Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы



Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы
Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы
Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы
Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы

 


Владельцы патента RU 2605630:

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Ставропольский государственный медицинский университет" (ФГБОУ ВО Ставропольский государственный медицинский университет) Минздрава РФ (RU)
Сирак Сергей Владимирович (RU)
Ходжаян Анна Борисовна (RU)
Щетинин Евгений Вячеславович (RU)

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургической стоматологии, и может быть использовано для восстановления целостности зубных рядов. Для этого способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы включает удаление зуба-донора, формирование лунки-реципиента, аутотрансплантацию зуба-донора, покрытие его стерильными марлевыми тампонами, шинирование зуба композиционным пломбировочным материалом без выведения из контакта с зубами антагонистами. При этом до аутотрансплантации в лунку-реципиент на 2/3 ее объема вводят тканеинженерную конструкцию, состоящую из предварительно культивированных мезенхимальных клеток, полученных из пульпы зуба-донора, и гидрогеля PuraMatrix/3DM. Способ обеспечивает высокий терапевтический эффект аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы, что позволяет эффективно использовать способ, например, при наличии сверхкомплектных, ретинированных, дистопированных зубов в ортодонтии и при хирургическом удалении опухолей челюстей. 2 пр., 3 ил.

 

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургической стоматологии, и может быть использовано для восстановления целостности зубных рядов.

Аутотрансплантацией зуба называют удаление зуба из одной области и его реплантацию в другую область у одного и того же человека. Новое место может быть свежей лункой после удаления зуба, который невозможно реставрировать, или искусственно высверленная лунка на беззубом альвеолярном гребне. Это определение включает в себя хирургическую репозицию зуба в ту же самую лунку.

Основное преимущество данного способа - экономическая эффективность, реализуемая за счет возможности использования зуба, ранее не функционировавшего (обычно это - третий моляр, сверхкомплектные, ретинированные или дистопированные моляры, премоляры, резцы или клыки), путем переноса в функциональное положение для замещения утраченного зуба у одного и того же человека.

Основные недостатки способа - дополнительное хирургическое вмешательство, относительно низкая адаптивность в практике (например, несоответствие зуба и размера пространства), и, что более важно - низкая предсказуемость результата по сравнению с обычным ортопедическим лечением (имплантаты, мостовидные протезы, съемные протезы).

Неизбежно сравнение аутотрансплантации и имплантации (например, с помощью дентальных имплантатов) как методов лечения при замещении отсутствующих зубов, ряд авторов обоснованно считают реплантацию и аутотрансплантацию зубов альтернативой имплантации в современных экологических условиях [1].

Одно из основных преимуществ трансплантации над имплантацией - это возможность ее применения у пациентов до завершения пубертатного периода. Имплантаты не растут вместе с растущими пациентами и в результате оказываются в инфраокклюзии. Красота аутотрансплантированных зубов заключается в том, что они натуральны и могут прорезываться в гармонии с соседними зубами и растущими челюстями.

Существующие способы аутотрансплантации достаточно однотипны и включают несколько этапов: удаление зуба-донора, подготовка лунки-реципиента, удаление пульпы зуба-донора, установка зуба-донора в лунку-реципиент, фиксация (шинирование) зуба-донора к окружающим зубам (обычно - проволокой, пломбировочным материалом, полиамидными нитями).

Основные недостатки существующих способов - удаление пульпы из коронковой и корневой частей зуба-донора, что делает невозможным ее регенерацию и лишает ткани (дентин, эмаль, цемент) зуба-донора полноценной иннервации и кровоснабжения. Сроки службы таких зубов небольшие, поскольку только жизнеспособная пульпа дает гарантию максимально длительного функционирования зуба.

Вместе с тем, крайне важно не только сохранить пульпу аутотрансплантированного зуба, но и минимизировать воспалительную реакцию, чтобы донорский зуб обладал возможностью для регенерации пульпы и имел открытое апикальное отверстие, шириной более 1 мм.

Известен способ аутотрансплантации зуба, описанный в статье Ckyau Е. [2]. Сущность способа-прототипа заключается в том, что автор использует остеоиндуктивный потенциал клеток пародонтальной связки зуба (PDL), в результате приводящий к регенерации кости в промежутке между стенками лунки и трансплантированным зубом. По мнению автора, генетически клетки PDL могут дифференцироваться в фибробласты, цементобласты и остеобласты, что объясняет этот остеоиндуктивный феномен. Представляет интерес идея использовать в будущем такие полезные PDL клетки для улучшения разработанной автором методики аутотрансплантации. Новое прикрепление происходит примерно в течение 2 недель после аутотрансплантации между PDL соединительной тканью на поверхности донорского зуба и стенкой лунки реципиента. Положительный эффект автор подтверждает клиническими наблюдениями на рентгенограммах у детей и подростков.

