Способ культивирования каланоидных копепод calanus euxinus (черноморского калянуса)



Способ культивирования каланоидных копепод calanus euxinus (черноморского калянуса)
Способ культивирования каланоидных копепод calanus euxinus (черноморского калянуса)

 


Владельцы патента RU 2541458:

Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского (RU)

Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) относится к области морской аквакультуры и может быть использован для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской токсикологии, а также при выращивании личинок ценных морских рыб.

В способе, отловленных из природных условий самок калянуса выдерживают в дезинфекционном растворе при температуре 15°С в течение 1,5 часов с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata, после чего осуществляют процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц, получают синхронную массовую продукцию яиц, из которых производят синхронный выклев науплиев и получают синхронные возрастные когорты калянуса.

Преимущества способа заключаются в том, что впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования яиц самками калянусов, развития и выклева яиц калянусов, развития и роста молоди калянусов до достижения последней жизненной стадии. Проведение дезинфекции яиц позволяет освободиться от патогенных микроорганизмов, влияющих как на выживаемость самих калянусов, так и при использовании их в качестве живых кормов на выживаемость личинок рыб. Предлагаемый способ позволяет осуществлять предварительную оценку количества и качества получаемого материала.

 

Предполагаемое изобретение относится к области морской аквакультуры и может быть использовано для проведения экспериментальных работ по морской биологии, физиологии и биохимии и для биологического тестирования в области морской токсикологии, а также в качестве живых кормов при выращивании личинок ценных морских рыб.

Каланоидные копеподы являются важным компонентом морской пищевой цепи и наиболее полноценным живым кормом как для личиночных, так и взрослых стадий морских рыб. Поэтому разработка способа их культивирования с целью получения массового количества однородных организмов, выращенных в заданных условиях среды, характеризующихся однородным возрастным и биохимическим составом, важна как для проведения достоверных экспериментальных работ в области морской биологии, экологии, физиологии, биохимии, биологического тестирования, так и для разработки методов выращивания полноценной здоровой молоди ценных пород морских рыб (например, камбалы калкана).

До настоящего времени не разработан ни один способ массового культивирования черноморских каланоидных копепод Calanus euxinus из яйца до половозрелого организма.

Известен способ выращивания близкородственного атлантического вида каланоидных копепод Calanus helgolandicus {см. Paffenhofer G.-A. Cultivation of Calanus helgolandicus under controlled conditions // Helg. wiss Meeresunters. - 1970. - 20. - P. 346-359). Способ предусматривает отлов из морских акваторий диких самок калянуса и одноразовое получение от них яиц при температуре 15°С. Для кормления науплиев калянуса в 1-2 л цилиндры вносят морские микроводоросли - диатомовые Lauderia borealis, Skeletonema costatum, Chaetoceros curvisteus, и динофлагелляты Gymnodinium splendens. Для минимального времени достижения половозрелости от яйца рекомендуется поддерживать концентрации микроводорослей около 100 мкг С/л. Плотность калянусов от выклева из яйца до копеподита С1 снижают от 0,33 до 0,023 экз/мл.

Известный способ имеет ряд существенных недостатков.

Основными недостатком является невозможность предварительной оценки количества и качества получаемого материала - науплиев калянусов из яиц, полученных от самок калянусов, развивавшихся в естественных условиях. Во-первых, количество яиц, производимых самками калянуса из естественных условий, непредсказуемо, так как зависит от количества и качества их питания во внешней среде. Во-вторых, при использовании известного способа непредсказуем процент жизнеспособных яиц, и, следовательно, процент жизнеспособных науплиев, так как питание самок в естественных условиях неконтролируемо, а из литературных и собственных экспериментальных данных известно, что даже при высокой продуктивности яиц, процент жизнеспособных науплиев калянуса зависит от качественного состава пищи самок. В-третьих, при получении яиц от самок не производится дезинфекция яиц и, таким образом, из внешней среды переносятся патогенные микроорганизмы, влияющие как на выживаемость самих калянусов, так и, при использовании их в качестве живых кормов, на выживаемость личинок рыб.

