Способ моделирования абсцесса печени



Способ моделирования абсцесса печени
Способ моделирования абсцесса печени
Способ моделирования абсцесса печени
Способ моделирования абсцесса печени
Способ моделирования абсцесса печени

 


Владельцы патента RU 2560778:

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "БАШКИРСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ МЕДИЦИНСКИЙ УНИВРЕСИТЕТ" Министерства здравоохранения Российской Федерации (RU)

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной гнойной хирургии, и может быть использовано для моделирования абсцесса печени. Для этого крысе линии Wistar под ультразвуковым контролем проводят чрескожную пункцию печени в определенной точке. Для ее нахождения отмечают линию №1 - срединную линию, соответствующую анатомически срединной плоскости крысы; линию №2 - перпендикулярную первой, соединяющую наиболее нижние точки левой и правой реберной дуг, замеряют и делят на три равные части отрезок линии №2, идущий от точки пересечения линий №1 и №2 до левой реберной дуги. Выбирают точку пункции на границе внутренней и средней третей данного отрезка. Иглу вводят перпендикулярно к поверхности на глубину в 1.2 см. В качестве препарата, вызывающего некроз ткани печени с формированием полости, вводят 0.3 мл водного раствора трипсина с концентрацией 1 мг/мл. Затем стафилококковый гной вводят через 2 суток в объеме 0.5 мл, содержащем 1 млн KOE. Перекрывают просвет на 5 суток с последующим ультразвуковым контролем. Использование изобретения упрощает и удешевляет формирование абсцессов печени, предотвращает побочное действие на организм лабораторного животного, ведущее к его гибели. 1 з.п. ф-лы, 5 ил.

 

Предлагаемое изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной гнойной хирургии, и может быть использовано для моделирования абсцесса печени.

Интенсивное развитие хирургии печени началось с середины шестидесятых годов прошлого века, чему способствовало изучение ее анатомии, внутрипеченочной архитектоники трубчатых структур, накопление опыта хирургии печени с внедрением новых технологий, технических средств и методов, позволяющих производить обширные вмешательства на печени. Вследствие резкого увеличения количества оперативных вмешательств на печени выросло и количество различных осложнений, в том числе формирование инфицированных полостных образований печени различной этиологии, что, в свою очередь, потребовало пристального изучения процессов происходящих в печеночной ткани при возникновении в ней инфицированного полостного образования.

Известно моделирование инфицированных полостных образований печени на кроликах путем введения гноеродных микроорганизмов в систему воротной вены животного [В.П. Крышень и др. Воспроизведение абсцессов печени у кроликов в эксперименте. / Патологическая физиология и экспериментальная терапия. - 1984. - Выпуск 2. - С. 68-69].

Наиболее близким аналогом изобретения является способ моделирования. абсцесса печени, заключающийся в том, что предварительно в печень устанавливают подключичный катетер, затем интрапаренхиматозно вводят 2,0 мл 70% раствора этилового спирта, а через сутки в катетер вводят 2 млн KOE в 1,0 мл стафилококкового гноя. Через 7-10 дней наступает формирование абсцесса печени [патент RU 2318248, 2008 г.]. Данная методика при современном развитии медицинской технике является, на наш взгляд, слишком сложной для рутинного моделирования полостного образования в эксперименте: крысе после наркоза необходимо произвести лапаротомию, пункцию печени, фиксацию катетера, при этом неизбежны некоторые потери лабораторных животных из-за технических осложнений и гибели животных вследствие инфицирования брюшной полости, кровотечений, осложнений анестезии.

Задачей предлагаемого изобретения является разработка технически простого и экономически целесообразного в выполнении метода моделирования абсцесса печени.

Технический результат при использовании изобретения - упрощение и удешевление способа формирования абсцессов печени, предотвращение побочного действия на организм лабораторного животного, ведущего к его гибели.

