Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов



Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов
Способ изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов

 

A01N1/02 - Консервирование тел людей или животных, или растений или их частей; биоциды, например дезинфектанты, пестициды, гербициды (препараты для медицинских,стоматологических или гигиенических целей A61K; способы или устройства для дезинфекции или стерилизации вообще, или для дезодорации воздуха A61L); репелленты или аттрактанты (приманки A01M 31/06; лекарственные препараты A61K); регуляторы роста растений (соединения вообще C01,C07,C08; удобрения C05; вещества, улучшающие или стабилизирующие состояние почвы C09K 17/00)

Владельцы патента RU 2566648:

Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России) (RU)
Закрытое акционерное общество "Альдомед" (ЗАО "Альдомед") (RU)

Изобретение относится к медицине. Способ изготовления и хранения анатомических музейных влажных макропрепаратов включает промывание препарата водой с последующей фиксацией препарата путем полного погружения в емкость с раствором химического реагента, с последующей заменой реагента на свежий, причем при приготовлении макропрепарата фиксацию осуществляют путем его погружения в 10% водный раствор глиоксаля по объему, превышающему объем макропрепарата не менее, чем в 10 раз, далее замену реагента производят трижды на 7, 14, 21 сутки, каждый раз промывая макропрепарат после удаления реагента проточной водой, для музейных экспонатов, фиксация которых осуществлялась 10% раствором формалина, формалин сливают, а перезаливку на 14, 28 и 42 сутки проводят 10% водным раствором глиоксаля. Изобретение позволяет сохранить цвет и органолептические свойства мягких тканей макропрепаратов, сохраняющихся в фиксирующей жидкости. 30 ил., 5 табл.

 

Изобретение относится к области медицины, а именно к нормальной, патологической анатомии, морфологии и судебной медицине, и может быть использован для изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов.

Основной проблемой, возникающей при изучении биологического материала в процессе обучения в медицинских вузах, является его недолговечность. В связи с развитием техники сохранения биологических тканей в настоящее время студент, изучающий медицину, может работать с консервированными органами, частями тел или целыми телами неограниченное время. Если препарат содержать и экспонировать в банках в формалиновом растворе, то со временем он выцветает, становится серым. Анатомические, патолого-анатомические и судебно-медицинские препараты, сохранившие свою естественную окраску, представляют большой интерес, они не только красивы, но и демонстративны. Ткани внутренних органов, таких как печень, почки, селезенка, головной мозг, поджелудочная железа, сердце, желудок, кишечник при длительном хранении в растворе формалина не только теряют естественную окраску, становясь серыми, но и отдают часть красящих веществ в раствор, из-за чего он принимает цвет органа, а иногда и мутнеет. В связи с этим возникает необходимость в регулярной смене раствора. Кроме того, растворы наиболее часто употребляемого для этих целей формалина являются высоко токсичными, что создает потенциальную угрозу здоровью не только обучающихся, но в первую очередь преподавателей, работающих с токсичными растворами. Также и утилизация отработанного формалина является довольно дорогостоящей процедурой.

Наиболее близким к предлагаемому является трехмоментный или трехфазный способ Н.Ф. Мельникова-Разведенкова, основанный на том, что макропрепарат фиксируют формалином. При этом происходит переход оксигемоглобина в метгемоглобин, имеющий грязно-бурый цвет. А при последующем воздействии крепким спиртом метгемоглобин переходит в нейтральный гематин, который и обуславливает цвет препарата, приближенный к естественному [1, 2, 3, 4, 5, 6, 7]. Известно, что при длительном хранении таких макропрепаратов все равно цвет изменяется, вплоть до бурого, смесь часто плесневеет [1, 3, 5, 7], особенно губительно это сказывается на изменении цвета кожных покровов макропрепарата.

Поэтому актуальным является замена высокотоксичных растворов формалина на менее токсичные растворы, обладающие всеми лучшими свойствами формалина как фиксатора биоматериала и реагента, в котором музейные экспонаты сохраняют достоверный цвет и структуру биологических тканей.

Новый технический результат - сохранение цвета и органолептических свойств мягких тканей макропрепаратов, сохраняющихся в фиксирующей жидкости.

