Способ количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии методом вэжх

Изобретение относится к способу количественного определения методом ВЭЖХ таурина и аллантоина при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах, биологически активных добавках, косметической и пищевой продукции. Способ включает растворение навески исследуемого вещества в подвижной фазе (ПФ), разделение раствора на хроматографической колонке, измерение оптической плотности полученного раствора и определение концентрации исследуемых веществ по калибровочным графикам. В качестве подвижной фазы для таурина использовали 30 мкмоль/л раствора ацетата натрия рН 6.0, а растворение проводили из расчета 250 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. В качестве подвижной фазы для аллантоина использовали смесь раствора гидрофосфат аммония с рН 7.78 и ацетонитрила 9:1, а растворение проводили из расчета 1000 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. Для таурина перед разделением раствора с ПФ на хроматографической колонке к нему добавляли боратный буферный раствор с рН 9.0 и 0,1% раствор 2,4-динитрохлорбензола в растворе ацетонитрил - вода (2:1) при соотношении 1:1:1, нагревали полученную смесь, охлаждали до комнатной температуры и на 6 об. ч. полученной смеси добавляли 1 об. ч. 10% раствора уксусной кислоты и 13 об. ч. воды. Детектирование проводили при длинах волн 360±2 нм и 218±2 нм для таурина и аллантоина, соответственно. Способ позволяет идентифицировать и количественно определять таурин и аллантоин при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах. 9 ил.

 

Изобретение относится к способам оценки качества, для идентификации и количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии в различных лекарственных препаратах, биологически активных добавках, косметической и пищевой продукции.

Известен способ количественного определения таурина в продукции, выпускаемой фармацевтическими предприятиями и аптеками (RU 2167410, G01N 21/78, 20.05.2001 г.), где определение проводят путем обработки исследуемого образца спиртовым раствором нингидрина в среде фосфатного буферного раствора с рН от 6,4 до 7,6 в присутствии аскорбиновой кислоты. Полученный окрашенный раствор разбавляют водой и измеряют оптическую плотность на спектрофотометре.

Известен способ количественного определения субстанции таурина с помощью формолового титрования (ФС.2.1.0039.15, ГФ XIII), включающий растворение субстанции в воде, прибавление формалина и титрование раствором натрия гидроксида до появления слаборозового окрашивания (индикатор-фенолфталеин) или определение точки эквивалентности потенциометрически. Параллельно проводят контрольный опыт.

Известен способ количественного определения субстанции аллантоина с фенилгидразином спектрофотометрическим методом (Chen, Х.В. and M.J. Gomes, 1992. Estimation of microbial protein supply to sheep and cattle based on urinary excretion of purine derivatives An overview of the technical details, International Feed Resources Unit, Rowett Research Institute, Bucksburn Aberdeen AB2 9SB, UK Occasional Publication).

Известен способ количественного определения аллантоина в биологических, косметических и фармацевтических образцах спектрофотометричеким методом: готовят раствор аллантоина с использованием гидроксида натрия и измеряют спектр полученного раствора (Determination of allantoin in biological, cosmetic, and pharmaceutical samples. JAOAC Int. 1996 May-Jun; 79(3):628-35).

Все вышеперечисленные методы с указанными пробоподготовками, не предоставляют возможности количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии в лекарственных препаратах, биологически активных добавках и косметических средствах. При проведении патентного поиска и анализа литературных источников не выявлено разработанной методики количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии.

Задача изобретения - разработка методики определения подлинности и количественного содержания таурина и аллантоина при совместном присутствии в различных лекарственных препаратах, биологически активных добавках, косметической и пищевой продукции.

Технический результат заключается в разработке способа на основе метода ВЭЖХ для количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии таурина и аллантоина в различных лекарственных формах или смесях.

