Способ получения убихинонов

 

Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается получения убихинонов. С целью повышения выхода убихинонов в качестве микроорганизмов продуцентов используют фототрофные бактерии: для получения убихинона Q7 штамм Ectothiorhodospira Shaposhnikovii ММК В 1525, убихинона Q8 штамм Thiocapsa roseopersicina ВКМ В 1613, убихинона Q10 - штамм Rhodobacter cap sulatus ВКМ В 1614. Биомассу бактерий омыляют и выделяют убихиноны из неомыленной фракции.

Изобретение относится к микробиологической промышленности, а именно к способам получения убихинонов. Цель изобретения повышение выхода убихинонов. Способ осуществляют следующим образом. В качестве микроорганизмов продуцентов убихинонов используют фототрофные микроорганизмы, которые выращивают периодическим или непрерывным способом в оптимальных для роста условиях. Биомассу из культуральной жидкости выделяют сепарированием и используют для выделения убихинонов. Выделение убихинонов проводят в несколько стадий. Вначале липиды клеток омыляют спиртовым раствором едкого кали в присутствии пирогаллола при кипячении в атмосфере аргона. Затем проводят экстракцию убихинона из неомыленной фракции петролейным эфиром, гептаном или гексаном. Экстракт промывают водой, сушат сульфатом натрия и упаривают досуха в вакуумном испарителе. Смесь убихинона и неомыленных липидов разделяют с помощью адсорбционной хроматографии на колонке с окисью алюминия. Убихинон выделяют кристаллизацией из абсолютного этанола. Для получения хроматографически чистого продукта проводят дополнительную очистку убихинонов в системе петролейный эфир диэтиловый эфир ледяная уксусная кислота (90:30:1). Идентификацию полученного убихинона проводят с помощью метода жидкостной хроматографии при высоком давлении на хроматографе фирмы "Beckman" и колонке "Altex Ultrasphere ODS 5" (4-6 мм х 25 см) в системе изопропанол метанол 50: 50 (объем/объем) при 270 нм, используя соответствующие маркеры убихинонов Q6 Q10. Выход убихинонов 2,2-4,3 мг на 1 г сухих клеток. Выход убихинонов по известному способу 0,2 мг/г. П р и м е р 1. Фототрофные бактерии Rhodobacter capsulatus ВКМ В-1614 выращивают в тонком слое при освещенности 100 ВТ/м2 в аппарате для непрерывного культивирования микроорганизмов, управляемом микроЭВМ. Установка предназначена для контролируемого непрерывного культивирования чистых культур фототрофных микроорганизмов в целях поддержания оптимальных условий их роста, а также получения биомассы с высоким содержанием практически важных соединений. При помощи созданного программного обеспечения осуществляют контроль и регулирование таких параметров роста культур, как температура, рН, Eh, скорость подачи среды и титрантов в ферментеры, оптическая плотность суспензии микроорганизмов, содержание подаваемых и образуемых газов (азот, водород, двуокись углерода, кислород). Культивирование ведут при 30оС на среде Ормерода, которая имеет следующий состав, (NH4)2SO4 0,125 KH2PO4 0,09 K2HPO4 0,06 MgSO4 7H2O 0,02 CaCl2 6H2O 0,0075 FeSO4 7H2O 0,001 ЭДТА 0,002 Микроэлементы, мл/л 1 Состав микроэлементов, мг/100 мл: H3BO3 280 Na2MoO4 75 MnCl2 4H2O 290 ZnSO4 7H2O 24 CuSO4 5H2O 55 В среду вносят также 0,2% лактата натрия в качестве источника углерода и 0,01% дрожжевого экстракта, рН среды 6,8. Полученную биомассу отделяют от культуральной жидкости с помощью сепаратора и лиофильно высушивают. Затем проводят омыление липидов следующим образом. 