Для достижения нового технического результат в способе изготовления и хранения музейных анатомических влажных макропрепаратов, включающем промывание препарата водой с последующей фиксацией препарата путем полного погружения в раствор химического реагента, с последующей заменой реагента на свежий, причем, при изготовлении анатомического препарата для фиксации его заливают 10% водным раствором глиоксаля по объему, превышающему объем макропрепарата не менее, чем в 10 раз, далее замену реагента производят трижды: на 7, 14, 21 сутки, каждый раз промывают макропрепарат проточной водой, после чего емкость герметично закрывают.

Также для хранения музейных экспонатов, фиксация которых осуществлялась 10% раствором формалина, раствор формалина сливают, препарат промывают проточной водой и, далее, перезаливку проводят 10% водным раствором глиоксаля на 14, 28 и 42 сутки.

Способ осуществляют следующим образом.

Биологический объект (внутренний орган, органокомплекс, фрагмент конечности, конечность), изъятый после вскрытия трупа, промывают проточной водой 1-2 минуты до «чистых вод». После промывания объект помещают в емкость и заливают 10% раствора глиоксаля до полного погружения объекта в раствор. При этом объем раствора должен превышать объем биологического объекта не менее, чем в 10 раз. Далее, через 7 дней после помещения объекта в раствор объекта из емкости, раствор сливают для утилизации, промывают емкость и объект проточной водой до чистоты и вновь заливают десятикратным по объему водным раствором глиоксаля, далее, перезаливку макропрепарата вышеописанным образом осуществляют на 14 и 21 сутки, после чего емкость герметично закрывают. Макропрепарат готов для экспозиции в качестве музейного экспоната.

Для музейных экспонатов, фиксация которых осуществлялась 10% раствором формалина, обработку проводят следующим образом - препарат извлекают из емкости, помещают его в лоток, сливают для утилизации раствор формалина. Промывают на лотке в проточной воде в течение 1-2 минут. Помещают в чистую емкость. Заполняют емкость с анатомическим музейным экспонатом 10% водным раствором глиоксаля до полного погружения объекта в раствор. Далее, проводят перезаливку на 14, 21 и 42 сутки 10% водным раствором глиоксаля. После этого емкость плотно закрывают. Музейный экспонат готов для хранения и экспонирования.

Необходимо тщательно следить за тем, чтобы препарат погружался в раствор полностью, в случае всплывания препарата на него необходимо наложить слой ваты и небольшой груз.

Для определения параметров способа и выбора раствора для хранения его состава и концентрации были проведены экспериментальные испытания, включающие как изготовление анатомических макропрепаратов, так и обработку для хранения музейных макропрепаратов, зафиксированных и хранящихся в 10% водном растворе формалина.

Целью испытаний явилась оценка эффективности глиоксальсодержащего средства в качестве средства для изготовления и хранения музейных анатомических экспонатов, а также целесообразности замены растворов формалина для целей хранения музейных экспонатов, разработка режимов применения средства.

В ходе работ проведена серия исследовательских экспериментов. Испытание проведено на 50 музейных экспонатах различных органов человека музея кафедры судебной медицины с курсом токсикологической химии ГБОУ ВПО СибГМУ Минздрава России. Материалы, представленные в Приложении 1 (Табл. 1-5) и Приложении 2 (фиг. 1-30), иллюстрируют результаты исследований.

В Приложении 1 представлены данные испытаний 5 макропрепаратов:

- препарат №63 «Субкапсулярная гемангиома печени» (фиг. 1-6);

- препарат №35«Инородное тело в гортани (камни)», фиг. (7-12);

- препарат №85 «Плод в матке» (фиг. 13-18);

- препарат №80 «Криминальный аборт» (Фиг. 19-24);

- препарата№252 «Киста почки» (Фиг. 25-30).

Для хранения экспонатов, зафиксированных в водном растворе формалина, замена растворов формалина на новые глиоксальсодержащие средства производилась по следующей схеме.

Были испытаны растворы, содержащие действующее вещество - глиоксаль в долях 2, 5, 7,5, 10, 15, 20% без добавления хлорида натрия и с добавлением хлорида натрия в доле 0,9% и 0,09%, без добавления и с добавлением этилового спирта в долях 5% и 10% в сравнении с 10% раствором формалина.