Предлагаемый способ моделирования абсцесса печени осуществляется следующим образом. Объектом для моделирования являются половозрелые аутбридинговые мужские особи лабораторной крысы Wistar с массой тела 280-300 грамм. Предварительно проводят обривание пупочной области и области мечевидного отростка животного. При помощи маркера в обритых областях проводят разметку: срединная линия (линия №1), соответствующая анатомически срединной плоскости крысы; перпендикулярная первой - вторая линия, соединяющая наиболее нижние точки левой и правой реберной дуг (линия №2). Замеряют и делят на 3 равные части отрезок линии №2, идущий от точки пересечения линий 1 и 2 до левой реберной дуги, выбирают точку на границе внутренней (ближней к точке пересечения линий 1 и 2) и средней третей данного отрезка, которая соответствует проекции центральной части левой доли (фиг.1). В определенной таким образом точке проводят пункцию с введением иглы с мандреном перпендикулярно к поверхности на глубину в 1.2 см, таким образом конец иглы оказывается в толще левой доли печени животного. При помощи чрескожной чреспеченочной пункции тонкой иглой (с диаметром иглы 1.4 мм.) с мандреном в левой доле печени устанавливают гибкий катетер и фиксируют к коже. Правильность места пункции контролируется при помощи ультразвукового аппарата. Затем интрапаренхиматозно через канал катетера вводят 0,3 мл водного раствора трипсина с концентрацией действующего вещества 1 мг/мл, катетер перекрывают. Опытным путем было выявлено, что введение трипсина в данной дозе и концентрации приводит к отграниченному асептическому некрозу ткани печени в зоне введения препарата без значимого системного эффекта на организм лабораторного животного с формированием полости и образованием благоприятной для микроорганизмов питательной среды. Через двое суток через канал катетера вводят 0.5 мл стафилококкового гноя, содержащего 1 млн KOE, и перекрывают просвет на 5 суток. На третьи и пятые сутки осуществляется ультразвуковой контроль за состоянием печени и создаваемой инфицированной полости. Способ обеспечивает воспроизведение модели абсцесса печени при очень простом техническом исполнении, не требующем лапаротомии и длительного наркоза, и коротком сроке формирования абсцесса, при этом первичный аффект в печени с разрушением гепатоцитов и развитием воспалительных изменений благоприятствует развитию вводимых микроорганизмов, а трипсин, инактивируясь, не оказывает негативного влияния на вводимые позднее микроорганизмы. В предлагаемом способе используют экономически выгодное лабораторное животное, типовое медицинское оборудование, а также для создания первичного аффекта в печени раствор трипсина, за счет действия которого в месте его введения происходит разрушение гепатоцитов с формированием полости, а из разрушенных гепатоцитов образуется питательный бульон, благоприятствующий развитию гноеродных микроорганизмов.

Методика была апробирована на 20 животных. Для оценки эффективности предлагаемого способа моделирования инфицированного полостного образования печени, на разных сроках проведения опыта производили выведение животных из опыта введением летальных доз гексенала внутриплеврально и гистологического исследования ткани печени. Трое животных выведены через 48 часов, пять - через 5 суток, пять - через 7 суток и семь - через 10 суток от начала эксперимента. Перед выведением животного из эксперимента проводилось ультразвуковое обследование печени, после эвтаназии проводилось макроскопическое и гистологическое исследования печени. При гистологическом исследовании препараты печени окрашивались гематоксилин-эозином. На фиг.2 проиллюстрировано, что в зоне введения трипсина через 48 часа отмечается некроз и лизис гепатоцитов и межклеточных стромальных элементов. Начинает формироваться демаркационный вал, характеризующийся лейкоцитарной инфильтрацией. За «ободком» лейкоцитарной инфильтрации располагается зона с выраженным полнокровием, отеком, дегенеративными изменениями в печеночных клетках. На пятые сутки вокруг образовавшейся полости формируется явный демаркационный вал, имеются признаки усиления роста соединительнотканных элементов (фиг.3). В тканях за зоной демаркации сохраняется отек стромы, дистрофия гепатоцитов. На седьмые сутки наблюдается дальнейшее формирование демаркационного вала, увеличение количества соединительной ткани (формирование капсулы) (фиг.4). На десятые сутки наблюдается регресс воспалительных изменений за переделами формирующейся капсулы вокруг полости абсцесса (фиг.5).

