейтрализуют до значения рН от 6,5 до 7,4.

Выбор путей и режимов реализации, а также характеристик используемых материалов заявляемого способа обусловлен следующими факторами.

Предлагаемое техническое решение предусматривает использование для аффинной очистки лизата зараженных капсид-модифицированным аденовирусом клеток, полученного при непосредственном перемораживании клеточного материала без предварительной отмывки зараженных клеток в отмывочных буферах. Это, с одной стороны, позволяет избавиться от дополнительных этапов технологии очистки аденовируса, а с другой стороны, предохраняет от возможных потерь аденовирусного урожая вследствие механического разрушения клеток в процессе отмывки и центрифугирования. В отношении аффинной очистки аденовируса на полисахаридных носителях, предлагаемое техническое решение ранее не было известно.

В качестве носителя для очистки капсид-модифицированного аденовируса в заявляемом способе используют дешевые полисахаридные носители как целлюлозные, так и декстрановые. Такие носители не нуждаются в предварительной подготовке (активировании, регенерации), что существенно упрощает технологию и делает ее более дешевой, в связи с низкой себестоимостью самого носителя и отсутствием необходимости использовать дополнительные реагенты для активирования и регенерации носителя.

Соотношение объема ресуспендированного полисахаридного носителя и объема вируссодержащего лизата клеток может составлять от 1:1 до 1:100, соответственно, в зависимости от концентрации аденовируса в лизате. Такое соотношение является наиболее выгодным как с экономической точки зрения, так и с точки зрения возможности концентрирования аденовирусного препарата, так как в связи с малым объемом носителя для элюирования аденовируса требуются небольшие объемы элюирующего буфера, а значит конечный продукт (аденовирусный препарат) будет более концентрированным, что существенно для использования его в медицине и ветеринарии.

В качестве материала для очистки выбирают рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы, к капсиду которых, посредством генетической модификации капсидных белков, привязаны полисахарид-связывающие домены. Благодаря наличию и экспонированию полисахарид-связывающих доменов на поверхности капсида таких рекомбинантных аденовирусов, вирусные частицы приобретают способность взаимодействовать с соответствующим полисахаридным носителем. Как показали проведенные эксперименты (в данной заявке результаты не приводятся), взаимодействие капсид-модифицированного аденовируса с носителем является достаточно прочным для того, чтобы иметь возможность многократно промывать адсорбированный на носителе аденовирус от неспецифических клеточных и культуральных компонентов различной химической природы (белки, нуклеиновые кислоты, липиды, гликопротеиды и т.д.), что позволяет получать достаточно чистый аденовирусный препарат на выходе. Адсорбированный на полисахаридном носителе аденовирус после серии промывок элюируют буферами различной ионной силы и кислотности. Так, например, аденовирус с целлюлозо-связывающим доменом в составе белка pIX способен взаимодействовать с аморфной нерастворимой целлюлозой и элюироваться путем добавления трис-фосфатного буфера с рН=3,0 в течение 30 минут. По данным исследования элюированного аденовируса, такой способ элюирования вируса с носителя позволяет получать аденовирусный препарат с выходом не менее 60%, не повреждая структуру аденовирионов, и последние способны сохраняться в буфере более суток при температуре +4°C.

Предлагаемое техническое решение предполагает использование полисахаридного носителя и полисахарид-связывающего домена в составе рекомбинантного аденовируса. Поскольку для каждого из полисахаридных носителей те или иные полисахарид-связывающие домены в структуре аденовируса могут быть подходящими или неподходящими для их физико-химического взаимодействия осуществляют подбор на соответствие полисахарид-связывающего домена и полисахаридного носителя, к которому конкретные капсид-модифицированные аденовирусы будут проявлять сродство для эффективного прикрепления. Это связано с тем, что предсказать, что какая-либо модификация аденовируса путем генетического привязывания к его капсидным белкам полисахарид-связывающего домена будет совместима с жизнью такого модифицированного аденовируса, невозможно. Это объясняется тем, что не всякая модификация капсидных белков аденовируса способна давать стабильное вирусное потомство в связи с возможными конформационными помехами при ассемблировании вирусных частиц, вызванными встраиванием в капсид конкретного полисахарид-связывающего домена. Подбор основан на химическом сродстве данного полисахарид-связывающего домена и полисахаридного носителя. В этой связи, предлагаемым изобретением предусматривается, что нерастворимый полисахаридный носитель содержит химические группировки углеводной природы или целые молекулы поли- или олигосахаров, обеспечивающие аффинное прикрепление соответствующих полисахарид-связывающих доменов, экспонированных на поверхности капсида аденовируса, к поверхности полисахаридного носителя. При этом носитель может представлять собой полностью углеводный субстрат, с которым способны взаимодействовать определенные полисахарид-связывающие домены. Кроме того, сам носитель может быть приготовлен на основе как природных, так и синтетических полимеров, не способных специфически взаимодействовать с аденовирусами, а вышеуказанные углеводные группировки или молекулы могут быть введены в структуру носителя после его формирования, что достигается известными способами, например химической прививкой. Подбор полисахаридных носителей не является предметом данного заявляемого изобретения.