Наблюдение за состоянием свежеприготовленных согласно предлагаемому способу и хранящихся анатомических экспонатов проводилось в течение 5 месяцев после перезаливки с регистрацией ряда параметров: цвет раствора, прозрачность раствора, выпадение осадка в растворе, внешний вид препарата по сравнению с исходным, цвет препарата по сравнению с исходным, состояние поверхности препарата, сохранность препарата - целостность, набухание/усыхание по сравнению с исходным. Наблюдение проводилось ежедневно. Результаты фиксировались сразу после перезаливки, на 7, 14, 21, 28, 31, 42 на 93 день и на 155 день после перезаливки. При необходимости, в случае активного помутнения раствора, выпадения осадка, чрезмерного прокрашивания раствора, раствор меняли на свежий аналогичный. Наблюдение продолжались до конца периода в 155 дней.

Как показали результаты, растворы с содержанием глиоксаля в долях 15 и 20% являются чрезмерно густыми, и анатомические препараты всплывают над поверхностью и начинают высыхать; растворы с содержанием глиоксаля в доле 2,5 и 7,5% быстрее других окрашиваются, хоть и сохраняют прозрачность. Содержание хлорида натрия и этилового спирта не оказало никакого явного влияния на сохранность экспонатов и состояние раствора по сравнению с растворами с аналогичным содержанием глиоксаля без хлорида натрия и этилового спирта.

В итоге в ходе изготовления и хранения путем перезаливки анатомических макропрепаратов с использованием 10% раствора глиоксаля в сравнении с использованием для этой цели 10% раствора формалина выявлена идентичность сохранности макропрепаратов на протяжении 5 месяцев наблюдения. Превосходством перезаливки с использованием 10% раствора глиоксаля является более качественное изготовление анатомических музейных макропрепаратов, что подтверждается сохранением цвета и консистенции биологических тканей, входящих в их состав. Также как и использование 10% водного раствора глиоксаля для хранения макропрепаратов, зафиксированных изначально формалином. После обработки согласно предлагаемому способу восстанавливается их цвет и консистенция тканей.

Существенным также является меньшая летучесть раствора (уровень раствора в банках с анатомическими экспонатами остается стабильным в течение 5 месяцев, в то время как раствор формалина испаряется), отсутствие запаха.

Таким образом, предлагаемый способ может успешно применятся для приготовления анатомических влажных макропрепаратов и их хранения. Проведенные испытания показали, что первоначально фиксированные в 10% водном растворе формалина макропрепараты были бледно-серого цвета, порой с землистым оттенком, кожные покровы препаратов были сморщены, подкожная клетчатка и мягкие ткани плотные, серого цвета, патологически измененные составные части препарата не имели естественного цвета и вида. И чем дольше препараты сохранялись в экспозиции музея, тем облик их становился все более искаженным. После обработки экспонатов с помощью предлагаемого способа с использованием водного раствора глиоксаля мягкие ткани макропрепаратов вернули свою консистенцию, а окраска макропрепарата восстановилась и приблизилась к исходному предфиксационному цвету органа или ткани. Мягкие ткани и жировая клетчатка также приобретала естественный цвет и мягкоэластическую консистенцию. Необходимо также отметить отсутствие запаха и меньшую летучесть применяемого реагента.

Источники информации

1. Абрикосов А.И. Техника патолого-анатомического вскрытия трупов. - М., 1948.

2. Автандилов Г.Г. Основы патолого-анатомической практики: Руководство. - 2-е изд. - Μ.: РМАПО, 1998. - 505 с.

3. Кузнецов Л.Е., Хохлов В.В., Федосеев С.П., Шигаев В.Б. Бальзамирование и реставрация трупов. Смоленск-Москва. 1999.

4. Минаков П.А. Консервирование и мумификация трупов. Русск. антропол. журн., 1924 г.; с. 26-37.

5. Привес М.Г. Методы консервации анатомических препаратов. Л.: Медгиз, 1956.