Преимущества метода - автор использует потенциал собственных мезенхимальных клеток пародонтальной связки зуба, которые могут дифференцироваться в фибробласты, цементобласты и остеобласты, что обеспечивает остеоиндуктивный эффект аутотрансплантации и хорошее приживление.

Недостатки - отсутствуют объективные данные о сохранении жизнеспособности пульпы аутотрансплантированного зуба, которыми служат показатели электровозбудимости пульпы.

Известен способ посттравматической аутореплантации зубов, выбранный в качестве прототипа, направленный на повышение эффективности операции за счет сокращения сроков приживления зуба-донора и оптимизации процессов регенерации [3].

Способ осуществляют следующим образом. Удаленный зуб помещают в физиологический раствор. Лунку покрывают стерильным марлевым тампоном и больному предлагают сомкнуть челюсти. Далее приступают к обработке реплантата: пломбируют кариозные полости, если они не были запломбированы ранее, производят резекцию верхушки корня и расширяют каналы при помощи эндодонтического инструмента. Реплантант захватывают стерильным тампоном, смоченным физиологическим раствором. Орошение зуба и эндодонтического инструмента производят непрерывно через каждые 2-3 с. Расширенные каналы обрабатывают гипохлоридом натрия. Канал культи корня в области его окончания (4-5 мм) расширяют до границ цемента и он, таким образом, принимает вид конуса с вершиной, обращенной в сторону коронковой части зуба. Затем, при помощи каналонаполнителя, канал пломбируют цементом; лишь конусовидно расширенную часть заполняют амальгамой. Шейку зуба осторожно, чтобы не повредить надкостницу корня, очищают от обрывков слизистой оболочки, от зубных отложений, и подготовленный таким образом реплантат погружают в физиологический раствор, где он находится до помещения его в лунку.

Следующим этапом операции является обработка лунки реплантата: удаляют тампон, лунку промывают физиологическим раствором и вводят в нее в смеси Цефазолин натрия, Виферон и Дексаметазон в соотношении 1:1:0,1 в дозе 0,5-1 г, при этом лекарственную смесь размещают в лунке реплантируемого зуба.

Далее обработанный зуб помещают в лунку. Его покрывают двумя-тремя стерильными марлевыми тампонами и больному предлагают сомкнуть челюсти. Тампоны пациент удерживает 15-20 минут. Реплантированный зуб не выводят из контакта с зубами антагонистами, тем самым он не выключается из артикуляции.

Затем в проекции верхушки корня реплантируемого зуба делают дренажный канал круглого сечения диаметром 3-4 мм, проходящий от поверхности слизистой до дна лунки, в который устанавливают эластичный упругий дренаж в форме спирали. В целях закрепления реплантированного зуба в послеоперационном периоде применяют шинирование с помощью GlasSpan®. Шины можно снимать через 3-4 недели.

Преимущества метода - обеспечивается технический результат в виде надежной фиксации и приживления реплантированного зуба.

Недостатки: способ не предусматривает аутотрансплантации зуба, а направлен на его реплантацию, т.е. помещение обратно в его же лунку, пульпа зуба не сохраняется, в описании отсутствует методика стимулирования процесса регенерации.

Поставлена задача разработать способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы.

Поставленная задача достигается за счет использования при аутотрансплантации тканеинженерной конструкции, состоящей из предварительно культивированных мезенхимальных клеток пульпы зуба-донора и матрицы-носителя для этих клеток - гидрогеля PuraMatrix/3DM.

Способ осуществляется следующим образом.

Под местной анестезией Sol. Ultracaini 4% с адреналином 1:100000 удаляют зуб-донор. Бором расширяют апикальное отверстие корня до 1 мм, через которое вводят пульпоэкстрактор на 3 мм длины корня и эвакуируют часть корневой пульпы зуба. Зуб-донор помещают до следующего этапа в стерильный физиологический раствор и хранят при температуре 4°С.

Следующим этапом является получение клеточной культуры из пульпы зуба-донора.

