Способ диагностики немелкоклеточного рака легких и набор для его осуществления

Настоящее изобретение относится к области медицины, в частности к онкологии и молекулярной биологии. Для диагностики немелкоклеточного рака легких определяют уровень транскрипции гена WIF1 в предположительно пораженной раком ткани человека и в прилегающей гистологически нормальной ткани. Сниженный уровень транскрипции в предположительно пораженной раком ткани человека и по сравнению с ее уровнем в прилегающей гистологически нормальной ткани служит диагностическим признаком немелкоклеточного рака легких. Для осуществления полимеразной цепной реакции для определения уровня транскрипции гена WIF1 используют набор праймеров, имеющих последовательность SEQ ID NO: 1 и 2. Использование изобретения позволяет с высокой достоверностью диагностировать немелкоклеточный рак легких, включая плоскоклеточный рак, в том числе на самой ранней стадии прогрессии опухолевой трансформации. 2 н. и 6 з.п. ф-лы, 2 ил., 1 табл.

 

Область техники, к которой относится изобретение

Настоящее изобретение относится к области медицины, в частности онкологии и молекулярной биологии, и может быть использовано для ранней диагностики немелкоклеточного рака легких, включая плоскоклеточный рак.

Уровень техники

Рак легких остается одной из основных причин смерти онкологических больных в мире. Смертность от рака легких превышает смертность от рака молочной железы, толстой кишки и простаты, вместе взятых [Jemal A., Siegel R., Ward E., Murray Т., Xu J., Smigal С., Thun M.J. 2006. Cancer statistics, 2006. CA Cancer J Clin. 56, 6-30]. В России показатели смертности от рака легких у мужчин 68,2 случая на 100 тысяч населения, у женщин - 6,8 случая [Заридзе Д.Г. 2004. Эпидемиология и этиология злокачественных новообразований, стр.29-85 - в кн. Канцерогенез. / Под ред. Д.Г.Заридзе. - М.: Медицина]. Различают два основных вида рака легких (РЛ): мелкоклеточный (МРЛ) и немелкоклеточный (НМРЛ), составляющих 15-20 и 75-80%, соответственно. К НМРЛ относят плоскоклеточный рак легких (ПРЛ), аденокарциному легких (АКЛ) и крупноклеточный рак. Среди разных форм рака легких по частоте встречаемости ПРЛ занимает первое место, АКЛ - второе.

Диагноз в половине случаев НМРЛ устанавливают на далеко зашедшей стадии опухолевого процесса, что делает малореальным радикальное излечение. Современные методы лечения повышают среднюю пятилетнюю продолжительность жизни больных НМРЛ не более чем на 15%. Этот показатель может быть существенно улучшен только с помощью разработки методов ранней диагностики.

Основными методами диагностики рака легких служат инструментальные - рентгеновские и эндоскопические. Используют также анализ мокроты на атипичные клетки, биопсию ткани легких, компьютерную томографию, флуоресцентную фиброскопию. Иммунологические методы диагностики находят пока ограниченное клиническое применение. Практическую значимость имеет определение опухолевых маркеров: СЕА - раковоэмбриональный антиген - онкомаркер рака прямой кишки, но может использоваться в оценке рака легких; NSE - нейрон-специфическая энолаза - в ряде случаев используют в оценке состояния пациентов с раком легких; тканевой полипептидный антиген (ТРА) - фрагмент цитокератина, более специфичный маркер рака легких. Эти маркеры применяют для контроля лечения, выявления рецидивов, но не для диагностики РЛ на ранней стадии. Для диагностики НМРЛ широко используют маркеры SCC - антиген плоскоклеточной карциномы и фрагмент цитокератина-19 (CYFRA 21.1) [Pastor A., Menendez R., Cremades M.J., Pastor V., Llopis R., Aznar J. 1997. Diagnostic value of SCC, CEA and CYFRA 21.1 in lung cancer: a Bayesian analysis. Eur Respir J. 10, 603-609; Buccheri G., Torchio P., Ferrigno D. 2003. Clinical Equivalence of Two Cytokeratin Markers in Non-small Cell Lung Cancer. A Study of Tissue Polypeptide Antigen and Cytokeratin 19 Fragments. Chest. 124, 622-632], но они также малопригодны для ранней диагностики РЛ.

Диагностическими признаками злокачественной трансформации клеток могут служить также изменения генома в опухолевых клетках - точечные мутации в кодирующих и регуляторных участках генов, микросателлитная нестабильность, аллельные потери, изменение уровня транскрипции или трансляции генов, метилирование промоторных участков гена и др. В отличие от белковых молекулярно-генетические маркеры обладают значительно большей чувствительностью. Рак легких сопровождается изменением функциональной активности многих генов. В числе перспективных потенциальных маркерных генов, вовлеченных в канцерогенез разных форм НМРЛ, рассматривают ген WIF1 [Mazieres J., Не В., You L., Xu Z., Lee A.Y., Mikami I., Reguart N., Resell R, McCormick F., Jablons D.M. 2004. Wnt inhibitory factor-1 is silenced by promoter hypermethylation in human lung cancer. Cancer Res. 64: 4717-4720; Wissmann С., Wild P.J., Kaiser S., Roepcke S., Stoehr R., Woenckhaus M., Kristiansen G., Hsieh J.C., Hofstaedter F., Hartmann A., Knuechel R., Rosenthal A, Pilarsky C. 2003. WIF1, a component of the Wnt pathway, is down-regulated in prostate, breast, lung, and bladder cancer. J. Pathol. 201: 204-212.].

Фактор-ингибитор Wnt 1 - WIF1 является внеклеточным ингибитором Wnt-сигнального пути, который способен связывать молекулы Wnt, тем самым предотвращая их взаимодействие с рецепторными комплексами и дальнейшую активацию сигнального пути [Hsieh J.C., Kodjabachian L., Rebbert M.L., Rattner A., Smallwood P.M., Samos C.H., Nusse R, Dawid I.B., Nathans J. 1999. A new secreted protein that binds to Wnt proteins and inhibits their activities. Nature. 398: 431-436].