6. Ратневский А.Н. Восстановление первоначального вида кожных ран на гнилостно-измененных и мумифицированных трупах. Вопросы судебно-медицинской экспертизы и криминалистики. Горький. 1972. - Вып. 45, с. 91-95.

7. Ярославцев Б.М. Анатомическая техника (руководство по изготовлению анатомических и биологических препаратов). Фрунзе, 1961.

Способ изготовления и хранения анатомических музейных влажных макропрепаратов, включающий промывание препарата водой с последующей фиксацией препарата путем полного погружения в емкость с раствором химического реагента, с последующей заменой реагента на свежий, отличающийся тем, что при приготовлении макропрепарата фиксацию осуществляют путем его погружения в 10% водный раствор глиоксаля по объему, превышающему объем макропрепарата не менее, чем в 10 раз, далее замену реагента производят трижды на 7, 14, 21 сутки, каждый раз промывая макропрепарат после удаления реагента проточной водой, для музейных экспонатов, фиксация которых осуществлялась 10% раствором формалина, формалин сливают, а перезаливку на 14, 28 и 42 сутки проводят 10% водным раствором глиоксаля.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области органической химии, а именно к способу получения 5-(1,5,3-дитиазепан-3-ил)-хинолина (1), заключающемуся во взаимодействии 5-аминохинолина и 1-окса-3,6-дитиациклогептана в среде этанол-хлороформ (1:1, объемные) в присутствии катализатора Sm(NO3)3·6Н2O при мольном соотношении 5-аминохинолин : 1-окса-3,6-дитиациклогептан : Sm(NO3)3·6H2O = 1:1:(0.03-0.07) при комнатной температуре (~20°C) и атмосферном давлении в течение 2.5-3.5 ч.

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для получения композиций, содержащих стволовые плацентарные клетки. Способ включает: (a) получение адгезивных плацентарных клеток в растворе, включающем от 2% до 10% декстрана, от 2,5% до 10% ДМСО и от 4% до 10% HSA, (b) фильтрацию полученного раствора через 70 мкм - 100 мкм фильтр; (c) разбавление указанных клеток до содержания не более 10±3·106 клеток на миллилитр раствором, включающим от 2% до 5% декстрана, от 2,5% до 10% ДМСО и от 4% до 10% HSA, и (d) криоконсервацию раствора, содержащего клетки.

Группа изобретений относится к медицине и касается способа криоконсервации стволовых клеток, включающего получение взвеси стволовых клеток и добавление к ней раствора криопротектора при постоянном перемешивании, с последующей криоконсервацией, где в качестве криопротектора во взвесь добавляют 50%-ный раствор ДМСО в реополиглюкине до конечной концентрации ДМСО 10% в получившейся суспензии.

Изобретение относится к области сельского хозяйства, в частности к овощеводству, и может найти применение при выращивании капусты. Способ предпосевной обработки семян капусты белокочанной включает использование черемшаного отвара, приготовленного кипячением растений 3-5 мин, растворение в нем при температуре 75-80°C парааминобензойной кислоты в концентрации 0,05%, а при остывании раствора до температуры 30-40°C замачивают в полученном растворе семена капусты на 5-10 мин.

Изобретение относится к области медицины и биологии, а именно к способу дополнительного электронноплотного контрастирования кислых групп биомолекул при гистохимическом выявлении катионов натрия в ультраструктурах клеток и тканей легких и трахеи.

Изобретение относится к области медицины, в частности гематологии. Криоконсервирование гемопоэтических стволовых клеток пуповинной крови проводят при добавлении ограждающего раствора криопротектора - диметилсульфоксида - во взвесь ядросодержащих клеток с гемопоэтическими стволовыми клетками.

Изобретение относится к раствору для фиксации биологических клеток. Фиксирующий раствор предназначен для сохранения in vitro цитологического образца, содержащего ядерные клетки и эритроциты.
Рентгеноконтрастная цветная масса для наливки сосудов и способ ее приготовления для анатомических исследований. Цветная рентгеноконтрастная масса состоит из сульфата бария, глицерина, акриловой краски и водного раствора желатина.

