Вакцина против ящура типа а инактивированная сорбированная



Вакцина против ящура типа а инактивированная сорбированная
Вакцина против ящура типа а инактивированная сорбированная
Вакцина против ящура типа а инактивированная сорбированная

 


Владельцы патента RU 2526570:

Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") (RU)

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и касается вакцины против ящура типа А. Вакцина содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма вируса Aphtae epizooticae, сем. Picornaviridae, рода Aphtovirus, серотипа A, депонированного в коллекции ФГУ «ВГНКИ» под регистрационным номером №2045/Киргизия/2007-ДЕПА №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный в перевиваемой культуре клеток ВНК-21, представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура, адъюванты гидроокись алюминия с сапонином и поддерживающую среду в эффективных соотношениях. Вакцина обладает высокой иммуногенностью и способна обеспечить эффективную защиту от возбудителя инфекции ящура, циркулирующего в странах Закавказья, Центральной Азии, Ближнего и Дальнего Востока. 11 з.п. ф-лы, 14 табл., 1 ил, 4 пр.

 

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при разработке и изготовлении вакцины против ящура типа А инактивированной сорбированной.

Ящур - это острое контагиозное вирусное заболевание парнокопытных животных. Для него характерна тенденция к широкому распространению и эпизоотическому течению. Болезнь сопровождается большими потерями молока, мяса и других видов животноводческой продукции, затрудняет коммерческие операции и хозяйственную деятельность. Для обеспечения устойчивого благополучия страны по ящуру в Российской Федерации реализуется система мероприятий, приоритетными в которой являются предупреждение заноса вируса ящура на территорию, а в районах высокой степени риска - вакцинопрофилактика. В настоящее время в Российской Федерации и странах СНГ для иммунизации крупного и мелкого рогатого скота против ящура применяют, как правило, инактивированные сорбированные, а для иммунизации свиней - инактивированные эмульсионные вакцины [1].

Технология изготовления противоящурной вакцины из инактивированного вируса начинается с подбора производственных штаммов на основе эпизоотологического анализа динамики ящура в стране и сопредельных государствах. При создании препаратов для специфической профилактики используют соответствующие типы вируса ящура и подбирают штаммы с широким антигенным спектром внутри типа с выраженной перекрестной иммуногенностью. Штамм с широким спектром иммуногенности и удовлетворяющий требованиям региона выбирают с помощью его испытания в реакции перекрестной защиты или чаще в реакции перекрестной нейтрализации. Как правило, в качестве производственного штамма используется популяция вируса, которая в совокупности с системой и условиями промышленного культивирования обеспечивает гарантированное и высокое накопление 146S и 75S компонентов вируса и получение иммуногенной вакцины.

Кроме того, к производственному штамму предъявляются требования стабильности вируса в процессе очистки от тканевых компонентов и концентрирования, а также сохранения вируса при инактивации и длительном его хранении [2].

Возбудитель ящура обладает значительной антигенной вариабельностью штаммов в пределах одного серотипа, которая выявляется в различные временные промежутки и на разных территориях и зависит от видового состава восприимчивого поголовья, его иммунного статуса и множества других различных факторов. Антигенная изменчивость вируса ящура обусловлена заменами аминокислот в полипептидных фрагментах (антигенных эпитопах), экспонированных на поверхности капсидных белков [2, 3]. Сдвиги антигенного спектра, соответствующие обновлению структуры нового полевого штамма, могут варьировать от незначительных, улавливаемых моноклональными антителами, до существенных, регистрируемых с помощью традиционных поликлональных иммуноглобулинов. Существенные изменения антигенных характеристик природного штамма с большой вероятностью вызывают ослабление специфического иммунитета, индуцированного негомологичным антигеном. Они вызывают также затруднения штаммоспецифической диагностики.

В результате возникает необходимость создания новых средств диагностики и специфической иммунопрофилактики.

Известны штаммы вируса ящура типа А, использовавшиеся в качестве производственных на территории СССР и РФ в течение последних 50 лет.

К ним относятся следующие штаммы: А7 №103, выделенный в 1962 году в Куйбышевской области; А7 №2, выделенный в 1965 году в Таджикской ССР; А №717/73, выделенный в 1973 году в Ставропольском крае.

Указанные штаммы использовались для получения диагностикумов и противоящурных вакцин, применявшихся в различных регионах страны.

Однако после ликвидации ящура, вызываемого близкими им в антигенном отношении штаммами вируса, они были сняты с производства и в настоящее время поддерживаются лишь в коллекции штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ» [1÷4].

Известна вакцина инактивированная сорбированная против ящура типа А, содержащая активное вещество в виде авирулентного и очищенного антигенного материала из гомологичного возбудителю инфекции штамма A22 №550, полученного в чувствительной биологической системе, и целевые добавки в виде адъюванта и поддерживающей среды в эффективном соотношении [5].

Штамм А22 №550 вируса ящура выделен в 1964 году в Азербайджане и используется в Российской Федерации в качестве производственного при изготовлении средств специфической профилактики и диагностики, применяемых на всей территории России и в странах постсоветского пространства [6, 7].

Известна инактивированная сорбированная вакцина из штамма A (Грузия) 1999/№1721 вируса ящура Aphtae epizooticae типа A, выделенного в 1999 году в Республике Грузия [8].

Известна инактивированная сорбированная вакцина из штамма №1707 «Армения-98» вируса ящура Aphtae epizooticae типа А [9].

Вакцина против вируса ящура типа A из производственного штамма A №1707 «Армения-98», применявшегося в буферной зоне Закавказья.

Недостатки вакцин, изготовленных из данных штаммов, состоят в недостаточной антигенной и иммуногенной активности относительно эпизоотических изолятов вируса ящура типа A, циркулирующих в настоящее время в странах Закавказья, Центральной Азии и Ближнего Востока (Турция, Иран и т.д.) ввиду имеющихся существенных антигенных отличий.

Наиболее близкой предлагаемому изобретению по совокупности существенных признаков является вакцина инактивированная сорбированная против ящура типа A, содержащая активное вещество в виде авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма A (Грузия) 1999/№1721, полученного в чувствительной биологической системе, и целевые добавки в виде адъювантов ГОА с сапонином и поддерживающую среду в соотношении, мкг:

Антигенный материал Не менее 3,0
ГОА 11320,0÷21080,0
Сапонин 750,0
Поддерживающая среда До 1000000,0 [5]

Штамм A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП выделен в 1999 году в Республике Грузия и используется в Российской Федерации в качестве производственного при изготовлении средств специфической профилактики и диагностики, применяемых на всей территории России и в странах СНГ [10].

В качестве чувствительной биологической системы используют суспензионную культуру клеток ВНК-21, а в качестве поддерживающей среды - раствор Эрла без сыворотки с добавлением ФГМС, ГБКС и антибиотиков при pH 7,4÷7,6.