Аномальная активация Wnt-сигнального пути часто наблюдается в различных типах опухолей и вносит свой вклад в формирование и прогрессию опухолевого фенотипа, в частности, в случае опухолей легких [Mazieres J., He В., You L., Xu Z., Jablons D.M. 2005. Wnt signaling in lung cancer. Cancer Lett. 222: 1-10; He В., You L., Uematsu K., Xu Z., Lee A.Y., Matsangou M., McCormick F., Jablons D.M. 2004. A monoclonal antibody against Wnt-1 induces apoptosis in human cancer cells. Neoplasia. 6: 7-14; You L., He В., Xu Z., Uematsu К., Mazieres J., Mikami I., Reguart N., Moody T.W., Kitajewski J., McCormick F., Jablons D.M. 2004. Inhibition of Wnt-2-mediated signaling induces programmed cell death in non-small-cell lung cancer cells. Oncogene. 23: 6170-6174].

Экспрессия WIF1 часто ингибирована в опухолях различного происхождения. Снижение уровня транскрипта WIF1 часто наблюдается в опухолях молочной железы, носоглотки, пищеварительного тракта, мочевого пузыря, легких [Urakami S., Shiina H., Enokida H., Kawakami Т., Kawamoto К., Hirata H., Tanaka Y., Kikuno N., Nakagawa M., Igawa M., Dahiya R. 2006a. Combination analysis of hypermethylated Wnt-antagonist family genes as a novel epigenetic biomarker panel for bladder cancer detection. Clin Cancer Res. 12: 2109-2116; Urakami S., Shiina H., Enokida H., Kawakami Т., Tokizane Т., Ogishima Т., Tanaka Y., Li L.C., Ribeiro-Filho L.A, Terashima M., Kikuno N., Adachi H., Yoneda Т., Kishi H., Shigeno K., Konety B.R., Igawa M., Dahiya R, 2006b. Epigenetic inactivation of Wnt inhibitory factor-1 plays an important role in bladder cancer through aberrant canonical Wnt/beta-catenin signaling pathway. Clin Cancer Res. 12: 383-391; Taniguchi H., Yamamoto H., Hirata Т., Miyamoto N., Oki M., Nosho K., Adachi Y., Endo Т., Imai K., Shinomura Y. 2005. Frequent epigenetic inactivation of Wnt inhibitory factor-1 in human gastrointestinal cancers. Oncogene. 24: 7946-7952; Lin Y.C., You L., Xu Z., He В., Mikami I., Thung E., Chou J., Kuchenbecker K., Kim J., Raz D., Yang C.T., Chen J.K., Jablons D.M. 2006. Wnt signaling activation and WIF-1 silencing in nasopharyngeal cancer cell lines. Biochem Biophys Res Commun. 341: 635-640; Mazieres J., He В., You L., Xu Z., Lee A.Y., Mikami I., Reguart N., Resell R., McCormick F., Jablons D.M. 2004. Wnt inhibitory factor-1 is silenced by promoter hypermethylation in human lung cancer. Cancer Res. 64: 4717-4720; Wissmann et al., 2003, supra].

Как ингибитор Wnt-сигнального пути, аномальная активация которого может вносить существенный вклад в процессы канцерогенеза, ген WIF1 может рассматриваться как потенциальный ген-супрессор опухолевого роста [Urakami et al., 2006b, supra; Taniguchi et al., 2005, supra; He et al., 2004, supra]. Потеря активности таких генов происходит в результате точечных мутаций, аллельных делеций, гомозиготных делеций или гиперметилирования CpG-островков генов, особенно в промоторных областях [Belinsky S.A, Klinge D.M., Dekker J.D., Smith M.W., Bocklage T.J., Gilliland F.D., Crowell R.E., Karp D.D., Stidley C.A., Picchi M.A. 2005. Gene promoter methylation in plasma and sputum increases with lung cancer risk. Clin. Cancer Res. 11, 6505-6511], Для гена WIF1 было выявлено, что причиной изменения его экспрессии в опухолях является гиперметилирование CpG-островков промотора гена [Ai L., Tao Q., Zhong S., Fields C.R., Kim W.J., Lee M.W., Cui Y., Brown K.D., Robertson K.D. 2006. Inactivation of Wnt inhibitory factor-1 (WIF1) expression by epigenetic silencing is a common event in breast cancer. Carcinogenesis. 27: 1341-1348; Batra S, Shi Y, Kuchenbecker K.M, He B, Reguart N, Mikami I., You L., Xu Z., Lin Y.C., Clement G., Jablons D.M. 2006. Wnt inhibitory factor-1, a Wnt antagonist, is silenced by promoter hypermethylation in malignant pleural mesothelioma. Biochem Biophys Res Commun. 342: 1228-1232; Urakami et al., 2006a, supra; Urakami et al., 2006b, supra; Taniguchi et al., 2005, supra; Mazieres et al., 2004, supra]. Для гена WIF1 с использованием в основном метода иммуногистохимического окрашивания было выявлено отсутствие корреляции статуса его экспрессии и клинико-патологическими характеристиками НМРЛ [Wissmann et al., 2003, supra].

Потеря транскрипционной активности при НМРЛ показана для нескольких генов. В работе (Terauchi К., Shimada J., Uekawa N., Yaoi Т., Maruyama M., Fushiki S. 2006. Cancer-associated loss of TARSH gene expression in human primary lung cancer. J. Cancer Res. Clin. Oncol. 132. 28-34) выявлено уменьшение транскрипции гена TARSH, одного из генов, связанных со старением клеток, в опухолевых клеточных линиях и образцах НМРЛ по сравнению с нормой. На основе полученных результатов авторы выдвинули предположение о возможном использовании этого гена в качестве биомаркера для диагностики НМРЛ. Однако в данной работе проведен анализ только 8-ми образцов ПРЛ, наиболее распространенной формы РЛ. Данный аналог наиболее близок по технической сущности заявленному изобретению и принят за прототип.

Из изложенного ясно, что в данной области существует настоятельная потребность в поиске нового диагностического маркера НМРЛ, позволяющего достоверно и уже на самых ранних этапах диагностировать заболевание, и в разработке на его основе простого, чувствительного, надежного, применимого в условиях клинических или поликлинических медицинских учреждений способа диагностики немелкоклеточного рака легких.

