Инъекционная игла и способ ее использования для подкожных инъекций

Изобретение относится к медицине, в частности к устройствам и способам подкожных инъекций лекарственных препаратов. Инъекционная игла с заостренным рабочим концом, острие которого выполнено в форме поверхности, образованной экспонентой вращения вокруг продольной оси, сопряженной с цилиндрическим корпусом, находится на продольной оси иглы с центральным каналом и боковыми отверстиями со скругленными кромками. Суммарная площадь сечения отверстий равна площади сечения канала иглы. Отверстия выполнены попарно в два ряда под углом 45° к продольной оси иглы друг против друга и смещены в рядах относительно друг друга на 90°. Наружная поверхность иглы выполнена в виде плавных продольных рифлений по диаметру с глубиной рифлений, составляющих 0,2 от величины наружного диаметра иглы, полностью покрыта слоем пористого желатина с единым наружным диаметром слоя. Толщина слоя в самых тонких местах составляет 0,2 от величины наружного диаметра иглы. Способ подкожной инъекции включает обработку спиртом избранного участка кожи; сбор этого участка кожи левой рукой в складку треугольной формы основанием вниз; удержание вторым пальцем правой руки инъекционной иглы, пятым пальцем правой руки поршня, остальными пальцами правой руки цилиндра; быстрое введение иглы в основание треугольника под углом 45° на глубину 1-2 см между первым и вторым пальцами левой руки; медленное введение раствора и быстрое извлечение иглы; после чего протирание спиртом места укола и прижимание к нему на короткое время стерильного ватного тампона, смоченного спиртом. После обработки спиртом участок нагревают до +42°С. Перед сбором кожи пальцы руки согревают до +42°С. Непосредственно перед инъекцией иглу опускают в 96° этиловый спирт при температуре ниже 30°С. Выбранный лекарственный препарат разводят равным объемом раствора 0,9% натрия хлорида, вводят нагретым до +42°С, вводя не более 0,5 мл. Спирт для смачивания тампона используют нагретым до +42°С. Прижатие тампоном осуществляют до полного обескровливания тканей в области медикаментозного инфильтрата под контролем УЗИ, применяя гель и датчик нагретыми до +42°С, на протяжении 6 минут, а при необходимости введения большего объема препарата производят новые инъекции, осуществляя проколы не ближе 1 см друг от друга. Изобретение предотвращает постинъекционные кровоподтеки при сниженной свертываемости крови за счет ускорения закупорки поврежденных сосудов. 2 н.п. ф-лы.

 

Изобретение относится к устройствам и способам инъекций лекарственных препаратов.

Известна инъекционная игла с заостренным рабочим концом, острие которого выполнено на продольной оси иглы с центральным каналом и боковыми отверстиями со скругленными кромками. Острие иглы выполнено в форме поверхности, образованной экспонентой вращения вокруг продольной оси, сопряженной с цилиндрическим корпусом. Отверстия выполнены попарно в два ряда под углом 45° к продольной оси иглы и в рядах смещены относительно друг друга на 90°. Отверстия выполнены друг против друга. Суммарная площадь сечения отверстий равна площади сечения канала иглы (RU 2243000).

Недостатком известной иглы является низкая безопасность инъекций лекарственных средств в условиях недостаточной активности свертывающей системы крови, поскольку при прокалывании кожи, подкожно-жировой клетчатки и других тканей игла вызывает разрыв кровеносных сосудов и обеспечивает свободное вытекание из них крови на протяжении всего периода времени, пока истекающая кровь не свернется и не появится тромб, способный закупорить зияющие сосуды. Кроме этого игла не содержит кровоостанавливающего средства, способного ускорить тромбообразование внутри колотой раны независимо от активности свертывающей системы крови пациента. В этих условиях в тканях на пути прокола их иглой при гемофилии, ДВС-синдроме и других гипокоагуляционых состояниях, либо в норме, но при инъекционном введении в ткани гепарина, лимоннокислого натрия или иных антикоагулянтов прямого действия, возникает длительное внутреннее кровотечение, ведущее к уменьшению объема циркулирующей крови, имбибированию тканей кровью либо к образованию гематомы. Возникшее кровоизлияние сопровождается гемолизом эритроцитов, выходом гемоглобина и окрашиванием межклеточной жидкости первоначально в красный цвет, после чего цвет тканей становится синюшно-красным, синим, а затем - зеленым.

