Изобретение относится к области биотехнологии и ветеринарной вирусологии и представляет собой способ диагностики цирковируса свиней, включающий посев культуры клеток РК-15, инфицирование ее биологическим материалом, фиксацию клеток РК-15, инкубирование последовательно со специфическими сыворотками и антисвиными меченными пероксидазой хрена иммуноглобулинами и выявление антигена цирковируса свиней по наличию темно-красного окрашивания цитоплазмы клеток, отличающийся тем, что фиксацию клеток РК-15 проводят в течение 30-40 минут в 0,01-0,02 М фосфатно-солевом буфере с рН 7,2-7,4, содержащем 1-4% параформальдегида и 0,2-0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля, при температуре 22-24°С, затем обрабатывают последовательно 10-15 минут 0,01-0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2-7,4, содержащим 0,3-0,4 М глицина и 1-2% казеина, затем 10-15 минут 0,3-0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Использование заявленного способа позволяет быстроту и точность диагностики цирковируса свиней. 1 з.п. ф-лы, 11 пр.

Изобретение относится к области биотехнологии и ветеринарной вирусологии и касается способа выявления вируса цирковируса свиней, определения биологической активности вируса при производстве инактивированной вакцины и научных исследованиях.

Способ диагностики цирковируса свиней, включающий посев культуры клеток РК-15, инфицирование ее биологическим материалом, фиксацию клеток РК-15, инкубирование последовательно со специфическими сыворотками и антисвинными меченными пероксидазой хрена-иммуноглобулинами и выявления антигена цирковируса свиней по наличию темно-красного окрашивания цитоплазмы клеток (Патент Украины (UA 89399). Иммунопероксидазный тест для вирусологической диагностики цирковирусной инфекции свиней, МПК G01N 33/536, A61K 39/42 опубликовано 25.04.2014, Бюл. №8).

Цирковирусная инфекция свиней - заболевание поросят отъемышей, которое характеризуется истощением, одышкой, пневмонией, увеличением лимфатических узлов, желтухой, бледностью. Это заболевание известно так же как синдром мультисистемного послеотъемного истощения поросят (СПМИ) - наиболее распространенная форма проявления цирковируса свиней 2-го типа. Впервые заболевание наблюдалось в Саскачеване (Канада), затем оно быстро распространилось во все страны с развитым свиноводством, включая Европу, Америку и Азию. В 1998 г. из тканей поросят с СПМИ был изолирован вирус, обозначенный как цирковирус свиней 2-типа (PCV2), а исходному ЦВС - не патогенному контаминанту культуры клеток РК-15 дали обозначение PCV1 (Патент РФ №2283862 Цирковирус свиней 2 типа и его применение, МПК C12N 7/00, C12N 15/34, C12N 15/63, C07K 14/01, A61K 39/12, C12Q 1/68, G01N 33/569, опубликовано 20.09.2006, Бюл. №26).

Однако известный диагностики цирковируса свиней является недостаточно эффективным при диагностике цирковируса свиней 2 типа.

Задачей предполагаемого изобретения является повышение чувствительности способа при диагностике цирковируса свиней 2 типа.

Поставленная задача достигается в способе диагностики цирковируса свиней, включающий посев культуры клеток РК-15, инфицирование ее биологическим материалом, фиксацию клеток РК-15, инкубирование последовательно со специфическими сыворотками и антисвинными меченными пероксидазой хрена-иммуноглобулинами и выявления антигена цирковируса свиней по наличию темно-красного окрашивания цитоплазмы клеток тем, что фиксацию клеток РК-15 проводят в течение 30-40 минут в 0,01-0,02 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2-7,4, содержащем 1-4% параформальдегида и 0,2-0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22-24°С, затем обрабатывают последовательно 10-15 минут 0,01-0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2-7,4, содержащем 0,3-0,4 М глицина и 1-2% казеина, затем 10-15 минут 0,3-0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела.

Также поставленная задача предполагаемого изобретения достигается в способе диагностики цирковируса свиней тем, что в качестве биологического материала используют сыворотку крови, или гомогенат лимфоузлов, или гомогенат легких.