Раскрытие изобретения

Данное изобретение стало возможным в результате проведенного авторами сравнительного анализа уровня транскрипции гена WIF1 в опухолевых тканях легких различного типа и на разных этапах их злокачественного перерождения и неожиданного открытия того факта, что уже ранние стадии развития злокачественной трансформации сопровождаются значительным снижением уровня транскрипции гена WIF1.

Настоящее изобретение в своем первом аспекте относится к новому маркеру для диагностики немелкоклеточного рака легких, который представляет собой уровень транскрипции гена WIF1. Сниженный уровень в предположительно пораженной раком ткани человека по сравнению с ее уровнем в здоровой ткани служит диагностическим признаком немелкоклеточного рака легких.

В одном из воплощений рак легких, маркером которого является уровень транскрипции гена WIF1, является плоскоклеточным раком легких.

В своем следующем аспекте настоящее изобретение относится к применению уровня транскрипции гена WIF1 в качестве маркера для диагностики немелкоклеточного рака легких человека.

В одном из воплощений рак легких, в отношении которого уровень транскрипции гена WIF1 служит в качестве диагностического маркера, является плоскоклеточным раком легких.

В еще одном аспекте настоящее изобретение относится к способу диагностики немелкоклеточного рака легких.

Данный способ включает следующие стадии:

а) получение исходной пары образцов ткани от пациента, где один из образцов получен из предположительно пораженной раком ткани, а второй получен из прилегающей гистологически нормальной (условно-нормальной) ткани;

б) выделение и очистка препаратов РНК из исходной пары образцов;

в) синтез одноцепочечной или двуцепочечной кДНК на матрице РНК с использованием олигонуклеотидных праймеров;

г) нормирование концентрации кДНК WIF1 по контрольному гену, уровень транскрипции которого постоянен в норме и при раке легких;

д) проведение количественной или полуколичественной реакции амплификации фрагмента гена WIF1 с использованием кДНК, полученной на стадии в), в качестве матрицы и пары геноспецифичных олигонуклеотидных праймеров;

е) сравнение количества амплифицированного фрагмента ДНК WIF1 для образца, полученного из предположительно пораженной раком ткани, с количеством амплифицированного фрагмента ДНК для образца, полученного из нормальной ткани, где указанные количества амплифицированного фрагмента ДНК отражают уровень транскрипции гена WIF1, причем уменьшение транскрипции гена WIF1 служит диагностическим признаком рака легких.

В одном из воплощений заявленный способ предназначен для диагностики плоскоклеточного рака легких.

В одном из воплощений способа изобретения на стадии в) олигонуклеотидные праймеры, используемые для синтеза одноцепочечной или двуцепочечной кДНК, выбирают из числа олиго(dT)-содержащих праймеров, случайных гексамеров, или их комбинации, а также геноспецифичных праймеров.

В следующем воплощении способа настоящего изобретения для амплификации кДНК на стадии д) используют олигонуклеотидные праймеры, подобранные таким образом, что они специфически гибридизуются с кДНК даже в присутствии в препарате примеси геномной ДНК.

В отдельном предпочтительном воплощении данного изобретения последовательность праймеров представлена SEQ ID NO:1 и 2.

В еще одном воплощении способа настоящего изобретения на стадии д) количественная или полуколичественная реакция амплификации фрагмента гена WIF1 представляет собой ПЦР в реальном времени или стандартную ОТ-ПЦР.

В одном воплощении заявленного способа на стадии г) в качестве контрольного гена используют ген GAPDH, кодирующий белок глицеральдегид-3-фосфат-дегидрогеназу.

Еще одним аспектом настоящего изобретения является набор праймеров для осуществления полимеразной цепной реакции для определения уровня транскрипции гена WIF1, имеющих последовательность SEQ ID NO:1 и 2.

Перечень фигур.

Далее изобретение будет более подробно раскрыто со ссылкой на отдельные иллюстративные примеры и фигуры, где

Фиг.1 показывает результаты подбора условий определения уровня транскрипции гена WIF1 в образцах тканей легких. Электрофоретическое разделение в агарозном геле продуктов ПЦР (размер 224 п.н.), полученных после 36 и 40 циклов, проводили в 1,8%-ном агарозном геле. М - маркер молекулярных масс ДНК (50 bp Ladder, Fermentas, Литва).

Фиг.2 показывает результаты ОТ-ПЦР-анализа уровня транскрипции гена WIF1 при ПРЛ с центральной локализацией опухоли и АКЛ (после 36-ти и 40-ка циклов). Номера образцов и число циклов амплификации указаны над дорожками. Т - опухоль, N - условная норма (прилежащие к опухоли ткани). Образцы были предварительно выравнены по уровню транскрипции GAPDH. Электрофоретическое разделение продуктов ПЦР проводили в 1,8%-ном агарозном геле. Показаны репрезентативные результаты анализа.

Осуществление изобретения

Данное изобретение обеспечивает новый генетический маркер для диагностики немелкоклеточного рака легких и основанный на определении уровня транскрипции этого маркера простой, надежный способ диагностики НМРЛ на разных стадиях развития злокачественной трансформации, включая начальные. Достоверно обнаруживаемое различие в транскрипции гена WIF1 в нормальных и опухолевых тканях может быть использовано для обнаружения рака легких.

Образцы ткани легких для анализа

В качестве образцов для проведения анализа могут быть использованы биоптаты, пунктаты, в том числе материал, полученный при бронхоскопии с прямой биопсией (центральный рак легких) и трансторакальной (чрезкожной) пункции опухоли (периферический рак).

Выделение РНК из образцов ткани легких

Способы выделения суммарной РНК из образцов ткани млекопитающих хорошо известны специалистам и, как правило, включают следующие стадии: измельчение в жидком азоте образцов опухолевых и нормальных тканей, лизис клеток, выделение РНК и ее очистку, проверку качества РНК электрофорезом в 1%-ном агарозном геле в присутствии красителя бромида этидия или в денатурирующем полиакриламидном геле, а также спектрофотометрическое определение количества РНК. Гомогенизацию кусочков ткани можно проводить вручную, растирая пестиком в керамической ступке, или с помощью механических гомогенизаторов, например, Omni Mixer или Micro-Dismembrator U фирмы Sartorius (Германия). Для выделения РНК могут быть использованы различные протоколы, широко известные специалистам в данной области. В классических методах выделения РНК используют сильные хаотропные агенты, такие, как гуанидинхлорид и гуанидинизотиоцианат, растворяющие белки, и последовательные экстракции фенолом и хлороформом для денатурации и удаления белков [Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis Т., Molecular Cloning. A laboratory Manual. 2nd Edition ed. 1989, Cold Spring Harbour: CSHL Press]. Широко используют также метод с использованием реагента Trizol [GIBCO/Life Technologies]. Для предотвращения разрушения РНК РНКазами могут быть использованы ингибиторы, такие как игибитор RNAsin плацентарного или рекомбинантного происхождения или, например, ванадил-рибозидный комплекс - неспецифический ингибитор РНКаз широкого спектра действия.