Известен способ подкожных инъекций, включающий обработку спиртом избранного участка кожи, сбор этого участка кожи левой рукой в складку треугольной формы основанием вниз, удержание вторым пальцем правой руки инъекционной иглы, пятым пальцем правой руки поршня, остальными пальцами правой руки цилиндра, быстрое введение иглы в основание треугольника под углом 45° на глубину 1-2 см между первым и вторым пальцами левой руки, медленное введение раствора и быстрое извлечение иглы, после чего протирание спиртом места укола и прижимание к нему на короткое время стерильного ватного тампона, смоченного спиртом (Костина В.В., Меньков Н.В. Уход за больными в терапевтической клинике. - Н.Новгород: Изд-во Нижегородской государственной медицинской академии, 2000. - С.51-53).

Недостатком способа является низкая безопасность инъекций при гемофилии и других синдромах с недостаточной активностью свертывающей системы крови, либо при инъекциях антикоагулянтов прямого действия или инъекциях в охлажденные участки тела. Дело в том, что быстрое введение иглы в основание треугольника под углом 45° на глубину 1-2 см между первым и вторым пальцем левой руки, медленное введение раствора, последующее быстрое извлечение иглы, протирание спиртом места укола и прижимание к нему на короткое время стерильного ватного тампона, смоченного спиртом, создает условия для механического повреждения кровеносных сосудов кожи и подкожно-жировой клетчатки, вызываемое инъекционной иглой, для понижения температурного режима в коже и подкожно-жировой клетчатке за счет прикладывания к коже холодного спирта и инфильтрирования тканей холодными растворами лекарственных средств. Локальная гипотермия дополнительно угнетает сниженную активность свертывающей системы крови. Помимо этого, способ не обеспечивает появление спирта внутри раневого канала на всем его протяжении одновременно с иглой. Поэтому при гемофилии и иных причинах гипокоагуляции способ обеспечивает замедление свертывания крови внутри колотого канала в коже и подкожно-жировой клетчатке и замедление закупоривания тромбами зияющих кровеносных сосудов.

Вследствие ранения сосудов и отсутствия условий, ускоряющих тромбообразование, в подкожно-жировой клетчатке возникает длительное кровотечение, которое формирует кровоподтек или гематому. При этом величина объема крови, истекающей из зияющего сосуда, определяется размером раны кровеносного сосуда, величиной внутрисосудистого давления, температурным режимом в порции истекающей крови и активностью свертывающей системы крови. Учитывая, что при гемофилии, при инъекции терапевтических доз гепарина, при охлаждении тканей ниже 18-20°С, либо при иных причинах гипокоагуляции кровь может полностью лишиться способности к свертыванию, процесс истечения крови в ткань может длиться несколько часов и даже несколько дней. Чрезмерно длительное кровотечение ведет к увеличению величины объема истекающей крови, к снижению объема циркулирующей крови, формированию кровоподтека и даже гематомы. Все это сопровождается симптомами общего и местного воспаления. Воспаление может быть асептическим, а может иметь и инфекционную природу. Дело в том, что излившаяся в ткани кровь гемолизируется, часть гемолизированной крови всасывается и вызывает пирогенную реакцию в организме пациента. Независимо от этого возникшая гематома и/или участок кровоподтека может инфицироваться и к асептическому воспалению может присоединиться воспаление инфекционного характера, что может завершиться абсцессом и даже сепсисом.

Поскольку фармакотерапия болезней нередко требует многократных ежесуточных инъекций на протяжении длительного курсового введения, вероятность повреждения кровеносных сосудов, чрезмерного внутритканевого кровотечения и имбибирования ткани кровью возрастает с каждой последующей инъекцией по мере возрастания числа производимых инъекций по этому способу.

Кроме этого курсовые подкожные инъекции лекарств при гемофилии либо при подкожных инъекциях гепарина независимо от активности свертывающей системы крови, осуществляемые через 4-6-12 часов по данному способу, не исключают очередное инъекционное введение препаратов по неведению или по ошибке в гематому или в участок внутритканевой кровоточивости, которые могли появиться вследствие предыдущей инъекции, поскольку способ не обеспечивает точное инъекционное введение препаратов мимо «кровавых» тканей (тканей, пропитанных кровью).

Все перечисленное приводит к снижению безопасности инъекций и к повышению вероятности развития постинъекционных кровоподтеков при сниженной свертываемости крови.