Полученный фрагмент пульпы зуба-донора отмывают раствором Хэнкса с цефазолином (1 г/л). Полученную клеточную суспензию центрифугируют в режиме 1,500×g, 10 минут и ресуспендируют в ростовой среде DMEM/F12, содержащей 15% эмбриональной телячьей сыворотки, селектированной для выращивания клеток в низкой плотности, 2 мМ глутамина. Суспензию клеток высевают на пластиковые чашки Петри с диаметром 100 мм. Плотность посева первичной клеточной суспензии составляет 15 миллионов мононуклеарных клеток на 1 см2. Через 1 сутки не прикрепившиеся клетки удаляют, ростовую среду заменяют, если ее рН менее 6,0 или более 8,0, на ростовую среду, рН которой лежит в пределах от 6,0 до 8,0, при этом элиминируют клетки, не относящиеся к популяции мезенхимальных стволовых клеток. Культуры инкубируют при 37°С в атмосфере 5% CO2. По достижении культурой 50% конфлуентности монослой трипсинизируют и пересевают на новые чашки с плотностью 10-30 клеток на 1 см в ростовой среде, дополнительно содержащей 10 мкг/мл трансферрина, 1 мкг/мл инсулина, 10 нг/мл фактора роста фибробластов - 2 и 8 ЕД/мл гепарина.

Через 3 дня отбирают плотные колонии мелких клеток (диаметром 7-10 мкм) с большим количеством митозов. Отобранные колонии рассевают в новые чашки с плотностью 20 клеток/см и выращивают до состояния преконфлуентности. Последующие пассажи (если планируется аутотрансплантация нескольких зубов) производят в том же режиме. Таким образом, продолжительность получения клеточной культуры из пульпы зуба-донора составляет до 5 суток.

В полученную таким образом культуру плюрипотентных мезенхимальных клеток по каплям добавляют гидрогель PuraMatrix/3DM до загустевания смеси.

Следующим этапом операции является формирование лунки-реципиента (если ее нет в челюсти), которую готовят по стандартной методике, аналогичной методу подготовки принимающего ложа для дентального имплантата: производят разрез слизистой оболочки, хирургическими сверлами необходимого диаметра просверливают кортикальную кость и формируют лунку-реципиент. После сверления лунку промывают физиологическим раствором и вводят в нее подготовленную тканеинженерную конструкцию на 2/3 объема лунки-реципиента.

Затем зуб-донор извлекают из стерильного физиологического раствора и помещают в лунку-реципиент.

Его покрывают двумя-тремя стерильными марлевыми тампонами и предлагают больному сомкнуть челюсти. Тампоны пациент удерживает 20-30 минут.

Аутотрансплантированный зуб не выводят из контакта с зубами антагонистами, тем самым он не выключается из артикуляции. В целях закрепления аутотрансплантированного зуба в послеоперационном периоде применяют шинирование с помощью композиционного пломбировочного материала. Шины снимают через 4 недели.

Послеоперационная терапия включает антибактериальные и десенсибилизирующие средства, например азитромицин и цетрин, которые рекомендуют принимать в течение 4-5 дней.

Контроль за жизнеспособностью пульпы аутотрансплантированного зуба осуществляется путем регистрации порога ее электровозбудимости. Значения электродиагностики (ЭОД) от 20 до 45 мкА в раннем послеоперационном периоде (3-30 суток) и от 6 до 15 мкА в позднем периоде (от 1 до 3 месяцев) являются подтверждением ее функциональной состоятельности.

Для объективной оценки эффективности разработанного метода авторами-заявителями проведено экспериментальное исследование на животных.

Цель эксперимента - оценить эффективность использования разработанной тканеинженерной конструкции в восстановительной клеточной терапии пульпы аутотрансплантированных зубов барана in vivo.

Материалы и методы экспериментального исследования. Объектом для исследования служили 14 взрослых баранов в возрасте от 3 до 5 лет. Животных разделили на 2 группы - основную и контрольную. В обеих группах животных оперировали под общим внутривенным наркозом (Zoletil 50) по одинаковой методике. Для аутотрансплантации использовали резцы (зацепы) нижней челюсти. Десневой край у зубов, подлежавших пересадке, отслаивали, зубы постепенно расшатывали с помощью прямого элеватора и удаляли щипцами (фиг. 1). После экстракции зубы помещали в стерильный физиологический раствор и хранили при температуре 4°С.