В основу «Способа культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса)» поставлена задача путем разработки новой технологии культивирования, обеспечить получение синхронной массовой популяции калянуса, состоящей из особей однородного возрастного, размерного и биохимического состава за определенный срок.

Поставленная задача достигается тем, что отловленных самок выдерживают в дезинфекционном растворе при температуре 15°С в течение 1,5 часов с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata, после чего осуществляют процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц, получают синхронную массу яиц, из которых производят синхронный выклев науплиев и получают синхронные возрастные когорты калянуса.

Синхронная культура калянусов необходима для получения массового количества калянусов (науплиальных или копеподитных стадий) заданного возраста (размера, биохимического состава). В течение жизненного цикла калянус проходит 6 науплиальных (личиночных, обозначаемых N1-N6), 5 - копеподитных стадий (C1-С5) и одну, последнюю, 12 жизненную стадию - взрослый калянус (самка или самец, обозначаемую С6♀ или С6♂). Переход от одной стадии к другой осуществляется в результате морфологических изменений, нарастания массы и размеров тела и смены покровов (линьки). После перехода (линьки) в стадию С6, калянус достигает терминальных размеров тела, и линек больше не происходит. В дальнейшем может происходить только прирост биомассы калянуса, например, за счет отложения запасных веществ и формирования генеративной продукции (яиц). Сроки достижения (прохождения очередной линьки) каждой последующей стадии калянуса обусловлены эндогенными (запрограммированными генетически) механизмами процессов и зависят от комплекса модифицирующих их температурных и трофических условий содержания организмов.

Способ реализуется следующим образом.

1) Получение самок калянуса

2) Процедура подготовки самок калянуса для синхронизации массового получения яиц.

3) Процедура получения синхронной массы яиц калянуса.

4) Процедура синхронного выклева науплиев из яиц.

5) Получение синхронных возрастных когорт калянуса Пример реализации способа

Получение самок калянуса. В ноябре 2003 г. производили траления зоопланктонной сетью на глубинах от 40 до 0 м. Полученные зоопланктонные пробы доставляли в лабораторные помещения. Половозрелых самок калянуса отделяли от основной массы планктона и помещали в дезинфекционный раствор, приготовленный на основе морской воды стандартной черноморской солености 17,5-18,5 ‰, стерилизованной путем механической фильтрации (через ряд последовательных картриджных фильтров 10, 5, 1 мкм) и обработки ультрафиолетом. Самок ыпри температуре 15°С выдерживали в дезинфекционном растворе с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata (syn. Prorocentrum minimum) в течение 1,5 часов.

Подготовка самок калянуса для синхронизации получения яиц. Самок калянусов промывали стерильной морской водой и помещали в контейнеры со стерильной морской водой при минимальном объеме 10 мл на самку при температуре 7±1°С. В таких условиях самок содержали от 1 до 14 суток, при условии ежедневной подмены 0,1 объема воды. В процессе содержания при низкой температуре возрастной состав у самок калянусов, готовых к вымету гамет, синхронизировался.

Получение яиц калянуса. Для перевода самок в режим размножения разбавляли среду, в которой находились самки, стерильной морской водой до 100 мл на особь, и переносили сосуды на рассеянный свет (оптимум 500 люкс) при температуре 15±1°С с добавлением оптимального для производства яиц и жизнеспособности науплиев корма - микроводоросли Exuviaellla cordata в концентрации 5·104 кл/мл.

Через 24 часа получали до 10-30 яиц на самку в сутки, в зависимости от исходного состояния половозрелой самки. Яйца калянусов получали ежесуточно на протяжении от 14 до 30 суток (в зависимости от качества исходного материала), после чего самок калянусов заменяли новой партией.