Для очистки вируссодержащей суспензии от балластных примесей используют полигексаметиленгуанидин (ПГМГ), а для инактивации вируса - аминоэтилэтиленимин (АЭЭИ). Для нейтрализации АЭЭИ в суспензию добавляют тиосульфат натрия.

Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A (Грузия) 1999/№1721 представляет собой суспензию преимущественно из 146S и 75S иммуногенных компонентов вируса ящура. В качестве адъювантов используют ГОА с сапонином.

Основной недостаток известных вакцин, в том числе и вакцины-прототипа, состоит в антигенных отличиях от изолятов вируса ящура типа A, выделенных в различные временные промежутки, и приготовленные на их основе вакцины обеспечивают эффективную защиту животных только против заражения гомологичным вирусом.

В 2003 году на территории Ирана был выделен новый изолят вируса ящура типа A, значительно отличающийся от ранее изученных штаммов этого типа. В течение 2005÷2006 гг. ящур типа A получил широкое распространение в странах Западной Азии - Иране, Турции, Саудовской Аравии и Пакистане. В феврале 2006 года ящур типа A линии Иран/05 попал во Фракию - европейскую часть Турции, которая граничит с Болгарией и Грецией. Проведение 100% вакцинации всех жвачных с применением штамма A22 во Фракии в феврале-марте 2006 г. предотвратило распространение ящура в соседние Грецию и Болгарию, однако через 3÷4 месяца появились свежие случаи заболевания [11].

В связи с этим возникла необходимость получить новую вакцину против вируса ящура серотипа A из штамма А №2045/Киргизия/2007 для обеспечения безопасности территории России и сопредельных государств от этого возбудителя.

В задачу создания настоящего изобретения входила разработка вакцины противоящурной инактивированной сорбированной, создающей эффективную защиту восприимчивых животных против эпизоотического вируса ящура типа A, циркулирующего в странах Закавказья, Центральной Азии, Ближнего и Дальнего Востока.

Технический результат от использования предлагаемого изобретения заключается в расширении арсенала инактивированных сорбированных вакцин против ящура типа A.

Указанный технический результат достигнут созданием вакцины против ящура типа A инактивированной сорбированной, охарактеризованной следующей совокупностью признаков.

Предлагаемая вакцина содержит в 1 см3 препарата: активное вещество в виде авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученного предпочтительно в суспензионной культуре клеток ВНК-21 в количестве не менее 3,0 мкг и целевые добавки: ГОА предпочтительно в количестве 11000,0÷15000,0 мкг, сапонин предпочтительно в количестве 500,0÷1500,0 мкг и поддерживающую среду в количестве до 1000000,0 мкг.

Исходный вирус для получения штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП выделен в 2007 году в Республике Киргизия. Штамм получен путем многократных последовательных пассажей на чувствительных гетеро- и гомологичных культурах клеток. Штамм адаптирован к первично трипсинизированным клеткам свиной почки и перевиваемым клеточным культурам ВНК-21, IBRS-2 и ПСГК-30.

Для изготовления вакцины в качестве чувствительной биологической системы используют предпочтительно суспензионную культуру клеток ВНК-21, а в качестве поддерживающей среды раствор Эрла без сыворотки с добавлением ФГМС, ГБКС и антибиотиков при pH 7,4÷7,8.

Для инактивации вируса используют АЭЭИ, который добавляют в вируссодержащую суспензию до концентрации 0,025÷0,05%. По окончании инактивации АЭЭИ нейтрализуют внесением в суспензию тиосульфата натрия [12].

Полученный антиген очищают от балластных примесей с помощью ПГМГ, который вносят в суспензию до концентрации 0,005÷0,007% [13].

Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП представляет собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура.

Количественное и качественное содержание вирусного сырья определяют методом турбидиметрии [14].

Для приготовления вакцины используют вирусный материал, содержащий в 1 см3 не менее 0,5 мкг 146S и 75S иммуногенных компонентов вируса ящура.

Необходимую концентрацию 146S и 75S иммуногенных компонентов вируса ящура в предлагаемой вакцине, составляющую не менее 3 мкг в 1 см3 готового препарата, получают путем добавления в авирулентный и очищенный антигенный материал расчетного количества адъюванта-сорбента ГОА. Оптимальным является содержание ГОА в 1 см3 готового препарата в диапазоне от 11000,0 мкг до 15000,0 мкг.

К полученному концентрату добавляют дополнительно 10% водный раствор сапонина из расчета 1500,0 мкг на прививную дозу. Например, для оптимальной прививной дозы 2 см3 конечная концентрация составляет 0,075%, что соответствует 750,0 мкг его содержания в 1 см3 готового препарата.

Полученная вакцина представляет собой жидкость светло-желтого цвета с рыхлым осадком сорбента, который образуется на дне флакона при хранении и легко разбивается в гомогенную взвесь при встряхивании.

Предлагаемое изобретение включает следующую совокупность существенных признаков, обеспечивающих получение технического результата во всех случаях, на которые испрашивается правовая охрана.

1. Вакцина против ящура типа A инактивированная сорбированная.

2. Активное вещество в виде авирулентного и очищенного антигенного материала из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП в эффективном количестве.

3. Целевые добавки.

Признаками изобретения, характеризующими предлагаемую вакцину и совпадающими с признаками прототипа, в том числе родовое понятие, отражающее назначение, являются:

1. Вакцина против ящура типа A инактивированная сорбированная.

2. Активное вещество.

3. Целевые добавки.

По сравнению с вакциной-прототипом существенным отличительным признаком предлагаемой вакцины является то, что в качестве активного вещества она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A в эффективном количестве.

Предлагаемое изобретение характеризуется также другими отличительными признаками, выражающими конкретные формы выполнения или особые условия его использования.

1. Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007, полученный в чувствительной биологической системе и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

2. Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток животного происхождения и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

3. Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

4. Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A в количестве не менее 3,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

5. В качестве целевой добавки вакцина содержит адъювант-сорбент ГОА.

6. ГОА предпочтительно в количестве 11000,0÷15000,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

7. В качестве целевой добавки вакцина содержит адъювант сапонин.

8. Сапонин предпочтительно в количестве 500,0÷1500,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

9. В качестве целевой добавки вакцина содержит поддерживающую среду.

10. Поддерживающая среда в количестве до 1000000,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

11. Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A, ГОА, сапонин и поддерживающую среду в соотношении, мкг:

Антигенный материал не менее 3,0
ГОА 11000,0÷15000,0
Сапонин 500,0÷1500,0
Поддерживающая среда до 1000000,0

Предлагаемая вакцина обладает высокой иммуногенной активностью и обеспечивает надежную защиту против вируса ящура серотипа A, циркулирующего в странах Закавказья, Центральной Азии, Ближнего и Дальнего Востока.