Задача изобретения - предотвращение постинъекционных кровоподтеков при сниженной свертываемости крови за счет ускорения закупорки поврежденных сосудов.

Поставленная задача достигается за счет предложенной инъекционной иглы и способа подкожной инъекции с ее применением, позволяющих ускорить закупорку поврежденных кровеносных сосудов и предотвратить имбибирование тканей кровью.

Сущность предлагаемой инъекционной иглы с заостренным рабочим концом, острие которого выполнено в форме поверхности, образованной экспонентой вращения вокруг продольной оси, сопряженной с цилиндрическим корпусом, находится на продольной оси иглы с центральным каналом и боковыми отверстиями со скругленными кромками с суммарной площадью сечения, равной площади сечения канала иглы, выполненными попарно в два ряда под углом 45° к продольной оси иглы друг против друга, смещенными в рядах относительно друг друга на 90°, заключается в том, что наружная поверхность иглы выполнена в виде плавных продольных рифлений по диаметру с глубиной рифлений 0,2 от величины наружного диаметра иглы, полностью покрыта слоем пористого желатина с единым наружным диаметром слоя, толщина которого в самых тонких местах составляет 0,2 от величины наружного диаметра иглы.

Сущность предлагаемого способа подкожных инъекций, включающего обработку спиртом избранного участка кожи, сбор этого участка кожи левой рукой в складку треугольной формы основанием вниз, удержание вторым пальцем правой руки инъекционной иглы, пятым пальцем правой руки поршня, остальными пальцами правой руки цилиндра, быстрое введение иглы в основание треугольника под углом 45° на глубину 1-2 см между первым и вторым пальцами левой руки, медленное введение раствора и быстрое извлечение иглы, после чего протирание спиртом места укола и временное прижатие к нему стерильного ватного тампона, смоченного спиртом, заключается в том, что после обработки спиртом участок нагревают до +42°С, перед сбором кожи пальцы руки согревают до +42°С, непосредственно перед инъекцией иглу опускают в 96° этиловый спирт при температуре ниже 30°С, выбранный лекарственный препарат разводят равным объемом раствора 0,9% натрия хлорида, вводят нагретым до +42°С, вводя не более 0,5 мл, спирт для смачивания тампона используют нагретым до +42°С, прижатие тампоном осуществляют до полного обескровливания тканей в области медикаментозного инфильтрата под контролем УЗИ, применяя гель и датчик нагретыми до +42°С, на протяжении 6 минут, а при необходимости введения большего объема препарата производят новые инъекции, осуществляя проколы не ближе 1 см друг от друга.

Нагревание выбранного участка до +42°С, осуществляемое после обработки кожи ваткой, смоченной этиловым спиртом, обеспечивает надежное сохранение достигнутой локальной гипертермии в момент прокола тканей иглой. Повышение температуры тканей до указанного уровня гипертермии обеспечивает эффективность гемостаза при случайном ранении кровеносных сосудов, поскольку гипертермия ускоряет свертывание крови. При этом нагревание кожи и подкожно-жировой клетчатки до +42°С исключает термический ожог. Нагревание тканей до инъекции обеспечивает высокую эффективность внутритканевого свертывания крови, изливающейся из ран кровеносных сосудов, поскольку температура ее повышается.

Согревание пальцев руки до +42°С перед сбором кожи обеспечивает сохранность достигнутой локальной гипертермии в выбранном участке и способствует ускорению внутритканевого свертывания крови, изливающейся из кровеносных сосудов при их ранении инъекционной иглой.

