Раствор для хранения роговицы

Изобретение относится к офтальмологии. Раствор для хранения роговицы содержит смесь биологических сред M199 и DMEM, хондроитина сульфат, L-аланил-L-глутамин, 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновую кислоту (HEPES), пируват натрия, β-гидроксибутират натрия, гентамицина сульфат, амфотерицин В, 2,3,5,7,8-пентагидрокси-6-этилнафталиндион-1,4 (эхинохром А) и гидроксиэтилкрахмал при следующем соотношении компонентов, мас.%: среда M199 0,64; среда DMEM 0,447; гидроксиэтилкрахмал 5-10; хондроитина сульфат 2,5; эхинохром А 0,001-0,01; L-аланил-L-глутамин 0,05425; буфер HEPES 0,5958; пируват натрия 0,0055; β-гидроксибутират натрия 0,151; гентамицина сульфат 0,01; амфотерицин В 0,0000250; дистиллированная вода до 100. Изобретение позволяет увеличить срок хранения роговицы. 1 ил., 1 табл., 1 пр.

 

Изобретение относится к области медицины, в частности к офтальмологии, и может быть использовано для длительного сохранения роговичного трансплантата, используемого для послойной и сквозной кератопластик.

Кератопластика широко используется для восстановления зрения при дистрофических, дегенеративных и воспалительных процессах роговицы. Главной проблемой такого метода лечения является отсутствие оптимальных сред для сохранения жизнедеятельности клеточных элементов важной оптической оболочки глаза, какой является роговица.

Среди сред, используемых для консервации, известна среда McCarey-Kaufman, включающая среду 199, буферный раствор HEPES 25 мМоль, декстран 40 кДа, и гентамицин [American journal of ophthalmology, vol.79, N 1, 1975, с.115-120]. Недостатками данной среды являются: отек стромы за счет падения энергетического потенциала эндотелия, определяющего жизнеспособность и трансплантабельность (через 72 ч), достаточно узкий профиль антибиотика, входящего в среду (гентамицин), а также отсутствие противогрибковой защиты.

Известен раствор для консервации роговицы, содержащий HEPES буфер, 1%-ный раствор декстрана, ионы натрия, калия, магния в виде растворимых солей 1%-ного содержания, антибиотики широкого спектра действия в ед. активности, противогрибковые препараты в ед. активности, BSS раствор [заявка RU 2007101966, опубликована 27.07.2008].

Известен раствор для хранения роговицы, содержащий гиалуроновую кислоту с молекулярной массой от 50000 до 15000 Да и ее фармацевтически приемлемую соль в концентрации от 1 до 20 мг/мл, дополнительно может включать антибиотик из группы гентамицина, пенициллина G и стрептомицина, при этом хранение производят при температуре раствора 2-8°C [патент RU 2184448, 2002 г.].

Наиболее близким аналогом изобретения является среда для консервации роговицы глаза, созданная в России на базе МНТК "Микрохирургия глаза", Москва, содержащая базовые среды M199, F12 и DMEM в соотношении 1:1:2, хондроитин-сульфат - 2,7 мас.%, декстран-40-2,0 мас.%, антибиотик гентамицин-сульфат-0,00014 мас.%, антимикотик амфотерицин В - 0,00015 мас.% [патент RU 2069951, 1996 г.]. Максимальный срок хранения донорского материала при использовании данной среды составляет 6 суток. Недостатком данной среды является недостаточная осмолярность применяемого декстрана, обусловливающая развитие отека роговицы, и проявляющего в отношении эндотелиоцитов токсический эффект (Zhao M. et al., 2008).

Задачей данного изобретения является разработка состава консервирующего раствора для продолжительного времени хранения донорских роговиц, предназначенных для сквозной, послойной и эндотелиальной кератопластик, в период между взятием и применением донорского материала.

Технический результат при использовании изобретения - увеличение срока хранения роговицы за счет создания оптимальных для жизнеспособной роговицы условий хранения.