Достижение технического результата от использования изобретения достигается тем, что в состав предлагаемой вакцины введен в качестве активного вещества антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура серотипа A, обладающего высокой биологической, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и после инактивации и обеспечивающего получение противоящурной вакцины сорбированной инактивированной, создающей эффективную защиту восприимчивых животных против вируса ящура серотипа A, вызывающего вспышки заболевания в последние годы в странах Закавказья, Центральной Азии, Ближнего и Дальнего Востока.

Штамм A №2045/Киргизия/2007 является новым, ранее неизвестным [15]. Исходный вирус для получения штамма A №2045/Киргизия/2007 был выделен из проб афтозного материала от больной телки, поступивших в ФГУ «ВНИИЗЖ» в декабре 2007 года из Республики Киргизия (экспертиза №2045 «Киргизия/07»). Производственный штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A получен путем последовательных пассажей на чувствительных гетеро- и гомологичных культурах клеток.

Полученный штамм депонирован 7 июля 2009 года во Всероссийскую государственную коллекцию штаммов микроорганизмов, используемых в ветеринарии и животноводстве, Федерального государственного учреждения «Всероссийский государственный центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГУ «ВГНКИ») под регистрационным номером (ссылкой): производственный штамм A №2045/Киргизия/2007-ДЕП вируса ящура типа A.

Штамм A №2045/Киргизия/2007-ДЕП вируса ящура типа A характеризуется следующими признаками и свойствами.

Морфологические свойства

Штамм A №2045/Киргизия/2007-ДЕП относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus, серотипу A и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона икосаэдрическая, размер 23-25 нм. Вирион состоит из молекулы РНК, заключенной в белковую оболочку. Белковая оболочка состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.

Антигенные свойства

По своим антигенным свойствам штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура относится к серотипу A. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности (ГА-активности). У переболевших животных в сыворотке крови образуются антитела, выявляемые в иммуноферментном анализе (ИФА) и реакции микронейтрализации (РМН). При иммунизации КРС вакциной из инактивированного вируса индуцирует образование специфических антител, выявляемых в ИФА, РДП и РМН.

При гипериммунизации морских свинок концентрированный антиген из инактивированного вируса ящура типа A штамма A №2045/Киргизия/2007 индуцирует образование вирусспецифических и вируснейтрализующих антител, выявляемых в РСК в разведениях 1:80÷1:160 и в ИФА в разведениях 1:10000÷1:12000.

Антигенное родство штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A с производственным штаммом вируса ящура A22 №550 и штаммами, ранее выделенными на Азиатском континенте, изучено в РСК, ИФА и РМН.

Результаты исследований в РСК представлены в таблице 1. Антигенное родство (R) штамма A №2045/Киргизия/2007 с другими вирусами ящура серотипа A составило для A/Иран/97 - 8%, A22/Ирак 24/64 - 28%, A/Иран/05 - 68%, A/Турция/06 - 66%, A22 №550 - 14%.

Результаты исследований в РМН представлены в таблице 2. Антигенное соответствие (r1) составило для A/Иран/97 - 0,125, A22 №550 - 0,17, A22/Ирак 24/64 - 0,6, A/Турция/06 - 0,5. При значении r1>0,3 полевой изолят и производственный штамм являются близко родственными, и вакцина из производственного штамма будет защищать от эпизоотического вируса, при значении r1<0,3 полевой изолят отличается от производственного штамма, и вакцина из данного штамма не защищает от эпизоотического вируса [16].

Результаты исследований в ИФА представлены в таблице 3. Антигенное соответствие (r1) составило для A22 №550 - 0,24, A22/Ирак 24/64 - 0,24, A/Иран/97 - 0,19, A/Турция/06 - 0,5. При значении r1, равном 0,4÷1,0, полевой изолят и производственный штамм находятся в близком антигенном родстве; при значении r1 0,2÷0,39 полевой изолят антигенно родственен производственному штамму, вакцина из производственного штамма может быть использована, если не будет найдено более родственного штамма, и при условии, что животные будут иммунизированы более 1 раза; при значение r1<0,2 полевой изолят отличается от производственного штамма, вакцина из которого не приемлема для защиты от заражения полевым вирусом [17].

Молекулярно-генетическая характеристика

Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура гена VP1 вируса ящура типа A штамма А №2045/Киргизия/2007 и выведена первичная структура белка VP1. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A имеет близкое филогенетическое родство со штаммами A/Иран/05 и A/Турция/06 (процент нуклеотидных различий 3,82÷4,3 и 4,46÷5,57 соответственно) и значительно отличается от вакцинного штамма A22 №550. Кроме того, он отличается от штаммов вируса этого типа, выделенных в 1998 г. в Армении и Турции, а также в Грузии и Иране в 1999 г. (смотри дендрограмму). Степень нуклеотидных различий последовательностей штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A со штаммами вируса ящура серологического типа A составила: со штаммом A22 №550 - 18,15%, со штаммом A №1707 «Армения-98» - 17,68%, со штаммом A/Турция/98 - 17,2%, со штаммом A (Грузия) 1999/№1721 - 18,79%, со штаммом A/Иран/99 - 17,68%.

Таким образом, филогенетический анализ показал, что штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A принадлежит к новой генетической линии вируса ящура серологического типа A.

Биотехнологические характеристики

Штамм A №2045/Киргизия/2007 репродуцируется в монослойной культуре клеток почки свиньи (СП), перевиваемых культурах клеток ПСГК-30, ВНК-21 и IB-RS-2, и в течение 20÷24 часов инкубирования урожай вируса в указанных культурах клеток достигает значений от 6,33 до 8,25 lg ТЦД50-/см3 (таблица 4). При массированном заражении (1÷10 ТЦД/клетку) вызывает ЦПД через 5 часов. Сохраняет исходные характеристики при пассировании в клеточных культурах на протяжении 10 пассажей (срок наблюдения).

Хемо- и генотаксономическая характеристика

Штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A является РНК-содержащим вирусом с молекулярной массой 7×106 Д.

Нуклеиновая кислота представлена одноцепочечной линейной молекулой молекулярной массой 2,8×106 Д. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP1, VP2, VP3 и VP4. Липопротеидная оболочка отсутствует.

Основным антигенным белком является VP1. В вирионе содержится приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирионная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники, в свою очередь, расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 8 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, один (BP56a) является РНК-зависимой РНК-полимеразой, участвующей в репликации РНК новых вирионов.

Физические свойства

Масса вириона составляет 8,4×10-18 г. Коэффициент седиментации 146S в градиенте сахарозы. Плавучая плотность 1,45 г/см3.

Устойчивость к внешним факторам

Штамм A №2045/Киргизия/2007 устойчив к эфиру, хлороформу, фреону, ацетону и другим органическим растворителям и детергентам. Наиболее стабилен при pH 7,2÷7,6. Сдвиги pH как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса.

Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению, высоким температурам.

Дополнительные признаки и свойства

Иммуногенная активность - иммуногенен в составе инактивированной вакцины.

Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает.

Патогенность - патогенен для парнокопытных животных, новорожденных мышат, морских свинок.