Опускание иглы непосредственно перед инъекцией в этиловый спирт 96° при температуре ниже +30°С обеспечивает пропитывание спиртом слоя пористой желатины при сохранении ее упругих свойств, поскольку кратковременное смачивание желатины 96° спиртом этиловым исключает ее набухание, а указанный температурный режим исключает ее плавление. Пропитывание капилляров спиртом происходит за счет «капиллярного эффекта», происходящего под влиянием силы поверхностного натяжения с участием процесса смачиваемости внутренней поверхности капилляров. Введение в ткани иглы, покрытой слоем пористой желатины, пропитанной этиловым спиртом, обеспечивает доставку спирта на всю глубину прокола и прижигающее его действие на всем протяжении раневого канала, созданного иглой. Доставка спирта обеспечивается за счет первоначальных упругих свойств желатины, необходимых для сохранения упругости пористой желатины, высвобождение спирта в тканях обеспечивается последующим быстрым таянием желатины в подкожно-жировой клетчатке, нагретой до +42°С, поскольку желатина плавится при нагревании выше +30°С. Плавление желатины и высвобождение спирта обеспечивается предварительным нагреванием области инъекции, пальцев рук человека, формирующего кожную складку, и последующим введением через иглу препарата, подогретого до +42°С. Сразу после прокола тканей происходит быстрое согревание слоя пористой желатины, пропитанной спиртом. При этом желатина плавится и инъекционная игла внутри тканей оказывается окруженной со всех сторон на всем своем протяжении слоем спирта, который сворачивает все белковые ткани, включая кровь, появившуюся при случайном ранении сосудов. Поэтому при ранении кровеносных сосудов кожи и подкожно-жировой клетчатки, происходящем при их прокалывании, вытекающая из них кровь даже при гемофилии сворачивается при взаимодействии со спиртом посредством денатурации. Процесс свертывания крови имеет неестественный, денатурирующий характер, не зависит от активности ее свертывающей системы, поскольку обусловлен моментальным уплотнением белков за счет физико-химических процессов. Поэтому взаимодействие спирта этилового с кровью в раневом канале при гемофилии, охлаждении области инъекции или других состояниях, вызывающих гипокоагуляцию, ускоряет свертывание крови.

Введение выбранного лекарственного препарата разведенным в 2 раза раствором 0,9% натрия хлорида обеспечивает эффективное снижение местной токсичности лекарственных средств за счет уменьшения конценртрации компонентов в 2 раза без чрезмерного увеличения объема вводимого препарата.

Введение препарата нагретым до +42°С обеспечивает плавление желатины и ускорение свертывания крови, излившейся из раненных сосудов в ткани.

Введение каждый раз не более 0,5 мл разведенного препарата обеспечивает высокую локальную безопасность инъекции для инфильтрированных тканей за счет снижения дозы вводимого препарата и за счет укорочения продолжительности рассасывания медикаментозного инфильтрата в подкожно-жировой клетчатке.

Использование спирта для смачивания тампона нагретым до +42°С обеспечивает сохранение локальной гипертермии после прикладывания тампона к коже в месте инъекции.

Прижатие тампоном места инъекции до полного обескровливания тканей в области медикаментозного инфильтрата обеспечивает остановку истечения крови из зияющих сосудов (за счет их механического сдавливания) в случае их ранения, что повышает эффективность предотвращения постинъекционных кровоподтеков.

Осуществление давления на ткани под контролем УЗИ с применением геля и датчика нагретыми до +42°С обеспечивает достижение полного обескровливания инфильтрированного участка при сохранении в нем локальной гипертермии, что повышает эффективность способа.

Сохранение высокого внутритканевого давления и обескровливания в области медикаментозного инфильтрата на протяжении 6 минут обеспечивает удаление из инфильтрированных тканей не менее половины введенного объема препарата за счет ускорения рассасывания в условиях гипертермии и повышенного внутритканевого давления, а также предотвращает кровоизлияние из раненых сосудов и взаимодействие ее чрезмерно больших объемов со спиртом и с вводимым лекарственным препаратом.

Производство новых и повторных инъекций путем осуществления проколов не ближе 1 см друг от друга повышает безопасность способа, поскольку за счет снижения в каждом отдельном участке подкожно-жировой клетчатки количества лекарственного препарата ниже критического значения, что исключает появление в локальном участке подкожно-жировой клетчатки чрезмерного количества препарата, что в итоге предотвращает постинъекционное повреждение подкожно-жировой клетчатки.

Дело в том, что при проколах и инъекциях, осуществляемых не ближе 1 см друг от друга, исключается контакт и перекрывание центральных зон соседних медикаментозных инфильтратов, что исключает суммирование вводимых доз препарата и превышение критического уровня в местах слияния отдельных зон постинъекционных медикаментозных инфильтратов подкожно-жировой клетчатки, что, в свою очередь, предотвращает развитие постинъекционного повреждения подкожно-жировой клетчатки.

