Способ очистки крови от фенолов

 

СОЮЗ СОВЕТСКИХ

СОЦИАЛИСТИЧЕСНИХ

РЕСПУБЛИН ()% (И)

51429 A (д) G 01 и 33/48

ОПИСАНИЕ ИЗОБРЕТЕНИЯ "

К АВТОРСКОМУ СВИДЕТЕЛЬСТВУ (21) 3369539/28-13 (?2) 28.12.81 (46) 30.10.83. Бюл. Н 40 (72) В.Д. Горчаков, А.Ф. Елинек, 10.А. Лейкин, М.M Кочетова, М.Н. Молоденков, М.С. Морейно и В.И. Сергиенко (71) 2-ой Московский ордена Ленина государственный медицинский институт им. Н.И. Пирогова (53) 578.085.21(088.8) (56) 1. Кочетова М.М., Лурье Б.Л., Агноков Х.Б., Благосклонов А.С.

Труды МОНИКИ им. М.ф. Владимирского, M., 1981, т. 31, с. 81-87 (прототип). (54)(57) СПОСОБ ОЧИСТКИ КРОВИ ОТ ФЕНОЛОВ путем перфуэии ее через сорбент, отличающийся тем, что, с целью уменьшения травмирующего действия на клеточные элементы крови и увеличения избирательности очистки, в качестве сорбента используют макропористые сополимеры стирола и полиэтиленполиаминов дивинилбензола.

Г0 51429 2

Изобретение относится к медицине, в частности к процессам извлечения токсических соединений из крови.

Известен способ извлечения фенолов из крови ее перфузией через колонны с активным углем $1) .

Недостатком известного способа является малая специфичность активных углей как сорбентов, что обуславливает извлечение на них наряду с фе- l0 нолами целого ряда других компонентов плазмы крови и ведет к нарушениям нормального биохимического состава, кроме того активные угли интенсивно разрушают форменные элементы крови. 15

Цель изобретения — уменьшение травмирующего действия на клеточные элементы крови и увеличение избирательности очистки от фенолов.

Поставленная цель достигается тем, 20 что согласно способу очистки крови от фенолов путем перфузии ее через сорбент используют микропористые сополимеры стирола и полиэтилен-полиаминов дивинилбензола. 25

Способ осуществляется следующим способом.

1. 50 г макропористого сополимера стирола и дивинил-бензола с содержанием дивинилбензола 15 мас. 1, полученного в присутствии 803 изооктана, хлорметилируют и аминируют диэтилентриамином. Сорбент экстрагируют эта" нолом, стандартизуют в цикле Н О (10 л), 3 НСР (10 л), Н,О (15 л), раствор НаОН (10 л) и Н О (15 л).

Затем промывают 10 л физиологичес- кого раствора и буферируют 16 НС8 до равновесного значения рН 7,357,45. После автоклавирования при

120 С в течение 2 ч готовый сорбент загружают в колонну.

2. 50 г макропористого сополимера стирола и дивинилбензола с содержани" ем дивинилбензола 12 мас.i, полученного в присутствии 90 синтина, хлор" метилируют и аминируют этилендиамином. Сорбент экстрагируют этанолом, стандартизуют в цикле Н О (15 л), 34 НС1 (10 л), Н О (20 л) и 0,9i вод50 ный раствор NaC8 (15 л), Затем буферируют 1ь -ным водным НС до равновесного значения рН = 7,35-7,45, автоклавируют при 120о(; в течение

2 ч и промывают стерильным физиологи-, ческим раствором.

Пример 1. Сорбент, приготовленный по способу I, загружают в стерильную колонку объемом 100 мл, Здоровую собаку через артериовенозный шунт подключают к колонке с сорбен-! том и перфузируют крсвь со скоростью

50 мл/мин в течение 60 мин.

Данные морфологических и биохимических анализов крови приведены в табл. 1 (пробы отбирают из общего кровотока) .

Пример 2. Больной П, с диагнозом: рак желчных протоков, механическая желтуха, проведен 1 сеанс гемосорбции на сорбенте, при готовленном по способу 2. Объем колонки с сорбентом 300 мл, скорость гемоперфузии

150 мл/мин, продолжительность 3б мин.

В результате гемосорбции наступило клиническое улучшение, выражавшееся в исчезновении кожного зуда, улучшении сна и аппетита. В ходе гемосорбции отмечена эффективная copGLия фенолов из организма больного, их концентрация в общем кровотоке уменьшилась на 70 (от 0,44 до 0,13 мг i).

Клинический эффект подтверждается и данными электроэнцефалограммы. До сорбции на ЭЭГ отмечены негрубые общемозговые нарушения в виде заостренности альфа-ритма. Проба с гипервентиляцией усиливала эти изменения и приводила к появлению групп невысоких тета-волн. После сорбции отмечена положительная динамика, фоновая запись нормализовалась, т роба с гипервентиляцией изменений не вызвала. !

Пример 3. Навеску сорбента, приготовленного по способу 2, высушивают, взвешивают пробу 0,2 г и заливают сывороткой крови донора, содержащей фенол в концентрации 1О ммоль/л в объеме 100 мл. Сорбцию проводят при постоянном перемешивании, в пробах определяют концентрацию фенола и проводят расчет емкости по фенолу.

Аналогичные эксперименты проводят с, углем "ИГИ" и сорбентом по способу 1 (табл. 1).

105!429

Таблица!

Емкость сорбентов в MMollb фенола на 1 г

Время отбора проб, с уголь "ИГИ" по способу 1 по способу 2

180

0,172

0,203

0, 341

0,421

600

1800

0,521

0,601

0,657

0,688

5400

0,691

Применение в качестве сорбентов макропористых сополимеров с группами полиэтиленполиаминов позволяет обесТ абли ц а 2

Лей коциты

10 /мм

Ге ма- Общий токрит, белок, 4 г3

Альбумин, г";

Зритроциты, 106/ммЭ

Тромбоциты, 10 /мм

Время отбора, мин г

Гемоглобин, Г4

6,8

4,0

38

42

31 фон

21,2

19,1

3,7

20,3

3,3

4,9

20,2

33

19,3

Способ позволяет достичь достаточно высокой эффективности извлечения фенолов из биологических жидкостей, Составитель И, Емельяненко

Редактор Е. Лушникова Техред M.Tenep Корре ктор О . Ти гор

Заказ 8656/43

Тираж 873 Подписное

ВНИИПИ Государственного комитета СССР по делам изобретений и открытий

113035, Москва, Ж-35, Раушская наб., д. 4/5

Филиал ПНП "Патент"- г. Ужгород, ул. Проектная, 4

4,9

4,7

4,4

4,5

4,8

О, 161

0,186

0,316

0,409

0,534

0,583

0,622

0,663

0,213

0,265

0,366

0,439

0,542

О, 60 7

0,669 печить сохранность основных форменных элементов крови в ходе гемосорбции, представленных в табл. 2.

60 63 33

58 61 33

61 60 32

62 6,0 3,1

60 62 33 что дает возможность резко cvчзить их концентрацию в организме больных и обеспечить выраженный клинический эффект.