Указанный технический результат достигается тем, что раствор для хранения роговицы, содержащий смесь биологических сред M199 и DMEM (таблица), хондроитина сульфат, L-аланил-L-глутамин, 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновую кислоту (HEPES), пируват натрия, гентамицина сульфат, амфотерицин В, согласно изобретению дополнительно содержит 2,3,5,7,8-пентагидрокси-6-этилнафталиндион-1,4 (эхинохром А) и гидроксиэтилкрахмал при следующем содержании компонентов, мас.%:

среда M199 0,64
среда DMEM 0,447
гидроксиэтилкрахмал 5-10
хондроитина сульфат 2,5
эхинохром А 0,001-0,01
L-аланил-L-глутамин 0,05425
буфер HEPES 0,5958
пируват натрия 0,0055
β-гидроксибутират натрия 0,151
гентамицина сульфат 0,01
амфотерицин В 0,0000250
дистиллированная вода до 100

Изобретение иллюстрируется фигурой, на которой представлена морфологическая картина при окраске трипановым синим и ализариновым красным: а) 3 сутки, б) 6 сутки, в) 9 сутки, г) 12 сутки.

Изобретение основано на следующих предположениях:

1) в ходе хранения донорского материала при низкой температуре на фоне пониженной энергетической активности клеточного аппарата происходит апоптоз с образованием свободно-радикальных фрагментов, способствующих гибели близлежащих клеток. В ходе применения антиоксидантов вероятность цитолиза эндотелиоцитов значительно снижается;

2) сбалансированный раствор на базе поликомпонентных сред (таких как M199 и DMEM), дополненный осмолярным соединением, должен быть достаточным для поддержания натуральной формы роговицы. Такая среда является подходящей в отличие от других растворов, в которых содержится декстран.

Увеличение срока хранения роговицы в предлагаемом растворе достигается за счет следующего:

1. С целью снижения риска повреждения клеточных структур радикалами, образующимися в ходе метаболизма, используется эхинохром А в концентрации 0,001-0,01% мас./объем.

2. Для повышения осмотического давления до значений водянистой влаги используется гидроксиэтилкрахмал 200/0,5, с молекулярной массой 200000 Да, в концентрации 5-10% мас./объем.

Выбор компонентов консервирующего раствора основывается на моделировании физиологических условий хранения корнео-склерального лоскута. В результате создана среда, в которой жизнеспособность клеточных элементов роговицы удерживается в течение 10-12 дней хранения при температуре 2-6°C.

Раствор для консервации роговицы производят в стерильных условиях (стерильный бокс и ламинарный поток воздуха на рабочем столе) с использованием стерильной посуды. Для приготовления 100 мл консервационного раствора в колбу с 80 мл дистиллированной воды насыпают сухую среду M199 в количестве 640 мг и DMEM - 447 мг (таблица)), После их полного растворения в раствор добавляют антибиотик гентамицин до конечной концентрации 10 мг и антимикотик амфотерицин В - 25 мкг. Далее в раствор насыпают 54,25 мг L-аланил-L-глутамина; 595,8 мг HEPES; 1-10 мг эхинохрома А; 5,5 мг пирувата натрия; 151 мг β-гидроксибутирата натрия; 220 мг гидрокарбоната натрия. По завершении растворения вышеуказанных соединений раствор разделяют поровну на 2 флакона. В 1-й флакон засыпают 2,5 г хондроитина сульфата, а во второй- 5-10 г гидроксиэтилкрахмала, и оставляют в темноте до их полного набухания и растворения (около 60-80 мин). Затем растворы сливают в стерильную мерную аналитическую колбу, добавляют дистиллированной воды до метки колбы 100 мл и перемешивают. Производят префильтрацию через фильтр "Millipore" с размером пор 0,45 мкм. Затем через фильтр "Millipore" с диаметром пор 0,22 мкм среду разливают во флаконы по 10 мл, укупориваемые стерильными силиконовыми пробками под жесткую обкатку.

В стерильном боксе выкраивают корнеосклеральный лоскут общим диаметром 13,0-13,5 мм и помещают в герметичный флакон с 10 мл консерванта, который хранится в условиях глубокой гипотермии (4-6°C) сроком до 10-12 суток. Роговичные лоскуты в данном поликомпонентном растворе сохраняют жизнеспособность клеток и тканевую структуру на весь срок консервации. Это обеспечивает высокие оптические и трансплантационные свойства донорского материала, как для сквозной, так и для послойной кератопластики.

Использование данной среды позволяет создать региональный банк корнеосклеральных лоскутов на базе ГБУ "Уфимский НИИ глазных болезней АН РБ". Использование материала, консервированного в данной среде, позволяет проводить экстренные и плановые кератопластики после предварительного тестирования донорского материала на HIV, HBV, HCV и Treponema pallidum.

