Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)



Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
Способ получения вакцины против бруцеллеза для иммунизации позвоночных животных (варианты)
C12N1/00 - Микроорганизмы, например простейшие; их композиции (лекарственные препараты, содержащие материал из микроорганизмов A61K 35/66; приготовление лекарственных составов, содержащих бактериальные антигены или антитела, например бактериальных вакцин A61K 39/00); способы размножения, содержания или консервирования микроорганизмов или их композиций; способы приготовления или выделения композиций, содержащих микроорганизмы; питательные среды

Владельцы патента RU 2746141:

Федеральное казенное предприятие "Щелковский биокомбинат" (RU)

Изобретение относится к области биотехнологии и представляет собой способ получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, включающий культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией, в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, при определенном содержании компонентов, причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин. Также в способе получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией, в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, причем стабилизатор дополнительно содержит бета-циклодекстрин, при определенном содержании компонентов, причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин. Изобретение позволяет увеличить срок хранения целевого продукта с сохранением его иммуногенности против бруцеллеза позвоночных животных. 2 н.п. ф-лы, 6 табл., 6 пр.

 

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и биотехнологии, в частности к созданию вакцины для профилактики бруцеллеза позвоночных животных.

Бруцеллез крупного рогатого скота - хроническое зооантропонозное заболевание, распространенное во многих странах мира, наносящее большой экономический ущерб скотоводству и представляющее серьезную опасность здоровью людей.

Основным средством борьбы с бруцеллезом крупного рогатого скота, особенно в зонах его широкого распространения, является вакцинация всего поголовья и своевременное удаление из стада больных животных.

Известен способ получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией [Авторское свидетельство №1585950, Способ изготовления вакцины против бруцеллеза животных, МПК А61К 39/10, 1990; Промышленный регламент производства вакцины живой сухой против бруцеллеза сельскохозяйственных животных из штамма Бруцелла абортус 19. Щелково, 2008, стр. 16-65].

Недостатками данной вакцины являются высокая агглютиногенность, так как в крови животных, иммунизированных данной вакциной в течение нескольких месяцев, а иногда и нескольких лет обнаруживают антитела в принятых для диагностики бруцеллеза серологических реакциях, что препятствует выявлению больных животных в вакцинированном стаде. Вакцину нельзя применять для иммунизации стельных коров, так как она вызывает аборты у отдельных животных.

Недостатком данной вакцины является ее недостаточный срок хранения с сохранением качества целевого продукта.

Техническим решением предлагаемого изобретения является увеличение сроков хранения целевого продукта с сохранением его иммуногенности против бруцеллеза позвоночных животных.

Предложена группа изобретений, объединенная единым изобретательским замыслом с достижением единого технического результата.

Поставленная задача решается в способе получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией тем, что в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, при следующем содержаний компонентов, мас. %:

причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин.

Поставленная задача также решается в способе получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией тем, что в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, причем стабилизатор дополнительно содержит бета-циклодекстрин, при следующем содержаний компонентов, мас. %:

причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин.

Штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК депонирован в коллекции микроорганизмов Федерального бюджетного учреждения «Федеральный Научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Министерства здравоохранения Российской Федерации (см. приложение 1).

Штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК выделен отделом биологического контроля ФКП «Щелковский биокомбинат» из органного материала, переданного с ООО АПК «Титан» Русско-Полянском районе, Омской области.

Известен бета-циклодекстрин, который является пищевой добавкой (Е459), стабилизатором и эмульгатором, который придает продуктам питания вязкость, поддерживает однородную дисперсию компонентов /ГОСТ 33782-2016/.

В патентной и научно-технической литературе неизвестны технические решения аналогичные заявляемому, т.е. предложение соответствует критерию изобретения «новизна».

Заявленная композиция решает актуальную проблему ветеринарии - профилактики бруцеллеза позвоночных животных, т.е. предложение «промышленно применимо».

В отечественной литературе не известно использование штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК для получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных. Нами впервые показано, что сочетанное использование вышеуказанных отличительных признаков, взятых в определенных соотношениях компонентов, увеличивает сроки хранения целевого продукта с сохранением его иммуногенности против бруцеллеза позвоночных животных, что приводит к достижению технического результата. Следовательно, изобретение соответствует критерию «изобретательский уровень».