Технический результат достигается тем, что способ количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии методом ВЭЖХвключает растворение навески исследуемого вещества в подвижной фазе (ПФ), разделение раствора на хроматографической колонке, измерение оптической плотности полученного раствора и определение концентрации исследуемых веществ по калибровочным графикам, причем в качестве подвижной фазы для таурина использовали 30 мкмоль/л раствора ацетата натрия рН 6.0, а растворение проводили из расчета 250 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ; в качестве подвижной фазы для аллантоина использовали смесь раствора гидрофосфат аммония с рН 7.78 и ацетонитрила 9:1, а растворение проводили из расчета 1000 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ; для таурина перед разделением раствора с ПФ на хроматографической колонке к нему добавляли боратный буферный раствор с рН 9.0 и раствор 0,1% 2,4-динитрохлорбензола в растворе ацетонитрил - вода (2:1) при соотношении 1:1:1, нагревали полученную смесь, охлаждали до комнатной температуры и на 6 об. ч. полученной смеси добавляли 1 об. ч. 10% раствора уксусной кислоты и 13 об. ч. воды; детектирование проводили при длинах волн 360±2 нм и 218±2 нм для таурина и аллантоина соответственно.

На фиг. 1 приведена метрологическая оценка результатов количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии в геле на основе хитозана с таурином и аллантоином. На фиг. 2 и фиг. 3 представлены хроматограммы растворителей образца геля ХТА для определения таурина и аллантоина соответственно.

На фиг. 4 - хроматограммараствора стандартного образца таурина и на фиг. 5 - хроматограмма раствора стандартного образца аллантоина. На фиг. 6 - хроматограмма испытуемого раствора таурина в растворе геля ХТА и на фиг. 7 - хроматограмма испытуемого раствора аллантоина в растворе геля ХТА. На фиг. 8 и фиг. 9 приведены калибровочные графики таурина и аллантоина соответственно

Использованные в способе растворы получали следующим образом.

Подвижная фаза для количественного определения таурина. В мерную колбу на 1000 мл помещали 2,46 г СН3СООNа⋅3Н2О, приливали около 900,0 мл воды для хроматографии и полностью растворяли соли. Устанавливали значение рН 6,0 потенциометрически при добавлении 5% триэтиламина или 10% ледяной уксусной кислоты, доводили водой для хроматографии до метки.

Боратный буферный раствор с рН 9.0 0,62 г тетрабората натрия помещали в мерную колбу на 100 мл, доводили значение рН 9.0, при помощи 1М раствора NaOH.

Раствор 0,1% 2,4-динитрохлорбензола. Растворяли 10 мг 2,4-динитрохлорбензолапомещали в 10 мл раствора ацетонитрил - вода (2:1).

Подвижная фаза для количественного определения аллантоина. В мерную колбу на 1000 мл помещали 6,61 г (NH4)2HPO4, приливали 300,0 мл воды для хроматографии и полностью растворяли соль, доводили объем в колбе до метки водой для хроматографии и еще раз тщательно перемешивали, рН 7,78 устанавливали потенциометрически. В мерную колбу вместимостью 1000 мл помещали 900 мл полученного раствора, прибавляли 100 мл ацетонитрила и тщательно перемешивали. Полученную подвижную фазу фильтровали через фильтр с диаметром пор 0,45 мкм и дегазировали.

Пример.

Анализ геля на основе хитозана с таурином и аллантоином.

Пробоподготовка 1.

Навеску геля ХТА массой 250 мг помещали в мерную колбу на 10 мл, растворяли навеску в ПФА. 100 мкл полученного раствора помещали в эппендорф вместимостью 1,5 мл. Добавляли 100 мкл боратного буферного раствора с рН 9.0 и 100 мкл 0,1% раствора 2,4-динитрохлорбензола, закрывали эппендорф и помещали в водяную баню с температурой 90°С на 90 мин, охлаждали до комнатной температуры, добавляли 50 мкл 10% раствора уксусной кислоты и доводили до 1 мл водой для хроматографии. Фильтровали через фильтр с размером пор 0,45 мкм, полученные пробы перемешивали и вводили в хроматограф. Использовали колонку LunaC18 размером 4,6×250 мм, заполненную сферическими частицами силикагеля размером 5 мкм. Детекцию осуществляли спектрофотометрически при длине волны 360 нм. На хроматограммах идентифицировали пики таурина и определяли их площади. Время удерживания составило 30 мин. Количественное определение таурина в геле ХТА проводили методом калибровочного графика. Содержание таурина составляло 100,33±0,82 мкг/мл.