Пример. 1. Донор мужского пола Р., 47 лет, скончался на фоне острого инфаркта миокарда. Через 14 часов после смерти, в морге изъяты глазные яблоки, которые в стерильных условиях при t=6-8°C доставлены в ГБУ "Уф НИИ ГБ АН РБ"; параллельно в лабораторию для исключения инфекционного поражения донорского материала на анализ вышеуказанных инфекций отправлена венозная кровь. Обработку донорского материала проводили в 3 этапа: 1) ополаскивание глазного яблока в 0,5% растворе поливинилпиролидона йодина (PVP-I), растворенного в дистилированной воде с добавлением гидроксида натрия (NaOH) до рН=5,0-6,3; 2) ополаскивание в растворе 1% тиосульфата натрия (0,08-1,2%), растворенного в физиологическом растворе; 3) ополаскивание в физиологическом растворе.

Вырезание корнеосклерального лоскута проводилось в стерильных условиях стерильными инструментами с соблюдением правил асептики. Далее на эндотелиальном микроскопе Konan KeratoAnalyzer ЕКА-10 проводили оценку плотности клеток эндотелиального слоя. Результаты анализа показали, что плотность клеток составляет 3200 кл./мм2.

Для объективной оценки качества хранения проводилось морфологическое исследование эндотелиоцитов в различные сроки хранения. Для этого применен метод M.J. Taylor and C.J. Hunt (1981), основанный на использовании трипанового синего и ализаринового красного (фигура 1).Как видно из фигуры, на третьи сутки морфологическая структура эндотелия полностью сохранена;

на 6 сутки отмечается небольшое расширение границ между несколькими клетками и появление единичных погибших клеток (прокрашены красным в верхнем секторе); на 9 сутки визуализируется укрупнение ряда клеток ввиду их слияния с близлежащими; на 12 сутки отмечается нарушение межклеточного контакта (красные точки на углах клеток), появление как разрушающихся (ядро прокрашено синим), так и погибших клеток.

Неорганические соли г % L-Серин 3,0(6)·10-3
NaHCO3 0,22 L-Треонин 5,17(3)·10-3
CaCl2 (безводный) 2·10-2 L-Триптофан 1,2·10-3
MgSO4 (безводный) 9,77·10-3 L-Тирозин·2Na·2H2O 7,326(3)·10-3
KCI 4·10-2 L-Валин 4,78(6)·10-3
NaCl 0,(6) Аланил-глутамин 5,425·10-2
NaH2PO4 (безводный) 1,35·10-2 Витамины г %
FeSO4·7H2O 3,3·10-5 р-амино-бензойная кислота 3,(3)·10-3
Fe(NO3)3·9H2O 3,(3)·10-9
CH3COONa·3H2O 5,528(6)·10-3 Аскорбиновая кисота 3,(3)·10-6
NaHSO4·H2O 1,0(6)·10-6 D-Биотин 6,(6)·10-3
Аминокислоты г % Кальциферол 6,(6)·10-6
L-Алании 1,(6)·10-3 Холин лорид 1,(6)·10-4
L-Аргинин·HCl 7,4(6)·10-3 Фолиевая кислота 1,34·10-4
L-Аспарагиновая кислота 2·10-3 Менадин 1,0(6)·10-6
L-Цистеин·HCl·моногидрат 6,(6)·10-6 мио-Инозитол 2,3(6)·10-4
L-Цистин-2HCl 3,819·10-3 Никотинамид 1,35·10-4
L-Глутаминовая кислота 5,0·10-3 Никотиновая кислота 1,(6)·10-6
Глицин 4,(3)·10-3 D-Пантеноновая кислота·1/2Са 1,34·10-4
L-Гистидин·HCl·моногидрат 2,8(6)·10-3 Пиридоксал·HCl 1,(6)·10-6
Гидрокси-L-пролин 6,(6)·10-4 Пиридоксин·HCl 1,35·10-4
L-Изолейцин 6,16·10-3 Ретинола ацетат 9,(3)·10-6
L-Лейцин 4·10-3 Рибофлавин 1,4·10-5
L-Лизин-HCl 9,54·10-3 Тиамин·HCl 1,34·10-4
L-Метионин 2·10-3 DL-α-Токоферола 6,(6)10-6
L-Фенилаланин 3,8(6)·10-3 фосфат·2Na
L-Пролин 2,(6)·10-3 Прочие г %
D-Глюкоза 0,1 Гуанин·HCl 2·10-5
Рибоза 3,(3)·10-5 Гипоксантин 2,2(6)·10-3s
2-DT-окси-D-рибоза 3,(3)·10-5 Фенол красный-Na 1,(3)·10-3
Аденина сульфат 6,(6)·10-4 Пировиноградная кислота-Na 3,(6)·10-3
Аденозина трифосфат·2Na 6,(6)·10-5 Тимин 2·10-5
Аденозина монофосфат·Na 1,(3)·10-5 Твин 80 1,(3)·10-3
Холестерол 1,(3)·10-5 Урацил 2·10-5
Глутатион (восстановленный) 3,(3)·10-6 Ксантин 2,0(6)·10-5