Изобретение иллюстрируется на следующих примерах.

Пример 1. Для получения посевного материала и производственного культивирования бруцелл используют стерильную питательную среду на основе перевара Хоттингера, содержащую, об.%: перевар Хоттингера - 25, глицерин - 2, глюкоза - 1,5, натрия хлорид - 0,5, дрожжевой аутолизат нативный - 3,4, вода - до 100. Для получения посевного материала чистую культуру штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК засевают в микроферментер с данной питательной средой. Концентрация посевного материала составляет 3,5 млрд.м.кл./см3. Культивируют 24 часа до накопления 35 млрд.м.кл./см3.

Производственное культивирование проводят глубинным методом в биореакторе в питательной среде того же состава. При культивировании рН поддерживают в пределах 6,9, а температуру - в пределах 36,5°С. Уровень парциального давления растворенного в культуральной жидкости кислорода составляет: с 1 по 3 час - 20 pO2, с 3 по 6 час - 25 рО2, с 6 по 15 час - 40 рО2 с 15 по 16 час - 30 pO2. Время культивирования составляет 16 часов, накопление клеток составляет 70 млрд.м.кл./см3. По окончании культивирования бактериальную суспензию концентрируют ультрафильтрацией с использованием мембранных кассет с пределом задержания 20 КД. Концентрирование (осаждение) бруцелл проводят натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы. Для концентрирования (осаждения) бруцелл натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ) в ферментер вносят (1-2) % раствор КМЦ из расчета 0,2% сухого вещества (на 500 л культуральной жидкости - 100 л 1% раствора КМЦ или 50 л 2% раствора КМЦ). Содержание ферментера тщательно перемешивается и охлаждается до температуры (6-8)°С. Осаждение бруцелл продолжается от 3 до 5 суток. После осаждения надосадочная жидкость должна быть прозрачной. Прозрачная надосадочная жидкость после осаждения культуры декантируется в специальный реактор для обезвреживания при температуре (119-120)°С в течение 40 минут.

К 80 кг полученной бактериальной массы штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 10 млрд.м.кл./см3 добавляют стабилизатор, содержащий 7,5 кг сахарозы, 1,2 кг пищевого желатина и 11,3 кг дистиллированной воды, получая состав 1 при следующем соотношении компонентов, мас. %:

причем желатин замачивается в дистиллированной воде на 2 часа до полного набухания, затем к набухшему желатину добавляют сахарозу, рН стабилизатора доводят до 7,4 15% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°С в течение 20 мин.

Далее получение вакцины против бруцеллеза позвоночных животных проводят аналогично известному способу, в частности состав 1 помещают в морозильную камеру при температуре минус (47-53°С) с принудительной циркуляцией воздуха в камере в течение 18-24 часов. Контроль за понижением температуры в морозильной камере и в вакцине ведется с помощью термодатчиков и вторичных приборов, записывающих показания температуры на диаграммной ленте или показывающий температуры на шкале логометров. Перед замораживанием во флаконы с вакциной помещают датчики температуры сублимационного аппарата, для контроля изменения температуры вакцин в процессе лиофилизации. После окончания процесса замораживания кассеты с вакциной, разлитой во флаконы, быстро перегружают в сублимационную установку (вакуумная, холодильная, контрольно-измерительная) проверяют и приводят в рабочее состояние согласно инструкции по эксплуатации сублимационной аппаратуры. При загрузке сублимационной камеры кроме датчика, регистрирующего изменения температуры в продукте, плотно закрывают дверь сушильной камеры, включают вакуумный насос и по достижении вакуума в камере 100-110 мкм. рт.ст. отключают охлаждение полок. В течение 6-8 часов ведут пассивный нагрев полок, используя циркуляцию в полках жидкости, устанавливают температуру 28-30°С. Продолжительность сушки 68-72 часа. Температура продукта достигает максимального значения 28-30°С, и поддерживается на этом уровне не менее 10-15 часов. По окончании сушки сублимационную камеру через стерилизующий фильтр наполняют азотом особой чистоты ГОСТ 9293-74 до уравнивания давления в сушильной камере с атмосферным. Специальным нажимным устройством в сублимационной камере флаконы с вакциной укупоривают пробкой УЛ-1, накрывают алюминиевым колпачком и обкатывают на линии «Штрунк» или на полуавтоматическом закаточном аппарате (ПЗК-1), получая целевой продукт - Вакцина 1. Готовая вакцина представляет собой сухую пористую мелкокристаллическую массу светло-коричневого или светло-желтого цвета, хорошо растворяющуюся в дистиллированной воде.