Вирулентность - вирулентен для естественно восприимчивых животных при контактном, аэрозольном и парентеральном заражении.

Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 10 пассажей.

Штамм A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A проявляет высокую биологическую, антигенную и иммуногенную активность как в нативном виде, так и после инактивации.

Исходя из полученных данных, можно утверждать, что штамм A №2045/Киргизия/2007 по антигенному и иммунологическому спектрам является оригинальным, в таксономическом отношении новым, ранее неизвестным вариантом вируса ящура типа A.

Для снижения его эпизоотической опасности необходима своевременная вакцинопрофилактика вновь возникающих очагов болезни, для чего необходимы актуальные высокоиммуногенные вакцины.

Проведенный заявителем анализ уровня техники, включающий поиск по патентным и научно-техническим источникам информации, и выявление источников, содержащих сведения об аналогах предлагаемого изобретения, позволил установить, что заявитель не обнаружил источники, характеризующиеся признаками, тождественными (идентичными) всем признакам предлагаемого изобретения. Определение из перечня выявленных аналогов прототипа, как наиболее близкого по совокупности признаков аналога, позволило установить совокупность существенных по отношению к усматриваемому заявителем техническому результату отличительных признаков предлагаемой вакцины, изложенных в независимом пункте формулы.

Следовательно, заявляемая вакцина соответствует уровню патентоспособности «новизна».

Для проверки соответствия предлагаемой вакцины условию патентоспособности «изобретательский уровень» проведен дополнительный поиск известных решений для выявления признаков, включенных в отличительную часть независимого пункта формулы изобретения. Результаты поиска показали, что предлагаемое решение не вытекает для специалиста явным образом из известного уровня техники, изложенного в соответствующем разделе описания (не выявлены решения, имеющие признаки, совпадающие с отличительными признаками предлагаемого изобретения), а также не выявлено влияние предусматриваемых существенными признаками предлагаемой вакцины преобразований для достижения технического результата.

Следовательно, предлагаемая вакцина соответствует условию патентоспособности «изобретательский уровень».

Сущность изобретения пояснена в перечнях последовательностей, в которых:

SEQ ID NO:1 представляет последовательность нуклеотидов гена белка VP1 штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A.

SEQ ID NO:2 последовательность аминокислот белка VP1 штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A.

Сущность изобретения пояснена на дендрограмме, отражающей филогенетические взаимоотношения штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура серологического типа A с эпизоотическими и вакцинными штаммами вируса ящура типа A. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP1.

Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его использования, которые не ограничивают объем изобретения.

Пример 1.

Штамм A №2045/Киргизия/2007 вирус ящура типа A был изолирован из полевого материала, поступившего в ФГУ «ВНИИЗЖ» в виде эпителия афт от КРС, подозреваемого в заболевании ящуром, при проведении лабораторной диагностики этого заболевания и дифференциации его от других везикулярных болезней. При изоляции вируса использован комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов.

Биологические и вирусологические методы включали инокуляцию материала полевого изолята КРС и последующую адаптацию вируса к культурам первично трипсинизированных и перевиваемых линий клеток. Были использованы культуры клеток СП, ПСГК-30, IB-RS-2 и ВНК-21. Первичные и перевиваемые культуры клеток для постановки биопробы выращивали на соответствующих питательных средах в стационарных условиях во флаконах емкостью 50÷100 см3, отмывали от ростовой среды и заражали 10% суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1÷10 ТЦД50 на клетку), приготовленной в растворе Хенкса с 0,5% ГЛА и антибиотиками по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов суспензию обрабатывали хлороформом в отношении 1:10. После 30-минутного инкубирования при 37°C во флаконы вносили по 5÷10 см3 поддерживающей среды и инкубировали при 37°C до появления ЦПД вируса. При наличии ЦПД (округление клеток, повышение их оптической плотности, дегенерация и отделение клеток от стекла) флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000g в течение 15 минут. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей и исследования в РСК и ИФА на наличие вирусного антигена, при этом использовали набор коммерческих типоспецифических сывороток и сыворотки, хранившихся в музее штаммов ФГУ «ВНИИЗЖ».

Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 4.

Данные, приведенные в таблице 4, свидетельствуют о хорошей адаптационной активности штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A к использованным клеточным культурам.

Изолированный с помощью перечисленных методов вирус был исследован в РСК с набором диагностикумов на все типы вируса ящура, с целью идентификации типовой принадлежности.

Результаты типирования вируса в РСК представлены в таблице 5.

Приведенные в таблице 5 результаты свидетельствуют о том, что выделенный вирус относится к типу A.

Пример 2.

Вакцину против ящура типа A инактивированную сорбированую готовят из вируса штамма A №2045/Киргизия/2007, выращенного в суспензионной культуре клеток ВНК-21. В качестве поддерживающей среды используют раствор Эрла без сыворотки с добавлением ФГМС, ГБКС и антибиотиков при pH 7,4÷7,8. Культуру клеток заражают вирусом из расчета 0,001÷0,05 ТЦД50 на клетку.

Культивирование вируса ведут при температуре 36÷37°C. Через 11÷13 часов инкубирования проводят подсчет живых и мертвых клеток при окраске трипановым синим. Если количество живых клеток составляет 15÷20%, то инкубирование продолжают еще 2÷3 часа. При достижении количества мертвых клеток 90÷95% культивирование прекращают и вируссодержащую суспензию контролируют на стерильность и содержание 146S и 75S компонентов. Количество 146S+75S компонентов в суспензии должно составлять не менее 0,5 мкг/см3.

В таблицах 6, 7, 8 и 9 приведены результаты культивирования штаммов A №2045/Киргизия/2007, A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП, A №1707 «Армения-98-ДЕП» и A22 №550 вируса ящура типа A, из которых следует, что культуральные свойства перечисленных штаммов существенно отличаются по двум изученным параметрам:

1) штамм A №2045/Киргизия/2007 имеет более короткий период репродукции (12,5 часа) по сравнению со штаммом A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП и A №1707 «Армения-98-ДЕП» (15÷16 часов);

2) штаммы A №2045/Киргизия/2007 и A22 №550 дают более высокий процент выхода иммуногенных компонентов (90,1% и 89,9% соответственно) по сравнению со штаммами A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП и A №1707 «Армения-98-ДЕП» (61,5% и 58,1% соответственно).

Сразу по окончании цикла репродукции вируса, не прекращая термостатирования, в вируссодержащую суспензию добавляют 15÷20% раствор АЭЭИ, подкисленный ледяной уксусной кислотой до pH 8,0÷8,5. Конечная концентрация АЭЭИ в вируссодержащей суспензии должна быть равной 0,025÷0,05%. Инактивацию инфекционности вируса проводят в течение 12÷24 часов при 36÷37°C и pH 7,2÷7,6 с перемешиванием через 5÷6 часов в течение 3÷5 минут. Остаток АЭЭИ нейтрализуют добавлением тиосульфата натрия.