И в контрольной, и в основной группах каждый удаленный зуб пересаживали в освободившуюся лунку с противоположной стороны той же челюсти, т.е. меняли зубы местами. В контрольной группе трансплантировали зуб в лунку, заполненную сгустком крови.

В основной группе перед аутотрансплантацией принимающее ложе (лунку) на 2/3 заполняли индуктором регенерации, гидрогелем PuraMatrix/3DM с мезенхимальными клетками. Данная тканеинженерная конструкция представляет собой синтетический биодеградируемый матрикс-гель на основе олигопептидных фрагментов, формирующий нанонити и предварительно культивированные мезенхимальные клетки барана, обработанные 5-азацитидином. Готовый тканеинженерный продукт получали путем добавления геля к предварительно культивированным мезенхиальным клеткм in situ.

Все трансплантированные зубы в обеих группах шинировали между собой с помощью композитного пломбировочного материала.

Всего животным пересажено 112 зубов. Через 2-3 часа после операции животные становились активными, а через 6-12 часов начинали принимать пищу. В последующие 2-3 суток у них наблюдалась повышенная саливация. В период от 3 месяцев до 1 года вследствие рассасывания корней в контрольной и основной группах выпало 9 зубов (4 и 5 соответственно) - потеря обусловлена явным несоответствием трансплантируемого корня и воспринимающего ложа.

Через 3, 15 и 30 суток, 3, 6 и 12 месяцев от начала эксперимента под общим наркозом аутотрансплантированные зубы выпиливали блоком с окружающими мягкими тканями и альвеолярным отростком, рану ушивали. Операцию проводили без умерщвления животных, поскольку объем нанесенной операционной травмы не представлял критической угрозы для их жизни. Изъятые блоки с аутотрансплантированными зубами фиксировали в 10% нейтральном формалине, после чего проводили декальцинацию блоков в трилоне-Б. Далее материал заливали в гистологическую среду «Гистомикс» с использованием гистологического процессора замкнутого типа Tissue-Tek VIP™ 5 Jr и станции парафиновой заливки Tissue-Tek® ТЕС™ 5 фирмы Sakura (Япония). Из полученных блоков делали гистологические срезы толщиной 5-7 мкм и окрашивали гематоксилином и эозином, по Маллори красителями (Bio-Optica, Италия и Биовитрум, Россия) на автоматическом мультистейнере Prisma™. Для иммуногистохимических реакций использовали моноклональные антитела к β-галактозидазе (Diagnostic BioSystems, Нидерланды 1:25 - 1:50), моноклональные мышиные антитела к фактору Виллебранда (Diagnostic BioSystems, Нидерланды 1:25 - 1:50) и поликлональные кроличьи антитела к α-SMA (SpringBioScience, США). Негативным контролем служили реакции с заменой первых антител раствором для разведения (SpringBioScience, США).

Микроскопию срезов проводили на цифровом микроскопе со встроенным фотоаппаратом Olympus ВХ45.

С каждого препарата окрашенного позитивно на β-галактозидазу, фактор Виллебранда и a-SMA, выполняли по 10 цифровых снимков (в формате jpg, размером 3136×2352 пикселей в палитре 24 бит) случайно выбранных полей зрения при увеличении x100, x200, x400 и x1000. Морфометрические исследования проводили с использованием программы Видео-Тест Морфология 5.1 для Windows. Полученные цифровые данные были анализированы с применением статистического метода t-критерия Стьюдента в программе Primer of Biostatistics 4.03 для Windows. Достоверными считали различия при p<0,05.

Научно-исследовательская работа проведена в рамках Государственного задания Министерства здравоохранения Российской федерации совместно с Центральным НИИ овцеводства и козоводства РФ и Ставропольским государственным аграрным университетом.

Результаты исследования. Дистрофические изменения пульпы в контрольной группе появляются к концу 3-х суток после аутотрансплантации зубов. Сетчатая дистрофия захватывает в первую очередь слой одонтобластов и, постепенно распространяясь на все слои пульпы, приводит ее к гибели уже к 15-м суткам (фиг. 2-а, б, в, г).