Как показали наши исследования, для проведения иммунопероксидазной реакции возможно использование только забуференного параформальдегида, при этом необходимо строго придерживаться определенного времени фиксации. Так, меньшая продолжительность фиксации приводит к диффузии, вымыванию антигена, а длительная - обуславливает маскировку антигена, образование большого числа альдегидных связей, препятствующих реакции антиген-антител, что приводит к снижению возможности выявления цирковируса свиней 2 типа. Нами впервые предложено проводить пермеабилизацию антигена с помощью использования нонилфенилполиэтиленгликоля (нонидент, NP-40), что позволило проводить идентификацию цирковируса свиней более стабильно. Пермеабилизация нужна, когда антитело должно достигать внутриклеточной части клеток, так как эпитопы находятся в цитоплазматической области. Кроме этого, впервые предложено обрабатывать клетки РК-15 глицином при определенных режимах воздействия, что способствует повышению проницаемости клеточных мембран, устранению «сшивок» между белками, образуемых в результате фиксации. Предполагаем, что глицин связывает свободные альдегидные группы, которые в противном случае связывали бы первичные и вторичные антитела, что неизбежно привело бы к высокому фоновому окрашиванию. После воздействия антиген становиться более доступным для антител. В патентной и научно-технической литературе не известны технические решения, содержащие режимы способа диагностики цирковируса свиней аналогичное заявляемому, т.е. предложение соответствует критериям «новизна» и «изобретательский уровень».

Все режимы способа осуществимы в промышленных условиях, направлены на решение реальной технической задачи, т.е. предложение «промышленно применимо».

Изобретение иллюстрируется на следующих примерах:

Пример 1.

Инфицирование культуры клеток РК-15 проводят биологическим объектом - сывороткой крови свиней (проб сыворотки было в опыте 20 от поросят 3-4 недельного возраста, зараженных цирковирусом свиней 2 типа - штаммом «PCV2/SHBC»).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегид и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «PCV2/SHBC» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же тест-препараты обрабатывали известным способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат. Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено еще положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 2. Готовят гомогенаты легких из проб материала легких известным способом (Патент РФ №2283862 Цирковирус свиней 2 типа и его применение, МПК C12N 7/00, C12N 15/34, C12N 15/63, C07K 14/01, A61K 39/12, C12Q 1/68, G01N 33/569, опубликовано 20.09.2006, Бюл. №26).

Инфицирование культуры клеток РК-15 проводят биологическим объектом - гомогенатом легких свиней (проб материала легких было в опыте 20 от поросят 3-4 недельного возраста, зараженных цирковирусом свиней 2 типа - штаммом «PCV2/SHBC»).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «PCV2/SHBC» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же пробы обрабатывали способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат.Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 3. Готовят гомогенаты лимфатических узлов из проб материала лимфатических узлов известным способом (Методические особенности изоляции вируса из лимфоидных органов свиньи и инфицирование культуры РК-15 описано в статье Морозова И. (JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY Detection of a Novel Strain of Porcine Circovirus in Pigs with Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome IGOR MOROZOV et all. 1998, p. 2535-2541 Vol. 36, No. 9).

Инфицирование культуры клеток РК-15 проводят биологическим объектом - гомогенатом их лимфатических узлов (проб материала лимфатических узлов было в опыте 20 от поросят 3-4 недельного возраста, зараженных цирковирусом свиней 2 типа - штаммом «PCV2/SHBC»).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «PCV2/SHBC» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Пример 4.

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей как и в известном способе. После 40 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «PCV2/SHBC» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Пример 5. Готовят гомогенаты легких из проб материала легких известным способом (Патент РФ №2283862 Цирковирус свиней 2 типа и его применение, МПК C12N 7/00, C12N 15/34, C12N 15/63, C07K 14/01, A61K 39/12, C12Q 1/68, G01N 33/569, опубликовано 20.09.2006, Бюл. №26).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 40 минут в 0,02 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,4, содержащем 4% параформальдегида и 0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 24°С, затем обрабатывают последовательно 15 минут 0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,4, содержащем 0,4 М глицина и 2% казеина, затем 15 минут 0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 40 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «PCV2/SHBC» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Пример 6. Готовят гомогенаты лимфатических узлов из проб материала лимфатических узлов известным способом (Методические особенности изоляции вируса из лимфоидных органов свиньи и инфицирование культуры РК -15 описано в статье Морозова И. (JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY Detection of a Novel Strain of Porcine Circovirus in Pigs with Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome IGOR MOROZOV et all. 1998, p. 2535-2541 Vol. 36, No. 9).

Пример 7.

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегид и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же тест-препараты обрабатывали известным способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат.Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено еще положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 8. Готовят гомогенаты легких из проб материала легких известным способом (Патент РФ №2283862 Цирковирус свиней 2 типа и его применение, МПК C12N 7/00, C12N 15/34, C12N 15/63, C07K 14/01, A61K 39/12, C12Q 1/68, G01N 33/569, опубликовано 20.09.2006, Бюл. №26).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же пробы обрабатывали способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат. Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 9. Готовят гомогенаты лимфатических узлов из проб материала лимфатических узлов известным способом (Методические особенности изоляции вируса из лимфоидных органов свиньи и инфицирование культуры РК-15 описано в статье Морозова И. (JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY Detection of a Novel Strain of Porcine Circovirus in Pigs with Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome IGOR MOROZOV et all. 1998, p. 2535-2541 Vol. 36, No. 9).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 30 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же пробы обрабатывали способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат. Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 10.