В теплую суспензию добавляют 10% раствор ПГМГ до концентрации 0,005÷0,007% для флокуляции балластных примесей и инактивации возможных контаминантов. Флокулированные балластные примеси подвергают седиментации с последующей декантацией.

В таблице 10 приведены результаты исследований по изучению влияния инактивации и очистки антигенного материала с помощью АЭЭИ и ПГМГ на иммуногенные (146S и 75S) компоненты вируса ящура штаммов A №2045/Киргизия/2007 и A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП.

Приведенные в таблице 10 данные свидетельствуют о том, что иммуногенные компоненты вируса ящура штамма A №2045/Киргизия/2007 не уступают в устойчивости к инактивации и очистке в условиях производства вирусу ящура штамма A (Грузия) 1999/№1721-ДЕП. Особенно важным является тот факт, что в процессе инактивации и очистки вируса из штамма A №2045/Киргизия/2007 не произошло существенных изменений в количестве 146S и 75S компонентов, полученных при репродукции вируса.

Полученный антиген контролируют на авирулентность, содержание вирусспецифического белка, 146S и 75S компонентов вируса и стерильность. Необходимую концентрацию 146S и 75S компонентов в прививной дозе адсорбированной вакцины получают путем концентрирования антигена ГОА.

Расчетный объем ГОА 3% концентрации добавляют в охлажденную суспензию антигена при работающей мешалке. Перемешивание ведут в течение 30 минут. После седиментации ГОА сливают расчетный объем оставшейся суспензии. Конечная концентрация ГОА должна быть в пределах 1,62±0,488 Р<0,01 мг/см3 n=10, а концентрация 146S и 75S компонентов вируса ящура, по меньшей мере, 3,0 мкг/см3 готового препарата. Затем в суспензию добавляют дополнительно 10% раствор сапонина до конечной концентрации 0,05÷0,15%, что соответствует 500,0÷1500,0 мкг сапонина в 1 см3 готовой вакцины.

Полученную вакцину расфасовывают в стеклянные флаконы и проводят контроль ее стерильности в соответствии с ГОСТ 28085.

Авирулентность и безвредность вакцины проверяют на 5 головах КРС, вводя вакцину сначала под слизистую языка в дозе 2,0 см3, а затем подкожно в дозе 10,0 см3. Наблюдение за клиническим состоянием животных ведут в течение 10 суток. Авирулентную, безвредную и стерильную вакцину проверяют на иммуногенную активность на КРС или на морских свинках.

Полученная вакцина представляют собой жидкость светло-желтого цвета с рыхлым белым осадком сорбента, который образуется на дне флакона при хранении и легко разбивается в гомогенную взвесь при встряхивании.

Оптимальный компонентный состав полученной адсорбат-вакцины против ящура типа A приведен в таблице 11.

Пример 3.

Проведены испытания адсорбат-вакцины против ящура типа A, изготовленной так, как описано в примере 2, и содержащей, мкг:

Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A 6,0
ГОА 22000,0
Сапонин 1500,0
Поддерживающая среда До 2000000,0

Авирулентность и безвредность вакцины проверили на 5 головах КРС. Препарат вводили каждому животному под слизистую языка в дозе 2,0 см3, а затем подкожно в дозе 10,0 см3. Наблюдение за клиническим состоянием животных вели в течение 10 суток.

По окончании контроля на авирулентность и безвредность вакцину проверили на иммуногенную активность. Испытание провели на 4 головах телят массой 70÷80 кг. Адсорбат-вакцину вводили подкожно в дозе 2,0 см3. Контрольное заражение телят проводили гомологичным штаммом вируса ящура на 28 день после вакцинации (ДПВ). Результаты исследований представлены в таблице 12.

Приведенные в таблице 12 данные показали, что заболел 1 теленок из 4 голов, 3 были защищены от генерализации процесса на 28 день после вакцинации. Уровень гуморального иммунитета у привитых животных составил 4,81±0,53 log2.

Пример 4.

Проведены испытания адсорбат-вакцины против ящура типа A, изготовленной так, как описано в примере 2, и содержащей, мкг:

Авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа A 30,0
ГОА 22000,0
Сапонин 1500,0
Поддерживающая среда До 2000000,0

Авирулентность и безвредность полученной вакцины проверили на 5 головах КРС. Препарат вводили каждому животному под слизистую языка в дозе 2,0 см3, а затем подкожно в дозе 10,0 см3. Наблюдение за клиническим состоянием животных вели в течение 10 суток после заражения.

По окончании контроля на авирулентность и безвредность вакцину проверили на иммуногенную активность. Испытание провели на 5 головах КРС массой 250÷300 кг и 5 головах телят массой 70÷80 кг. Адсорбат-вакцину вводили подкожно в дозе 2,0 см3. Контрольное заражение проводили гомологичным штаммом вируса ящура на 28 день после вакцинации (ДПВ) для телят и на 90 день для быков. Результаты исследований представлены в таблицах 13÷14.

Приведенные в таблицах 13÷14 данные показали, что заболел 1 бык из 5 голов, а 4 были защищены от генерализации процесса на 90 день после вакцинации а, все 5 голов телят были защищены от генерализации процесса на 28 день после вакцинации. Уровень гуморального иммунитета у привитых животных на момент заражения составил 5,00±0,27 log2 для быков и 6,20±0,63 log2 для телят, что свидетельствует об эффективности испытанной вакцины.

Таким образом, приведенная выше информация свидетельствует о выполнении при использовании предлагаемой вакцины следующей совокупности условий:

вакцина против ящура типа A инактивированная сорбированная, воплощающая предлагаемое изобретение, предназначена для использования в сельском хозяйстве, а именно в ветеринарной вирусологии и биотехнологии;

- для предлагаемого изобретения в том виде, как оно охарактеризовано в независимом пункте формулы изобретения, подтверждена возможность его осуществления с помощью приведенных в заявке или известных до даты приоритета средств и методов;

вакцина против ящура типа A сорбированная инактивированная, изготовленная из штамма A №2045/Киргизия/2007 в соответствии с предлагаемым изобретением, обладает высокой иммуногенной активностью и способна обеспечить эффективную защиту восприимчивых животных против эпизоотического вируса ящура типа A, циркулирующего в странах Закавказья, Центральной Азии, Ближнего и Дальнего Востока.

Источники информации

1. Bojko A. A. Declaration sur I′apparition en URSS d′un type virus aphteux different des souches de type A anterieurement etudiees dans le Pays. BOIE, 1965, 64, V. 2. - P. 1075-1077.

2. Pepep X. Ящур: пер. с нем./ Г.А.Сурковой; под ред. и с предисл. П.В. Малярца. - М.: Колос, 1971. - 432 с.

3. Ящур: монография / А.Н. Бурдов, А.И. Дудников, П.В. Малярец [и др.]. - М.: Агропромиздат, 1990. - 320 с.