Выклев науплиев из яиц. Яйца, которые были отделены с помощью сита с размером ячей 70 мкм, обрабатывали дезинфицирующим раствором в течение 30 мин и переносили в инкубаторы со стерильной морской водой при плотности 10 экз/мл. При температуре 16±1°С через сутки из яиц происходил массовый выклев первых науплиальных стадий калянусов. Жизнеспособные науплии составляли до 95% от общей массы собранных яиц. При необходимости, выклев науплиев из собранных яиц задерживали на сутки путем временного перемещения яиц сразу после сбора в темноту при температуре 7±1°С.

Получение синхронных возрастных когорт калянуса. Из общей массы жизнеспособных науплиев отбирали необходимую для проведения экспериментов партию науплиев, которых переводили на подращивание до необходимой стадии развития (размерной группы). Науплиев при плотности 5 экз/мл помещали в стерильную морскую воду соленостью 18‰ при температуре 17±1°С и освещенности 1000 - 2000 люкс. Для стабилизации среды добавляли примнезиофитовые микроводоросли Isochrysis galbana (клон T-Iso) (экспоненциальная фаза роста), в концентрации 103 кл/мл. Через сутки науплии проходили первую линьку и переходили на вторую науплиальную стадию N2 (первую питающуюся стадию). В качестве корма науплиям добавляли 105 кл/мл (0.9 мкг С мл-1) T-Iso. Такую концентрацию корма поддерживали до четвертых суток после выклева.

В конце четвертых суток после выклева, когда 50% науплиев переходили на четвертую науплиальную стадию N4, состав корма модифицировали: к 4,5 104 кл/мл Т-Iso добавляли 0,5 104 кл/мл динофлагеллят Exuviaella cordata (Exu), т.е. в соотношении концентрации клеток 4:1. В совокупности эта концентрация клеток смеси кормовых микроводорослей составляла 5104 кл/мл.

Ежедневно на протяжении науплиального периода объем стерильной воды увеличивали вдвое для снижения плотности науплиев и корректировали концентрацию микроводорослей. На протяжении 7-8 сут после выклева из яиц происходило 5 последовательных науплиальных линек, приводящих к получению последней шестой науплиальной стадии N6.

Со второй недели культивирования (8-10 сут после выклева) происходил массовый переход от науплиальных к копеподитным стадиям калянуса. Морскую воду, в которой находились калянусы, меняли на 75% и доводили до объема, который соответствовал 20 мл на 1 копеподита С1. К началу копеподитного периода когорты калянуса плотность организмов в культуре составляла не более 0.05 экз/мл. Объем воды ежесуточно подменяли на 0.2 объема и производили постепенное разбавление плотности калянусов, таким образом, чтобы к 15 сут на 1 калянуса приходилось 80 мл среды. Концентрацию микроводорослей в культуре калянусов с 9 до 15 сут поддерживали на уровне 3104 кл/мл смеси микроводорослей T-Iso и Exu в соотношении концентрации клеток 2:1.

Начиная с 15 сут (копеподитной стадии СЗ) по 18 сут после выклева из яйца, калянусов кормили смесью динофлагеллят: 5.103 кл/мл Exu, и 103 кл/мл Prorocentrum micans (Pmc). Совокупная концентрация клеток этих видов микроводорослей в культуре калянуса составляла 6103 кл/мл смеси при соотношении видов 5:1.

С 18 сут после выклева из яйца (при переходе к четвертой копеподитной стадии С4) калянусов продолжали кормить смесью Exu и Pmc, но соотношение концентраций клеток смещали в сторону более крупных клеток (3:1), которая составила в совкупности 4103 кл/мл.

С 21 сут после достижения пятой копеподитной стадии (С5), калянуса кормили исключительно Рте, концентрацию клеток которого поддерживали на уровне 2103 кл/мл до достижения стадии взрослого калянуса (С6), т.е. на 28-31 сутки выращивания калянуса от яйца.