1 г сухих клеток помещают в колбу с мешалкой, приливают 10 мл воды, 0,5 г пирогаллола в 15 мл этанола и 5 мл 25%-ного раствора КОН. Смесь кипятят с обратным шариковым холодильником в течение 25 мин при перемешивании в токе аргона, затем охлаждают в бане со льдом. Добавляют 15 мл воды и экстрагируют петролейным эфиром, гептаном или гексаном 3 раза по 50 мл. Водную фазу отделяют с помощью делительной воронки. Обьединенный экстракт желтого цвета промывают 2 раза водой до нейтральной реакции и высушивают над сульфатом аммония. Далее экстракт отфильтровывают, количественно переносят в колбу для выпаривания и упаривают под вакуумом при 45оС. Сухой красно-оранжевый осадок растворяют в 2 мл смеси элюирования и наносят на колонку с водяной рубашкой размером 1,6 х 15 см. Хроматографию убихинона проводят на окиси алюминия для тонкослойной хроматографии фирмы "Woelm" (ФРГ) или окиси алюминия II степени по Брокману. Элюирование проводят смесью петролейный эфир (т.кип. 40-70оС) хлороформсерный эфир (85:10:5), объем 100 мл. Фракцию, содержащую убихинон в виде ярко-оранжевой полосы с Rf 0,55, отделяют и упаривают. Рехроматографию проводят либо на пластинах Силуфола (ЧССР), либо с помощью второй колонки с окисью алюминия в системе петролейный эфир (т.кип. 40-70оС) серный эфир ледяная уксусная кислота (90:30:1). Элюат упаривают и определяют количество убихинона взвешиванием или спектpофотометрически по поглощению спиртового раствора при 275 нм, используя молярный коэффициент экстинкции -14600 для кюветы с длиной оптического пути 1 см. Получают убихинон Q10, выход которого составляет 4,3 мг на 1 г сухих клеток. П р и м е р 2. Фототрофные бактерии Thiocapsa roseopersicina ВКМ В-1613 выращивают на модифицированной среде Пфеннига следующего состава, г/л: NH4Cl 1,0 KH2PO4 1,0 NaHCO3 2,0 MgCl2 1,0 KCl 1,0 CH3COONa 2,0 Na2S 9H2O 1,0 NaCl 10,0 Na2S2O3 2,0 CaCl2 0,1 Микроэлементы, мл/л 1 Витамин В12, мкг/л 12 Микроэлементы, мг/л: ZnSO4 7H2O 100 MnCl2 4H2O 30 H3BO3 300 CoCl2 6H2O 200 CuCl2 2H2O 10 NiCl2 6H2O 20 Na2MoO4 2H2O 30 FeCl3 200 Выращивание проводят на свету (20 103 эрг/см2 с) при температуре 30оС и рН 7,0-7,5. Клетки осаждают центрифугированием, лиофильно высушивают и после предварительного омыления липидов выделяют убихинон по примеру 1. Получают убихинон Q8, выход которого составляет 2,2 мг на 1 г сухих клеток. П р и м е р 3. Фототрофные бактерии Ectоthiorhodospira Shaposhnikovii ВКМ В-1525 D выращивают на среде Ларссена следующего состава, NH4Cl 0,05 KH2PO4 0,1 MgCl2 0,05 NaCl 0,2 CaCl2 0,01 NaHCO3 0,5 FeCl3 0,01 Na2S 9H2O 0,01 CH3COONa 0,2 Na2S2O3 0,3 Микроэлементы, мл/л 1 Состав микроэлементов, мг/л: H3BO3 5,7 Co(NO3)2 6H2O 246 CuSO4 5H2O 20 MnCl2 4H2O 18 ZnSO4 7H2O 430 Клетки выращивают на свету при температуре 30оС и рН 8,3-8,6, сепарируют, высушивают лиофильно и выделяют убихинон по примеру 1. Убихинон Ectothiorhodospira Shaposhnikovii ВКМ В-1525 D идентифицирован как убихинон Q7. Коэффициент экстинкции равен 14800 для 1 см кюветы при 275 нм. Выход убихинона Q7 составляет 3,0 мг на 1 г сухих клеток. Таким образом, использование для получения убихинонов фототрофных бактерий позволяет в 10-20 раз увеличить их выход.