Раствор для хранения роговицы, содержащий смесь биологических сред M199 и DMEM, хондроитина сульфат, L-аланил-L-глутамин, 4-(2-гидроксиэтил)-1-пиперазинэтансульфоновую кислоту (HEPES), пируват натрия, β-гидроксибутират натрия, гентамицина сульфат, амфотерицин В, отличающийся тем, что он дополнительно содержит 2,3,5,7,8-пентагидрокси-6-этилнафталиндион-1,4 (эхинохром А) и гидроксиэтилкрахмал при следующем соотношении компонентов, мас.%:

среда M199 0,64
среда DMEM 0,447
гидроксиэтилкрахмал 5-10
хондроитина сульфат 2,5
эхинохром А 0,001-0,01
L-аланил-L-глутамин 0,05425
буфер HEPES 0,5958
пируват натрия 0,0055
β-гидроксибутират натрия 0,151
гентамицина сульфат 0,01
амфотерицин В 0,0000250
дистиллированная вода до 100



 

Похожие патенты:

Изобретение относится к области криобиологии, клеточной биологии, морской биотехнологии и гидробиологии. Проводят обработку клеток морских микроводорослей криопротекторной смесью, содержащей проникающий и непроникающий криопротекторы и питательную среду.
Изобретение относится к медицине. Проводят получение донорской крови, смешивание с гемоконсервантом глюцир в соотношении 4:1, разделение донорской крови на плазму и эритроцитную массу с последующим хранением эритроцитной массы в течение 30 суток при t=+4°С.
Изобретение относится к области медицины, а именно к способу получения минерализованного костного матрикса. Способ получения минерализованного костного матрикса, включающий механическую очистку губчатой кости от хрящевой ткани, перфорацию кости спицей, далее кость последовательно обрабатывают раствором натрия хлорида и твина-100, раствором перекиси водорода, смесью хлороформ-этанол, перемешивают, объем всех используемых растворов составляет не менее 5 объемов губчатой кости, далее обрабатывают спирт-эфирной смесью, перемешивают, все перемешивания проводят на магнитной мешалке, далее центрифугируют и проветривают на воздухе, затем костные фрагменты замораживают, лиофильно высушивают и стерилизуют, при определенных условиях.
Изобретение относится к области медицины, а именно инфектологии и патологической анатомии, и может быть использовано для диагностики телэнцефального глиоза (ТГ) у детей с врожденными инфекциями.

Изобретение относится к сельскому хозяйству. .

Изобретение относится к сельскому хозяйству. .
Изобретение относится к медицине. .

Изобретение относится к медицине, ветеринарии и биологии. Проводят фиксацию образца, декальцинацию, промывание водой, дегидратацию в спиртовых растворах и заливку в парафин. Фиксацию образца проводят в течение 24-х часов в молекулярном фиксаторе FineFix на спиртовой основе, содержащем FineFix и 96° спирт в соотношении 1:2,5. Декальцинацию осуществляют в течение 2-5 суток в 5-8% забуференном растворе муравьиной кислоты при ежедневной смене декальцинирующего раствора и контроле полноты декальцинации. Соотношение образец: декальцинирующий раствор составляет 1:20. После завершения декальцинации проводят промывку образца водой и до стадии дегидратации повторно помещают образец в спиртовой раствор молекулярного фиксатора FineFix на 6-12 часов. Набор для приготовления препарата костной ткани содержит молекулярный фиксатор FineFix на спиртовой основе, концентрированный раствор декальцинатора, изготовленный из расчета 40 г лимоннокислого натрия, 100 мл 90%-ного раствора муравьиной кислоты, 300 мл дистиллированной воды и рабочие растворы для контроля полноты декальцинации, содержащие насыщенный раствор оксалата аммония и 25%-ный водный раствор аммиака. Изобретение позволяет получать высококачественные препараты, пригодные для последующего гистологического и иммуногистологического исследования при отсутствии использования высокотоксичных компонентов. 2 н.п. ф-лы, 2 ил.