В результате получили следующие временные когорты калянуса (табл.1).

Таблица 1.

Размерный состав культивируемых когорт черноморского калянуса, изменялся от 212.5±12.5 до 3100±300 цм соответственно стадиям развития (N1 до С6) в усредненные сроки получения их (от 1 до 28 - 31 сут) при приведенных стандартных трофических условиях и плотности культивирования, при стандартной температуре культивирования (17±1°С). Размер (в микронах) соответствует для яйца - его диаметру; для возрастных стадий калянуса - его общей длине.

Минимальное время генерации от выклева из яйца до достижения стадии С6 при оптимальном питании составило 30 сут (при среднесуточной температуре 17±1°С), максимальное - 60 сут (при среднесуточной температуре 9±1°С). Максимальная выживаемость от стадии яйца до взрослого калянуса при применении предлагаемого способа культивирования - 50%.

Заявляемый способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) обладает рядом преимуществ:

впервые предложены оптимальные температурные, трофические и плотностные

условия для синхронизации и стандартизации процессов продуцирования яиц самками калянусов, развития и выклева яиц калянусов, развития и роста молоди калянусов до достижения последней жизненной стадии;

проведение дезинфекции яиц позволяет освободиться от патогенных микроорганизмов, влияющих как на выживаемость самих калянусов, так и при использовании их в качестве живых кормов на выживаемость личинок рыб; предлагаемый способ позволяет осуществлять предварительную оценку количества и качества получаемого материала.

1. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса), включающий отлов самок, получение от них яиц и науплиев в искусственных условиях, кормление морскими микроводорослями, отличающийся тем, что отловленных самок выдерживают в дезинфекционном растворе при температуре 15°С в течение 1,5 часов с добавлением микроводорослей Exuviaella cordata, после чего осуществляют процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц, получают синхронную массу яиц, из которых производят синхронный выклев науплиев и получают синхронные возрастные когорты калянуса.

2. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по п. 1, отличающийся тем, что процедуру подготовки для синхронизации массового получения яиц осуществляют путем помещения самок в контейнеры со стерильной морской водой с температурой 7±1°С и выдерживания от 1 до 14 суток при условии ежедневной подмены 0,1 объема воды.

3. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по п. 1, отличающийся тем, что для получения синхронной массы яиц емкости с самками помещают на рассеянный свет при температуре 15±1°С и добавляют микроводоросли Exuviaellla cordata в концентрации 5∙104 кл/мл.

4. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по п. 1, отличающийся тем, что для синхронного выклева науплиев яйца обрабатывают дезинфицирующим раствором и помещают в инкубаторы со стерильной морской водой с температурой 16±1°С при плотности 10 экз/мл.

5. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по п. 1, отличающийся тем, что синхронные возрастные когорты калянуса получают путем подращивания до необходимой стадии развития в течение 1-30 суток.

6. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что науплиев при плотности 5 экз/мл помещают в стерильную морскую воду соленостью 18‰ при температуре 17±1°С и освещенности 1000 - 2000 люкс и на 2-е сутки добавляют примнезиофитовые микроводоросли Isochrysis galbana (клон T-Iso) в концентрации 103 кл/мл, доводя до 105 кл/мл на 4-е сутки.

7. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что при подращивании до четвертой науплиальной стадии N4 корм состоит из T-Iso и динофлагеллят Exuviaella cordata (Exu) в соотношении 4:1.

8. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что на 8-10-е сутки производят замену морской воды на 75% и доводят до объема 20 мл на 1 копепо дита С1 при плотности не более 0.05 экз/мл, а к 15-м суткам разбавление плотности доводят до 80 мл среды на 1 экз., при этом корм состоит из смеси микроводорослей T-Iso и Exu в соотношении 2:1.

9. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что с 15 по 18 сутки (копеподитная стадия СЗ) калянусов кормят смесью динофлагеллят Exu, и Prorocentrum micans (Pmc) при соотношении 5:1.

10. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что с 18 суток (при переходе к четвертой копеподитной стадии С4) калянусов кормят смесью Exuviaella cordata и Prorocentrum micans при соотношении 3:1.

11. Способ культивирования каланоидных копепод Calanus euxinus (черноморского калянуса) по пп. 1, 5, отличающийся тем, что с 21 по 30 сутки (копеподитная стадия С5-С6) калянуса кормят Prorocentrum micans при концентрации клеток 2·103 кл/мл.



 

Похожие патенты:
Способ мелиорации прибрежных экосистем относится к морской биотехнологии и предназначен для ликвидации негативных последствий антропогенного влияния на прибрежные морские экосистемы. В способе определяются основные параметры, отражающие негативное состояние района, акватории, сообщества, экосистемы, например переэфтрофикация среды, дисбаланс биогенов, недостаток организмов-фильтраторов, дефицит меро- или ихтиопланктона.
Способ предусматривает обработку икры и личинок рыб биологически активными веществами, содержащими микробную массу бактерий. До нереста в состав ежедневного рациона для производителей вводят пробиотик "Пролам" в количестве 0,6% по отношению к массе корма.

Изобретение относится к культивированию двустворчатых моллюсков с планктонной личинкой. Способ предусматривает сбор и содержание в искусственных условиях взрослых моллюсков, стимулирование нереста, оплодотворение яиц, содержание развивающихся яиц до момента выплыва личинок, отбор и рассаживание личинок по отдельным емкостям и доращивание личинок в морской воде.

Изобретение относится к аквакультуре и может найти применение для искусственного разведения рыб в условиях малых рыбоводных предприятий. Способ защиты рыб на ранних этапах онтогенеза осуществляют обработкой масляным раствором серусодержащего антиоксиданта (3,5-диметил-4-гидрокси)бензилтиододекан в процессе обесклеивания оплодотворенной икры.

Изобретение относится к области насосной техники и используется для перекачки живой взрослой рыбы, личинок и молоди с потоком воды в рыбоотводах рыбозащитных сооружений и при промышленном лове рыбы.
Способ предусматривает прием однодневных личинок и высаживание их с плотностью посадки 5000 экз./м2 в садки, где личинки проходят адаптацию. После перехода личинок на активное питание плотность посадки уменьшают до 1500 экз./м2, при этом до достижения средней массы тела рыб 1 г в садке используют стенки из сита №9-12, а дно из сита №17.
Способ предусматривает круглогодичное регулирование температурных режимов и их длительности с изменением температуры воды на 1-2°C в сутки. Производителям осетровых рыб в период выращивания и межнерестового нагула вводят путем внутримышечных инъекций препарат Гамавит.
Изобретение относится к способу искусственного размножения морского огурца. Способ включает сбор и стимуляцию особей к размножению путем деления.

Сетка представляет собой плетенку, изготовленную из отдельных спирально изогнутых продольных элементов. Изогнутые с образованием цилиндрической формы продольные элементы переплетают со смежными продольными элементами и расплющивают таким образом, что у отдельных изогнутых продольных элементов образуются приблизительно прямые проволочные участки.
Способ включает облов исследуемого водоема мелкоячейным неводом с коэффициентом вылова не более 0,2 при селективном и не более 0,3-0,4 при неселективном промысле. Затем определяют прирост ихтиомассы выживших рыб в возрастных и размерно-весовых классах и популяции в целом за год, а также коэффициенты восстановления ихтиомассы выживших рыб в возрастных и размерно-весовых классах и популяции в целом с последующим расчетом общего допустимого улова рыбы исходя из зависимостей: B-Y=By; By×ΔP/B=Py; By+Py=B, где B - исходная ихтиомасса рыбы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; Y - общий допустимый улов рыбы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; By - оставшаяся ихтиомасса отдельных возрастных классов или всей популяции в целом, кг/га; ΔP - прирост ихтиомассы выживших рыб отдельных возрастных классов или всей популяции в целом за год, кг/га; ΔP/B - коэффициент восстановления ихтиомассы отдельных возрастных классов или всей популяции в целом; Py - прирост, создаваемый оставшейся ихтиомассой отдельных возрастных классов или всей популяции в целом (By), кг/га.