Иммуногистохимический метод контроля жизнедеятельности мезенхимальных клеток в основной группе показал, что после аутотрансплантации зуба с использованием тканеинженерной конструкции все прекультивированные клетки, равно как и трансплантируемые клетки, сохраняют свою жизнеспособность, а значит, и способность продуцировать факторы, ускоряющие процесс регенерации пульпы зуба и тканей пародонта. Данное явление выражалось в ускорении смены фаз регенераторного процесса: по сравнению с контрольной группой сокращались сроки периода клеточной инфильтрации, ускорялся темп неоангиогенеза и разрастания сосудистой сети пульпы (фиг. 3-а, б, в, г). На наш взгляд, данное явление связано с более высокой функциональной активностью мезенхимальных клеток в составе тканеинженерной конструкции в сочетании с материцей-носителем и индуктором регенерации, гидрогелем PuraMatrix/3DM, а также обусловлено создавшимися межклеточными взаимодействиями.

Полученные экспериментальные данные исследования позволяют рекомендовать разработанную тканеинженерную конструкцию в качестве носителя предварительно культивированных мезенхимальных клеток пульпы и гидрогеля PuraMatrix/3DM для эффективной доставки жизнеспособных клеток в патологический очаг, удержания их там и оптимизации условий их лечебного воздействия в местах повреждения тканей.

Таким образом, предложен новый способ лечения, характеризующийся тем, что, используя стандартные хирургические протоколы (удаление зуба-донора, формирование лунки-реципиента, шинирование зуба проволокой или композиционным пломбировочным материалом) и тканеинженерную конструкцию, состоящую из предварительно культивированных клеток пульпы зуба-донора и матрицы-носителя для этих клеток - гидрогеля PuraMatrix/3DM, получен технический результат, ранее не известный, имеющий высокий терапевтический эффект.

Хорошая совместимость указанных компонентов тканеинженерной конструкции обеспечивает синергизм их действия, приводящий к возникновению новых свойств и широкому спектру терапевтических эффектов: ускорении регенерации пульпы зуба-донора, приживления зуба-донора в лунке-реципиенте, восстановлению целостности зубного ряда.

Высокая эффективность разработанного способа аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы позволяют эффективно его использовать ее при лечении различных патологических состояний, в том числе при наличии сверхкомплектных, ретинированных, дистопированных зубов, что подтверждено конкретными клиническими примерами.

Исследования проведены на базе кафедры стоматологии Ставропольского государственного медицинского университета и Ставропольской краевой стоматологической поликлиники.

Всем больным выполнялось рентгенологическое исследование до и после выполнения аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы по вышеописанному способу.

Клинический пример 1.

Пациентка В., 17 лет, направлена из школьного стоматологического кабинета с кальцифицированным образованием в левой половине нижней челюсти. В анамнезе выявлены периодически повторяющиеся появления припухлости и болезненности в области нижней челюсти слева.

Объективно: слизистая оболочка полости рта нижней челюсти слева гиперемирована, отечна, в области 34-38 зубов определяются точечные кровоизлияния. Индекс гигиены (ИГ) (OHI-S) составил 2,5 балла (неудовлетворительная гигиена полости рта).

Рентгенологически: выявлен рентгеноконтрастный очаг поражения, расположенный в области от 35-38 зуба. Поверхность очага извитая, окружена рентгенопрозрачным ободом. 36 зуб смещен к нижней границе челюсти и располагается в нижнечелюстном канале. Рентгенологическая плотность образования составила 1500 ед по шкале Хаунсфилда. ЭОД 36, 37 зуба составляет 6-12 мкА, 38 зуба - 60 мкА.

Диагноз - одонтома нижней челюсти слева.

Лечение. Под инфильтрационной анестезией Sol. Ultracaini 4% с адреналином 1:100000 произведено хирургическое удаление одонтомы. Нижнечелюстной нерв сохранен без потери чувствительности. В ходе формирования доступа к одонтоме 36, 37, и 38 зубы удалены.

По показаниям ЭОД, проведенным до операции, принято решение произвести аутотрансплантацию 36 и 37 зуба с сохранением жизнеспособности пульпы по заявляемому способу.

Шаровидным бором расширены апикальные отверстия корней 36 и 37 зубов до 1 мм, куда введен пульпоэкстрактор на 3 мм длины корней и эвакуирована часть корневой пульпы. Зубы-доноры помещены до следующего этапа в стерильный физиологический раствор, где они хранятся при температуре 4°С.