Такое сочетание признаков, как совокупность используемых в заявляемом техническом решении операций процесса очистки рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов и применяемых для этого нерастворимых полисахаридных носителей, ранее известно не было.

Примеры для очистки.

Пример 1.

1. Подготовка вируссодержащего материала.

1) Накопление рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса в клетках.

Для накопления рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозо-связывающими доменами в структуре капсидного белка pIX, этим вирусом заражали клетки линии НЕК-293, высеянные на тридцать 150-мм культуральных чашек с конфлюэнтностью монослоя 90% в дозе 15 инфекционных вирусных частиц на клетку. На вторые сутки после заражения наблюдали цитопатическое действие (далее ЦПД) вируса у 100% клеток.

2) Сбор зараженных клеток.

После наступления ЦПД клетки собирали в центрифужные банки (V=200 мл) и центрифугировали для осаждения клеток при 1500 об/мин, в течение 10 минут, а супернатант удаляли. Осадок клеток ресуспендировали в 10 мл фосфатного солевого буфера (далее PBS).

3) Лизис клеток для высвобождения рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Клетки в полученной суспензии лизировали путем трехкратного перемораживания для высвобождения рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса из клеток.

4) Освобождение от клеточного дебриса.

Клеточные лизаты после трехкратного перемораживания центрифугировали при 5000 об/мин в течение 10 минут для осаждения клеточного дебриса, а супернатант, содержащий рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус, отбирали для его последующей очистки.

На этой стадии, после получения суспензии рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса, освобожденной от клеточного дебриса, из этой суспензии отбирали 200 мкл в отдельную пробирку для определения исходного титра рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса для последующего сравнения с титром этого аденовируса после очистки и определения его выхода (данные в таблице 1, где приведена концентрация аденовирусов до и после очистки).

Перечисленные этапы подготовки вируссодержащего материала, а также отбор аликвоты исходного материала для определения титра рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса, являются общими для всех примеров, поэтому в примерах 2 и 3 будут упоминаться кратко.

2. Непосредственная очистка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на целлюлозном носителе.

2.1. Посадка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на целлюлозный носитель. В качестве носителя для очистки рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса использовали целлюлозные носители: аморфную целлюлозу; носители, содержащие остатки целлюлозы, привитые к субстрату другой (не полисахаридной) химической природы; модифицированные формы целлюлозы (метилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза). Эти носители смешивали с приготовленной вируссодержащей суспензией в соотношении: 1 г целлюлозного носителя +9 мл вируссодержащей суспензии. Смесь инкубировали в течение 16 часов при постоянном покачивании при температуре +4°C.

2.2. Осаждение целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом.

Затем целлюлозный носитель с адсорбированным на нем рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом осаждали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 5 минут. Супернатант удаляли.

2.3. Промывка.

а) Сначала осадок целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали нейтральным трис-фосфатным буфером рН=7,2 в объеме 10 мл, а затем снова осаждали центрифугированием 4000 об/мин в течение 5 минут с последующим удалением супернатанта, как описано в этапе 2.2. Промывку повторяли 2 раза.

б) Для окончательной отмывки целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом от связавшихся с ним балластных веществ (белки, нуклеиновые кислоты, липиды, гликопротеиды и т.д.) целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали кислым трис-фосфатным буфером рН 4,5 в объеме 8 мл. Целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом затем осаждали и удаляли супернатант, как в этапе 2.2.