Способ выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море относится к марикультуре и предназначен для промышленного выращивания устриц в Черном море в контролируемых условиях. В способе выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море, кондиционирование производителей осуществляют в течение 24 ч путем содержания без корма с постоянной аэрацией воды. Серотонин, растворенный в стерильной морской воде, вводят в межстворчатую жидкость по 1 мл/особь в концентрации 0,003%. Через 15 минут после оплодотворения проводят селекцию яйцеклеток по размерам. При культивировании яйцеклеток поддерживают плотность 50 тыс.яйц./л, на ранних и поздних стадиях развития личинок - соответственно 20 тыс.лич./л и 10 тыс.лич/л, на стадии оседания - до 1 тыс.лич./л. На всех стадиях развития устриц обеспечивают кормом, причем на ранних стадиях развития корм состоит из Isochrysis galbana и Chaeíoceros calcitróos в концентрации до 100 тыс. кл./мл при соотношении клеток 2:1, на поздних включает микроводоросли Isochrysis galbana, Chaeíoceros calcitrans, Phaeodactilum tricornutum, Tetraselmis suecica в концентрации корма до 200 тыс.кл./мл в при соотношении клеток 2:1:1:1 соответственно, а на стадии педивелигера в состав корма дополнительно вводят микроводоросль Skeletonema costatum (2 части) при общей концентрации 200-250 тыс.кл/мл. При кондиционировании производителей обмен фильтрованной морской воды производят дважды в сутки. Для селекции по размерам яйцеклетки собирают на мельничное сито с диаметром ячеи 32 мкм и промывают фильтрованной и стерилизованной морской водой. Эмбриональное развитие яйцеклеток проводят в стерилизованной морской воде с аэрацией. Разработаны оптимальные условия для получения личинок и выращивания гигантской устрицы в питомнике. При выращивании проводится селекция, как производителей, так и личинок и контролируется весь цикл культивирования. Благодаря оптимизации всех этапов культивирования гигантской устрицы С. gigas появляется возможность создания полноцикличного устричного хозяйства для производства товарной устрицы в Черном море.

Способ диагностики и профилактики проктэкозиса черноморских мидий в условиях марикультуры. Изобретение относится к биотехнологии и предназначено для диагностики и профилактики паразитарного заболевания черноморской мидии Mytilus galloprovincialis на мидийных фермах. У мидий изучают клинические признаки заболевания, по которым отбирают мидий для паразитологического анализа. Моллюсков считают слабо зараженными при содержании в одной мидии до 100 экз. спороцист, средне зараженными при содержании в одном моллюске до 150-500 партенит, сильно зараженными при содержании в одной мидии от 600 до 5000 партенит, гиперинвазироваными, если в одной мидии содержится свыше 6000 спороцист. В зависимости от этого проводят профилактические меры. Если мидия слабо зараженная, то увеличивают частоту отбора контрольных проб на ферм в 2-3 раза. Если средне зараженная мидия, то увеличивают объем выборки в пробе в 2 раза и регулируют плотность размещения коллекторов на носителях. Если сильно зараженная, то осуществляют выбраковывание ослабленных мидий на коллекторах и сбор опавших на дно мидий. Если мидия гиперинвазированная, то перемещают фермы в другое место.