Пример 2. Для получения посевного материала и производственного культивирования бруцелл используют стерильную питательную среду на основе перевара Хоттингера, содержащую, об.%: перевар Хоттингера - 25, глицерин - 2, глюкоза - 1,5, натрия хлорид - 0,5, дрожжевой аутолизат нативный - 3,4, вода - до 100. Для получения посевного материала чистую культуру штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК засевают в микроферментер с данной питательной средой. Концентрация посевного материала составляет 3,5 млрд.м.кл./см3. Культивируют 24 часа до накопления 35 млрд.м.кл./см3.

Производственное культивирование проводят глубинным методом в биореакторе в питательной среде того же состава. При культивировании рН поддерживают в пределах 6,9, а температуру - в пределах 36,5°С. Уровень парциального давления растворенного в культуральной жидкости кислорода составляет: с 1 по 3 час - 20 рО2, с 3 по 6 час - 25 рО2, с 6 по 15 час - 40 рО2 и с 15 по 16 час - 30 pO2. Время культивирования составляет 16 часов, накопление клеток составляет 70 млрд.м.кл./см3. По окончании культивирования бактериальную суспензию концентрируют ультрафильтрацией с использованием мембранных кассет с пределом задержания 20 КД. Концентрирование (осаждение) бруцелл проводят натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы. Для концентрирования (осаждения) бруцелл натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ) в ферментер вносят (1-2) % раствор КМЦ из расчета 0,2% сухого вещества (на 500 л культуральной жидкости-100 л 1% раствора КМЦ или 50 л 2% раствора КМЦ). Содержание ферментера тщательно перемешивается и охлаждается до температуры (6-8)°С. Осаждение бруцелл продолжается от 3 до 5 суток. После осаждения надосадочная жидкость должна быть прозрачной. Прозрачная надосадочная жидкость после осаждения культуры декантируется в специальный реактор для обезвреживания при температуре (119-120)°С в течение 40 минут.

К 85 кг полученной бактериальной массы штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 40 млрд.м.кл./см3 добавляют стабилизатор, содержащий 10,0 кг сахарозы, 1,5 кг пищевого желатина и 3,5 кг дистиллированной воды, получая состав 1 при следующем соотношении компонентов, мас. %:

причем желатин замачивается в дистиллированной воде на 3 часа до полного набухания, затем к набухшему желатину добавляют сахарозу, рН стабилизатора доводят до 7,6 20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 120°С в течение 30 мин.

Далее получение вакцины против бруцеллеза позвоночных животных проводят аналогично известному способу, как и состав 1, получая целевой продукт - Вакцина 2. Готовая вакцина представляет собой сухую пористую мелкокристаллическую массу светло-коричневого или светло-желтого цвета, хорошо растворяющуюся в дистиллированной воде.

Пример 3. Для получения посевного материала и производственного культивирования бруцелл используют стерильную питательную среду на основе перевара Хоттингера, содержащую, об.%: перевар Хоттингера - 25, глицерин - 2, глюкоза - 1,5, натрия хлорид - 0,5, дрожжевой аутолизат нативный - 3,4, вода - до 100. Для получения посевного материала чистую культуру штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК засевают в микроферментер с данной питательной средой. Концентрация посевного материала составляет 3,5 млрд.м.кл./см3. Культивируют 24 часа до накопления 35 млрд.м.кл./см3.