Сдавливание тканей, инфильтрированных лекарственным препаратом, производимое под контролем УЗИ до их обескровливания на протяжении всего периода рассасывания медикаментозного инфильтрата, обеспечивает полное механическое пережатие просвета сосудов и выдавливание из них крови с ее перемещением внутри сосудистого русла в область пониженного внутритканевого давления. Исключение вытекания крови в раневой канал и в ткани, его окружающие, из травмированных кровеносных сосудов независимо от закупорки их тромбами, вызванными спиртовой денатурацией крови, исключает локальное взаимодействие вводимых растворов лекарственных средств с порцией крови, истекающей из раненных сосудов. Это препятствует медикаментозному разведению истекшей крови, уменьшению в ней концентрации всех факторов свертывания, включая суммарную концентрацию белков, стабилизирует процесс внутритканевого гемостаза, способствует уплотнению возникших тромбов и окончательной закупорке ими раненых сосудов.

Устройство работает следующим образом: после обработки этиловым спиртом участка кожи, выбранного для подкожной инъекции, обработанный участок нагревают до +42°С, например, посредством прикладывания к нему дна стеклянного стакана с жидкостью, нагретой до +50°С. Одновременно с этим пальцы руки, используемые для сбора кожи перед инъекцией, согревают до +42°С путем опускания их, например, в нагретый до +50°С раствор антисептика, такой, например, как раствор 10% натрия хлорида, который может быть налит в указанный стакан, используемый одновременно для согревания выбранного участка. Одновременно с этим разводят препарат в 2 раза раствором 0,9% натрия хлорида и производят согревание готового средства до +42°С. Для этого ампулы с раствором 0,9% натрия хлорида и с выбранным лекарственным средством могут быть помещены в этот же стакан с нагретым антисептиком. До этого согревают шприц с обычной инъекционной иглой, путем предварительного помещения их в термический шкаф, в котором шприцы с обычными иглами хранятся при температуре +42°С, и набирают в теплый шприц теплое лекарство с помощью обычной теплой иглы, которую затем заменяют на разработанную инъекционную иглу. Контроль согревания пальцев руки, лекарственного препарата в ампуле, а также шприца, обычной инъекционной иглы, лекарственного средства внутри шприца и спирта, используемого для смачивания тампона, до требуемого температурного режима, может быть осуществлен с помощью визиографа. Затем, после того как теплый щприц будет заполнен теплым лекарством, например раствором гепарина, разведенным в 2 раза раствором 0,9% натрия хлорида, и к нему будет присоединена разработанная инъекционная игла, иглу непосредственно перед инъекцией опускают в 96° этиловый спирт при температуре ниже +30°С, например при комнатной температуре (которая составляет обычно +24-+26°С), после чего производят прокол тканей. После удаления иглы из тканей место инъекции сдавливается ватным тампоном, смоченным этиловым спиртом, нагретым до +42°С. Нагревают гель и датчик ультразвукового прибора до +42°С и применяют их нагретыми для визуализации с помощью УЗИ подкожно-жировой клетчатки в месте инъекции для контроля эффективности сдавливания тканей тампоном вплоть до их полного обескровливания на протяжении 6 минут.

Пример 1. Пациентке Ю. 19 лет при тромбозе глубоких вен голеней в клинических условиях было назначено с профилактической целью подкожно по 1000 ME с интервалом 8 часов в переднюю латеральную стенку живота с использованием тонкой длинной иглы для подкожных инъекций. Для осуществления первой инъекции взяли шприц, присоединили к нему длинную тонкую иглу для подкожных инъекций, набрали в шприц 1000 ME гепарина натрия (раствора для инъекций), выбрали участок передней латеральной стенки живота справа, обработали его этиловым спиртом 96°, собрали этот участок с помощью большого и указательного пальцев левой руки в складку треугольной формы основанием вниз, затем удерживая вторым пальцем правой руки инъекционную иглу, пятым пальцем правой руки поршень, остальными пальцами правой руки цилиндр, ввели иглу в основание треугольника под углом 45° на глубину 1,5 см между первым и вторым пальцами левой руки, медленно ввели раствор гепарина и быстро извлекли иглу. После этого протерли спиртом место укола и прижали к нему на короткое время стерильный ватный тампон, смоченный спиртом. Перед 2-й инъекцией, назначенной через 8 часов после первой, было выявлено наличие кровоизлияния в коже и подкожно-жировой клетчатке округлой формы с диаметром около 1,5 см в области инъекции. В связи с этим для подкожных инъекций решено было применить иную инъекционную иглу и иной способ подкожных инъекций.