Полученные фрагменты пульпы зубов-доноров отмыты раствором Хэнкса с цефазолином (1 г/л). Полученную клеточную суспензию центрифугировали в режиме 1,500×g, 10 минут и ресуспендировали в ростовой среде DMEM/F12, содержащей 15% эмбриональной телячьей сыворотки, селектированной для выращивания клеток в низкой плотности, 2 мМ глутамина. Суспензию клеток высеяна на пластиковые чашки Петри с диаметром 100 мм. Плотность посева первичной клеточной суспензии составила 15 миллионов мононуклеарных клеток на 1 см. Через 1 сутки не прикрепившиеся клетки удалены, ростовая среда заменена (поскольку ее рН была менее 6,0) на ростовую среду, рН которой составила 8,0, элиминированы клетки, не относящиеся к популяции мезенхимальных стволовых клеток. Культуры инкубированы при 37°С в атмосфере 5% СО2. По достижении культурой 50% конфлуентности монослой трипсинизирован и пересеян на новые чашки с плотностью 10-30 клеток на 1 см в ростовой среде, дополнительно содержащей 10 мкг/мл трансферрина, 1 мкг/мл инсулина, 10 нг/мл фактора роста фибробластов - 2 и 8 ЕД/мл гепарина.

Через 3 дня отобраны плотные колонии мелких клеток (диаметром 7-10 мкм) с большим количеством митозов. Отобранные колонии рассеяли в новые чашки с плотностью 20 клеток/см и выращивали до состояния преконфлуентности. Последующие пассажи (поскольку запланирована аутотрансплантация нескольких зубов) произведены в том же режиме. Таким образом, продолжительность получения клеточной культуры из пульпы зубов-доноров составила 5 суток. В полученную таким образом культуру плюрипотентных мезенхимальных клеток по каплям добавили гидрогель PuraMatrix/3DM до загустевания смеси.

Через 4 месяца после операции по удалению одонтомы произведено формирование 4 лунок-реципиентов (по числу корней зубов), которые подготовили по стандартной методике, аналогичной методу подготовки принимающего ложа для дентального имплантата: произвели разрез слизистой оболочки, хирургическими сверлами необходимого диаметра просверлили кортикальную кость и сформировали 4 лунки-реципиента. После сверления лунки промыты физиологическим раствором, в них введена подготовленная тканеинженерная конструкция на 2/3 их объема.

Зубы-доноры (36 и 37) извлечены из стерильного физиологического раствора и помещены в подготовленные лунки-реципиенты.

Аутотрансплантированные 36 и 37 зубы покрыты двумя стерильными марлевыми тампонами, которые удерживались пациенткой 30 минут.

Аутотрансплантированные зубы не выводили из контакта с зубами антагонистами, тем самым они не выключались из артикуляции. В целях закрепления аутотрансплантированных зубов в послеоперационном периоде использовали шинирование с помощью композиционного пломбировочного материала Филтек. Шины сняты через 4 недели после операции аутотрансплантации.

Послеоперационная терапия включала антибактериальные и десенсибилизирующие средства, азитромицин (по 500 мг 1 раз в сутки 5 суток) и цетрин (по 200 мг 2 раза в сутки 5 суток).

На контрольной рентгенограмме - полноценная интеграция корней аутотрансплантированных зубов-доноров в лунках-реципиентах. При повторном осмотре через 3, 7 и 30 суток больная жалоб не предъявляет. Результаты рентгенологического исследования, проведенные через 1 год, показали отсутствие признаков рассасывания костной ткани в области корней аутотрансплантированных зубов и отсутствие деструктивных изменений в окружающих периапикальных тканях.

Контроль за жизнеспособностью пульпы аутотрансплантированных зубов осуществляли на протяжении 1 года. Значения электродиагностики (ЭОД) 36 и 37 зубов через 3 суток после операции составили 20 и 22 мкА соответственно, через 1 месяц - 16 и 12 мкА соответственно, через 3 месяца - 6 и 8 мкА соответственно, через 1 год - 4 и 6 мкА соответственно.

Полученные данные являются подтверждением жизнеспособности и функциональной состоятельности пульпы аутотрансплантированных 36 и 37 зубов. Данный клинический пример продемонстрировал, что аутотрансплантированные зубы могут хорошо прижиться в искусственно просверленной полости лунки-реципиента во вторично регенерировавшейся кости после удаления патологического очага челюсти (одонтомы).

Клинический пример 2.

Пациент В., 14 лет, направлен на кафедру стоматологии с непрорезавшимся верхним правым боковым резцом и клыком (12 и 13 зубы).