Изобретение относится к рыбоводству и может быть использовано для учета биомассы и количества личинок. Устройство включает подвижную камеру, снабженную сеткой, резервуар для накопления гидробионтов и счетчик. Камера выполнена в виде эксцентрического ковша на шарнирах и соединена с механическим счетчиком. Личинки поступают с потоком воды из инкубационного аппарата в ковш через переходной лоток. Резервуар для накопления личинок расположен под эксцентрическим ковшом. Все элементы конструкции крепятся на несущей раме. Изобретение позволяет повысить точность учета личинок и уменьшить их травматизм. 1 ил.

Устройство состоит из абсорбционного аммиачного холодильного агрегата, включающего, в частности, термосифон и испаритель. Устройство оснащено параболическим зеркалом, концентрирующим солнечные лучи на термосифоне холодильного агрегата. Параболическое зеркало механически соединено с солнечной батареей, которая, в свою очередь, соединена с аккумуляторной батареей, блоком определения положения солнца и двигателем, приводящим в движение параболу с солнечной батареей. Изобретение позволяет использовать солнечную энергию для понижения температуры воды. 1 ил.

Способ получения питательной основы микробиологических сред относится к биотехнологии. Способ предназначен для получения основы для приготовления микробиологических питательных сред из сырья морского генеза и может быть использован в медицинской и технической микробиологии, в научно-исследовательской и практической работе для выделения и культивирования микроорганизмов. В способе получают щелочной гидролизат из моллюсков и соединяют с кислотным гидролизатом из рыбного сырья в соотношении 1:3-3:1, чтобы количество аминного азота была в пределах 600-900 мг %. Гидролиз гомогената рыбного сырья выполняют в кислотной среде. При приготовлении кислотного гидролизата из рыбного сырья к гомогенату рыбного сырья прибавляют 18-20%-ный раствор соляной кислоты до рН 4,5-5,0 и нагревают до 45-50°С на протяжении 22-26 ч, затем прибавляют концентрированную ортофосфорную кислоту до остаточной концентрации кислоты на равные 2% и осуществляют прогревание гомогената рыбного сырья при 100°С на протяжении 22-26 ч, затем гидролизат из рыбного сырья нейтрализуют добавлением 40%-ного раствора едкого натра до рН 6,8-7,4. При приготовлении щелочного гидролизата из моллюсков к измельченному сырью из моллюсков прибавляют 1,0%-ный раствор едкого натра в соотношении 1:1 и осуществляют гидролиз при 80°С на протяжении 20 - 24 ч, затем гидролизат из моллюсков нейтрализуют с добавлением концентрированной соляной кислоты до рН 6,8-7,4. Гидролиз сырья из моллюсков осуществляют к получению количества аминного азота в пределах 240-450 мг %. Соединение кислотного гидролизата из рыбного сырья со щелочным гидролизатом из моллюсков осуществляют с операцией нейтрализации гидролизата из рыбного сырья со следующим корректированием кислотности биомассы до pH 6,8-7,4. Кислотность полученной основы для микробиологических питательных сред корректируют до pH 7,0. Достигнуто расширение сырьевой базы и улучшение экологических условий производства.

Способ выращивания гетерозисных личинок гигантской устрицы Crassostrea gigas (Th) при культивировании в питомнике относится к марикультуре и предназначен для промышленного культивирования гигантской устрицы на Черном море в условиях питомника. В питомнике Института биологии южных морей НАН Украины (Севастополь) в 2006 г. получены гетерозисные гибриды гигантской устрицы Crassostrea gigas. В качестве производителей были использованы трехлетние устрицы из двух географически изолированных поселений: черноморского (инбредная линии) и атлантического. Черноморская когорта устриц отличалась более плоской формой раковины: индекс формы раковины (IF) равнялся соответственно 2,15 и 2,50. Инбредная линия устриц была выведена в результате скрещиваний между сибсами и при возвратных скрещиваниях. В пятом поколении достигнут «инбредний минимум», о чем можно было судить при сравнении с выживаемостью личинок четвертого поколения. Гетерозисные личинки, выращиваемые в условиях плотности посадки в три раза превышающей оптимальные значения, по скорости роста (в 1,2 раза) и выживаемости (в 2,5 и 4 раза) превышали потомков атлантической когорты устриц и личинок инбредной линии.