Несколько ампул с гепарином натрия, раствором 0,9% натрия хлорида и шприцов с обычными инъекционными иглами поместили в термостат и нагрели их до +42°С, обработали спиртом выбранный участок передней латеральной стенки живота слева, приложили к этому участку дно стеклянного стакана, наполненного нагретым до +50°С раствором 10% натрия хлорида, опустили в стакан указательный и большой пальцы левой руки, контролируя с помощью визиографа марки ThermoTracer TH9100 PMVI-WL фирмы NEK температурный режим выбранного участка тела пациентки, добиваясь их нагревания до +42°С, после чего стакан убрали с живота. Набрали в теплый шприц 0,2 мл (1000 ME) теплого раствора гепарина натрия из ампулы и 0,2 мл теплого раствора 0,9% натрия хлорида из ампулы с помощью обычной теплой иглы, которую после этого заменили на разработанную инъекционную иглу диаметром 1 мм, имеющую 3 продольных рифления (углубления) по диаметру с глубиной каждого рифления 0,2 мм, покрытую слоем пористой желатины с единым наружным диаметром 1,2 мм. Затем собрали теплыми пальцами руки складку кожи в выбранном участке, перед инъекцией иглу опустили в спирт, тут же произвели прокол на глубину 1,5 см, медленно ввели 0,4 мл разведенного раствора гепарина натрия (1000 ME), после чего удалили иглу, смочили этиловым спиртом 96° при +42°С ватный тампон и с его помощью сильно сдавили место инъекции теплыми пальцами левой руки. Нагрели датчик ультразвукового аппарата «ALOKA 1000» и специальный гель, используемый для УЗИ-визуализации, до +42°С, нанесли нагретый гель на кожу в области инъекции месте, приложили к этому участку кожи датчик и с помощью аппарата УЗИ визуализовали подкожно-жировую клетчатку в области инъекции и под контролем УЗИ добились полного его обескровиливания, сохраняя обескровливание на протяжении 6 минут путем сохранения соответствующего давления тампоном на ткани.

Наблюдение за местом инъекции в последующем не выявило кровоизлияния и дальнейшие подкожные инъекции гепарина натрия по 1000 ME были осуществлены по предложенному способу с применением предложенной инъекционной иглы, покрытой пористым желатином и смоченной этиловым спиртом. Курс фармакотерапии завершился без местных побочных эффектов, и пациентка была выписана в удовлетворительном состоянии.

Пример 2. Пациентке И. 40 лет при тромбоэмболии правой легочной артерии в клинических условиях по жизненным показаниям были назначены подкожные инъекции по 5000 ME (1 мл) гепарина натрия (раствора для инъекций) с интервалом 4 часа в переднюю латеральную стенку живота с использованием тонкой длинной иглы для подкожных инъекций. Для осуществления первой инъекции взяли шприц, присоединили к нему длинную тонкую иглу для подкожных инъекций, набрали в шприц 5000 ME (1 мл) гепарина натрия, выбрали участок передней латеральной стенки живота справа, обработали его этиловым спиртом 96°, собрали этот участок с помощью большого и указательного пальцев левой руки в складку треугольной формы основанием вниз, затем, удерживая вторым пальцем правой руки инъекционную иглу, пятым пальцем правой руки поршень, остальными пальцами правой руки цилиндр, ввели иглу в основание треугольника под углом 45° на глубину 2 см между первым и вторым пальцами левой руки, медленно ввели раствор гепарина и быстро извлекли иглу. После этого протерли спиртом место укола и прижали к нему на короткое время стерильный ватный тампон, смоченный спиртом. Перед 2-й инъекцией, назначенной через 4 часа после первой, было выявлено наличие кровоизлияния в коже и подкожно-жировой клетчатке округлой формы с диаметром около 2 см в области инъекции. В связи с этим для подкожных инъекций решено было применить разработанную инъекционную иглу, покрытую пористым желатином, смоченным спиртом, и разработанный способ подкожных инъекций с ее применением.