Метод позволяет с учетом срока вмешательства моделировать вмешательства на различных стадиях развития очагового инфицированного образования в печени. При этом, в отличие от рассматриваемого в качестве прототипа метода, он имеет ряд преимуществ: техническая простота выполнения с использованием доступного типового медицинского оборудования и расходных материалов, для создания первичного аффекта в печени применяется раствор трипсина, обладающий значительным повреждающим действием на печеночную ткань, вызывающий воспалительные изменения в ткани на границе между формирующейся полостью и неповрежденной тканью, но не вызывающий негативного влияния на вводимые позднее в формирующуюся полость гноеродные микроорганизмы.

1. Способ моделирования абсцесса печени, включающий введение через катетер, предварительно установленный в толще печени крысы линии Wistar, сначала препарата, вызывающего некроз ткани печени с формированием полости, а затем стафилококкового гноя, отличающийся тем, что под ультразвуковым контролем проводят чрескожную пункцию печени в точке, для нахождения которой отмечают линию №1 - срединную линию, соответствующую анатомически срединной плоскости крысы; линию №2 - перпендикулярную первой, соединяющую наиболее нижние точки левой и правой реберной дуг, замеряют и делят на три равные части отрезок линии №2, идущий от точки пересечения линий №1 и №2 до левой реберной дуги, выбирают точку пункции на границе внутренней и средней третей данного отрезка, причем иглу вводят перпендикулярно к поверхности на глубину в 1.2 см, в качестве препарата, вызывающего некроз ткани печени с формированием полости, вводят 0.3 мл водного раствора трипсина с концентрацией 1 мг/мл, а стафилококковый гной вводят через 2 суток в количестве 0.5 мл, содержащего 1 млн KOE, и перекрывают просвет на 5 суток с последующим ультразвуковым контролем.

2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что пункцию печени проводят иглой с мандреном диаметром 1.4 мм.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной фармакологии и сосудистой хирургии, и может быть использовано при лечении критической ишемии конечности.

Изобретение относится к экспериментальной фармакологии и экспериментальной хирургии и может быть использовано для стимуляции регенерации резецированной печени.
Изобретение относится к медицинской технике, а именно к устройствам формирования медицинских умений и навыков. Система содержит медицинский симулятор организма человека, включающий имитаторы функциональных систем и органов, датчики измерения и контроля текущего состояния имитаторов и их положения в симуляторе, связанные мультиплексором с блоком управления симулятором, содержащим процессор с блоком установок значений нормы и патологии, корректором степени патологического состояния функциональных систем и органов и логическим блоком оценки правильности действий обучаемого и блоком корректировок, выполненным с возможностью внесения корректировок в оценку профессиональных умений и навыков и связанным с блоком инструктора, выполненным с возможностью формирования заданий и их корректировки в имитаторе функциональных систем и органов медицинского симулятора, и монитор компьютера обучаемого, связанный с блоком инструктора.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной фармакологии и экспериментальной хирургии, и может быть использовано для стимуляции регенерации резецированной печени.