Способ изучения пополнения поселений мидии, митилястера и анадары в прибрежной зоне Черного моря относится к научным исследованиям в области экологии. Способ состоит в том, что в фиксированной точке исследуемой акватории в сезон оседания личинок (для мидий - на протяжении всего года, для митилястера и анадары - летом и осенью) ежемесячно экспонируется носитель с экспериментальными субстратами. После окончания 30 дней проводят замену носителя и определяют число личинок, которые осели на экспонированный субстрат. Перед экспонированием на носителе размещают не менее чем 2 субстрата с ворсистой поверхностью, а каждый субстрат выполняют в виде полосы шириной 3-6 см из акриловой комплексной нити, которую размещают плотно в один слой на цилиндрической части пластикового каркаса.
Способ интенсивного выращивания мальков камбалы калкан относится к морскому рыбоводству и может использоваться на рыбоводческих фермах для получения в искусственных условиях правильно метаморфизированной молоди черноморской камбалы калкан для зарыбления прибрежных акваторий или дальнейшего товарного производства. В соответствии со способом, бассейн заполняют на 2/3 стерильной морской водой с температурой 18,0±0,5°С за 2 дня до внесения личинок с начальной плотностью 40-50 экз./л, обеспечивая двухуровневую продувку воздухом. Коловраток вносят за 12 часов до начала внешнего питания и на протяжении 6 часов после начала питания личинок повышают концентрацию коловраток до 3 экз./мл, потом в возрасте 6 дней - до 4 экз./мл, и к достижению возраста 13 дней личинок кормят коловратками порционно, корректируя плотность коловраток сначала каждые 6 часов (до 7 дневного возраста), а потом каждые 12 часов (до 13 дневного возраста). В возрасте 12-13 дней в рацион личинок добавляют личинки артемии из расчета не более 0,1 экз./мл (1 раз на день), на 14-15 день личинок переводят на кормление метанауплиями артемии, ас 18-19 дня дополняют корм (1 раз в 2 дня) копеподитами копепод (0,1 экз./мл). На 30-35 день личинкам дают пробный инертный корм, увеличивая продолжительность первого кормления инертным кормом до 3 часов, вырабатывая постепенную замену кормления 2-суточными насыщенными метанауплиями артемий. В возрасте 45-50 дней личинок полностью переводят на питание инертным кормом, подкармливая копепод 2 раза в неделю из расчета не менее 100 копепод на личинку.

Способ подготовки кормов для выращивания гигантской устрицы Crassostrea gigas в Черном море в условиях питомника включает культивирование микроводорослёй в накопительном и проточном режимах с применением модифицированной среды Конвея, причем на стадии велигера используют микроводоросли, которые культивируют в течение 17-ти дней в накопительном режиме, для стадии великонхи применяют 10-дневные микроводоросли, которые культивируют в проточном режиме и для стадии педивелигера микроводоросли проходят 24-дневное культивирование в накопительном режиме.

Способ получения гидролизата из моллюсков относится к отрасли биотехнологии и предназначается для получения белково-углеводного гидролизата из моллюсков, который может быть использован в качестве сырья для фармакологических и косметических препаратов, а также для получения пищевых примесей лечебно-профилактического действия. В соответствии со способом, ткани моллюсков, освобожденных от межстворчатой жидкости, вместе со створкой выдерживают при температуре +2÷+5°С в течение 3-4 суток, после чего измельчают. Из измельченной массы экстрагируют биологически активные вещества тройным объемом кипящей воды, оставшийся осадок гидролизуют, затем объединяют водный экстракт и полученный гидролизат.
Наверх