На обзорной рентгенограмме выявлено, что расположенный горизонтально в теле альвеолярного отростка верхней челюсти 12 зуб блокировал прорезывание 13 зуба, который в свою очередь, смещенный лабиально, упирался в центральный резец слева - 11 зуб. Диагноз: ретенция и дистопия 12 и 13 зубов.

Лечение. Под инфильтрационной анестезией sol. Ultracaini 4% с адреналином 1:100000 12 зуб удален по частям (сохранить его целым не представлялось возможным), 13 зуб выведен от контакта с 11 зубом, извлечен из лунки и через 5 суток аутотрансплантирован по вышеописанной методике в позицию 12 зуба (интра-альвеолярная аутотрансплантация). Клык зафиксирован шиной из композиционного пломбировочного материала Филтек на 3 недели. В послеоперационном периоде 13 зуб занял вертикальное положение в функциональной окклюзии на месте 12 зуба.

На контрольной рентгенограмме - полноценная интеграция корня аутотрансплантированного 13 зуба. При повторных осмотрах через 3, 7 и 30 суток больной жалоб не предъявляет. Результаты рентгенологического исследования, проведенные через 1 год, указали на отсутствие признаков рассасывания костной ткани в области корня аутотрансплантированного клыка, отсутствие деструктивных изменений в окружающих периапикальных тканях, отсутствие признаков облитерации корневого канала, а также пульпарной камеры 13 зуба.

Контроль за жизнеспособностью пульпы аутотрансплантированного клыка осуществлялся на протяжении 2 лет. Значение ЭОД 13 зуба через 3 суток после операции составило 16 мкА, через 1 месяц - 12 мкА, через 3 месяца - 10 мкА, через 1 год - 6 мкА.

Всего таким образом трансплантировано 48 зубов человека. Аутотрансплантированные зубы не изменялись в цвете, сохраняли прежний блеск, видимые воспалительные явления мягких тканей вокруг аутотрансплантированных зубов, как правило, исчезали через 5-7 суток. В период от 3 месяцев до 1 года вследствие рассасывания корней выпало 2 (4,2%) из 48 аутотрансплантированных зубов - потери обусловлены явным несоответствием аутотрансплантируемого корня зуба-донора и воспринимающего ложа лунки-реципиента, эффективность заявляемого способа составила 95,8%.

Таким образом, полученные данные в экспериментальных условиях и в клинике свидетельствуют о высоком терапевтическом эффекте разработанного способа аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы, что позволяет эффективно использовать его в стоматологической практике, например, при наличии сверхкомплектных, ретинированных, дистопированных зубов в ортодонтии и при хирургическом удалении опухолей челюстей.

Способ аутотрансплантации зуба с сохранением жизнеспособности его пульпы, включающий удаление зуба-донора, формирование лунки-реципиента, аутотрансплантацию зуба-донора, покрытие его стерильными марлевыми тампонами, которые удерживают 20-30 минут при сомкнутых челюстях пациента, шинирование зуба композиционным пломбировочным материалом без выведения из контакта с зубами антагонистами, отличающийся тем, что в лунку-реципиент на 2/3 ее объема вводят тканеинженерную конструкцию, состоящую из предварительно культивированных мезенхимальных клеток, полученных из пульпы зуба-донора, и гидрогеля PuraMatrix/3DM.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к средству, обладающему антибактериальным бактерицидным действием, для лечения воспалительных заболеваний пародонта.

Изобретение относится к области медицины, а именно к стоматологии, и предназначено для лечения больных с воспалительными заболеваниями пародонта. Проводят снятие зубных отложений, антисептическую обработку полости рта.
Изобретение относится к медицине, в частности к стоматологии, и касается профилактики атрофии альвеолярной кости и десны после удаления зуба. Способ включает предварительный забор крови из вены пациента, приготовление из нее фибринового сгустка, смешивание сгустка с наполнителем.

Изобретение относится к медицине, а именно к терапевтической стоматологии, и может быть использовано для лечения кариеса в стадии пятна. Способ включает нанесение на места деминерализации эмали геля хлоргексидина биглюконата 2% экспозицией 3-5 минут, удаление его водой, высушивание поверхности зуба, нанесение реминилизирующего препарата - геля GC Tooth Mousse экспозицией 10 минут.

Изобретение относится к медицине, а именно к стоматологии, и может быть использовано для профилактики и лечения гингивита. Для этого применяют суспензию, полученную методом рефрижераторного центрифугирования биологически активной добавки «Ягель», при частоте вращения 3500 оборотов в минуту и температуре 70±2°C в течение 40-45 минут.