Производственное культивирование проводят глубинным методом в биореакторе в питательной среде того же состава. При культивировании рН поддерживают в пределах 6,9, а температуру - в пределах 36,5°С. Уровень парциального давления растворенного в культуральной жидкости кислорода составляет: с 1 по 3 час - 20 рО2, с 3 по 6 час - 25 pO2, с 6 по 15 час - 40 рО2 и с 15 по 16 час - 30 рО2. Время культивирования составляет 16 часов, накопление клеток составляет 70 млрд.м.кл./см3. По окончании культивирования бактериальную суспензию концентрируют ультрафильтрацией с использованием мембранных кассет с пределом задержания 20 КД. Концентрирование (осаждение) бруцелл проводят натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы. Для концентрирования (осаждения) бруцелл натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ) в ферментер вносят (1-2) % раствор КМЦ из расчета 0,2% сухого вещества (на 500 л культуральной жидкости - 100 л 1% раствора КМЦ или 50 л 2% раствора КМЦ). Содержание ферментера тщательно перемешивается и охлаждается до температуры (6-8)°С. Осаждение бруцелл продолжается от 3 до 5 суток. После осаждения надосадочная жидкость должна быть прозрачной. Прозрачная надосадочная жидкость после осаждения культуры декантируется в специальный реактор для обезвреживания при температуре (119-120)°С в течение 40 минут.

К 80 кг полученной бактериальной массы штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 10 млрд.м.кл./см3 добавляют стабилизатор, содержащий 7,5 кг сахарозы, 1,2 кг пищевого желатина, 1,5 кг бета-циклодекстрина и 9,8 кг дистиллированной воды, получая состав 3 при следующем соотношении компонентов, мас. %:

причем желатин замачивается в дистиллированной воде на 2 часа до полного набухания, затем к набухшему желатину добавляют сахарозу, рН стабилизатора доводят до 7,4 15% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°С в течение 20 мин.

Далее получение вакцины против бруцеллеза позвоночных животных проводят аналогично известному способу, в частности состав 3 помещают в морозильную камеру при температуре минус (47-53°С) с принудительной циркуляцией воздуха в камере в течение 18-24 часов. Контроль за понижением температуры в морозильной камере и в вакцине ведется с помощью термодатчиков и вторичных приборов, записывающих показания температуры на диаграммной ленте или показывающий температуры на шкале логометров. Перед замораживанием во флаконы с вакциной помещают датчики температуры сублимационного аппарата, для контроля изменения температуры вакцин в процессе лиофилизации. После окончания процесса замораживания кассеты с вакциной, разлитой во флаконы, подвергают лиофильному высушиванию, получая целевой продукт - Вакцина 3. Готовая вакцина представляет собой сухую пористую мелкокристаллическую массу светло-коричневого или светло-желтого цвета, хорошо растворяющуюся в дистиллированной воде.

Пример 4. Для получения посевного материала и производственного культивирования бруцелл используют стерильную питательную среду на основе перевара Хоттингера, содержащую, об.%: перевар Хоттингера - 25, глицерин - 2, глюкоза - 1,5, натрия хлорид - 0,5, дрожжевой аутолизат нативный - 3,4, вода - до 100. Для получения посевного материала чистую культуру штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК засевают в микроферментер с данной питательной средой. Концентрация посевного материала составляет 3,5 млрд.м.кл./см3. Культивируют 24 часа до накопления 35 млрд.м.кл./см3.

Производственное культивирование проводят глубинным методом в биореакторе в питательной среде того же состава. При культивировании рН поддерживают в пределах 6,9, а температуру - в пределах 36,5°С. Уровень парциального давления растворенного в культуральной жидкости кислорода составляет: с 1 по 3 час - 20 рО2, с 3 по 6 час - 25 рО2, с 6 по 15 час - 40 pO2 и с 15 по 16 час - 30 pO2. Время культивирования составляет 16 часов, накопление клеток составляет 70 млрд.м.кл./см3. По окончании культивирования бактериальную суспензию концентрируют ультрафильтрацией с использованием мембранных кассет с пределом задержания 20 КД. Концентрирование (осаждение) бруцелл проводят натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы. Для концентрирования (осаждения) бруцелл натриевой солью карбоксиметилцеллюлозы (КМЦ) в ферментер вносят (1-2) % раствор КМЦ из расчета 0,2% сухого вещества (на 500 л культуральной жидкости - 100 л 1% раствора КМЦ или 50 л 2% раствора КМЦ). Содержание ферментера тщательно перемешивается и охлаждается до температуры (6-8)°С. Осаждение бруцелл продолжается от 3 до 5 суток. После осаждения надосадочная жидкость должна быть прозрачной. Прозрачная надосадочная жидкость после осаждения культуры декантируется в специальный реактор для обезвреживания при температуре (119-120)°С в течение 40 минут.