2.4. Элюирование рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Для элюирования рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозного носителя добавляли кислый элюирующий трис-фосфатный буфер (рН 3,0) в объеме 3,5 мл и инкубировали в течение 30 минут при постоянном покачивании.

2.5. Отбор вируссодержащего раствора.

Для разделения целлюлозного носителя и рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса суспензию центрифугировали, как описано в этапе 2.2, а затем отбирали вируссодержащий супернатант.

2.6. Нейтрализация.

Так как в отобранном вируссодержащем супернатанте рН=3,0, рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус не может сохраняться длительное время, раствор нейтрализовали путем добавления карбонатного буфера (рН=9,2) в объеме 3,5 мл для выравнивания рН до значения 7,2.

Аликвоты полученного очищенного рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса отбирали для определения его концентрации и титра, а также для определения чистоты рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса методом высокоэффективной жидкостной хроматографии.

Пример 2.

1. Подготовка вируссодержащего материала. Как в примере 1.

2. Непосредственная очистка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на целлюлозном носителе.

2.1. Посадка аденовируса на целлюлозный носитель.

Как и в примере 1, носителями для очистки рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса являлись: аморфная целлюлоза; носители, содержащие остатки целлюлозы, привитые к субстрату другой (не полисахаридной) химической природы; модифицированные формы целлюлозы (метилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза). Эти носители смешивали с приготовленной вируссодержащей суспензией в соотношении: 0,5 г целлюлозного носителя + 9 мл вируссодержащей суспензии. Смесь инкубировали в течение 2 часов при постоянном покачивании при температуре +4°C.

2.2. Осаждение целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом.

Затем целлюлозный носитель с адсорбированным на нем рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом осаждали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 5 минут. Супернатант удаляли.

2.3. Промывка.

а) Сначала осадок целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали нейтральным трис-фосфатным буфером рН=6,0 в объеме 10 мл, а затем снова осаждали центрифугированием 4000 об/мин в течение 5 минут с последующим удалением супернатанта, как описано в этапе 2.2. Промывку повторяли 4 раза.

б) Для окончательной отмывки целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом от связавшихся с ним балластных веществ (белки, нуклеиновые кислоты, липиды, гликопротеиды и т.д.) целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали кислым трис-фосфатным буфером рН=6,0 в объеме 8 мл. Целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом вирусом затем осаждали и удаляли супернатант, как в этапе 2.2.

2.4. Элюирование рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Для элюирования рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозного носителя добавляли кислый элюирующий трис-фосфатный буфер (рН 3,5) в объеме 3,5 мл и инкубировали в течение 40 минут при постоянном покачивании.

2.5. Отбор вируссодержащего раствора.

Для разделения целлюлозного носителя и рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса суспензию центрифугировали, как описано в этапе 2.2, а затем отбирали вируссодержащий супернатант.

2.6. Нейтрализация.

Так как в отобранном вируссодержащем супернатанте рН=3,5 рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус не может сохраняться длительное время, раствор нейтрализовали путем добавления карбонатного буфера (рН=9,2) в объеме 3,1 мл для выравнивания рН до значения 7,2.

Аликвоты полученного очищенного рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса отбирали для анализа, как в примере 1.

Пример 3.

1. Подготовка вируссодержащего материала.

Как в примере 1.

2. Непосредственная очистка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на целлюлозном носителе.

2.1. Посадка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на целлюлозный носитель.

Как и в примере 1, носителями для очистки рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса являлись: аморфная целлюлоза; носители, содержащие остатки целлюлозы, привитые к субстрату другой (не полисахаридной) химической природы; модифицированные формы целлюлозы (метилцеллюлоза, карбоксиметилцеллюлоза). Эти носители смешивали с приготовленной вируссодержащей суспензией в соотношении: 5 г целлюлозного носителя + 5 мл вируссодержащей суспензии. Смесь инкубировали в течение 24 часов при постоянном покачивании при температуре +4°C.

2.2. Осаждение целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом.

Затем целлюлозный носитель с адсорбированным на нем рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом осаждали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 5 минут. Супернатант удаляли.

2.3. Промывка.

а) Сначала осадок целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали трис-фосфатным буфером рН=7,8 в объеме 30 мл, а затем снова осаждали центрифугированием 4000 об/мин в течение 5 минут с последующим удалением супернатанта, как описано в этапе 2.2. Промывку повторяли 7 раз.