Формула изобретения

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ УБИХИНОНОВ, включающий культивирование микроорганизмов-продуцентов, отделение и омыление биомассы с последующим выделением убихинонов из неомыляемой фракции, отличающийся тем, что с целью повышения выхода убихинонов, в качестве микроорганизмов продуцентов используют фототрофные бактерии Rhodobacter capsulatus ВКМ В-1614 или Thiocapsa roseopersicina ВКМ В-1613, или Ectothiorhodospira Schaposhnikovii ВКМ В-1525D.

MM4A Досрочное прекращение действия патента Российской Федерации на изобретение из-за неуплаты в установленный срок пошлины за поддержание патента в силе

Номер и год публикации бюллетеня: 36-2000

Извещение опубликовано: 27.12.2000        




 

Похожие патенты:

Изобретение относится к микробиологии и может быть использовано для дифференциации аэробных бактерий

Изобретение относится к микробиологической промьшшенности и касается нового штамма бактерий, котррый может быть использован для очистки морской воды от нефтяных загрязнений

Изобретение относится к биологии , а именно к способам ферментативного разрушения клеточной стенки мицелиальных грибов для получения протопластов , ,и может быть использовано в биохимических, микробиологических и генетических исследованиях

Изобретение относится к технической микробиологии и может быть использовано для производства энтомопатогенного препарата - дендробациллина

Изобретение относится к микробиологической промьшшенности, в частности к способу выделения гуанилрибонуклеазы, применяется в молекулярной биологии для изучения структуры РНК и ферментативном синтезе олигоркбонуклеотидов Сущность изобретения заключается в том, что фильтрат культуральной жидкости Tricho- derma harzianum хроматографируют непосредственно на КМ-целлю,гюзе при рН 5 ,0-7,3, при этом сорбцию осуществляют в статике или динамике, а элюцию в динамике ступенчатым градиентом 0,2 и 0,5 М ацетата натрия рН 7,3 или 0,25 М трис-НС с 1,0 М NaCl, или прямолинейным градиентом 0,01- 0,5 М ацетатно-аммиачного буфера рН 5,3, после чего активные фракции подвергают диализу против О,01-0,02М трис-НС1 буфера рН 7,3-7,7, пропускают через ДЭАЭ-целлюлозу в тпм же буфере и окончательно хроматографируют на КМ-целлюлозе, при этом для элюции используют ацетатно-ам миачный буфер рН 5,4 или прямолинейный градиент 0,01-0,5 М хлористого натрия в 0,02 М трис-НС1 буфере, или последовательно два градиента: вначале прямолинейный градиент 0,01-0,05 М трис- НС буфера рН 7,3, а затем градиент 0,2 М хлористого натрия в трис-НС1 буфере того же рН

Изобретение относится к микробиологии и касается получения нового штамма бактерий, пригодного для очистки почвы, пресной и морской воды от нефти и нефтепродуктов в течение 7-14 суток, в широком диапазоне температур 12-30oC

Изобретение относится к медицинской микробиологии и иммунологии, в частности, к разработке, производству и контролю качества живых сибиреязвенных вакцин

Изобретение относится к иммунологии и может быть использовано для экспрессной индикации бактериальных средств при возникновении чрезвычайных ситуаций
Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается нового штамма бактерий, используемых для биологической утилизации формальдегида, а также сопутствующих ему метанола и формиата в сточных водах химических производств (нефтехимзаводы, производства карбамидных смол, пластмасс и т.д.)

Изобретение относится к медицинской и ветеринарной микробиологии и касается штамма бактерий спорообразующего микроорганизма для контроля эффективности стерилизации изделий медицинского и ветеринарного назначения термическим методом, а именно стерилизации водяным паром

Изобретение относится к медицине, а именно к лепрологии, и может быть, в частности, использовано для моделирования лепрозной инфекции на лабораторных животных
Наверх