Единица дозирования в форме прессованной таблетки для замедленного высвобождения средства против насекомых содержит испаряющееся средство против насекомых и инертную твердую основу. Твердая основа содержит двухкомпонентную систему, включающую материал для придания объема и материал, обеспечивающий пористость. Материал для придания объема выбран из группы наполнителей прямого прессования. Материал, обеспечивающий пористость, является карбонатом или бикарбонатом. Устройство подачи средства против насекомых содержит емкость для средства против насекомых. Для получения единицы дозирования ингредиенты смешивают и таблетируют при температуре выше температуры плавления средства против насекомых. Дозатор средства против насекомых содержит единицу дозирования в качестве единственного источника средства против насекомых. Состав находится в форме таблетки, помещенной рядом с нагревателем. Устройство содержит вилку, которая обеспечивает электрическое соединение с нагревателем, и колпак для таблетки, содержащий кожух и крышку. 4 н. и 9 з.п. ф-лы, 2 ил., 1 пр.

Устройство для консервирования замораживанием клеточных взвесей под давлением в атмосфере инертного газа - портативный криобароконтейнер - выполнен из нержавеющей стали марки 12Х18Н10Е и состоит из передней и задней панелей. На передней панели расположено восемь отверстий для стяжных болтов, а в верхней части имеется винт с толкателем для пережатия трубки пластикового контейнера, через которую заливается клеточная взвесь и подается под давлением инертный газ в стандартный контейнер «Компопласт 300». Контейнер находится в криобароконтейнере, а на задней панели в центральной части расположена ниша, выполненная точно по объему и размерам стандартного пластикового контейнера, а в верхней части имеется канал, по которому проходит трубка от него, а в верхней и нижней частях ниши находятся возвышения. Сверху задней панели расположена петля для подвешивания всего устройства, а по всему периметру задней панели расположено восемь стяжных болтов, закрепленных винтовой нарезкой и сваркой в задней панели. С задней стороны задней панели присоединена основными восьмью стяжными болтами и монтажными винтами задняя стенка. Использование данного изобретения позволяет производить замораживание по различным программам. 2 ил.

Изобретение относится к химии азотсодержащих гетероциклических соединений, а именно к производным несимметричных триазинонов, которые могут быть использованы в сельском хозяйстве. Ростстимулирующее средство в качестве основного активного компонента содержит соединение гетероциклического ряда - 4-амино-1,4,5,6-тетрагидро-1,2,4-триазинон-5. Изобретение повышает продуктивность сельскохозяйственных культур и обладает ростстимулирующей активностью. 4 табл.

Изобретение относится к упаковке для вмещения и хранения жидкого вещества, предназначенного для замораживания. Упаковка (1) для вмещения и хранения жидкого вещества (S), предназначенного для замораживания, содержит две герметизирующие стенки (4, 7), соединенные друг с другом для образования камеры (2) вмещения жидкого вещества (S), одно посадочное место (3), изолированное от герметизирующей камеры (2), для вмещения устройства (T) считывания температуры жидкого вещества (S). Герметизирующие стенки (4, 7) содержат две внешние стенки (4), которые образуют внешние габаритные размеры самой упаковки, опорные стенки (7), разграничивающие посадочное место (3) и выполненные с возможностью образования сквозного отверстия через герметизирующую камеру (2), которая имеет две вмещающие области (2а). Внешние стенки (4) образуют край (5), имеющий впускной зазор (6) для жидкого вещества (S). Опорные стенки имеют пару первых сторон (7а) напротив друг друга и пару вторых сторон (7b) напротив друг друга. Изобретение позволяет повысить надежность считывания температурных данных во время контроля и сертификации. 7 з.п. ф-лы, 2 ил.