Быстрое и качественное выделение РНК можно проводить с использованием ряда коммерчески доступных наборов (Клоноген, Санкт-Петербург; RNeasy kits (Qiagen); SV Total RNA Isolation System, Promega (США) и т.д.).

Чтобы исключить работу с агрессивными агентами, ускорить и упростить выделение РНК, применяют различные приборы, например, QuickGene-810 (Life Science, Япония). Для экстракции РНК в этом приборе используют 80 мкм пористую мембрану, которая в 12,5 раз тоньше обычно используемого в таких приборах стеклянного фильтра (1000 мкм). Это позволяет уменьшить деградацию РНК и увеличить ее выход.

Реакция обратной транскрипции: синтез кДНК на матрице РНК. выделенной из образцов ткани легких, и ее перевод в двуцепочечную форму.

Процесс обратной транскрипции, в результате которой на РНК-матрице синтезируют одноцепочечную цепь ДНК, при необходимости, с достройкой второй цепи, позволяет от нестабильных молекул РНК перейти к более стабильным молекулам ДНК и амплифицировать с помощью полимеразной цепной реакции до количеств, необходимых для детекции. ОТ-ПЦР-амплификация позволяет использовать очень малые количества исходной РНК (на уровне 1 нанограмма), а следовательно, и количество исследуемой легочной ткани, из которой выделяют РНК.

Реакцию обратной транскрипции можно проводить с использованием ряда коммерчески доступных препаратов обратных транскриптаз, таких как обратная транскриптаза вируса лейкоза мышей Молони (M-MLV), вируса миелобластоза птиц (AMV), PowerScript (точечная мутация M-MLV-RT), С.Therm Polymerase и др., с помощью которых можно получать продукты амплификации длиной до нескольких тысяч и даже несколько десятков тысяч пар нуклеотидов (т.п.н.). Может быть использована термостабильная ДНК-полимераза Thermus thermophilus (Tth), обладающая обратной транскриптазной активностью в присутствии ионов Mn²⁺.

Для обратной транскрипции могут быть использованы различные праймеры, например:

1. Олиго(dT)_n-содержащие праймеры, которые связываются с эндогенным полиА-хвостом на 3'-конце мРНК (число n обычно равно 12-18, но может достигать и большей величины). Эти праймеры наиболее часто используют для получения полноразмерных кДНК. К олиго(dT)-последовательности часто добавляют на 3'-конце нуклеотиды А, С или G, чтобы «заякорить» праймер на границу транскрипта и поли-А тракта.

2. Случайные гексануклеотидные праймеры (статистические затравки), которые гибридизуются с РНК в многочисленных участках. При обратной транскрипции с этими праймерами получают короткие кДНК. Случайные гексамеры используют для преодоления трудностей, связанных с прочной вторичной структурой РНК, они более эффективны при обратной транскрипции 5'-областей мРНК.

3. Гексамеры или другие короткие олигонуклеотиды (10-12 нуклеотидов) случайного состава могут быть также использованы в комбинации с олиго(dT)-содержащими праймерами.

4. Специфические олигонуклеотидные праймеры используют для транскрипции участка мРНК, представляющего интерес для исследования. Эти праймеры успешно применяют для диагностических целей.

Анализ транскрипции генов можно проводить, используя одноцепочечкую или двуцепочечную и амплифицированную кДНК. Для синтеза второй цепи и ее амплификации наиболее часто используют специфичные праймеры. В продаже имеются наборы для синтеза кДНК, основанные на применении различных обратных транскриптаз и различных праймеров для затравки. Для получения кДНК разработан также SMART-метод (switching mechanism at the 5' end of RNA templates of reverse transcriptase), в основе которого лежит свойство обратных транскриптаз добавлять на 3'-конец синтезированной первой цепи кДНК несколько нуклеотидных остатков, преимущественно dC. Эта олиго(dC)-последовательность служит местом отжига олигонуклеотидного адаптера, имеющего комплементарную олиго(dG)-последовательность на 3'-конце. Обратная транскриптаза воспринимает праймер как продолжение РНК-матрицы и продолжает синтез первой цепи [Schmidt W.M., Mueller M.W. 1999. CapSelect: a highly sensitive method for 5' CAP-dependent enrichment of full-length cDNA in PCR-mediated analysis of mRNAs. Nucleic Acids Res. 27, e31]. Таким образом, первая цепь кДНК оказывается фланкирована с одной стороны последовательностью 3'-праймера с олиго(dT) на 3'-конце, а с другой - последовательностью, комплементарной адаптеру. Эти праймеры имеют одинаковые внешние последовательности, отличаясь только на 3'-конце. Затем первую цепь амплифицируют в ПЦР с праймером, соответствующим внешней части 3'-праймера и адаптера. Нуклеотидную последовательность общей части этих праймеров подбирают в зависимости от дальнейших целей, например получения клонотек, применения вычитающей гибридизации и т.д. В результате получают двухцепочечную ДНК, обогащенную полноразмерными последовательностями. За счет использования адаптера с заблокированным 3'-концом достигается существенное снижение фоновой амплификации. При использовании модифицированного SMART-метода за короткое время происходит амплификация исходного материала более чем в 10⁵ раз, поэтому можно работать с очень небольшими количествами РНК (меньше 1 нанограмма), а следовательно, и с небольшим количеством исследуемой ткани [Zhu Y.Y., Machleder E.M., Chenchik A., Li R., Siebert P.D. 2001. Reverse transcriptase template switching: a SMART approach for full-length cDNA library construction. Biotechniques 30, 892-897]. Наборы для получения кДНК этим способом выпускают различные фирмы, например, Евроген, Россия (набор MINT), Clontech, США и т.п.