б) Для окончательной отмывки целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом от связавшихся с ним балластных веществ (белки, нуклеиновые кислоты, липиды, гликопротеиды и т.д.) целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали кислым трис-фосфатным буфером рН 3,7 в объеме 15 мл. Целлюлозный носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом затем осаждали и удаляли супернатант, как в этапе 2.2.

2.4. Элюирование рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Для элюирования рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозного носителя добавляли кислый элюирующий трис-фосфатный буфер (рН=2,9) в объеме 3 мл и инкубировали в течение 20 минут при постоянном покачивании.

2.5. Отбор вируссодержащего раствора.

Для разделения целлюлозного носителя и рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса суспензию центрифугировали, как описано в этапе 2.2, а затем отбирали вируссодержащий супернатант.

2.6. Нейтрализация.

Так как в отобранном вируссодержащем супернатанте рН=2,9 рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус не может сохраняться длительное время, раствор нейтрализовали путем добавления карбонатного буфера (рН=9,2) в объеме 4 мл для выравнивания рН до значения 7,2.

Аликвоты полученного очищенного рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса отбирали для анализа, как в примере 1.

Во всех примерах после этапа 2.3 (отмывка целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом) осуществлялся отбор 100 мкл суспензии целлюлозного носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом для исследования наличия специфически связанных рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусных частиц на поверхности целлюлозного носителя методом трансмиссионной электронной микроскопии. Во всех трех примерах на поверхности целлюлозного носителя регистрировали наличие связанных с ним рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусных частиц (фиг.1). На фиг.1 представлена трансмиссионная электронная микроскопия образцов целлюлозного носителя и носителя с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусными частицами, где А - исходный целлюлозный носитель, Б - Целлюлозный носитель + рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус с целлюлозо-связывающими доменами.

В очищенных на целлюлозном носителе образцах рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов с целлюлозо-связывающими доменами, а также контрольного аденовируса (без целлюлозо-связывающих доменов) определялись концентрация аденовируса на выходе (спектрофотометрически по максимуму поглощения при λ=260 нм) и титр аденовируса (методом бляшкообразования). Концентрацию аденовирусов выражали в вирусных частицах в 1 мл вирусной, суспензии (вч/мл), титр аденовирусов выражали в бляшкообразующих единицах в 1 мл (БОЕ/мл) В таблице 1 представлена концентрация аденовирусов до и после очистки.

Таблица 1
Всего вирусных частиц Выход по вирусным частицам, %
До очистки После очистки
Ad5 (к-) 6,3×1012 6×1010 0,952%
Ad5-CBD (с целлюлозо-связывающими доменами) 3,1×1012 2×1012 64,51%

В таблице 2 представлен титр аденовирусов до и после очистки на аморфной целлюлозе.

Таблица 2
Всего БОЕ Выход по БОЕ, %
До очистки После очистки
Ad5 (к-) 6×1010 5,25×108 0,875
Ad5-CBD (с целлюлозо-связывающими доменами) 2×1010 1,19×1010 59,5

Также полученные после очистки образцы рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов исследовались на чистоту методом высокоэффективной жидкостной хроматографии (фиг.2). На фиг.2. представлена хроматограмма рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозо-связывающими доменами, очищенного на целлюлозном носителе. Сплошным маркером отмечен пик рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса (22,5 мин), пунктирным - сателлитный пик (дефектные рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусные частицы).

В качестве стандарта чистоты для сравнения в хроматографию брали рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус, очищенный в градиенте плотности хлористого цезия (фиг.3). На фиг.3 представлена хроматограмма рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с целлюлозо-связывающими доменами, очищенного в плотности хлористого цезия. Сплошным маркером отмечен пик рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса (22,5 мин), пунктирным - сателлитный пик (дефектные рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусные частицы).

По результатам хроматографии можно видеть, что очистка рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов на целлюлозном носителе позволяет получать рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы, по чистоте сравнимые с образцами рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов, очищенными в плотности хлористого цезия.

Пример 4.

Очистка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с декстран-связывающими доменами на декстрановых носителях.

1. Подготовка вируссодержащего материала.

1) Накопление рекомбинантного капсид-модифицированного

аденовируса в клетках.