Для этого в термостат при +42°С поместили несколько ампул с гепарином натрия, раствором 0,9% натрия хлорида и шприцов с обычными инъекционными иглами, нагрели их до +42°С, обработали спиртом выбранный участок передней латеральной стенки живота слева, приложили к этому участку дно стеклянного стакана, наполненного нагретым до +50°С раствором 10% натрия хлорида, опустили в стакан указательный и большой пальцы левой руки, контролируя с помощью визиографа марки ThermoTracer TH9100 PMVI-WL фирмы NEK температурный режим выбранного участка тела пациентки, добиваясь их нагревания до +42°С, после чего стакан убрали. Набрали в теплый шприц 1 мл (5000 ME) теплого раствора гепарина натрия из ампулы и 1 мл теплого раствора 0,9% натрия хлорида из ампулы с помощью обычной теплой иглы, которую после этого заменили на разработанную инъекционную иглу, покрытую слоем пористой желатины. Затем собрали теплыми пальцами руки складку кожи в выбранном, обработанном спиртом и нагретом участке, непосредственно перед инъекцией иглу опустили в 96° этиловый спирт при температуре +42°С, тут же произвели прокол на глубину 2 см, медленно ввели 0,5 мл разведенного раствора гепарина натрия (1000 ME), после чего удалили иглу, смочили этиловым спиртом 96° при +42°С ватный тампон и с его помощью сильно сдавили место инъекции теплыми пальцами левой руки. Нагрели датчик ультразвукового аппарата «ALOKA 1000» и специальный гель, используемый для УЗИ-визуализации, до +42°С, нанесли нагретый гель на кожу в области инъекции месте, приложили к этому участку кожи датчик и с помощью аппарата УЗИ визуализовали подкожно-жировую клетчатку в области инъекции и под контролем УЗИ добились полного его обескровиливания, сохраняя обескровливание на протяжении 6 минут путем сохранения соответствующего давления тампоном на ткани.

Затем повторили очередные аналогичные инъекции по 0,5 мл разведенного гепарина, выбирая места для очередных инъекций на расстоянии, не ближе 1 см от предыдущих проколов.

Наблюдение за местами инъекций в последующем не выявило кровоизлияния и дальнейшие подкожные инъекции гепарина натрия по 5000 ME были осуществлены по предложенному способу с применением предложенной инъекционной иглы, покрытой пористым желатином и смоченной этиловым спиртом. Курс фармакотерапии завершился без местных побочных эффектов, и пациентка была выписана в удовлетворительном состоянии.

1. Инъекционная игла с заостренным рабочим концом, острие которого выполнено в форме поверхности, образованной экспонентой вращения вокруг продольной оси, сопряженной с цилиндрическим корпусом, находится на продольной оси иглы с центральным каналом и боковыми отверстиями со скругленными кромками с суммарной площадью сечения, равной площади сечения канала иглы, выполненными попарно в два ряда под углом 45° к продольной оси иглы напротив друг друга смещенными в рядах относительно друг друга на 90°, отличающаяся тем, что наружная поверхность иглы выполнена в виде плавных продольных рифлений по диаметру с глубиной рифлений, составляющих 0,2 от величины наружного диаметра иглы, полностью покрыта слоем пористого желатина с единым наружным диаметром слоя, толщина которого в самых тонких местах составляет 0,2 от величины наружного диаметра иглы.

2. Способ подкожной инъекции, включающий обработку спиртом избранного участка кожи, сбор этого участка кожи левой рукой в складку треугольной формы основанием вниз, удержание вторым пальцем правой руки инъекционной иглы, пятым пальцем правой руки поршня, остальными пальцами правой руки цилиндра, быстрое введение иглы в основание треугольника под углом 45° на глубину 1-2 см между первым и вторым пальцами левой руки, медленное введение раствора и быстрое извлечение иглы, после чего протирание спиртом места укола и прижимание к нему на короткое время стерильного ватного тампона, смоченного спиртом, отличающийся тем, что после обработки спиртом участок нагревают до +42°С, перед сбором кожи пальцы руки согревают до +42°С, непосредственно перед инъекцией иглу опускают в 96° этиловый спирт при температуре ниже 30°С, выбранный лекарственный препарат разводят равным объемом раствора 0,9% натрия хлорида, вводят нагретым до +42°С, вводя не более 0,5 мл, спирт для смачивания тампона используют нагретым до +42°С, прижатие тампоном осуществляют до полного обескровливания тканей в области медикаментозного инфильтрата под контролем УЗИ, применяя гель и датчик нагретыми до +42°С, на протяжении 6 мин, а при необходимости введения большего объема препарата производят новые инъекции, осуществляя проколы не ближе 1 см друг от друга.