К 85 кг полученной бактериальной массы штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 40 млрд.м.кл./см3 добавляют стабилизатор, содержащий 10,0 кг сахарозы, 1,5 кг пищевого желатина, 2,0 кг бета-циклодекстрина и 1,5 кг дистиллированной воды, получая состав 4 при следующем соотношении компонентов, мас. %:

причем желатин замачивается в дистиллированной воде на 3 часа до полного набухания, затем к набухшему желатину добавляют сахарозу, рН стабилизатора доводят до 7,6 20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 120°С в течение 30 мин.

Далее получение вакцины против бруцеллеза позвоночных животных проводят аналогично известному способу, в частности состав 3 помещают в морозильную камеру при температуре минус (47-53°С) с принудительной циркуляцией воздуха в камере в течение 18-24 часов. Контроль за понижением температуры в морозильной камере и в вакцине ведется с помощью термодатчиков и вторичных приборов, записывающих показания температуры на диаграммной ленте или показывающий температуры на шкале логометров. Перед замораживанием во флаконы с вакциной помещают датчики температуры сублимационного аппарата, для контроля изменения температуры вакцин в процессе лиофилизации. После окончания процесса замораживания кассеты с вакциной, разлитой во флаконы, подвергают лиофильному высушиванию, получая целевой продукт - Вакцина 3. Готовая вакцина представляет собой сухую пористую мелкокристаллическую массу светло-коричневого или светло-желтого цвета, хорошо растворяющуюся в дистиллированной воде.

Пример 5. Результаты оценки иммуногенных характеристик полученных вакцин 1-4 (в соответствии с вышеприведенными примерами 1-4) с использованием культур штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК в сравнении с вакциной-прототипом были получены при оценке ее иммуногенности после хранения вакцин в течение двух лет. Морских свинок (в каждой группе по 5 животных) иммунизируют подкожно в дозе 2,0 млрд микробов по стандарту мутности оптическому для определения концентрации микробов ОСО 42-28-85-2013, через 28 сут после иммунизации животных заражают культурой вирулентного штамма 16М В. melitensis в дозе 100 живых микробов. Иммуногенность вакцин определяют по доле незаболевших животных на основании данных бактериологического и серологического обследования через 30 сут после заражения. Доля незаболевших животных при использовании вакцин 1-4 составила 65, 70, 75 и 80%%, соответственно, а при использовании известного технического решения - 30%.

Пример 6. Испытания иммуногенных свойств вакцин 1-4 и вакцины-прототипа после сохранения их в течение 2 лет проводят на телках 8-10-месячного возраста. Телок иммунизируют подкожно в заднюю треть шеи в дозах 50-400⋅109 м.к. в объеме 5 см3. Через 10 мес иммунизированных вакцинами 1-4 и вакциной-прототипа, а также контрольных (невакцинированных) телок заражают стандартной культурой контрольного вирулентного штамма Brucella abortus 54М/ВГНКИ в дозе 15-20 ИД50. Через 45 дней после заражения животных убивают и проводят бактериологическое исследование внутренних органов и лимфатических узлов (60 объектов). Определяют наличие бруцелл вирулентного штамма в лимфатических узлах и органах, рассчитывают процент защиты и индекс инфицированности (процент инфицированных органов и лимфоузлов). В результате в группах животных, вакцинированных вакцинами 1-4, полученными согласно примерам 1-4 описания) доля незаболевших животных составила 65, 70, 75 и 80%%, соответственно, в то время как при использовании вакцины-прототипа индекс инфицированности составил 20%. В контрольной группе невакцинированных телок индекс инфицированности составил 100%.