Для накопления рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с декстран-связывающими доменами в структуре капсидного белка pIX, этим вирусом заражали клетки линии НЕК-293, высеянные на тридцать 150-мм культуральных чашек с конфлюэнтностью монослоя 90% в дозе 20 инфекционных вирусных частиц на клетку. На вторые сутки после заражения наблюдали цитопатическое действие (ЦПД) вируса у 100% клеток.

2) Сбор зараженных клеток.

После наступления ЦПД клетки собирали в центрифужные банки (V=200 мл) и центрифугировали для осаждения клеток при 1500 об/мин, в течение 10 минут, а супернатант удаляли. Осадок клеток ресуспендировали в 10 мл фосфатного солевого буфера (PBS).

3)Лизис клеток для высвобождения рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса. Клетки в полученной суспензии лизировали путем трехкратного перемораживания для высвобождения рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса из клеток.

4) Освобождение от клеточного дебриса.

Клеточные лизаты после трехкратного перемораживания центрифугировали при 5000 об/мин в течение 10 минут для осаждения клеточного дебриса, а супернатант, содержащий рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус, отбирали для его последующей очистки.

На этой стадии, после получения суспензии рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса, освобожденной от клеточного дебриса, из этой суспензии отбирали 200 мкл в отдельную пробирку для определения исходного титра рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса для последующего сравнения с титром рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса после очистки и определения выхода рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Непосредственная очистка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на декстрановых носителях.

1) Посадка рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса на декстрановый носитель.

В качестве носителя для очистки рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса использовали декстрановые носители: сефадексы, сефакрилы; носители, содержащие остатки декстрана, привитые к субстрату другой (не полисахаридной) химической природы. Эти носители смешивали с приготовленной вируссодержащей суспензией в соотношении: 1,5 г декстранового носителя + 9 мл вируссодержащей суспензии. Смесь инкубировали в течение 16 часов при постоянном покачивании при температуре +4°C.

2) Осаждение декстранового носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом.

Затем декстрановый носитель с адсорбированным на нем рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом осаждали центрифугированием при 4000 об/мин в течение 5 минут. Супернатант удаляли.

3) Промывка.

а) Сначала осадок декстранового носителя с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали нейтральным трис-фосфатным буфером рН=7,2 в объеме 10 мл, а затем снова осаждали центрифугированием 4000 об/мин в течение 5 минут с последующим удалением супернатанта, как описано в этапе 2.2. Промывку повторяли 2 раза.

б) Для окончательной отмывки декстранового носителя от связавшихся с ним балластных веществ (белки, нуклеиновые кислоты, липиды, гликопротеиды и т.д.) декстрановый носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом промывали кислым трис-фосфатным буфером рН 4,5 в объеме 8 мл. Декстрановый носитель с рекомбинантным капсид-модифицированным аденовирусом затем осаждали и удаляли супернатант, как в этапе 2.2.

4) Элюирование рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса.

Для элюирования рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса с декстранового носителя добавляли кислый элюирующий трис-фосфатный буфер (рН 3,0) в объеме 3,5 мл и инкубировали в течение 30 минут при постоянном покачивании.

5) Отбор вируссодержащего раствора.

Для разделения декстранового носителя и рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса суспензию центрифугировали, как описано в этапе 2.2, а затем отбирали вируссодержащий супернатант.

6) Нейтрализация.

Так как в отобранном вирус-содержащем супернатанте рН=3,0 рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус не может сохраняться длительное время, раствор нейтрализовали путем добавления карбонатного буфера (рН=9,2) в объеме 3,5 мл для выравнивания рН до значения 7,2.

Функциональная активность декстран-связывающего домена в составе рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса была доказана методом трансмиссионной электронной микроскопии образцов этого вируса, инкубированного с низкомолекулярным декстраном (4 kDa) (фиг.4). На фиг.4 представлена трансмиссионная электронная микроскопия аденовирионов, где, А немодифицированный аденовирус; Б - капсид-модифицированный аденовирус, экспонирующий декстран-связывающие домены; В - немодифицированный аденовирус после инкубирования с низкомолекулярным декстраном; Г - капсид-модифицированный аденовирус после инкубирования с низкомолекулярным декстраном.