Анализ уровня транскрипции гена WIF1 с помощью ПЦР.

Используя первую или вторую цепь кДНК как матрицу, коммерчески доступную от широко спектра производителей термостабильную ДНК-полимеразу (например, Taq, Pfu, Tfl, Tth, Tma и т.д.) и специфические праймеры, сайты для которых расположены в представляющем интерес транскрипте, проводят стандартный, полуколичественный ПЦР, в котором амплифицируемый фрагмент транскрипта детектируется простым гель-электорофорезом, или количественный ПЦР в реальном времени. Выбор специфических праймеров осуществляют способом, хорошо известным специалистам в данной области. Для подбора праймеров и температур отжига целесообразно использовать коммерчески доступные программы или программы, находящиеся в свободном доступе в Интернете. Среди таких программ можно упомянуть Oligo (версия 6.42), PrimerSelect из пакета Lasergene (www.dnastar.com), Primer Premier 5, primers3 (http://frodo.wi.mit.edu/cgi-bin/primer3/primer3_www.cgiC), EasyExonPrimer (Wu X., Munroe D.J. 2006. EasyExonPrimer: Automated Primer Design for Exon Sequences. Appl Bioinformatics. 5, 119-120), ExPrimer (Sandhu K.S., Acharya K.K. 2005. ExPrimer: to design primers from exon--exon junctions. Bioinformatics. 21, 2091-2092), PerlPrimer, FastPCR (http:/www.biocenter.helsinki.fi/bi/Programs/fastpcr.htm), PrimerQuest (http://scitools.idtdna.com/Primerquest/). С учетом сложности анализируемого генома длина праймеров может быть выбрана в диапазоне от 18 до 25 п.н.

С целью упростить процедуру осуществления способа для целей клинического анализа и обеспечить максимальную сохранность содержащейся в образце РНК, необходимо свести к минимуму манипуляции с образцом ткани, которые потенциально могут приводить к разрушению РНК. В этой связи в одном из предпочтительных вариантов получения препарата РНК в данном изобретении не используют ДНКазу, свободную от РНКазы. При этом праймеры для ПЦР подбирают таким образом, чтобы они специфически гибридизовались с кДНК даже в присутствии в препарате примеси геномной ДНК. Этого можно достигнуть, например, путем подбора праймеров к разным экзонам гена WIF1. При использовании геноспецифичных праймеров, комплементарных участкам разных экзонов, длина продукта ПЦР, амплифицированного с примесной геномной ДНК, будет значительно больше длины ожидаемого продукта ПЦР, амплифицированного с кДНК. Если хотя бы один из подобранных праймеров перекрывает границу между экзонами, примеси геномной ДНК не будут влиять на результаты реакции амплификации.

В предпочтительном воплощении используют праймеры:

WIF1_F (SEQ ID NO: 1) 5'-CCAGGCAAGAGTACTCATAG-3' и

WIF1_R (SEQ ID NO: 2) 5'-TTGGATCTGCCATGATGCCT-3'

Специалисту в данной области будет понятно, что могут быть подобраны и другие пары праймеров, различающиеся, например, по своей длине, по своей локализации относительно последовательности транскрипта гена WIF1, которые будут обеспечивать специфическую и эффективную амплификацию фрагмента транскрипта гена WIF1 даже в присутствии примеси геномной ДНК.

Количественная оценка уровня транскрипции достигается с помощью параллельного проведения ПЦР с тестируемым транскриптом и контрольным/стандартным транскриптом или предварительного уравнивания количеств матриц в ПЦР по количеству контрольного/стандартного транскрипта. В качестве эндогенного внутреннего контроля, относительно которого проводилось нормирование продуктов амплификации исследуемого гена WIF1, выбран «ген домашнего хозяйства» - GAPDH, кодирующий глицеральдегид-3-фосфат-дегидрогеназу. Экспрессия «генов домашнего хозяйства» (housekeeping genes) во всех клетках одинакова. Для гена WIF1 в случае НМРЛ показан наименьший разброс уровней транскрипции в нормальных и опухолевых тканях (D.W. Liu, S.T. Chen, H.P. Liu. Choice of endogeneous control for gene expression in nonsmall lung cancer. 2005. Eur. Respir.J, 26, 1002-1008).

Для анализа уровня транскрипции генов может быть использована не только стандартная ПЦР, но и ПЦР в реальном времени (ПЦР-РВ). В отличие от стандартного метода, где фиксируются только конечные продукты реакции, ПЦР в реальном времени использует флуоресцентно меченые олигонуклеотидные зонды для детекции ДНК в процессе ее амплификации, поэтому позволяет наблюдать накопление амплифицированных фрагментов в экспоненциальной фазе реакции, что увеличивает чувствительность метода. Зонд, комплементарный средней части амплифицируемого фрагмента, содержит на концах флуорофор и тушитель. Когда флуорофор и тушитель связаны с олигонуклеотидным зондом, наблюдается лишь незначительная флуоресцентная эмиссия. Во время процесса амплификации за счет 5'-экзонуклеазной активности Taq-полимеразы флуоресцентная метка переходит в раствор, освобождаясь от соседства с тушителем, и генерирует флуоресцентный сигнал, усиливающийся в реальном времени пропорционально накоплению амплификата.

Подбор зондов для проведения ПЦР-РВ может осуществляться в соответствии со стандартными рекомендациями производителя приборов для ПЦР-РВ. Если отсутствует необходимость мультиплексного анализа нескольких генов одновременно, экономичной альтернативой может быть система, использующая специфический к двухспиральной ДНК краситель SYBR Green, интенсивность флуоресценции которого возрастает в реальном времени пропорционально увеличению количества ампликонов. В таком варианте можно использовать праймеры без зонда.