Изобретение относится к медицине, а именно к онкологии, акушерству и гинекологии, и может быть использовано при необходимости сохранения и восстановления репродуктивной функции у женщин с онкологическими заболеваниями. Для этого до проведения курса лучевой и/или химиотерапии лапароскопическим доступом осуществляют забор образцов яичниковой ткани из кортикального слоя с фрагментацией их на части по 2-5 мм2. Из полученных образцов одну часть берут на гистологические исследования, а другую помещают в криопробирки и консервируют в две стадии. При этом в качестве криопротектора на первой стадии используют 10-14% раствор диметилсульфоксида, на второй стадии - 20% раствор 2,5 М сахарозы и 29-32% раствор диметилсульфоксида. При проведении аутотрансплантации образцы яичниковой ткани размораживают с использованием среды Kitazata и оценивают их качество путем гистологического исследования. Непосредственно перед трансплантацией лапароскопическим путем проводят биопсию сохраненных яичников с последующим проведением гистологического исследования. При удовлетворительном результате исследования в кортикальном слое каждого яичника формируют ложе и помещают в них от 5 до 10 фрагментированных размороженных образцов. Затем края ложа смыкают, обрабатывают биологически нейтральным клеем и накладывают клеммы для последующего визуального контроля и оценки динамики роста фолликулов трансплантированной ткани с применением визуальной диагностики. Контроль уровня гормонов проводят один раз в месяц до достижения уровня гормонов на момент забора яичниковой ткани для консервации. Способ позволяет сохранить или восстановить репродуктивную функцию у женщин с онкологическими заболеваниями за счет трансплантации декриоконсервированной овариальной ткани в сохраненные яичники, что обеспечивает адекватную васкуляризацию и приживаемость ткани. 3 з.п. ф-лы, 3 табл., 5 ил., 3 пр.

Изобретение относится к пантовому оленеводству, в частности к консервированию варочной пантовой воды непосредственно на мараловодческой ферме в период панторезной компании. Способ заключается в том, что наряду с термообработкой варочной пантовой воды в качестве консерванта используют листья бадана. Предлагаемое изобретение позволяет в период панторезной компании на мараловодческой ферме сохранять для реализации весь объем варочной пантовой воды без изменения ее органолептических характеристик. 2 з.п. ф-лы, 2 табл., 1 пр.
Изобретение относится к медицине. Биоткань перед ферментативной обработкой помещают в гипертонические растворы хлорида натрия и подвергают воздействию ультразвука в течение 20-300 минут. Затем обрабатывают ферментом террилитином в концентрации 0,1-10 ПЕ на 1 грамм ткани, отмывают в растворе уксусной кислоты и гидрокарбонате натрия, выдерживают в многократно заменяющихся растворах глутарового альдегида возрастающих концентраций и стерилизуют. Изобретение позволяет гарантированно сохранить коллагеново-эластическую структуру биоткани, снизить степень ее минерализации, сократить расход используемых для обработки реактивов, получить неиммуногенный, прошитый по всему объему, биоматериал. 1 з.п. ф-лы, 3 пр.

Группа изобретений относится к медицине, а именно к кардиохирургии, и касается создания гомографтов сердечнососудистой системы (ГССС), применяемых в качестве сосудистых биологических протезов при операциях на сердечно-сосудистой системе. Предлагаются варианты гомографта, представляющего собой изъятый из трупа участок магистральных сосудов или выходных трактов правого и левого желудочков сердца. Гомографт характеризуется также тем, что в течение, по крайней мере, 30 минут его подвергают предварительной обработке средой, содержащей гентамицин, дифлюкан и стабилизатор рН. Затем на стадии препаровки обрабатывают средой с рН 7,0-7,4, представляющей собой раствор DMEM/F12, содержащей гентамицин, дифлюкан, цефалоспорин и метрогил. Последующее хранение гомографта осуществляют в среде, содержащей раствор DMEM/F12, гентамицин, дифлюкан и фосфатный буфер. Предложены также способы получения указанных вариантов ГССС, а также среды для воздействия на ткани гомографта на разных этапах получения, хранения и транспортировки. Изобретения обеспечивают создание ГССС более жестких конструкций, устойчивых по отношению к воздействию повреждающих факторов сред обработки, транспортировки и хранения, что улучшает их функционирование в организме. 6 н. и 10 з.п. ф-лы, 10 пр., 9 табл., 10 ил.
Предлагаемое изобретение относится к медицине и может быть использовано в работе анатомических музеев, коллекций, кафедр анатомии медицинских вузов. Способ консервации костных анатомических препаратов предусматривает нанесение на предварительно очищенную от мягких тканей, обезжиренную, высушенную кость композиции-консерванта, приготовленной из полимерного клея «Dragon» и ацетона, взятых в соотношении 1:(1-3). Предлагаемый способ обеспечивает механическую прочность и естественный цвет кости, прост и безопасен в применении. 3 пр.
Наверх