В качестве носителя для очистки капсид-модифицированного аденовируса в заявляемом способе используют дешевые полисахаридные носители как целлюлозные, так и декстрановые. Такие носители не нуждаются в предварительной подготовке (активировании, регенерации), что существенно упрощает технологию и делает ее более дешевой, в связи с низкой себестоимостью самого носителя и отсутствием необходимости использовать дополнительные реагенты для активирования и регенерации носителя. Таким образом, в заявленном изобретении для очистки аденовируса используется более дешевый носитель полисахаридный (например, целлюлозный или декстрановый), чем в прототипе, в котором используется более дорогостоящий носитель (авидин-биотиновый). В результате в заявленном способе значительно удешевляется способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека, а значит и существенно уменьшается себестоимость целевого продукта.

В заявляемом способе подготовка вируссодержащего материала заключается в освобождении зараженных клеток от культуральной среды и непосредственное их перемораживание в фосфатном буфере без предварительных отмывок клеток в отмывочных буферах, что существенно упрощает технологию очистки и предупреждает возможные потери аденовируса в результате дополнительных процедур отмывок/центрифугирований.

В связи с тем, что с малым объемом носителя для элюирования аденовируса требуются небольшие объемы элюирующего буфера, конечный продукт (аденовирусный препарат) будет более концентрированным, что существенно для использования его в медицине и ветеринарии.

Очистка рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов на полисахаридном носителе позволяет получать рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы, по чистоте сравнимые с образцами рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов, очищенными в плотности хлористого цезия.

В заявленном способе рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус после процедуры очистки остается без каких-либо дополнительных модификаций, в том числе полисахарид-связывающие домены в структуре капсида рекомбинантного капсид-модифицированного аденовируса сохраняют способность связывать полисахаридный субстрат, что позволяет использовать очищенные аденовирусы для последующей физико-химической модификации антигенами, конъюгированными с полисахаридыми наночастицами, с целью их применения для вакцинации или направленной трансдукции капсид-модифицированными аденовирусами определенных типов клеток человека и животных.

Биологическая активность подтверждена примерами.

В связи с вышеизложенным можно сделать вывод, что цель, поставленная данным предлагаемым изобретением, а именно разработка способа очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека, позволяющего получать биологически активный, хроматографически чистый и концентрированный аденовирусный препарат и сократить время его очистки, при этом удешевить способ за счет использования более дешевого носителя - достигнута.

Такое сочетание признаков, как совокупность используемых в заявляемом техническом решении способа очистки рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов и применяемых для этого нерастворимых полисахаридных носителей, ранее известно не было, поэтому предлагаемое изобретение отвечает критерию «новизна» и «изобретательский уровень».

Критерий «Промышленная применимость» доказан приведенными исследованиями, отображенными в примерах.

1. Способ очистки рекомбинантных аденовирусов млекопитающих и человека, включающий накопление аденовируса в пермиссивной культуре клеток линии НЕК-293, сбор этих клеток, высвобождение рекомбинантных аденовирусов за счет разрушения клеток путем перемораживания и их очистку, отличающийся тем, что
в качестве очищаемого рекомбинантного аденовируса выбирают рекомбинантный капсид-модифицированный аденовирус с модифицированным капсидным белком рlХ, несущим полисахарид-связывающий домен, выбранный из группы, включающей целлюлозо-связывающий домен, декстран-связывающий домен, а в процессе очистки производят посадку рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов на полисахаридный носитель, выбранный из группы, включающей целлюлозный носитель для связывания с целлюлозо-связывающим доменом, декстрановый носитель - для связывания с декстран-связывающим доменом, путем смешивания полисахаридного носителя с вируссодержащим лизатом и инкубируют, при этом рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы аффинно связываются с полисахаридным носителем за счет полисахарид-связывающих доменов, затем осуществляют процесс очистки, для чего полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами путем осаждения его центрифугированием освобождают от клеточных растворимых продуктов, разрушенных клеток и других балластных веществ, оставшихся от питательной среды, в которой выращивались клетки, а полученный супернатант удаляют, после чего осажденный полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами промывают промывочными буферами: сначала нейтральным промывочным буфером с рН от 6,0 до 7,8, а затем кислым промывочным буфером с рН от 3,7 до 6,0 для окончательного удаления балластных веществ и опять осаждают, а полученный супернатант удаляют, после этого производят элюирование рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов с полисахаридного носителя, для чего добавляют элюирующий буфер с рН от 2,9 до 3,5 и инкубируют раствор, при этом происходит диссоциация и рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы переходят в раствор, а для дальнейшего разделения полисахаридного носителя и рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов производят разделение полученной суспензии центрифугированием, затем отбирают вируссодержащий супернатант и стабилизируют его путем нейтрализации за счет добавления нейтрализующего буфера до значения рН от 6,5 до 7,4.