Для подтверждения точности метода был получен стандартный раствор с точно известной концентрацией таурина. 10,0 мг стандартного образца таурина помещали в мерную колбу на 10 мл, растворяли навеску в ПФА. 100 мкл полученного раствора помещали в эппендорф вместимостью 1,5 мл и добавляли 100 мкл боратного буферного раствора с рН 9.0 и 100 мкл 0,1% раствора 2,4-динитрохлорбензола. Закрывали эппендорф и помещали в водяную баню с температурой 90°С на 90 мин. Охлаждали до комнатной температуры, добавляли 50 мкл 10% раствора уксусной кислоты и доводили раствор до 1 мл водой для хроматографии, с последующим фильтрованием через фильтр размером пор 0,45 мкм. Полученные пробы перемешивали и вводили в хроматограф. Использовали колонку LunaC18 размером 4,6×250 мм, заполненную сферическими частицами силикагеля размером 5 мкм

Статистическая обработка данных показала, что средняя ошибка определения количественного содержания таурина заявленным методом не превышала 0,63%.

Пробоподготовка 2.

1000 мг геля помещали в мерную колбу на 10 мл и растворяли в 5 мл раствора подвижной фазы, использовали ультразвуковую ванну при комнатной температуре в течение 5 минут, затем доводили объем до метки раствором подвижной фазы и еще раз тщательно перемешивали, с последующей фильтрацией через бумажный складчатый фильтр. Детекцию осуществляли УФ спектрофотометрически при длине волны 218 нм. На хроматограммах идентифицировали пики аллантоина и определяли их площади. Время удерживания равнялось 4 мин. Количественное определение аллантоина в геле ХТА проводили методом калибровочного графика. Содержание аллантоина составляло 0,5 мг/мл.

Для подтверждения точности метода был получен стандартный раствор с точно известной концентрацией аллантоина. В мерную колбу вместимостью 100 мл помещали 50,0±0,5 мг аллантоина, приливали 50 мл подвижной фазы, растворяли полностью и доводили объем подвижной фазой до метки. Использовали колонку LunaC18 размером 4,6×250 мм, заполненную сферическими частицами силикагеля размером 5 мкм. Концентрация аллантоина 0,500±0,0005 мг/мл. Статистическая обработка данных показала, что средняя ошибка определения количественного содержания аллантоина заявленным методом не превышала 0,85%.

Методика позволяет идентифицировать и количественно определять таурин и аллантоин при совместном присутствии в различных лекарственных формах или смесях, что может служить для стандартизации геля ХТА.

Способ количественного определения таурина и аллантоина при совместном присутствии методом ВЭЖХ, включающий растворение навески исследуемого вещества в подвижной фазе, разделение раствора на хроматографической колонке, измерение оптической плотности полученного раствора и определение концентрации исследуемых веществ по калибровочным графикам, причем в качестве подвижной фазы для таурина использовали 30 мкмоль/л раствора ацетата натрия рН 6.0, а растворение проводили из расчета 250 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором подвижной фазы; в качестве подвижной фазы для аллантоина использовали смесь раствора гидрофосфат аммония с рН 7.78 и ацетонитрила 9:1, а растворение проводили из расчета 1000 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором подвижной фазы; для таурина перед разделением раствора с подвижной фазой на хроматографической колонке к нему добавляли боратный буферный раствор с рН 9.0 и 0,1% раствор 2,4-динитрохлорбензола в растворе ацетонитрил - вода (2:1) при соотношении 1:1:1, нагревали полученную смесь, охлаждали до комнатной температуры, и на 6 об. частей полученной смеси добавляли 1 об. часть 10% раствора уксусной кислоты и 13 об. частей воды; детектирование проводили при длинах волн 360±2 нм и 218±2 нм для таурина и аллантоина соответственно.



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области микробиологии, а именно к способу определения контаминации растворов и биологических жидкостей. Сущность способа состоит в том, что детектируют биологические объекты, включающие микроорганизмы или вирусы, с помощью наночастиц металлов, формирующихся in situ из внесенных в исследуемый объект солей соответствующих металлов, при последующем анализе динамики спектральных характеристик формирующихся наночастиц.