Для проведения ПЦР в реальном времени различными фирмами разработаны амплификаторы, например: ABI Prism 7000 Sequence Detection System фирмы Applied Biosystems (США), Chromo4, MiniOpticon или iCycler iQ5 MJ Research (Bio-Rad), а также отечественные приборы ДТ-322 (ДНК-Технология), АНК-32 (Институт Аналитического Приборостоения РАН, http://www.syntol.ru/productank.htm) и т.д. Применение ПЦР-РВ позволяет также уменьшить риск контаминации и автоматизировать процесс диагностики. Процесс продолжается два-три часа (50 или 60 циклов ПЦР, соответственно) и включает одновременное проведение ПЦР, детекцию флуоресцентного сигнала, обработку данных и их представление в графическом виде (полной кинетической кривой) с помощью специального программного обеспечения. Результаты анализа становятся доступными сразу после завершения процесса и не требуют дополнительно очистки и анализа продуктов ПЦР. В качестве основного метода измерения уровня транскрипции генов обычно выбирают сравнительный метод (метод относительных измерений, RQ-метод), основанный на относительном измерении количества исследуемых полинуклеотидных последовательностей, позволяющий проводить двойное сравнение результатов - для контрольных и целевых генов, а также для нормальных и опухолевых образцов кДНК.

Далее настоящее изобретение будет подробно проиллюстрировано со ссылкой на конкретные примеры, представляющие собой наиболее предпочтительные воплощения данного изобретения. При этом должно быть понятно, что изобретение не ограничивается этими описанными воплощениями. Напротив, предполагается, что оно включает любые альтернативы, модификации или эквиваленты, допустимые с учетом сущности и объема изобретения.

Пример 1. Образцы тканей легких

Анализировали 29 пар образцов легочных тканей (опухоль - условная норма) пациентов с НМРЛ: 25 пар образцов ПРЛ (19 образцов с центральной локализацией опухоли и шесть - с периферической) и четыре пары образцов АКЛ. За условную норму принимали гистологически нормальные ткани легких, взятые из прилегающей к опухоли ткани ближе к краю резекции. Средний возраст пациентов, среди которых 28 мужчин и одна женщина, составляет 61 год (диапазон 34-76 лет). Диагноз в каждом случае устанавливали на основании результатов клинического, морфологического, эндоскопического и рентгенологического обследований. Все опухолевые образцы охарактеризованы согласно международной системе клинико-морфологической классификации опухолей TNM, где Т (tumor) - Т0-Т4 - категории, отражающие нарастание размера и/или местного распространения первичной опухоли, N (nodulus) - N0-N3 - категории, отражающие различную степень поражения метастазами регионарных лимфатических узлов; М (metastasis) - М0-М1 - характеризует отдаленные метастазы. Все возможные комбинации TNM объединяют в более крупные группы - стадии, отражающие течение опухолевого процесса. I-я стадия заболевания установлена у шести больных, II-я - у 18-ти, III-я - у пяти. Признаков отдаленных метастазов не наблюдали ни у одного из пациентов. Никто из пациентов не подвергался до операции лучевой терапии и химиотерапии.

Пример 2. Выделение РНК из образцов тканей

Суммарную РНК выделяли из замороженных, измельченных в жидком азоте образцов опухолевых и нормальных тканей. Образцы тканей гомогенизировали на приборе Micro-Dismembrator U (Sartorius, Германия). Очистку РНК проводили стандартным методом с использованием гуанидинизотиоцианата и фенола с последующим осаждением этиловым спиртом [Sambrook et al., 1989, supra]. Для удаления примесей гликопротеидов, которыми богаты ткани легких, использовали дополнительное осаждение РНК солевым раствором [Chomczynski P., Mackey К. 1995. Modification of the TRI reagent procedure for isolation of RNA from polysaccharide - and proteoglycan-rich sources. Biotechniques 19, 942-945]. После солевого осаждения все препараты РНК очищали с помощью набора "Rneasy Mini kit" (Qiagen, США) согласно прилагаемому изготовителем протоколу. Такая трехэтапная процедура очистки РНК позволила эффективно избавиться не только от трудно растворимых осадков гликопротеидов, но и от низкомолекулярных РНК. Качество препарата РНК проверяли электрофорезом в 1%-ном агарозном геле в присутствии бромида этидия. Количество РНК определяли спектрофотометрически [Sambrook et al., 1989, supra].

Пример 3. Реакция обратной транскрипции

Синтез первой цепи кДНК

На матрице РНК, выделенной, как описано в Примере 2, синтезировали одноцепочечную кДНК. Для получения кДНК использовали модифицированный SMART-метод [Zhu Y.Y., Machleder E.M., Chenchik A., Li R., Siebert P.D. 2001, Reverse transcriptase template switching: a SMART approach for full-length cDNA library construction. Biotechniques 30, 892-897], 2 нг - 1 мкг суммарной РНК, праймеры:

SMART (5'-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTACGCrGrGrG-3') и

CDS (5'-AGCAGTGGTATCAACGCAGAGTAC(T)₃₀N_-1N-3'),

и обратную транскриптазу PowerScript (Clontech, США)

Условия реакции:

Состав реакционной смеси (10 мкл):

РНК (1 мкг/мкл)	1,0 мкл
праймер SMART (6 мкМ)	2,0 мкл
праймер CDS (10 мкМ)	1,0 мкл
стерильная деионизованная вода	1,0 мкл

Прогревали пробу при 72°С, 3 мин и помещали в лед.

Добавляли 5 мкл смеси:

буфер (Clontech) для построения 1-й цепи (5х)	2,0 мкл
dNTP (10 мМ)	1,0 мкл
DTT (20 мМ)	1,0 мкл
обратная транскриптаза PowerScript (Clontech)	1,0 мкл

Инкубировали при 42°С, 60 мин. Реакцию останавливали прогреванием при 65°С, 5 мин, добавляли 2 мкл 60 мМ ЭДТА и доводили объем пробы до 20 мкл.

Пример 4. Синтез второй цепи кДНК

Для синтеза второй цепи кДНК и амплификации брали 1/10 часть от объема реакционной смеси, полученной в Примере 3. Синтез проводили с помощью Advantage2 DNA Polymerase с праймером 5'-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGT-3' согласно протоколу «Advantage 2 PCR kit» (Clontech, Heidelberg, Germany).