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургической стоматологии, и может быть использовано для локальной иммунокоррекции при проведении дентальной имплантации с одномоментным закрытым синус-лифтингом.
Изобретение относится к медицине, а именно к стоматологии, и может быть использовано для лечения радикулярных кист. Для этого осуществляют препарирование кариозной полости.
Группа изобретений относится к медицине и предназначена для ухода за полостью рта. Композиция по уходу за полостью рта содержит (a) гидрофильный образующий пленку полимер и (b) гидрофобный носитель, где гидрофильный образующий пленку полимер представляет собой образующий пленку полимер, эффективный для окклюзии зубных канальцев, и композиция по уходу за полостью рта содержит 0-10% мас.
Группа изобретений относится к медицине, а именно к терапевтической стоматологии и лабораторной диагностике, и может быть использована для лечения хронических воспалительных заболеваний пародонта, обусловленных дрожжеподобными грибами рода Candida.

Группа изобретений относится к области средств и способов ухода за зубами. Предлагаемая композиция для реминерализации по меньшей мере одного зуба содержит: a) выделенный теобромин или его соль или двойную соль; b) по меньшей мере один источник кальция; c) по меньшей мере один источник фосфата; и d) рН от 5,0 до 8,5.

Изобретение относится к медицине, а именно к интенсивной терапии, и может быть использовано для лечения септического шока. Для этого больному внутривенно вводят мультипотентные мезенхимные стволовые клетки донора, полученные из костного мозга донора, выращенные на среде с плазмой крови человека, обогащенной лизированными тромбоцитами, в количестве 1-1,5×106 трансплантируемых клеток на 1 кг веса больного однократно в первые 10 часов с момента развития септического шока.
Изобретение относится к медицине, а именно к колопроктологии, и может быть использовано для восстановления запирательного аппарата прямой кишки. Для этого в мягкие ткани параанальной области однократно вводят трансплантат, содержащий клеточную массу аутологичного костномозгового пунктата.

Изобретение относится к медицине, а именно к неврологии, и может быть использовано для лечения рассеянного склероза. Для этого на первом подготовительном этапе производят заготовку кроветворных стволовых клеток с использованием гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в дозе 10 мкг/кг в течение 4-5 дней и их заморозку.

Представленные изобретения касаются применения средства, стимулирующего регенерацию тканей, и способа стимуляции регенерации мезенхимальных, эпителиальных или неврологических тканей путем введения такого средства.

Изобретение относится к экспериментальной медицине и биотехнологии и может быть использовано для стимуляции регенерации мышечной ткани в эксперименте. Для этого лабораторному животному в область раневого дефекта мышечной ткани вводят клеточно-гелевый комплекс, состоящий из клеточной массы костного мозга и биодеградируемого гетерогенного гидрогеля Сферо®ГЕЛЬ медиум.

Изобретение относится к медицине и биологии, в частности касается стимуляции регенерации гепатоцитов. Для этого в экспериментальных условиях животному вводят подкожно или внутримышечно пористый трансплантат в виде кальцийфосфатного матрикса с диаметром пор в диапазоне 150-600 мкм, либо в виде указанного матрикса с предварительно нанесенным сингенным костным мозгом.

Изобретение относятся к медицине, хирургии, трансплантологии. Матрикс из децеллюляризированной донорской печени млекопитающего в объеме 1:1, в течение 8-12 часов, при температуре 4°C инкубируют в растворе с рН 7,4.

Изобретение относится к области медицины, а именно к травматологии и ортопедии, и предназначено для замещения дефектов костной ткани и коррекции травматических повреждений костей.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к биотехнологии, и может быть использована для лечения ожогов и ран. Для этого получают средство способом, включающим культивирование мезенхимных стромальных клеток жировой ткани (МСК ЖТ) человека 2-5 пассажа в среде роста до момента достижения концентрации общего белка в среде 3-4 мг/мл.
Изобретение относится к медицине, сосудистой хирургии и может быть использовано при лечении хронических облитерирующих заболеваний артерий нижних конечностей, субкритической ишемии.

Изобретение относится к медицинской технике. Устройство содержит опорный стержень в виде собранных в жгут никелид-титановых нитей и облегающую стержень оболочку из проницаемо-пористого никелида титана, химически связанную с опорным стержнем.
Наверх