4. Вирусные болезни животных / В.Р. Сюрин, А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьев [и др.]. - М.: ВНИИТИБП, 1998. - С.532-548.

5. Временная инструкция по изготовлению и контролю противоящурной концентрированной гидроокись алюминиевой формолвакцины из лапинизированного вируса A22. Утверждена ГУВ СССР 25.03.1971 г.

6. Промышленный регламент на производство вакцины против ящура типов A, O, C, Азия-1, Сат-1, Сат-2 и Сат-3 инактивированной сорбированной моно- и поливалентной (из вируса, выращенного в клетках ВНК-21): утв. Директором ФГУ «ВНИИЗЖ» 11.09.2009. - Владимир, 2009. - 216 с.

7. Промышленный регламент на производство вакцины против ящура инактивированной эмульсионной моно- и поливалентной для профилактики ящура свиней (из вируса, выращенного в клетках ВНК-21): утв. Директором ФГУ «ВНИИЗЖ» 11.09.2009. - Владимир, 2009. - 240 с.

8. Пат. РФ 2294760, МПК A61K 39/135, Вакцина инактивированная сорбированная против ящура типа A/ В.В. Михалишин, Т.Н. Лезова, А.В. Щербаков, Д.В. Михалишин, Н.С. Мамков; ФГБУ «ВНИИЗЖ» - Заявл. 21.12.2004; опубл. 10.06.2006 г. (прототип).

9. Пат. РФ 2140452, МПК A61K 39/135, Штамм N 1707 "АРМЕНИЯ-98" вируса ящура типа A для изготовления диагностических и вакцинных препаратов/ В.М. Захаров, В.К. Спирин, А.И. Гриценко [и др.]; ФГБУ «ВНИИЗЖ» - Заявл. 15.03.1999; опубл. 27.10.1999 г.

10. Пат. РФ 2242513, МПК A61K 39/135, Штамм A (ГРУЗИЯ) 1999/№1721 вируса ящура типа A для изготовления диагностических и вакцинных препаратов; ФГУ «ВНИИЗЖ» - Заявл. 24.11.2003; опубл. 20.12.2004 г.

11. Foot-and-mouth Disease. Sitiation worldwide and major epidemiological events in 2005-2006/ K. Sumption, J. Lubroth, T. Murrai, S. De la Rocque// Empress/Focus on. - 2007. - №1.

12. Пат. РФ 594771, МПК A61K 39/12, Средство для инактивации вирусов при изготовлении противовирусных препаратов/ Н.А. Улупов, А.И. Дудников, П.А. Гембицкий, Д.С.Жук; ВНИЯИ - Заявл. 07.05.1973; опубл. 07.07.93 г.

13. Пат. РФ 2054039, МПК A61K 39/135, Способ очистки и стерилизации культурального вируса ящура/ Т.Н. Лезова, Н.А. Улупов, В.В. Борисов, В.В. Михалишин, А.И. Дудников, П.А. Гембицкий; ВНИЯИ - Заявл. 07.02.1992; опубл. 10.02.1996 г.

14. Авт.свид. СССР 784335, C12Q 1/02, Способ определения качества вирусного сырья/ А.Ф. Бондаренко; ВНИЯИ - Заявл. 04.07.1979; опубл. 20.03.2000 г.

15. Пат. 2451745 Российская Федерация, МПК A61K 39/135, Штамм A 2045/Киргизия/2007 вируса ящура Aphtae epizooticae типа A для контроля антигенной и иммуногенной активности противоящурных вакцин и для изготовления биопрепаратов для диагностики и специфической профилактики ящура типа A/ Е.В. Белик, В.В. Борисов, А.В. Щербаков, С.Р. Кременчугская [и др.]; ФГБУ «ВНИИЗЖ» - Заявл. 26.07.2010; опубл. 27.05.2012 г.

16. OIE. Manual of diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial animals (Mammals, Birds and Beers). - 6 th ed. - Paris, 2008. - Vol.1.- P 203÷207.

17. Selection of foot and mouth disease vaccine strains - a review/ D.J. Paton, J.F. Valacher, J. Bregman [et al.]// Rev. Sci. Techn. OIE. -2005. - Vol.24, №3. - P. 981÷993.