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 30 минут в 0,01 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,2, содержащем 1% параформальдегида и 0,2% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 22°С, затем обрабатывают последовательно 10 минут 0,01 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2, содержащем 0,3 М глицина и 1% казеина, затем 10 минут 0,3%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 40 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же тест-препараты обрабатывали известным способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат.Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено еще положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 11. Готовят гомогенаты легких из проб материала легких известным способом (Патент РФ №2283862 Цирковирус свиней 2 типа и его применение, МПК C12N 7/00, C12N 15/34, C12N 15/63, C07K 14/01, A61K 39/12, C12Q 1/68, G01N 33/569, опубликовано 20.09.2006, Бюл. №26).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 40 минут в 0,02 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,4, содержащем 4% параформальдегида и 0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 24°С, затем обрабатывают последовательно 15 минут 0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,4, содержащем 0,4 М глицина и 2% казеина, затем 15 минут 0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 40 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Те же тест-препараты обрабатывали известным способом-прототипом. Все тест-препараты, обработанные способом - прототипом дали отрицательный результат.Все тест-препараты, обработанные по заявляемому способу дали положительный результат, что подтверждено еще положительным результатом ПЦР в реальном времени.

Пример 12. Готовят гомогенаты лимфатических узлов из проб материала лимфатических узлов известным способом (Методические особенности изоляции вируса из лимфоидных органов свиньи и инфицирование культуры РК-15 описано в статье Морозова И. (JOURNAL OF CLINICAL MICROBIOLOGY Detection of a Novel Strain of Porcine Circovirus in Pigs with Postweaning Multisystemic Wasting Syndrome IGOR MOROZOV et all. 1998, p. 2535-2541 Vol. 36, No. 9).

Фиксацию культуры клеток РК-15 проводят в течение 40 минут в 0,02 М фосфатно-солевым буфере с рН 7,4, содержащем 4% параформальдегида и 0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля при температуре 24°С, затем обрабатывают последовательно 15 минут 0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,4, содержащем 0,4 М глицина и 2% казеина, затем 15 минут 0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела. Далее в лунках полистироловых панелей производят окрашивание комплекса антиген-антитела добавлением хромоген-субстратного раствора по 50 мкл в каждую лунку полистироловых панелей, как и в известном способе. После 40 минутного окрашивания хромоген-субстратным раствором, лунки промывают дистиллированной водой и вирус штамма «Stoon 1010» выявляют по темно-красному окрашиванию цитоплазмы инфицированных клеток со светлым неокрашенным ядром. У неинфицированных клеток отсутствует окрашивание цитоплазмы.

Таким образом, только использование предлагаемого технического решения при диагностике цирковируса свиней 2 типа позволило диагностировать это заболевание животных.

1. Способ диагностики цирковируса свиней, включающий посев культуры клеток РК-15, инфицирование ее биологическим материалом, фиксацию клеток РК-15, инкубирование последовательно со специфическими сыворотками и антисвиными меченными пероксидазой хрена иммуноглобулинами и выявление антигена цирковируса свиней по наличию темно-красного окрашивания цитоплазмы клеток, отличающийся тем, что фиксацию клеток РК-15 проводят в течение 30-40 минут в 0,01-0,02 М фосфатно-солевом буфере с рН 7,2-7,4, содержащем 1-4% параформальдегида и 0,2-0,4% нонилфенилполиэтиленгликоля, при температуре 22-24°С, затем обрабатывают последовательно 10-15 минут 0,01-0,02 М фосфатно-солевым буфером с рН 7,2-7,4, содержащим 0,3-0,4 М глицина и 1-2% казеина, затем 10-15 минут 0,3-0,6%-ной перекисью водорода, после чего наносят специфические поликлональные антитела.

2. Способ диагностики цирковируса свиней по п.1, отличающийся тем, что в качестве биологического материала используют сыворотку крови, или гомогенат лимфоузлов, или гомогенат легких.