Таким образом, вакцина из штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК сроком хранения в течение двух лет защищает от заражения высоковирулентной культурой бруцелл 65-80% иммунизированных животных, в то время как аналогичный препарат из штамма Brucella abortus №19 только 20-30%. Использование культуры штамма бактерий Brucella abortus RB-51/ЩБК в биологической промышленности позволит получить высокоэффективные биопрепараты для профилактики бруцеллеза позвоночных животных с увеличенным в два раза сроком хранения вакцин.

1. Способ получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией, отличающийся тем, что в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, при следующем содержании компонентов, мас.%:

причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин.

2. Способ получения вакцины против бруцеллеза позвоночных животных, культивирование бруцеллезного штамма рода Brucella abortus с последующим культивированием на стерильной питательной среде с последующим выделением антигена в виде бактериальной массы и его конъюгацией со стабилизатором, содержащим сахарозу и желатин, стерилизацией, фасовкой и лиофилизацией, отличающийся тем, что в качестве бруцеллезного штамма рода Brucella abortus используют штамм Brucella abortus RB-51/ЩБК, а в качестве антигена используют бактериальную массу штамма Brucella abortus RB-51/ЩБК с содержанием клеток 1,0-4,0×1010 м.кл./см3, причем стабилизатор дополнительно содержит бета-циклодекстрин, при следующем содержаний компонентов, мас.%:

причем рН стабилизатора доводят до 7,4-7,6 15-20% раствором едкого натрия, стерилизуя его при 116°-120°С в течение 20-30 мин.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области медицины, вирусологии, микробиологии, молекулярной генетики и биотехнологии. Представлена живая вакцина Enterococcus faecium L3-pentF-covid-19, содержащая клон энтерококков COVID 19+ с введенным в его геном участком ДНК SEQ ID No: 1, обеспечивающий экспрессию белка, имеющего аминокислотную последовательность SEQID No: 2, стимулирующая гуморальный и клеточный иммунитет в отношении вируса SARS-CoV-2.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение представляет собой питательную среду жидкую для выращивания и сбора биомассы вакцинного штамма чумного микроба Yersinia pestis EV, содержащую следующие ингредиенты: панкреатический гидролизат казеина 89,0 мл, пептон сухой ферментативный 20,0 г, натрий хлористый 5,0 г, натрий фосфорнокислый двузамещенный 12-водный 4,0 г, аммоний молибденовокислый 4-водный 0,5 г, дистиллированная вода до 1 л.

Изобретение относится к области биотехнологии и касается нового штамма вируса ящура Aphtae epizooticae типа Азия-1 сем. Picornaviridae, рода Aphthovirus, депонированного в коллекции ФГБУ «ВНИИЗЖ» под регистрационным номером: №176 - деп / 19-66 - ГКШМ ФГБУ «ВНИИЗЖ» штамм Азия-1 №2356/14/2018 вируса ящура.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к получению мультипотентных мезенхимных стромальных клеток из Вартонова студня пупочного канатика новорожденного.

Изобретение относится к области биотехнологии и биохимии, а именно моноклональному антителу, селективно взаимодействующему с RBD фрагментом в составе S белка вируса SARS-CoV-2, и изолированному фрагменту ДНК, кодирующему участки легкой и тяжелой цепи указанного антитела, и антигенсвязывающему фрагменту указанного моноклонального антитела.

Изобретение относится к области биотехнологии. Изобретение позволяет упростить способ генотипирования крупного рогатого скота по аллелям 878 C>Т гена scd1 (rs41255693), сократить время проведения анализа.

Изобретение относится к области биохимии, в частности к иммуностимулирующей композиции ДНК. Также раскрыт способ стимуляции иммунного ответа у субъекта.

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к созданию диагностического набора в реакции торможения гемагглютинации (РТГА) с использованием вируса гриппа птиц подтипа Н9 при разработке и производстве средств диагностики.

Настоящее изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к применению антибиотика со специфическими терапевтическими показаниями в эффективном количестве в ассоциации со штаммом бифидобактерий.

Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии и касается получения рекомбинантных штаммов дрожжей Pichia pastoris, способных продуцировать фитазу. Получен трансформант дрожжей Pichia pastoris продуцент фитазы, несущий в составе хромосомы ген, кодирующий фитазу из E.coli, и ген НАС1 из Saccharomyces cerevisiae.
Наверх