2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве полисахаридного носителя используют нерастворимый в водных средах субстрат, полностью состоящий из целлюлозы.

3. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве целлюлозы используют аморфную целлюлозу.

4. Способ по п.2, отличающийся тем, что в качестве целлюлозы используют модифицированные формы целлюлозы.

5. Способ по п.4, отличающийся тем, что в качестве модифицированной формы целлюлозы используют метилцеллюлозу.

6. Способ по п.4, отличающийся тем, что в качестве модифицированной формы целлюлозы используют карбоксиметилцеллюлозу.

7. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве полисахаридного носителя используют целлюлозные остатки, привитые к субстрату другой, не полисахаридной химической природы.

8. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве полисахаридного носителя используют декстрановый носитель.

9. Способ по п.8, отличающийся тем, что в качестве декстранового носителя используют сефадексы.

10. Способ по п.8, отличающийся тем, что в качестве декстранового носителя используют сефакрилы.

11. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве полисахаридного носителя используют декстрановые остатки, привитые к субстрату другой, не полисахаридной химической природы.

12. Способ по п.1, отличающийся тем, что смешивание полисахаридного носителя с вируссодержащим лизатом производят в соотношении по массе от 1:1 до 1:100, а инкубирование осуществляют в течение 2-24 ч в динамическом режиме.

13. Способ по п.1, отличающийся тем, что осажденный полисахаридный носитель с адсорбированными на нем рекомбинантными капсид-модифицированными аденовирусами промывают в два этапа, при этом сначала промывают нейтральным промывочным буфером в соотношении от 1:5 до 1:100 по объему, причем промывку осуществляют многократно, затем промывают кислым отмывочным буфером однократно.

14. Способ по п.1, отличающийся тем, что элюирование рекомбинантных капсид-модифицированных аденовирусов с полисахаридного носителя производят с добавлением элюирующего буфера, а инкубирование производят продолжительностью от 20 до 90 мин.

15. Способ по п.1, отличающийся тем, что вируссодержащий супернатант, содержащий рекомбинантные капсид-модифицированные аденовирусы, нейтрализуют до значения рН 7,2.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано при производстве препарата для эффективного восстановления биологического равновесия вагинальной микрофлоры.
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для сокращения сроков постановки диагноза. .

Изобретение относится к области биотехнологии и касается способа биологического получения н-бутанола и микроорганизма Clostridia acetobutylicum, используемого в таком способе.
Изобретение относится к биотехнологии и молочной промышленности и предназначено для производства кисломолочных продуктов и бактериальных препаратов. .
Изобретение относится к биотехнологии и молочной промышленности. .
Изобретение относится к биотехнологии и молочной промышленности и предназначено для производства кисломолочных продуктов и бактериальных препаратов. .
Изобретение относится к биотехнологии и молочной промышленности и предназначено для производства кисломолочных продуктов и бактериальных препаратов. .
Изобретение относится к области биотехнологии, получению протеолитических ферментов - активаторов протеина С плазмы крови человека. .
Изобретение относится к области медицины и касается способа получения живой культуральной гриппозной вакцины. .
Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу получения вирионного антигена вируса клещевого энцефалита (КЭ) из антигенсодержащего материала, включающего, главным образом, антигенные частицы вируса КЭ мельче полноразмерных вирионов КЭ.

Изобретение относится к области биотехнологии, конкретно к получению питательных сред для культивирования клеток, и может быть использовано для значительного снижения вариаций продукции рекомбинантных белков, которые имеют место при культивировании клеток с использованием разных партий коммерчески доступного соевого гидролизата.

Изобретение относится к биотехнологии и вирусологии. .
Изобретение относится к области биотехнологии и вирусологии. .

Изобретение относится к устройству для очистки вирусов и может быть использовано в микробиологической промышленности. .

Изобретение относится к области биотехнологии и касается способа концентрации вирусов из жидких сред. .
Изобретение относится к области вирусологии. .
Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и касается способа получения антигенов аденовирусов птиц. .

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу очистки вируса везикулярного стоматита (ВВС) из жидкости клеточной культуры
Наверх