Группа изобретений относится к области детекции маркера-мишени в биологическом образце. Набор для детекции маркера-мишени в биологическом образце в комбинации с молекулой, связывающейся с маркером-мишенью, способной специфически связываться с маркером-мишенью, содержит: первое связывающее средство, содержащее первую связывающую молекулу, способную прямо или косвенно специфически связываться с молекулой, связывающейся с маркером-мишенью, и вещество мечения; линкерную молекулу, способную специфически связываться с первым связывающим средством; и второе связывающее средство, содержащее вторую связывающую молекулу, способную специфически связываться с указанной линкерной молекулой, и вещество мечения.

Способ и система для определения биологического ответа мишени на растворимое вещество-кандидат // 2671974

Группа изобретений относится к обнаружению мишень-ориентированных лекарственных средств. Способ определения биологического ответа мишени на растворимое исследуемое вещество содержит следующие этапы: - в ламинарный поток буферной жидкости, текущей через дисперсионный канал, вводят растворимое исследуемое вещество с образованием растворенного исследуемого вещества в буферной жидкости, имеющего начальный концентрационный профиль; ламинарным потоком буферной жидкости через дисперсионный канал вышеуказанное растворенное исследуемое вещество диспергируется так, чтобы в буферной жидкости содержался диспергированный концентрационный профиль; направляют ламинарный поток буферной жидкости, содержащей раствор исследуемого вещества, имеющий вышеуказанный профиль, в канал обнаружения так, что в этом канале растворенное исследуемое вещество образует конечный симметричный концентрационный профиль растворенного исследуемого вещества в буферной жидкости; вводят мишень в канал обнаружения для смешения с растворенным исследуемым веществом, имеющим конечный симметричный концентрационный профиль в буферной жидкости таким образом, чтобы получить в буферной жидкости смесь, имеющую объединенный концентрационный профиль, причем указанный профиль содержит мишень, имеющую постоянный концентрационный профиль мишени, смешанную с растворенным исследуемым веществом, имеющим конечный симметричный концентрационный профиль в буферной жидкости; удерживают смесь мишени и растворенное исследуемое вещество в буферной жидкости в канале обнаружения так, чтобы по меньшей мере одна половина объединенного концентрационного профиля удерживалась в этом канале; и производят оптическое сканирование смеси мишени и растворенного исследуемого вещества, содержащейся в буферной жидкости, удержанной в канале обнаружения и содержащей по меньшей мере, одну половину объединенного концентрационного профиля, для обнаружения при различных концентрациях раствора исследуемого вещества, содержащегося в объединенном концентрационном профиле, оптического сигнала, представляющего биологический ответ мишени на растворимое исследуемое вещество.

Цифровой анализ молекулярных анализируемых веществ с использованием одномолекулярного обнаружения // 2670133

Изобретение относится к биотехнологии. Описан способ обнаружения множества одномолекулярных анализируемых веществ.

Тест-система на основе конъюгатов "полимерная микросфера-тиреоглобулин" для экспресс-диагностики аутоиммунных заболеваний щитовидной железы // 2657834

Группа изобретений относится к области медицины, а также к аналитической и органической химии. Тест-система для экспрессного определения аутоиммунных антител к тиреоглобулину человека содержит фосфатный буфер и суспензионную композицию полимерных микросфер со средним размером от 1,0 до 5,0 мкм из поли(2-метил-5-винилпиридина), у которых к карбоксиметильным группам, связанным с поверхностью микросфер через атом азота пиридина, ковалентно присоединены молекулы тиреоглобулина.

Иммунологический тест для определения аутоантител против антигенов семенников // 2528060

Настоящее изобретение относится к иммунологическому тесту для обнаружения и специфического определения аутоантител против антигенов семенников, которые присутствуют при воспалительных заболеваниях половой системы самцов млекопитающих, в биологическом образце самца млекопитающего, в частности для обнаружения тестикулярных аутоантител к ER-60 и/или трансферриновых аутоантител.

Способ диагностики онкологических заболеваний и иммуноферментный набор для его осуществления // 2522231

Группа изобретений относится к области медицинской диагностики, иммунологии и онкологии, в частности к новым онкомаркерам и способам диагностики онкологических заболеваний.

Биологический микрочип на основе диэлектрофореза, система для экспресс-идентификации вирусов и способ экспресс-идентификации вирусов с их использованием // 2477310

Изобретение относится к области молекулярной биологии и может быть использовано в медицине, вирусологии и охране окружающей среды. .

Устройство и способ детектирования флуоресцентно меченных биологических компонентов // 2390024

Способ диагностики кератоконуса на ранней стадии // 2251395

Изобретение относится к области медицины, а именно к офтальмологии. .

Способ оценки непрямого антигеноспецифического розеткообразования нейтрофилов при астраханской лихорадке и вирусном гепатите в // 2239191

Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии инфекционных болезней. .