Изобретение относится к медицине - консервированию гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) человека. Проводят вскрытие флакона криопротектора в ламинарном боксе, заправку криопротектора в специальный шприц шприцевого насоса, введение ограждающего раствора криопротектора - 55% диметилсульфоксида с 5% декстран 40 при температуре +4°C во взвесь ядросодержащих клеток с гемопоэтическими стволовыми клетками в криопакете с концентратом и одновременное механическое перемешивание в аппарате для перемешивания, перенос системы вместе с флаконом криопротектора в ламинарный бокс, выпуск воздуха из криопакета и части взвеси, запайку и помещение его в термоусадочный пакет и осуществление программного многоэтапного замораживания, на первом этапе которого смесь взвеси со стволовыми клетками и криопротектором - образец замораживания - выдерживают 10 мин при температуре +4°C, на втором этапе охлаждают со скоростью 1°C/мин до температуры -12°C, на третьем этапе охлаждают со скоростью 20°C/мин до температуры -60°C, на четвертом этапе нагревают образец со скоростью 10°C/мин до температуры -18°C, на пятом этапе охлаждают образец со скоростью 1°C/мин до -60°C и в конце программы замораживания образец охлаждают со скоростью 3°C/мин до температуры -100°C, после замораживания образец помещают в карантинный дьюар с жидким азотом, до определения результатов тестов на инфекционные агенты и бактериологическую грибковую контаминацию.

Изобретение относится к способу получения 1,6-бис-(1,5,3 -дитиазепан-3-ил)-2,5-дисульфанилгексана формулы (1), обладающего фунгицидной активностью против Botrytis cinerea и Rhizoctonia solani.

Изобретение относится к области биотехнологии и может быть использовано для хранения препаратов ДНК в жидком виде. Получают композицию, содержащую буферный раствор, включающий 0,5-4% N-лаурилсаркозина, 5-20 мМ ЭДТА, 30-200 мМ Трис (гидроксиметил) аминометана и воду - остальное. Варианты композиции могут содержать 0,04-0,4% NaN3 (азида натрия) вместо Трис либо совместно с ним. Полученные композиции применяют для пропитки пористых носителей для хранения и/или транспортировки ДНК-содержащих препаратов или ДНК. Изобретение обеспечивает стабильность ДНК биообразцов в широком диапазоне температур в течение длительных периодов времени. 4 н. и 15 з.п. ф-лы, 4 ил., 6 табл., 4 пр.
Изобретение относится к медицине, в частности к области нормальной анатомии, и может быть использовано для обучения школьников, студентов, аспирантов и врачей. Осуществляют предварительное санирование анатомического объекта и его инъекционное инфильтрирование бальзамирующим раствором. Раствор содержит 7% формалина с добавлением тимола из расчета 1-2 г на 10 литров. Объект погружают в раствор на 1,5-2 месяца. В день начала применения осуществляют приготовление раствора консерванта с использованием жидкого концентрата и перемещение в него объекта. Концентрат представляет собой смесь диалканолзамещенного диметилгидантоина и гидантоина в соотношении 20:1 и 3-йод-2-пропинилбутилкарбамат с концентрацией 0,29-0,39%. Раствор обновляют каждые 6 месяцев. Для демонстрации объект извлекают из раствора. Обеспечивается повышение безопасности и эффективности хранения и демонстрации анатомического препарата.

Изобретение относится к медицине. Для получения культуры клеток ретинального пигментного эпителия (РПЭ) взрослого донора-трупа производят удаление из глазного яблока донора-трупа роговично-склерального диска. При целостности всех частей сосудистой оболочки, глазное яблоко без роговично-склерального диска полностью погружают в емкость с фосфатно-солевым буфером с pH 7,4, производят полное отделение склеры от собственно сосудистой оболочки глаза (ССО) путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка» и пересечения со стороны супрахориоидального пространства вортикозных вен и внутрисклеральной части зрительного нерва, после чего производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и РПЭ: первый круговой разрез на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный в любом меридиане в направлении от первого кругового разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх, заливают 3 мл смеси раствора 0,25% трипсина и раствора Версена в соотношении 1:1 по объему, инкубируют при 37°C и 5% концентрации CO2 в течение 25 минут, после чего РПЭ отделяют с поверхности ССО струей фосфатно-солевого буфера с pH 7,4. Полученную взвесь клеток собирают в пробирку, центрифугируют, сливают надосадочную жидкость, к полученному осадку добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. При этом культуру клеток инкубируют при 37°C и при 5% концентрации CO2, питательную среду заменяют каждые 3-4 дня. Изобретение позволяет снизить степень загрязнения культуры клеток. 2 ил., 1 пр.