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к способу биотестирования активности противопаразитарных субстанций и препаратов, содержащих в качестве активного вещества авермектины и их производные, с помощью олигохет вида Tubifex tubifex.
Изобретение относится к медицине, а именно к фармакологии, фармации, дерматологии, косметологии и судебной медицине, и может быть использовано при разработке новых лекарственных средств, предназначено для поиска и оценки эффективности средств, обесцвечивающих кожу в области «красных» и «синих», свежих и старых кровоподтеков, при разработке косметических технологий, предназначенных для удаления кровоподтеков, а также при судебной медицинской экспертизе давности кровоподтеков и ушибов мягких тканей.

Изобретение относится к медицине для определения концентрации в биосистемах (сыворотке крови, слюне и др.) и может быть использовано для количественного определения биоцидного гидразида изоникотиновой кислоты (изониазида) в водных растворах этого соединения при токсикологическом и техническом анализе субстанции и лекарственных форм этого препарата.

Изобретение относится к медицине, в частности к лабораторным методам исследования, позволяющим осуществлять эффективный скрининг антиоксидантов. Способ экспресс-скрининга потенциальных антиоксидантов заключается в том, что выделяют липопротеиды низкой плотности (ЛНП) из плазмы венозной крови здоровых доноров, осуществляют окисление липопротеидов низкой плотности при температуре 37°С внесением 30 мМ сульфата меди (CuSO4), после чего через фиксированные интервалы времени измеряют накопление липогидропероксидов (конъюгированных диенов) при 233 нм (ΔD233) и по результатам исследования строят кинетическую кривую окисления ЛНП, из которой определяют продолжительность периода индукции (τ), затем в опытные пробы вносят исследуемые антиоксиданты (конечная концентрация 1 мкМ), растворенные либо в 96% этаноле - для жирорастворимых веществ или в среде инкубации - для водорастворимых веществ, и если продолжительность периода индукции исследуемого вещества выше 0,4 - вещество может рассматриваться в качестве эффективного антиоксиданта; если ниже 0,1 - исследованное вещество эффективным антиоксидантом не является.

Изобретение относится к фармации, фармакологии и клинической фармакологии и касается способа модельно-дискриминационной оценки фармацевтической эквивалентности лекарственных средств, покрытых кишечнорастворимой оболочкой, включающего определение кинетики растворения изучаемых препаратов и препарата сравнения путем последовательного помещения по одной единице твердой дозированной формы в фосфатный буфер объемом 500 мл с рН 1,05±0,05 и при температуре 37±0,05°С, перемешивания с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбора аликвоты через 2 часа и ее фильтрации, определения в аликвоте действующего вещества, переноса лекарственной формы в фосфатный буфер с рН 7,0±0,05, перемешивания с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбора аликвот через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут и в дополнительное расчетное время объемом 5 мл с восполнением этого объема средой растворения; аликвоты фильтруют, прибавляют к 2 мл фильтрата аликвот по 400 мкл 0,25 моль/л натрия гидроксида, определяют количество действующего вещества, перешедшего в раствор, параллельно проводят второй этап сравнительного теста кинетики растворения, включающий последовательное помещение по одной единице твердой дозированной формы в среду растворения с рН 4,0±0,05 объемом 500 мл, перемешивание с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбор проб через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут объемом 5 мл с восполнением этого объема средой растворения, фильтрацию аликвот, прибавление к 2 мл фильтрата аликвот по 400 мкл 0,25 моль/л натрия гидроксида, определение количества действующего вещества, перешедшего в раствор, с рН 7,0±0,05, объемом 900 мл, перемешивание с помощью лопастной мешалки со скоростью 100 об/мин, отбор проб через 10, 15, 20, 30, 45, 60 минут, при этом дополнительно определяют точку отбора аликвоты из среды растворения с рН 7,0±0,05 по формуле Тр=(Тк×0,121)+t(1).

Изобретение относится к области фармации и может быть использовано для определения фазы цветения лекарственного сырья, в частности горца птичьего, горца перечного и горца почечуйного.