Таблица 1
Антигенный спектр штамма А №2045/Киргизия/2007 вируса ящура серотипа А по данным РСК
Сравниваемые штаммы Показатели
r1 r2 R%
А/Иран/97 0,05 0,11 8
А22/Ирак 24/64 0,08 1 28
А/Иран/05 0,46 1 68
А/Турция/Об 0,59 0,76 66
А22 №550/64 0,02 1 14
Примечание: R s: 40% - штаммы вируса ящура относятся к одному подтипу
R=(%): 25÷40 - к разным подтипам.
Таблица 2
Антигенное соответствие (r1) в РМН штамма А №2045/Киргизия/2007 штаммам вируса ящура типа А
Штаммы Показатель r1
А/Иран/97 0,125
А22 №550 0,17
А22 Ирак 24/64 0,6
А Турция/Об 0,5
Таблица 3
Антигенное соответствие (r1) в ИФА штамма А №2045/Киргизия/2007 штаммам вируса ящура типа А
Штаммы Показатель r1
А22 №550 0,24
А22 Ирак 24/64 0,24
А Иран/97 0,19
А Турция/06 0,5
Таблица 4
Биологические свойства вируса эпизоотического штамма А №2045/Киргизия/2007 вируса ящура типа А
Система репродукции вируса Время проявления биологической активности (часы) Количество адаптационных пассажей Характеристика адаптированного материала
Активность в РСК Титр инфекционной активности (Ig ТЦД50/см3)
СП 20 3 1:2 6,5
ПСГК-30 20 3 1:6 7
IB-RS-2 24 4 1:4 6,33
ВНК-21 18 9 1:12 7,5-8,25
Таблица 5
Определение типа вируса в 33%-ной суспензии афтозного материала в РСК (экспертиза №2045 «Киргизия/07»)
г/и сыворотки в рабочем разведении Экспертиза №2045 Контроль
цельный 1:2 1:4 1:8 к/а A/Турция/06 О/Приморский/2000 Азия-1 Амурский/2005 Сат-1 Сат-2 Сат-3 б/а
А/Турция/06 4 4 3 - 4 - - - - -
О/Приморский/2000 - - - - - 4 - - - - -
Азия-1 Амурский/2005 - - - - - - 4 - - - -
Сат-1 - - - - - - - 4 - - -
Сат-2 - - - - - - - - 4 - -
Сат-3 - - - - - - - - - 4 -
б/с - - - - - - - - - - -
б/к 4 4 4 4 4 4 4 4 4 4 4
Примечание: 4 - 100% задержка гемолиза;
«-» - полный гемолиз;
б/с - без сыворотки;
б/а - без антигена;
б/к - без комплемента
Таблица 6
Культивирование вируса ящура типа А штамма А №2045/Киргизия/2007 в суспензии клеток ВНК-21
№ п/п Концентрация клеток (млн/см3) Доза заражения (ТЦД50/кл) Длительность репродукции (часы) Титр вируса (Ig TLW50/CM3) ВСЕ (мкг/см3) 146S+75S компоненты (мкг/см3) % выхода 146S+75S компонентов
1 2,2 0,1 18 2,0 - -
2 2,2 0,01 18 - 1,6 - -
3 2,2 0,001 18 - 1,67 - -
4 2,0 0,4 7 8,00 1,72 1,48 86,3
5 1,2 1,1 9,5 8,00 1,67 1,55 93,1
6 3,8 0,01 15 7,75 2,89 2,64 91,4
Таблица 7
Культивирование вируса ящура типа А штамма А (Грузия) 1999/№1721-ДЕП в суспензии клеток ВНК-21
№ п/п Концентрация клеток (млн/см3) Доза заражения (ТЦД50/кл) Длительность репродукции (часы) Титр вируса (Ig ТЦД50/см3) ВСБ (мкг/см3) 146S+75S компоненты (мкг/см3) % выхода 146S+75S компонентов
1 2,5 1,5 14,0 8,25 2,93 1,72 58,7
2 2,5 1,2 15,0 8,50 3,12 1,80 57,7
3 3,0 1,2 17,0 8,00 2,06 1,33 64,6
4 2,6 1,1 15,5 8,25 2,71 1,83 67,5
5 2,3 1,0 16,5 7,50 2,38 1,27 53,4
6 2,8 1,0 14,5 7,75 2,27 1,49 65,6
7 2,7 0,6 16,0 7,50 2,06 1,34 65,0
8 3,1 0,05 18,0 7,75 2,31 1,19 51,5
9 3,5 0,001 20,0 7,25 2,54 1,76 69,3
Таблица 8
Культивирование вируса ящура типа А штамма А №1707 «Армения-98-ДЕП» в суспензии клеток ВНК-21
№ п/п Концентрация клеток (млн/см3) Доза заражения (ТЦД50/кл) Длительность репродукции (часы) Титр вируса (Ig ТЦД50/см3) ВСБ (мкг/см3) 146S+75S компоненты (мкг/см3) % выхода 146S+75S компонентов
1 2,5 1,5 14,5 8,00 3,30 2,20 66,8
2 2,5 1,1 16,0 8,00 2,29 1,33 58,2
3 2,5 1,0 16,5 7,75 2,24 1,21 54,1
4 2,6 0,91 14,5 8,00 2,53 1,52 60,1
5 2,6 0,5 15,5 7,75 1,73 0,89 51,5
Таблица 9
Культивирование вируса ящура типа А штамма А22 №550 в суспензии клеток ВНК-21
№ п/п Концентрация клеток (млн/см3) Доза заражения (ТЦД50/кл) Длительность репродукции (часы) Титр вируса (Ig TЦД/cм3) ВСБ(мкг/см3) 146S+75S компоненты (мкг/см3) % выхода 146S+75S компонентов
1 2,5 1,5 13 8,00 2,48 2,19 88,3
2 2,6 1,0 12 7,25 1,17 1,04 88,8
3 2,7 1,0 11 7,75 2,00 1,83 91,6
4 2,4 0,8 14 8,00 1,78 1,48 89,3
5 2,4 0,5 12 7,50 1,34 1,26 94,3
6 3,0 0,05 13 7,25 2,06 1,80 87,2
Таблица 10
Сравнительные данные по устойчивости штамма вируса ящура А (Грузия) 1999/№1721 и штамма А №2045/Киргизия/2007 к инактивации АЭЭИ и стерилизующей очистке ПГМГ
Штамм после культивирования после инактивации и очистки
ВСБ м кг/мл 146S+75S м кг/мл ВСБ мкг/мл 146S+75S мкг/мл
А №2045/Киргизия/2007 3,12 1,80 2,69 1,93
А (Грузия) 1999/№1721 n=5 2,64±0,19 1,59±0,2 2,35±0,11 1,53±0,12
+- 0,48 0,21 0,34 0,4
Таблица 11
Оптимальный компонентный состав вакцины против ящура типа A инактивированной сорбированной
Ингредиенты Количество (мкг/1 cм3)
Минимум Рекомендуемые Максимум
Авирулентный и очищенный антигенный материал в виде иммуногенных (146S и 75S) компонентов вируса ящура типа А штамма А №2045/Киргизия/2007 3,0 ≥3,0 >3,0
ГОА 11000,0 12000,0 15000,0
Сапонин 500,0 750,0 1500,0
Поддерживающая среда До 1000000,0 До 1000000,0 До 1000000,0
Таблица 12
Результаты исследования адсорбированной вакцины против ящура типа А из штамма А №2045/Киргизия/2007 на телятах
№ п/п Титр BHA log2 против A №2045/Киргизия/2007 на ДПВ Наличие генерализации
7 14 21 28
1 5,25 6,25 5,25 5,00 -
2 4,50 ≤6,50 6,00 6,25 -
3 5,25 6,25 5,75 4,00 +
4 3,75 ≤6,50 6,00 4,00 -
M±m 4,69±0,36 р<0,001 6,38±0,07 р<0,001 5,75±0,18 р<0,001 4,81±0,3 р<0,005 1/4
Таблица 13
Результаты исследования адсорбированной вакцины против ящура типа А из штамма А №2045/Киргизия/2007 на быках
№ п/п Титр ВНА log2 против А №2045/Киргизия/2007 на ДПВ Наличие генерализации
7 14 21 28 35 56 77 83 90
1 5,75 6,00 5,25 5,75 5,25 4,50 ≥5,25 ≥5,25 5,50 +
2 7,00 6,25 5,50 6,50 5,50 4,75 5,00 ≥5,25 5,00 +
3 7,50 7,00 7,25 7,00 5,75 4,75 5,00 ≥5,25 5,50 -
4 5,25 6,00 5,50 5,25 5,50 5,00 3,50 4,50 4,00 +
5 7,75 6,25 5,00 5,25 4,75 3,75 3,50 ≥5,25 5,00 +
M±m 6,65±0,49 6,30±0,18 5,70±0,40 5,95±0,35 5,35±0,17 4,55±0,22 4,45±0,39 5,10±0,15 5,00±0,27 4/5
р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001 р<0,001
Таблица 14
Результаты исследования адсорбированной вакцины против ящура типа А из штамма А №2045/Киргизия/2007 на телятах
№ п/п Титр ВНА log2 против А №2045/Киргизия/2007 на ДПВ Наличие генерализации
7 14 21 28
1 7,00 6,00 6,50 6,50 -
2 7,75 6,00 6,00 7,25 -
3 6,75 6,00 5,00 6,50 -
4 7,50 6,75 ≤4,5 3,75 -
5 8,00 6,25 6,00 7,00 -
M±m 7,4±0,23 р<0,001 6,20±0,15 р<0,001 5,60±0,37 р<0,001 6,20±0,63 р<0,005 0/5

1. Вакцина против ящура типа A инактивированная сорбированная, содержащая активное вещество и целевые добавки, отличающаяся тем, что в качестве активного вещества она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма вируса Aphtae epizooticae, сем. Picornaviridae, рода Aphtovirus, серотипа A, депонированного в коллекции ФГУ «ВГНКИ» под регистрационным номером производственный штамм вируса ящура серотипа A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, в эффективном количестве.

2. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный в чувствительной биологической системе и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

3. Вакцина по п.2, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток животного происхождения и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

4. Вакцина по п.3, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A.

5. Вакцина по п.4, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A в количестве не менее 3,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

6. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что в качестве целевой добавки она содержит адъювант-сорбент гидроокись алюминия (ГОА).

7. Вакцина по п.6, отличающаяся тем, что она содержит ГОА предпочтительно в количестве 11000,0÷15000,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

8. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что в качестве целевой добавки она содержит адъювант сапонин.

9. Вакцина по п.8, отличающаяся тем, что она содержит адъювант сапонин предпочтительно в количестве 500,0÷1500,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

10. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что в качестве целевой добавки она содержит поддерживающую среду.

11. Вакцина по п.10, отличающаяся тем, что она содержит поддерживающую среду в количестве до 1000000,0 мкг в 1 см3 готового препарата.

12. Вакцина по любому из пп.1-11, отличающаяся тем, что она содержит авирулентный и очищенный антигенный материал из штамма A №2045/Киргизия/2007-ДЕП, полученный предпочтительно в перевиваемой культуре клеток ВНК-21 и представляющий собой суспензию, содержащую преимущественно 146S и 75S иммуногенные компоненты вируса ящура типа A, ГОА, сапонин и поддерживающую среду в соотношении, мкг:

Антигенный материал Не менее 3,0
ГОА 11000,0÷15000,0
Сапонин 500,00÷1500,0
Поддерживающая среда До 1000000,0.



 

Похожие патенты:
Изобретение относится к медицинской вирусологии и микробиологии. Способ оценки противооспенной активности лечебно-профилактических препаратов включает введение в организм модельных животных контрольной и испытуемой групп по заданной схеме суспензии исследуемого противовирусного препарата.
Изобретение относится к области медицины. Способ предусматривает отделение подвижных сперматозоидов от спермоплазмы и сопутствующих клеток путем центрифугирования и последующей инкубации в специальных средах с целью забора супернатанта, содержащего «отмытые» сперматозоиды для проведения оплодотворения.

Изобретение касается набора олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Хунин методом полимеразной цепной реакции в реальном времени.

Изобретение касается набора олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченного зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени.
Представленный способ получения бактериофага включает: засев бактериальной культуры штамма-хозяина в титре 108-109 КОЕ/мл в сосуд для культивирования на скошенную плотную питательную среду с толщиной слоя от 10 мм до 25 мм, культивирование в течение 3-3,5 часов при оптимальной температуре для роста культуры штамма-хозяина, затем на полученный газон культуры штамма-хозяина засевают маточный бактериофаг в титре 105-106 БОЕ/мл и культивируют в течение 13-15 часов при оптимальной температуре и толщине слоя воздуха над поверхностью плотной питательной среды от 25 мм до 40 мм.

Изобретение относится к области биотехнологии, вирусологии и медицины. Предложен реассортантный вирус гриппа для производства вакцин.

Изобретение относится к области биотехнологии и касается синтетических олигонуклеотидов-праймеров. Представленные праймеры фланкируют участки генов PB2, PB1, PA, NP, MP, NS низкопатогенных вирусов гриппа птиц и не дают перекрестных реакций с родственными видам.
Изобретение относится к области вирусологии и касается штамма вируса гриппа H10N7-cyбтипа. Охарактеризованный штамм вируса гриппа A/pochard/Siberia/249/08-МА H10N7-субтипа выделен из клоакального смыва красноголового нырка и адаптирован к линии BALB/c мышей.
Изобретение относится к области ветеринарной микробиологии, вирусологии и биотехнологии и касается способа получения вакцины против инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота.
Изобретение относится к медицинской вирусологии и микробиологии. Способ оценки активности лечебно-профилактических препаратов против вируса натуральной оспы включает введение в организм модельных животных контрольной и испытуемой групп по заданной схеме суспензии исследуемого противовирусного препарата, интраназальное заражение их штаммом вируса натуральной оспы, инкубацию вируса в организме животных и определение концентрации вируса в легких животных с последующим вычислением оценочных показателей снижения концентрации вируса в легких.
Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при изготовлении вакцины против ящура. Способ изготовления вакцины против ящура включает культивирование вирусного антигена в суспензионной культуре клеток ВНК-21 при температуре 36-37 °С, очистку вирусной суспензии от балластных примесей, инактивацию, концентрирование полученного антигена вируса ящура и соединение концентрата антигена с адъювантом, при этом очистку вирусной суспензии от балластных примесей проводят добавлением производных полигуанидинов в конечной концентрации 0,005-0,01% или смеси хлороформа и производных полигуанидинов, взятых в весовых соотношениях (40-160):1, соответственно, в конечной концентрации 0,4-0,8.
Изобретение относится к биотехнологии, ветеринарной вирусологии и микробиологии. Предложено применение этония в качестве адъюванта для производства сорбированной противоящурной вакцины, где этоний используют в виде 10%-ного водного раствора, который вносят в состав противоящурных вакцин в количестве 750 мкг на 1 см3 препарата.

Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к полиэпитопному вакцинному белку, предназначенному для иммунизации против вируса ящура, нуклеиновой кислоте, кодирующей данный белок, рекомбинантной плазмиде pA7248-AMV-H-PE для продукции в растениях данного белка и к вакцинному препарату для профилактики и защиты от инфекции, вызываемой вирусом ящура.

Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии. .

Изобретение относится к ветеринарной вирусологии и биотехнологии. .

Группа изобретений относится к медицине, а именно к биофармацевтике, и может быть использована для сохранения иммуногенной композиции в пригодном состоянии для введения животному. Для этого указанная композиция содержит антиген ящура (FMD) и эмульсию, которая является единичной эмульсией при первой температуре ниже температуры тела животного, и указанная эмульсия обращается при второй температуре между первой температурой и температурой тела. Способ включает: предоставление композиции, замораживание композиции и хранение замороженной композиции до ее востребования для введения животному. Группа изобретений также относится к способу тестирования иммуногенной композиции. Данная группа изобретений позволяет достигнуть увеличение срока хранения вакцины против FMD, которая основана на эмульсии в качестве адъюванта, при этом можно применять процесс небыстрого замораживания, не оказывая воздействие на адъювантные свойства эмульсии. 4 н. и 9 з.п. ф-лы, 6 ил., 3 пр.
Наверх