Изобретение относится к медицине. Криоконсервирование гемопоэтических стволовых клеток крови проводят путем добавления ограждающего раствора криопротектора диметилсульфоксида во взвесь ядросодержащих клеток с гемопоэтическими стволовыми клетками при температуре +4,0°C, подготовки полученной взвеси к замораживанию путем холодовой адаптации при +4,0°C в течение 10 минут. Замораживание взвеси со стволовыми клетками осуществляют до температуры -196°C с последующим отогреванием. В качестве хладагента клеточной взвеси используют сухие обеззараженные термогранулы Lab Armor с заданной температурой +4±1°C. Изобретение обеспечивает высокий технологический уровень криоконсервирования, стерильность процедуры, а также высокую устойчивость к витальному красителю мембран большего количества ядерных клеток крови. 1 табл.

Группа изобретений относится к области ветеринарии и предназначена для борьбы с эктопаразитами и эндопаразитами у животных. Заявлена ветеринарная композиция для наружного применения для лечения или предотвращения паразитарных инфекций или инвазий у животного, содержащая: (a) комбинацию четырех активных агентов, содержащую фипронил, регулятор роста насекомых, празиквантел и авермектиновый или милбемициновый активный агент; и (b) фармацевтически приемлемый носитель; где указанная композиция является жидкой композицией для наружного нанесения. Заявлен также способ лечения или предотвращения паразитарных инвазий или инфекций у животного, включающий стадию, на которой нуждающемуся в этом животному вводят эффективное количество указанной выше ветеринарной композиции для наружного применения. Заявленная группа изобретений высокоэффективная для борьбы с эктопаразитами и эндопаразитами у животных. 2 н. и 16 з.п. ф-лы, 1 ил., 6 табл., 5 пр.

Изобретение относится к области медицины, а именно к посмертной патоморфологической диагностике бифуркационной недостаточности сосудов артериального круга большого мозга. Сущность способа состоит в том, что проводят микроскопическое, морфометрическое и гистохимическое исследование продольных гистологических срезов бифуркации артерии. При выявлении не менее трех признаков: увеличении длины сочленения артерий более 370 мкм, наличии метахромазии основного вещества в сочленении и адвентиции артерий, декомплексации и неравномерной толщины коллагеновых волокон, фрагментации и лизиса внутренней эластической мембраны и эластических волокон адвентиции, диагностируют бифуркационную недостаточность сосудов артериального круга большого мозга. Использование заявленного способа позволяет повысить точность диагностики бифуркационной недостаточности сосудов артериального круга большого мозга за счет комплексной оценки изменений гистологических признаков. 1 ил., 1 табл., 1 пр.

Настоящее изобретение относится к области биотехнологии. Предложен способ получения нагруженных антигеном, активированных дендритных клеток (DC) для применения в иммунотерапии, включающий нагрузку по меньшей мере одним антигеном неактивированных DC; активацию неактивированных DC IFN-γ и липополисахаридом (LPS) для образования активированных DC; криосохранение активированных DC и размораживание активированных DC; где степень извлечения и жизнеспособность активированных DC после размораживания выше или равна приблизительно 70%, и где размороженные активированные DC продуцируют эффективное количество по меньшей мере одного цитокина для создания Т-клеточного ответа. Также рассмотрена криосохраненная композиция, содержащая DC, и способ вызова иммунного ответа у млекопитающего, включающий введение композиции по изобретению. Данное изобретение может найти дальнейшее применение в производстве лекарственных средств на основе DC. 3 н. и 12 з.п. ф-лы, 8 ил., 4 пр.