Изобретение относится к области аналитической химии и касается способа определения феназепама. Сущность способа заключается в том, что готовят растворы определяемого вещества в концентрации 0,02 мг/мл и образца сравнения.

Изобретение относится к исследованию или анализу материалов с использованием хроматографии. Способ одновременного определения примесей этилендиаминтетрауксусной кислоты (ЭДТА), диметилсульфоксида (ДМСО) и N-этилмалеимида (ЭТМ) в фармацевтических субстанциях методом обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии включает определение ЭДТА, ДМСО и ЭТМ во время одного анализа, с использованием хроматографической колонки длиной не более 150 мм, заполненной носителем с зернением не более 5 мкм, используя раствор кислоты ортофосфорной 10-30 мМ (рН 1,9-2,26) с градиентом органического растворителя от 0 до 100%, при температуре колонки 25-45°С, достигается предел детектирования для ЭДТА - от 4,14 до 8,0 нг, ДМСО - от 0,8 до 3,0 нг, ЭТМ - 0,04 до 1 нг и предел количественного определения ЭДТА - от 12,9 до 30 нг, ДМСО - от 2,66 до 10 нг, ЭТМ - от 0,13 до 3 нг.

Изобретение относится к фармацевтической промышленности, а именно к фармацевтическому анализу, и может быть использовано для количественного определения хлорпротиксена гидрохлорида, зуклопентиксола и флупентиксола в субстанциях.

Изобретение относится к области аналитического приборостроения, в частности, к конструкциям делителей газовых потоков для капиллярных колонок. .

Изобретение относится к технике исследования и анализа веществ, находящихся в растворенном или распределенном состоянии в матрице (в жидкости или в твердом теле). .

Изобретение относится к газовому анализу , в частности к газовой хроматографии. .

Изобретение относится к анализу материалов путем разделения на составные части с использованием разделительных сорбционных колонок, например хроматографии, и может найти применение в установках для определения состава газа в металлическом образце.

Изобретение относится к аналитическому приборостроению и может быть использовано для анализа проб равновесной паровой фазы в системах жидкость-газ, твердое вещество - газ.

Изобретение относится к пищевой, гидролизной и микробиологической промышленности и может найти применение при оперативном контроле процесса накопления биомассы. .

Изобретение относится к области оптических измерений и касается способа контроля объектов. Способ заключается в том, что освещают идентифицируемый объект и калибровочный шаблон спектрально-узкополосными потоками излучения неперекрывающихся спектральных каналов, формируют калибрующие электрические сигналы и сигналы идентифицируемого объекта, осуществляют калибровку полученных сигналов, преобразуют электрические сигналы в пространственно-спектральные образные сигналы и формируют спектральный и пространственно-спектральный образы идентифицируемого объекта.

Изобретение относится к способу количественного определения методом ВЭЖХ таурина и аллантоина при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах, биологически активных добавках, косметической и пищевой продукции. Способ включает растворение навески исследуемого вещества в подвижной фазе, разделение раствора на хроматографической колонке, измерение оптической плотности полученного раствора и определение концентрации исследуемых веществ по калибровочным графикам. В качестве подвижной фазы для таурина использовали 30 мкмольл раствора ацетата натрия рН 6.0, а растворение проводили из расчета 250 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. В качестве подвижной фазы для аллантоина использовали смесь раствора гидрофосфат аммония с рН 7.78 и ацетонитрила 9:1, а растворение проводили из расчета 1000 мг исследуемого вещества на 10 мл и доведение до объема раствором ПФ. Для таурина перед разделением раствора с ПФ на хроматографической колонке к нему добавляли боратный буферный раствор с рН 9.0 и 0,1 раствор 2,4-динитрохлорбензола в растворе ацетонитрил - вода при соотношении 1:1:1, нагревали полученную смесь, охлаждали до комнатной температуры и на 6 об. ч. полученной смеси добавляли 1 об. ч. 10 раствора уксусной кислоты и 13 об. ч. воды. Детектирование проводили при длинах волн 360±2 нм и 218±2 нм для таурина и аллантоина, соответственно. Способ позволяет идентифицировать и количественно определять таурин и аллантоин при их совместном присутствии в различных лекарственных препаратах. 9 ил.

Наверх