Изобретение относится к биотехнологии. Описан способ ингибирования тромбообразования и ускорения фибринолиза с помощью ДНК аптамеров (олигонуклеотидов), ингибирующих активность тромбина.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной офтальмологии, и предназначено для получения модели пролиферативной витреоретинопатии. Для этого крысам в полость стекловидного тела глаза вводят 2 мкл раствора диспазы, содержащего фермент в дозе 0,03U.
Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной хирургии. Для моделирования инфравезикальной обструкции у мелких животных проводят перевязку уретры.
Изобретение относится к экспериментальной медицине, травматологии и ортопедии, хирургическому лечению травматических повреждений спинного мозга с одновременным ускорением его регенерации.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной патофизиологии и трансплантологии, и касается моделирования посттрансплантационных изменений почки.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и касается разработки тактики лечения химических ожогов пищевода и желудка. Для этого у лабораторных крыс моделируют химический ожог.
Изобретение относится к медицине, к экспериментальной онкологии и может быть использовано в качестве модели фибромиомы матки. Моделирование проводят на самках кролика весом 3-4 кг введением серотонина. Препарат вводят внутрибрюшинно в 1-й день эксперимента в дозе 50-60 мкг/кг, на 5-й день - 75-85 мкг/кг, на 10-й день - 100-115 мкг/кг, на 20-й день - 150-170 мкг/кг и на 30-й день -200-230 мкг/кг. Устанавливают развитие фибромиомы спустя 3 месяца. Способ обеспечивает упрощение создание модели заболевания. 2 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальным исследованиям в онкологии, и может быть использовано для оценки противоопухолевого действия наночастиц (НЧ) металлов. Для этого с 6-х суток после перевивки лимфосаркомы Плисса крысам-самцам осуществляют восьмикратное внутрибрюшинное или локально в опухоль введение суспензии наночастиц железа на физиологическом растворе в концентрации 1 мг/мл. Введение проводят на 6, 7, 9, 10, 14, 15, 16 и 17 сутки в разовой дозе 1,25 мг/кг массы животного. Способ позволяет достичь противоопухолевого действия НЧ без повышения токсичности их воздействия на организм. 2 табл.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной токсикологии. И может быть использовано при исследовании механизмов токсического действия урана на функциональное состояние почек и других органов и систем при комбинированном воздействии. Для этого моделирование острого воздействия обедненным ураном у анестезированных крыс осуществляют однократным последовательным введением различных форм урана. В виде пыли смешанного оксида урана (U3O8) уран вводят в легкие в дозовом диапазоне по элементу от 1 до 100 мг 238U/кг массы тела. Внутрижелудочное введение растворенной в деионизированной воде соли шестивалентного урана вводят также в дозовом диапазоне по элементу от 1 до 100 мг 238U/кг массы тела. Накожное введение урана осуществляют в виде аппликации путем погружения хвоста животного на 2/3 его длины в раствор 0,5 г/л урана в течение 10-60 минут. Способ воспроизводит острое комбинированное воздействие обедненным ураном, близкое к таковому у человека в условиях военных конфликтов, а также в условиях проживания в эндемических зонах урановых месторождений и хранилищ. 1 пр., 5 табл.
Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной онкологии, и может быть использовано в качестве модели опухоли толстой кишки. Для этого крысе в просвет общего желчного протока вводят пикрилсульфоновую кислоту в дозе 0,03-0.05 мл. Введение осуществляют 2-кратно с интервалом 5-10 дней. Способ обеспечивает создание модели зубчатой аденомы толстой кишки. 3 пр.

Изобретение относится к экспериментальной биологии и медицине и может быть использовано для определения степени устойчивости мелких лабораторных животных к острой гипобарической гипоксии. Для этого осуществляют подъём животного в барокамере и регистрацию времени восстановления после спуска с высоты. Подъём животного осуществляют на высоту 9000 м без промежуточных остановок со скоростью 50 м/с. При подъеме регистрируют высоту, на которой возникают признаки угнетения двигательной активности с оценкой в баллах. При этом угнетение двигательной активности на высоте 4000 м оценивают как 30 баллов, 5000 м - как 25 баллов, 6000 м - как 20 баллов, 7000 м - как 15 баллов, 8000 м - как 10 баллов, 9000 м оценивают как 5 баллов. На высоте 9000 м животных выдерживают 10 минут. После этого при спуске с высоты регистрируют высоту, на которой возобновляется двигательная активность с оценкой в баллах. Возобновление двигательной активности на высоте 8000 м оценивают как 5 баллов, 7000 м - как 10 баллов, 6000 м - как 15 баллов, 5000 м - как 20 баллов, 4000 м оценивают как 25 баллов. После спуска животного проводят неврологическое тестирование и регистрируют время восстановления позных реакций с оценкой в баллах. При этом восстановление корковых рефлексов - реакции постановки лап на опору и хватания на 1 минуте - оценивают как 1 балл, на 2 минуте - как 4 балла, на 3 минуте - как 8 баллов, на 5 минуте - как 12 баллов, на 7 минуте - как 24 балла, на 10 минуте оценивают как 48 баллов. Восстановление рефлексов, замыкающихся на уровне среднего мозга и Варолиева моста - рефлексов переворачивания и равновесия на 1 минуте - оценивают как 1 балл, на 2 минуте - как 6 баллов, на 3 минуте - как 12 баллов, на 5 минуте - как 24 балла, на 7 минуте - как 48 баллов, на 10 минуте оценивают как 96 баллов. После этого полученные баллы суммируют. Если полученная сумма баллов составляет 25 баллов и менее животных относят к высокоустойчивым к острой гипобарической гипоксии. При значении полученной суммы 26-70 баллов животных относят к среднеустойчивым. Если сумма баллов составляет 71-116 баллов, животных относят к низкоустойчивым. При результате 117-199 баллов животных относят к неустойчивым к гипоксии. При этом животных, у которых отмечаются судороги, признают неустойчивыми к гипоксии независимо от количества набранных баллов. Способ обеспечивает повышение точности исследования при снижении вероятности гипоксического повреждения ЦНС в результате тестирования. 4 табл.