Изобретение относится к ветеринарии, в частности к искусственному осеменению крупного рогатого скота. Среда для консервирования семени быка составлена с использованием следующих компонентов (мас.%): трис-(гидроксиметил)-аминометан 1,9, фруктоза 0,9, лимонная кислота 0,7, сахароза 2, глицерин 4,5-6,5, фосфолипиды сои 0,04-2,00, высокомолекулярное поверхностно-активное вещество 0,01-1, вода бидистиллированная остальное. Способ приготовления среды для криоконсервации семени быка включает приготовление безлипидной основы среды для криоконсервации семени быка путем разведения в горячей бидистилированной воде с температурой 80-90°C трис-(гидроксиметил)-аминометана, лимонной кислоты, фруктозы, добавления глицерина и охлаждения до комнатной температуры, доведения pH раствора до 6,8. При этом отдельно готовят липосомальный концентрат посредством добавления в 10%-ный раствор сахарозы 0,2-20,0 мас.% фосфолипидов сои, вносят поверхностно-активное вещество, выдерживают при комнатной температуре, периодически помешивая 4-24 часа, затем обрабатывают суспензию на ультразвуковом дезинтеграторе в течение 5-30 минут и смешивают безлипидную основу среды для криоконсервации семени быка и липосомальный концентрат в соотношении 4:1, стерилизуют автоклавированием при температуре 115°C и давлении 1,4 атмосферы в течение 1 часа или стерилизуют фильтрацией через фильтр с порами 0,22 мкм. Предлагаемая среда для криоконсервирования имеет повышенную биологическую безопасность, обладает оптической прозрачностью и имеет длительный срок использования. 2 н.п. ф-лы, 3 табл., 2 ил., 4 пр.

Изобретение относится к области криобиологии. Предложен способ консервации биоматериала. Способ включает размещение биоматериала в стерильной емкости, удаление воздуха из емкости и ее герметизацию, обработку биоматериала в закрытой среде в емкости со смотровым окном ксеноном и охлаждение биоматериала при постоянном визуальном мониторинге. Обработку биоматериала производят ксеноном 90-99,999% степенью чистоты до величины давления в 7-9 атм., а последующее охлаждение биоматериала ведут до температуры не более +5°C, но не менее -10°C. Изобретение обеспечивает уменьшение вероятности разрушения биоматериала, в том числе в процессе хранения законсервированного биоматериала. 2 з.п. ф-лы, 5 ил., 8 табл., 2 пр.

Изобретение относится к медицине. После удаления из глазного яблока взрослого донора-трупа роговично-склерального диска глазное яблоко при отсутствии сквозных повреждений радужной оболочки, цилиарного тела и видимой части собственно сосудистой оболочки (ССО) и выхода стекловидного тела за пределы витреальной полости полностью погружают в стерильную емкость со стерильным фосфатно-солевым буфером с рН 7,4. Производят полное отделение склеры от ССО путем рассечения склеры меридиональными разрезами спереди назад на 2, 3 или 4 «лепестка». Со стороны супрахориоидального пространства пересекают вортикозные вены и внутрисклеральную часть зрительного нерва. Производят три разреза хороидально-пигментного комплекса (ХПК), состоящего из ССО и ретинального пигментного эпителия (РПЭ). Первый круговой разрез производят на расстоянии 1 мм от зубчатой линии, один меридиональный разрез - в любом меридиане в направлении от первого разреза спереди назад к культе диска зрительного нерва и второй круговой разрез - на расстоянии 1 мм от культи зрительного нерва. Далее ХПК аккуратно отделяют от нейральной сетчатки пинцетом и укладывают на дно стерильной чашки Петри в положении клетками РПЭ вверх. Добавляют питательную среду следующего состава: среда Игла в модификации Дульбекко со средой Хэма F12 (DMEM/F12) - 89%, эмбриональная телячья сыворотка - 10%, смесь антибиотиков, включающая пенициллин 10000 МЕ/мл, стрептомицин 10000 мкг/мл, амфотерицин 25 мкг/мл - 1%. При этом культуру инкубируют при 37°C и при 5% концентрации СО2, питательную среду заменяют 2 раза в день. Изобретение позволяет снизить степень загрязнения продукта. 2 ил., 1 пр.
Наверх