Условия проведения ПЦР:

Состав реакционной смеси (50 мкл):

ПЦР-буфер Advantage 2 (Clontech) (10x)	5,0 мкл
dNTP (2,5 мМ)	5,0 мкл
праймер 10 мкМ	1,0 мкл
кДНК (одноцепочечная)	1,0 мкл
Advantage 2 ДНК-полимераза (Clontech)	1,0 мкл
стерильная деионизованная вода	37,0 мкл

Условия амплификации:

95°С, 1,5 мин 1 цикл

95°С, 20 с; 65°С, 20 с; 72°С, 3 мин 14-17-20-23 цикла

Для каждого образца подбирали количество циклов, позволяющих получать одинаковое количество амплифицированного материала.

Пример 5. Подбор условий определения уровня транскрипции гена WIF1 в образцах тканей легких.

Протокол определения уровня транскрипции

При подборе условий определения уровней транскрипции для амплификации двуцепочечной кДНК использовали геноспецифичные праймеры WIF1_F (SEQ ID NO: 1) и WIF1_R (SEQ ID NO: 2), которые были подобраны к разным экзонам гена WIF1, причем один из праймеров перекрывает границу между экзонами. В этих условиях примеси геномной ДНК не влияют на результаты амплификации.

Размер ПЦР-фрагмента составлял 224 п.н. Подбор условий проведения ПЦР осуществляли на нескольких образцах кДНК. Амплификацию проводили в 25 мкл смеси. Реакционную смесь (50 мкл), содержащую: 50 mM KCl, 10 mM Трис-HCl, рН 8,3, 2 мМ MgCl₂, 0,2 мМ каждого из dNTP, 0,4 мкМ каждого из праймеров, 0,8 мкг кДНК, 2 ед. активности Taq ДНК-полимеразы (Fermentas, Литва), разделяли на 2 части по 25 мкл для проведения 36 и 40 циклов ПЦР. Условия проведения ПЦР:

Состав реакционной смеси (50 мкл):

ПЦР-буфер (10x)	5,0 мкл
MgCl2 (25 мМ)	4,0 мкл
dNTP (10 мМ)	1,0 мкл
праймер WIF1_F, 10 мкМ	2,0 мкл
праймер WIF1_R, 10 мкМ	2,0 мкл
кДНК (0.1 мкг/мкл)	8,0 мкл
Taq ДНК-полимераза, 5 ед/мкл	0,4 мкл
стерильная деионизованная вода	27,6 мкл

Условия амплификации:

94°С, 2 мин 1 цикл

94°С, 40 с; 63°С, 60 с; 72°С, 60 с 36 и 40 циклов

72°С, 3 мин 1 цикл

Образцы кДНК нормировали по контрольному гену GAPDH, кодирующему белок глицеральдегид-3-фосфат-дегидрогеназу. Для этого подбирали количества матриц, обеспечивающих получение равных количеств продукта амплификации на матрице GAPDH в ПЦР с одинаковыми количествами раундов амплификации до наступления насыщения по продукту амплификации. Амплификацию проводили с праймерами GAPDH-for (5'-TTAGCACCCCTGGCCAAGG-3') и GAPDH-rev (5'-CTTACTCCTTGGAGGCCATG-3') в реакции объемом 50 мкл, содержащей 16,6 мМ сульфата аммония, 67 мМ Трис-HCl, рН 8.8, 0.1% Tween 20, 2.5 мМ MgCl₂, 0.125 мМ каждого дезоксинуклеотид трифосфата, 0.4 мМ каждого из праймеров и 1 ед. активности Taq ДНК полимеразы (ГосНИИ Генетика, Россия). ПЦР проводили в следующих условиях; 94°С, 30 с; 58°С, 30 с и 72°С, 40 с. После 24, 27 и 30 циклов отбирали аликвоты реакции.

ПЦР проводили на амплификаторе OmniGene, Hybaid (Великобритания). Продукты амплификации анализировали в 1,8%-ном агарозном геле с 0,5 мкг/мл бромида этидия (см. Фиг.1). В результате были подобраны оптимальные условия ОТ-ПЦР (36-40 циклов), при которых получали увеличение количества продуктов ПЦР с увеличением числа циклов. Все реакции амплификации повторяли трижды.

Интенсивность флуоресценции полос после электрофоретического разделения продуктов ПЦР оценивали визуально.

Амплифицированные фрагменты гена WIF1 клонировали в векторе pCR®-Blunt (Invitogen, США) и секвенировали. Их нуклеотидные последовательности полностью совпадали с последовательностями соответствующего фрагмента кДНК. Секвенирование проводили с помощью набора реактивов ABI PRISM® BigDye™ Terminator v. 3.1 с последующим анализом продуктов реакции на автоматическом секвенаторе ДНК ABI PRISM 3100-Avant.

Пример 6. Определение уровня транскрипции гена WIF1 в образцах нормальных и опухолевых тканей.

Протокол определения уровня транскрипции

1. Приготовить master-mix, смешав все компоненты ПЦР кроме матрицы. Master-mix следует готовить из расчета 2 реакции объемом 25 мкл для каждого образца + 1 дополнительная реакция объемом 25 мкл.

Состав реакционной смеси (25 мкл):

ПЦР-буфер (10х)	5,0 мкл
MgCl2 (25 мМ)	4,0 мкл
dNTP (10 мМ)	1,0 мкл
праймер WIF1_F, 10 мкМ	2,0 мкл
праймер WIF1_R, 10 мкМ	2,0 мкл
кДНК	8,0 мкл
Taq ДНК-полимераза, ((Fermentas, Литва) 5 ед/мкл	0,4 мкл
стерильная деионизованная вода	27,6 мкл

2. В пробирки на 0,6 мл (помеченные для проведения 36 циклов амплификации) добавить по 42 мкл master-mix.

3. Добавить в пробирки по 8 мкл матрицы, перемешать пипетированием несколько раз.

4. Перенести по 25 мкл реакционной смеси в пробирки на 0,6 мл (помеченные для проведения 36 циклов амплификации).

5. В отдельной пробирке (контроль) смешать 21 мкл master-mix и 4 мкл стерильной деионизованной воды.

6. Добавить в каждую пробирку по 1 капле минерального масла (Sigma, США) и закрыть крышки пробирок.

7. Поместить пробирки в амплификатор и провести 36 или 40 циклов реакции амплификации.