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной офтальмологии, и предназначено для получения модели пролиферативной витреоретинопатии. Для этого в полость стекловидного тела глаза крысы вводят 2 мкл изотонического раствора, содержащего 0,5 мкг - 0,5 мг конканавалина А. Способ позволяет получить через 8 недель адекватную модель пролиферативной витреоретинопатии, необходимую для разработки методов профилактики и лечения этой патологии. 5 ил., 2 пр.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и может быть использовано при ранней диагностике и лечении опухолей, индуцированных в эксперименте. Для раннего МРТ выявления опухолей, инвазий и метастазов животному вводят комбинации МРТ-негативных контрастных нанопрепаратов с позитивными МРТ контрастными препаратами. Диагностику проводят путем контрастной магнитно-резонансной томографии (КМ-РТ). Ферримагнитно-термохимиотерапию (ФТ) опухолей различной локализации проводят активированными комбинациями магнитоуправляемых нанопрепаратов. Долечивание животных с метастазами проводят комбинациями, включающими дакарбазин, доцетаксел и циклофосфан. Способ позволяет увеличить среднюю продолжительность жизни до 340% с полной регрессией опухолей у 55% животных. 6 пр., 7 табл., 15 ил.

Изобретение относится к медицине, экспериментальной хирургии и может быть использовано для лечения, коррекции и профилактики последствий ишемического воздействия на печень в условиях временного ее выключения из кровообращения. Экспериментальному животному выполняют резекцию печени с интраоперационным применением временного экстракорпорального портокавального шунтирования. В день операции внутривенно струйно медленно вводят гептрал в виде раствора для инъекций за 1,5 часа до операции в дозе 2 мг/кг, через 2 часа после первого введения в дозе 6 мг/кг и через 8 часов после первого введения в дозе 4 мг/кг. Внутривенно струйно медленно вводят кларитромицин на 5,0 изотонического раствора NaCl в дозе 3 мг/кг трижды в сутки в 700, в 1500, в 2300. В послеоперационном периоде вводят гептрал дважды в сутки - в 900 в дозе 7 мг/кг, в 1600 в дозе 5 мг/кг; кларитромицин - трижды в сутки - в 700, в 1500, в 2300 в дозе 3 мг/кг. Общая продолжительность введения гептрала и кларитромицина 10 суток. Способ обеспечивает лечение, коррекцию и профилактику развития хирургической инфекции, ишемических и реперфузионных повреждений печени, продление безопасных сроков обескровливания печени, предотвращение массивных кровотечений при операциях на ней. 3 пр., 5 таб.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной биологии, токсикологии, и может быть использовано для изучения формирования и прогрессирования изменений печени, возникающих под действием токсико-химических повреждающих факторов. Для этого предложен способ моделирования подострого токсического поражения печени. Способ включает введение крысам-самцам перорально в течение 21 дня формалина. Введение осуществляют через день, из расчета 0,2 мл на 100 г массы животного. Одновременно воздействуют 10% раствором этанола, который используют вместо питьевой воды свободным поением животных. Способ обеспечивает развитие выраженных дегенеративных повреждений практически всех участков печени, что подтверждается повышением трансаминаз в сыворотке крови, креатининемией, снижением синтетической функции печени и развитием холестаза. 1 табл., 3 пр.

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной токсикологии, и может быть использовано для моделирования хронического токсического поражения печени. Для этого самцам-крысам в течение 50 дней вводят через день, per os, шприцем 10%-ный раствор формалина (CH2O) из расчёта 0,2 мл на 100 г массы животного. Способ обеспечивает создание модели, по сроку моделирования и картине поражения в патогенезе приближенной к клиническому течению хронического процесса в печени за счёт развития структурных и функциональных изменений в гепатоцитах под действием вводимого химического вещества. 1 табл.
Наверх