8. После завершения реакции амплификации отобрать 10 мкл продуктов амплификации и смешать с 2 мкл краски 6х Orange Loading Dye (Fermentas, Литва). Наносили образцы на 1,8%-ный агарозный гель, содержащий 0,5 мг/л бромида этидия. Также наносили на гель маркер молекулярных масс ДНК, позволяющий оценить размер продуктов амплификации (использовали 50 bp Ladder, производства Fermentas, Литва). Гель-электрофорез проводили в ТВЕ-буфере, содержащем 0.5 мг/л бромида этидия. Длина разделения составляет 3-5 см геля. После гель-электрофореза визуализацию продуктов амплификации и их документирование проводили в ультрафиолете при длине волны 302 нм.

Результаты анализа уровня транскрипции гена WIF1.

Уровень транскрипции WIF1 считался сниженным в опухоли, если после 40 циклов реакции амплификации в опухоли количество продукта не превышало количества продукта после 36 циклов реакции амплификации в условной норме. Достоверность различий в транскрипции WIF1 в опухолях и условных нормах оценивали по точному критерию Фишера. Данные считали достоверными при Р<0,05, где Р - показатель статистической значимости (достоверности) данных.

Нами показано, что в 90% опухолей уровень транскрипции понижен в опухолях по сравнению с условной нормой или отсутствует, в то время как транскрипция не обнаруживается только в 38% прилежащих к ним тканях (Р<0.0001). В восьмидесяти трех процентах (83%) опухолей уровень транскрипции отсутствует, в то время как транскрипция отсутствует лишь в 38% прилежащих к ним тканях (Р=0.0011) (Фиг.2 и Таблица). В четырнадцати из 29-ти образцов транскрипция гена в опухолях практически отсутствует. В двух образцах транскрипция гена существенно понижена. В одном образце транскрипция гена присутствует только в опухоли. В десяти образцах транскрипция гена не обнаружена ни в опухолях, ни в прилежащих к ним тканях. Отсутствие транскрипции гена в образцах ткани, смежной с дисплазией, но морфологически нормальной, показывает возможность распространения опухолевых клеток в нормальные клетки. В двух образцах уровень транскрипции гена в опухолях приблизительно равен уровню в условной норме. Связи между изменением уровня транскрипции гена WIF1, гистологическими различиями и стадиями прогрессии опухоли не обнаружено (Таблица).

Настоящим изобретением также предусмотрено, что определение уровня транскрипции гена WIF1 будет полезным при мониторинге эффективности проводимой противораковой терапии, причем анализ способом настоящего изобретения следует проводить до начала и после окончания курса лечения, а также при необходимости по ходу курса лечения. Повышение уровня транскрипции гена WIF1 по ходу или по завершении курса лечения будет свидетельствовать о восстановлении активности гена-супрессора опухолевого роста WIF1, что может говорить о положительных сдвигах при лечении. Понижение уровня транскрипции гена WIF1 будет свидетельствовать о дальнейшем подавлении активности гена, что может говорить об отсутствии эффективности лечения.

TNM - клинико-морфологическая классификация опухолей:

Т0-Т4 - категории, отражающие местное распространение первичной опухоли; N0-N3 - категории, отражающие различную степень метастатического поражения регионарных лимфатических узлов; М0-М1 - характеризуют наличие отдаленных метастазов. А - отсутствие метастазов, В - поражение одиночных лимфатических узлов, н.д. - нет данных.

Представленное выше подробное описание изобретения и его конкретных воплощений, приведенных в примерах со ссылкой на фигуры, предназначено исключительно для более полного уяснения сущности заявленного изобретения, но не для его ограничения. Специалисту будет ясно, что могут быть сделаны различные изменения, которые, тем не менее, будут соответствовать сущности и объему настоящего изобретения, которые определяются прилагаемой формулой изобретения.

1. Способ диагностики немелкоклеточного рака легких, включающий следующие стадии:

а) получение исходной пары образцов ткани от пациента, где один из образцов берется из предположительно пораженной раком ткани, а второй берется из прилегающей гистологически нормальной (условно-нормальной) ткани;

б) выделение и очистка препаратов РНК из исходной пары образцов;

в) синтез одноцепочечной или двуцепочечной кДНК на матрице РНК с использованием олигонуклеотидных праймеров;

г) нормирование концентрации кДНК WIF1 по контрольному гену, уровень транскрипции которого постоянен в норме и при раке легких;

д) проведение количественной или полуколичественной реакции амплификации фрагмента кДНК WIF1 с использованием кДНК, полученной на стадии в), в качестве матрицы и пары геноспецифичных олигонуклеотидных праймеров с последовательностями SEQ ID NO: 1 и 2;

е) сравнение количества амплифицированного фрагмента кДНК WIF1 для образца, полученного из предположительно пораженной раком ткани, с количеством амплифицированного фрагмента кДНК для образца, полученного из нормальной ткани, где указанные количества амплифицированного фрагмента кДНК отражают уровень транскрипции гена WIF1, причем уменьшение транскрипции гена WIF1 служит диагностическим признаком немелкоклеточного рака легких.

2. Способ по п.1, в котором диагностируют плоскоклеточный рак легких.

3. Способ по п.1, в котором на стадии в) олигонуклеотидные праймеры, используемые для синтеза одноцепочечной или двуцепочечной кДНК, выбирают из числа олиго(dT)-содержащих праймеров, случайных гексамеров или их комбинации, а также геноспецифичных праймеров.

4. Способ по п.1, в котором для амплификации кДНК на стадии д) используют олигонуклеотидные праймеры, подобранные таким образом, что они специфически гибридизуются с кДНК даже в присутствии в препарате примеси геномной ДНК.

5. Способ по п.3, в котором последовательности праймеров представлены SEQ ID NO: 1 и 2.

6. Способ по п.1, в котором на стадии д) количественная или полуколичественная реакция амплификации фрагмента кДНК WIF1 представляет собой полимеразную цепную реакцию (ПЦР) в реальном времени или стандартную полимеразную цепную реакцию с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР).

7. Способ по п.1, в котором на стадии г) в качестве контрольного гена используют ген GAPDH, кодирующий белок глицеральдегид-3-фосфат-дегидрогеназу.

8. Набор праймеров для осуществления полимеразной цепной реакции для определения уровня транскрипции гена WIF1 в способе по п.1, имеющих последовательность SEQ ID NO: 1 и 2.